يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

اختبار نخر العضلات في C. elegans الناتج عن سلالة ممرضة من Aeromonas

242 مشاهدة

فبراير 26, 2026

في هذه المقالة

الملخص

المصدر: تشين، ي. وآخرون، تقييم ضراوة ومسببات عدوى إيروموناس في نموذج التهاب الكاينورهابديتس الغريب . J. Vis. Exp. (2018)

يوضح هذا الفيديو اختبار نخر العضلات في C. elegans (Caenorhabditis elegans) باستخدام سلالات Aeromonas الممرضة. من خلال تغذية الديدان التي تعبر عن البروتين الفلوري الأخضر (GFP) على ألواح بذور Aeromonas، يحاكي الاختبار العدوى البكتيرية ويكشف عن تلف الأنسجة من خلال التصوير الفلوري. يشير فقدان البنية العضلية وإشارة GFP التدريجي إلى استجابة نخرية ناتجة عن إيروموناس.

البروتوكول

1. اختبار نخر العضلات Caenorhabditis elegans باستخدام Aeromonas

ملاحظة: لتجنب التلوث، يجب تنفيذ هذه الخطوات في غطاء تدفق طبقي.

  1. في اليوم الذي تزرع فيه ديدان L1 على وسط نمو الديدان الخيطية المغنية (ENGM) المنتشرة ب Escherichia coli OP50، قم باختيار مستعمرة واحدة لكل من سلالات Aeromonas الأربعة والإشريكية القولونية OP50 وزراعة مرق 2 مل من Luria-Bertani (LB) عند كل منها عند 37 درجة مئوية لمدة 16 ساعة. ملاحظة: هنا، تم استخدام السلالات البكتيرية التالية: الإشريكية القولونية OP50، المصدر الغذائي الطبيعي ل C. elegans. A. dhakensis AAK1، أول عزل سريري ممرض بالكامل متسلسل متواصل. أ. هيدروفيليا A2-066، A. veronii A2-007، وA. caviae A2-9307121 هي عزلات سريرية ممثلة من مستشفى جامعة تشنغ كونغ الوطني.
  2. قس امتصاص مرق البكتيريا بمقدارOD 600 واضبط مرق البكتيريا إلى OD600 = 2.0 باستخدام مرق LB. ضع 30 ميكرولتر من المرق البكتيري وانشر على ألواح نمو الديدان الخيطية بطول 6 سم. زرع الصحون في درجة حرارة الغرفة طوال الليل.
  3. في اليوم الذي تنمو فيه ديدان L1 إلى مرحلة L4، يتم نقل 50 دودة إلى كل صفيحة NGM مع كل من سلالات Aeromonas الأربع أو E. coli OP50. حضن صفائح NGM عند 20 درجة مئوية. انقل الديدان كل 24 ساعة إلى صفائح NGM المحضرة حديثا مع البكتيريا.
  4. التقط صور للعضلات باستخدام مجهر فلوري.
    1. اختر 10 ديدان عشوائيا على جل أغاروز بنسبة 2٪ بلون M9 متوسط على شريحة كهربائية. شل الديدان باستخدام 2 ميكرولتر من أزيد الصوديوم 1٪ في وسط M9 على الأغاروز لأقل من 5 دقائق قبل التقاط الصور.
    2. ضع غطاء والتقاط صور العضلات باستخدام فلتر بروتين فلوري أخضر (GFP) على مجهر فلوري مزود بكاميرا شحنة متصلة. التقط صور العضلات بعد 24 و48 و72 ساعة بعد مرحلة L4.

قم بإجراء تحليل الصور وتحضير الأشكال باستخدام برنامج معالجة الصور.
ملاحظة: تعريفات الدرجات ومستويات تلف العضلات موضحة في الشكل 1، حيث تم سرد المعايير كما يلي: 3 نقاط لنقص ألياف العضلات؛ نقطتان للألياف العضلية الممزقة أو المكسورة؛ نقطة واحدة لألياف العضلات المثنية؛ 0 نقاط لألياف عضلية صحية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Figure_1.jpg

الشكل 1: الدرجات المقابلة لنخر العضلات في C. elegans الناتج عن عدوى Aeromonas. معايير نخر العضلات والدرجات المقابلة هي كما يلي: 3 نقاط لألياف العضلات المفقودة؛ نقطتان للأ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
حاضنة الهزازييه ديرLM-570Rحضانة البكتيريا
K₂HPO₄ج.ت. بيكرMP021519455تحضير وسيط الزراعة
KH₂PO₄ج.ت. بيكر3246-05تحضير وسيط الزراعة
Na₂HPO₄ج.ت. بيكرMP021914405تحضير وسيط الزراعة
NaClسيغما31434تحضير وسيط الزراعة
MgSO₄سيغماM7506تحضير وسيط الزراعة
أغارديفكو214530تحضير وسيط الزراعة
CaCl₂سيغماC1016تحضير وسيط الزراعة
الكوليسترولسيغماC8503تحضير وسيط الزراعة
الإيثانولسيغما32205تحضير وسيط الزراعة
KOHسيغماP5958تحضير وسيط الزراعة
لوحة بتري بطول 6 سمألفا بلس46تحضير طبق الأجار
الببتون البكتيريAffymetrix/USBAAJ20048P2تحضير وسيط الزراعة
مستخلص الخميرةسيغما92144تحضير وسيط الزراعة
حمض الستريك • H₂Oسيغماحوالي 1909تحضير وسيط الزراعة
سترات ثلاثي البوتاسيوم • H₂Oسيغما104956تحضير وسيط الزراعة
FudRسيغما1271008تحضير وسيط الزراعة
ثنائي الصوديوم EDTAسيغماE1644تحضير وسيط الزراعة
FeSO₄·7H₂Oسيغما215422تحضير وسيط الزراعة
MnCl₷4H₂Oسيغما221279تحضير وسيط الزراعة
ZnSO₄·7H₂Oسيغما204986تحضير وسيط الزراعة
CuSO₄·5H₂OسيغماC8027تحضير وسيط الزراعة
التريبتونسيغما16922تحضير وسيط الزراعة
نظام المجهرنيكونإكليباز تي مقلوبتصوير المجهر
كاميرا CCD العلميةكيماجينغريتيغا-2000R فاست 1394تصوير المجهر

الوسوم

C elegans Aeromonas GFP