تمت مراجعة جميع الإجراءات المتعلقة بنماذج الحيوانات من قبل لجنة رعاية الحيوانات المؤسسية المحلية ومجلس مراجعة الطب البيطري في JoVE.
- تحضير وشحن أنسجة الجرذ غير المصابة والمصاب ب C. difficile
- قم بتلقيح الفئران الذكور C57BL/6 بمضادات حيوية (0.5 ملغ/مل سيفوبيرازون أو 0.5 ملغ/ملليتر سيفوبيرازون + 1 ملغ/مل فانكومايسين) في ماء الشرب بإرادته لمدة 5 أيام، تليها فترة تعافي لمدة يومين ثم إصابة.
- قم بقتل الحيوانات عن طريق الاختناق بثاني أكسيد الكربون واصطدم عضو الساق الفأر فورا. أضعه في خليط بنسبة 20٪ من مركب درجة حرارة القطع المثلى (OCT) في ماء مقطر.
- ضع العينات على الثلج الجاف ثم تعبئتها وشحنها للتحليل؛ خزنها عند -80 درجة مئوية حتى التحليل.
2. التقميد في أنسجة الجرذ غير المصابة مقابل أنسجة الفأر المصابة ب C. difficile
- نظف جميع معدات التقسيم بالتجميد عن طريق الشطف بالإيثانول بنسبة 100٪ واتركه لتجف قبل وضع العينات في غرفة التجميد. جهز شرائح المجهر المطلية ب ITO باستخدام أوممتر لتحديد جانب الشريحة الذي يحتوي على الطلاء الموصل. استخدم خط ذو طرف ماسي لنقش ووضع علامة على الجانب المطلي ب ITO من شريحة المجهر.
ملاحظة: يجب ارتداء معدات الحماية الشخصية المناسبة، بما في ذلك القفازات، ونظارات المختبر، ومعطف المختبر، وأكمام التجميد الكامل. - قم بإجراء القطع بالتجميد على ميكروتوم بحثي. انقل نسيج السيكا المدمجة في OCT من فريزر بدرجة حرارة -80 درجة مئوية إلى غرفة الميكروتوم الكريوميكروتومية (درجة حرارة غرفة 30 °م، -28 °م) على الثلج الجاف. يتم تركيب عينات الأنسجة التي سيتم مقارنتها باستخدام مطياف الكتلة التصويرية (مثل الضابط غير المصب مقابل المصابة بعدوى الديفيسيل) على نفس شريحة المجهر لضمان تطابق العينات لكلا النوعين وتمكين مقارنات دقيقة للمستقلبات.
- داخل غرفة الميكروتوم الكريوميكروتوم، قم بتركيب النسيج المدمج في OCT على قالب عينة باستخدام محلول OCT إضافي. بعد أن يتصلب محلول OCT، ثبت العصا على رأس العينة. ابدأ التشريح بالتجميد بزيادات 10-50 ميكرومتر للوصول إلى عمق النسيج/المستوى المطلوب للعضو.
- بمجرد الوصول إلى المقطع العرضي الأمثل للنسيج، ابدأ بجمع المقاطع بسماكة 12 ميكرومتر. قم بتحريك الشريحة بلطف باستخدام فرش الرسم الفني وضعها على شريحة مجهرية مغطاة بالتفلون.
- لف شريحة المجهر المغطاة ب ITO فوق قسم الأنسجة لالتقاط النسيج من الشريحة المغطاة بالتفلون. قم بتثبيت قسم الأنسجة على شريحة المجهر عن طريق الضغط على راحة اليد على ظهر شريحة المغلفة ب ITO. استمر في إذابة القاعدة حتى يتحول قسم الأنسجة من شفاف إلى ملمس معتم/غير لامع.
- نقل شرائح المجهر المثبتة على الأنسجة على الثلج الجاف إلى صندوق جاف مع مادة مسبب للتخزين للتحليل في نفس اليوم، أو تخزينها عند -80 درجة مئوية للتخزين لفترات طويلة.
3. تحضير أنسجة العضلات غير المصابة ضد الأنسجة المخروطية المصابة بالكورديا ديفيسيل لتطبيق المصفوفة وتحليل الطيف الكتلي التصويري MALDI
- تنفيذ تطبيق مصفوفة MALDI (درجة حرارة الفوهة 30 °م، ثماني محاولات، معدل تدفق 0.1 مل/دقيقة، نمط CC، وقت جفاف 0 ثانية، 10 psi).
- إجراء تحليل الطيف الكتلي التصويري MALDI
- تحليل صور الأيونات من عدة نسخ بيولوجية وقارن النتائج للدلالة عبر مقارنات مخطط صندوق الشدة باستخدام برنامج SCiLS الإحصائي المشار إليه أعلاه.
ملاحظة: ستعتمد الاختبارات والمقارنات الإحصائية المناسبة على التطبيق ويمكن أن تشمل التقسيم المكاني، ونماذج التصنيف، والتحليل المقارن لتحديد السمات الطيفية التمييزية والمرتبطة به. يمكن أن تشمل التحليلات المقارنة تعيين قيم p للميزات ذات الدلالة، وتوليد تحليلات المكونات الرئيسية لمقارنات الأنسجة، وتصور مخططات الصندوق لتحديد التباينات. من المفيد أيضا تصور الأنسجة باستخدام مجهر الحقل المضيء لقسم النسيج المصبوغ بالهيماتوكسيلين والإيوزين (H&E) بعد تصوير مطيافية الكتلة. يتيح ذلك تحديد الخصائص الشكلية في الأنسجة بوضوح ويمكن تحليله بالتشاور مع أخصائي علم أمراض مدرب.