1. اختبار نخر العضلات Caenorhabditis elegans باستخدام Aeromonas
ملاحظة: لتجنب التلوث، يجب تنفيذ هذه الخطوات في غطاء تدفق طبقي.
- في اليوم الذي تزرع فيه ديدان L1 على وسط نمو الديدان الخيطية المغنية (ENGM) المنتشرة ب Escherichia coli OP50، قم باختيار مستعمرة واحدة لكل من سلالات Aeromonas الأربعة والإشريكية القولونية OP50 وزراعة مرق 2 مل من Luria-Bertani (LB) عند كل منها عند 37 درجة مئوية لمدة 16 ساعة. ملاحظة: هنا، تم استخدام السلالات البكتيرية التالية: الإشريكية القولونية OP50، المصدر الغذائي الطبيعي ل C. elegans. A. dhakensis AAK1، أول عزل سريري ممرض بالكامل متسلسل متواصل. أ. هيدروفيليا A2-066، A. veronii A2-007، وA. caviae A2-9307121 هي عزلات سريرية ممثلة من مستشفى جامعة تشنغ كونغ الوطني.
- قس امتصاص مرق البكتيريا بمقدارOD 600 واضبط مرق البكتيريا إلى OD600 = 2.0 باستخدام مرق LB. ضع 30 ميكرولتر من المرق البكتيري وانشر على ألواح نمو الديدان الخيطية بطول 6 سم. زرع الصحون في درجة حرارة الغرفة طوال الليل.
- في اليوم الذي تنمو فيه ديدان L1 إلى مرحلة L4، يتم نقل 50 دودة إلى كل صفيحة NGM مع كل من سلالات Aeromonas الأربع أو E. coli OP50. حضن صفائح NGM عند 20 درجة مئوية. انقل الديدان كل 24 ساعة إلى صفائح NGM المحضرة حديثا مع البكتيريا.
- التقط صور للعضلات باستخدام مجهر فلوري.
- اختر 10 ديدان عشوائيا على جل أغاروز بنسبة 2٪ بلون M9 متوسط على شريحة كهربائية. شل الديدان باستخدام 2 ميكرولتر من أزيد الصوديوم 1٪ في وسط M9 على الأغاروز لأقل من 5 دقائق قبل التقاط الصور.
- ضع غطاء والتقاط صور العضلات باستخدام فلتر بروتين فلوري أخضر (GFP) على مجهر فلوري مزود بكاميرا شحنة متصلة. التقط صور العضلات بعد 24 و48 و72 ساعة بعد مرحلة L4.
قم بإجراء تحليل الصور وتحضير الأشكال باستخدام برنامج معالجة الصور.
ملاحظة: تعريفات الدرجات ومستويات تلف العضلات موضحة في الشكل 1، حيث تم سرد المعايير كما يلي: 3 نقاط لنقص ألياف العضلات؛ نقطتان للألياف العضلية الممزقة أو المكسورة؛ نقطة واحدة لألياف العضلات المثنية؛ 0 نقاط لألياف عضلية صحية.