مقالة منهجية

الكشف عن حساسية المضادات الحيوية البكتيرية باستخدام مجهر رامان المحفز للتشتت

مارس 31, 2026

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: تشانغ، م. وآخرون، اختبار الحساسية السريعة لمضادات الميكروبات بواسطة تصوير تشتت رامان المحفز لدمج الديوتيريوم في بكتيريا واحدة. J. Vis. Exp. (2022)

يوضح هذا الفيديو تطبيق مجهر رامان المحفز للتشتت لتقييم القابلية للمضادات الحيوية من خلال تتبع النشاط الأيضي الموسوم بالديوتيريوم. من خلال مراقبة إشارات الكربون-ديوتيريوم، تتيح الطريقة الكشف السريع عن مجموعات البكتيريا المقاومة والمعرضة للتأثير.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. D2O العلاج بالدمج في وجود المضادات الحيوية (الشكل 1أ)

  1. تحقق من تركيز البكتيريا بقياس الكثافة الضوئية (OD) باستخدام فوتوميتر بطول موجي 600 نانومتر.
  2. تخفيف المحلول البكتيري باستخدام وسط مرق مولر-هينتون (MHB) العادي، الذي لا يحتوي على الديوتيريوم، للوصول إلى تركيز خلوي نهائي يبلغ 8 × 105 CFU/mL. استخدم فورتكس بلطف لخلط الخلايا البكتيرية.
  3. تحضير 300 ميكرولتر من محلول البكتيري في سبعة أنابيب دقيقة بحجم 1.5 مل، و600 ميكرولتر من المحلول البكتيري في أنبوب ميكرو واحد بسعة 1.5 مل.
  4. أضف 4.8 ميكرولتر من محلول المضاد الحيوي (جنتاميسين أو أموكسيسيلين) (1 ملغ/مل) إلى الأنبوب الدقيق الذي يحتوي على 600 ميكرولتر من المحلول البكتيري، ليصل التركيز النهائي للمضاد الحيوي إلى 8 ميكروغرام/مل.
  5. خذ 300 ميكرولتر من المحلول من محلول بكتيريا يحتوي على 8 ميكروغرام/مل، وأضيف إلى 300 ميكرولتر أخرى من المحلول البكتيري، لإنتاج محلول بكتيريا مخفف مزدوجا (4 ميكروغرام/مل).
  6. كرر التخفيف التسلسلي المزدوج للمضادات الحيوية للاختبار، جنتاميسين، أو أموكسيسيلين، حتى يتم الوصول إلى الأنبوب الدقيق ذو التركيز الأدنى (0.25 ميكروغرام/مل)، ثم تخلص من 300 ميكرولتر من الأنبوب. لكل من الجنتاميسين والأموكسيسيلين، تتراوح التركيزات التسلسلية بين 0.25 ميكروغرام/مل - 8 ميكروغرام/مل.
    1. اترك أنبوبا واحدا بدون مضادات حيوية ليتم التحكم فيه تماما. سيكون هذا هو الدليل الإيجابي لفحص النشاط الأيضي البكتيري دون علاج بالمضادات الحيوية ولكن مع علاج D2O.
    2. اترك أنبوبا واحدا بدون مضادات حيوية وبدونD2Oللسيطرة السلبية.
  7. حضن البكتيريا مع مضاد حيوي معين (جنتاميسين أو أموكسيسيلين) يحتوي على وسط MHB لمدة ساعة واحدة.
  8. أثناء الحضانة، جهز تخفيفا متسلسلا للمضادات الحيوية التي تحتوي على وسط يحتوي على D2O بنسبة 100٪ مع نفس تدرج تركيز المضادات الحيوية المحضرة في الخطوة 1.6. لكل من الجنتاميسين والأموكسيسيلين، تتراوح التركيزات التسلسلية بين 0.25 ميكروغرام/مل - 8 ميكروغرام/مل.
  9. بعد ساعة من العلاج بالمضاد الحيوي، أضف 700 ميكرولتر من المضاد الحيوي المخفف بشكل متسلسل ومتوسط MHB يحتوي على D2O، إلى 300 ميكرولتر من البكتيريا المعالجة بالمضادات الحيوية بنفس تركيز المضاد الحيوي (المعد في الخطوة 1.6)، على التوالي.
    1. على سبيل المثال، أضف 700 ميكرولتر من وسط MHB يحتوي على D2OX بنسبة 100٪ (يحتوي على 8 ميكروغرام/مل من المضاد الحيوي) إلى 300 ميكرولتر من البكتيريا المعالجة مسبقا بالمضادات الحيوية بحجم 8 ميكروغرام/مل. بنفس الطريقة، ينتقل إلى الأنابيب المقابلة للتركيز التالي، ثم يشكل التجانس عن طريق التوصيل بالماصات صعودا وهبوطا عدة مرات.
    2. أضف 700 ميكرولتر من وسط MHB الخالي من المضادات الحيوية 100٪ يحتوي على D2O، إلى 300 ميكرولتر من البكتيريا الخالية من المضادات الحيوية (المحضرة في الخطوة 1.6.1) كمادة تحكم فارغة.
    3. احتضن عند 37 درجة مئوية في جهاز حضانة عند 200 دورة في الدقيقة لمدة 30 دقيقة إضافية.
      ملاحظة: في هذه الخطوة، يكون التركيز النهائي ل D2O في الوسط للاختبار 70٪.
  10. أولا قم بالطرد المركزي بكمية 1 مل من المضاد الحيوي وعينة بكتيريا معالجة ب D2O بحرارة 6200 × جرام لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية، ثم اغسلها مرتين بماء منقى. وأخيرا، ثبت العينات في محلول فورمالين 10٪ وخزنها عند 4 درجات مئوية.

2. تصوير تشتت رامان المحفز (SRS) لدمج الأيضD2O في بكتيريا واحدة

  1. اغسل 1 مل من محلول البكتيريا الثابت بماء منقي ثم استخدم الطرد المركزي على حرارة 6200 x g لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية. أزل السوبرناتينت. قم بإثراء المحلول البكتيري إلى حوالي 20 ميكرولتر.
  2. وضع المحلول البكتيري على زجاج مغلف بطبقة من البولي-إل-ليسين. ضع العينة في الساندويتش وأغلق التصوير لفحص SRS.
  3. صور البكتيريا عند تردد اهتزاز C-D عند 2168 سم-1 باستخدام مجهر SRS.
    1. إدخال وضبط طول موجة المضخة إلى 852 نانومتر باستخدام برنامج التحكم في الكمبيوتر.
    2. قس طاقة الليزر باستخدام مقياس الطاقة. اضبط قدرة ليزر المضخة عند العينة إلى ~8 ميغاوات وقدرة ليزر ستوكس عند العينة إلى ~40 مللي واط عن طريق ضبط لوحة نصف الموجة أمام خرج الليزر.
      ملاحظة: في مجهر SRS، يوفر ليزر فيمتوثانية قابل للضبط بمعدل تكرار 80 ميجاهرتز ليزري الإثارة المضخة (680 إلى 1300 نانومتر) وستوكس (1045 نانومتر).
  4. عن طريق ضبط براغي مرايا الانعكاس، قم بمحاذاة المضخة وشعاعي ستوكس مكانيا وتوجيه الشعاعين إلى مجهر قائم مزود بنظام مرآة جالفو ثنائية الأبعاد للمسح بالليزر.
    1. استخدم هدف غمر ماء بمقدار 60x لتركيز المضخة وليزر ستوكس على العينة.
    2. استخدم مكثف زيت لجمع الإشارات من العينة في الاتجاه الأمامي.
    3. استخدم فلتر تمرير النطاق لتصفية ليزر ستوكس قبل توجيهه إلى الفوتوديود.
    4. استخرج إشارة رامان المحفزة بواسطة مضخم قفل وكشف الإشارات بواسطة فوتوديود.
  5. قم بتعيين كل صورة SRS لتحتوي على 200 × 200 بكسل ووقت البكسل ليكون 30 ميكروثانية في لوحة تحكم البرنامج. إجمالي زمن الاقتناء لصورة واحدة هو ~1.2 ثانية. اضبط حجم الخطوة على 150 نانومتر، بحيث يكون حجم الصورة حوالي 30 × 30 ميكرومترمربع. صور على الأقل ثلاثة مجالات رؤية لكل عينة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
التضمين الصوتي البصريغوتش وهاوسغوR15180-1.06-LTDتعديل الليزر يشعل شعاع الليزر
أموكسيسيلينسيغما ألدريتشA8523-5G 
مرشح تمرير النطاق الكهربائيالكروماHQ825/150محجب شعاع ليزر ستوكس قبل الفوتوديود
كلوريد الكالسيومسيغما ألدريتشC1016-100Gتعديل الكاتيون
مرق مولر-هينتون المعدل بالتيونفيشر ساينتيفكB12322اختبار حساسية المضادات الميكروبية للكائنات الدقيقة باستخدام طرق تخفيف المرق
الطرد المركزيثيرمو ساينتفيك75002542 
نظارات التغطيةVWR16004-318 
أنبوب الزراعة مع غطاء القطععلامة فيشر149569B 
أكسيد الديوتيريوم 151882مذيب عضوي لإذابة المضادات الحيوية
أكسيد الديوتيريوم-d6سيغما ألدريتش156914المذيب العضوي كمعيار لمعايرة نظام تصوير SRS
الإشريكية القولونية BW 25113مركز المخزون الجيني للقولون7636 
أنابيب الطرد المركزي الدقيق من البولي بروبيلين من إبندورف بحجم 1.5 ملعلامة فيشر05-408-129 
جنتاميسين كبريتاتسيغما ألدريتشG4918 
مرشحات فلوريد بولي فينيليدين المحبة للماءميليبور-سيغماSLSV025NBحجم المسام: 5 ميكرومتر
ليزر نبضي فيمتوثانية إنسايت ديب سيفيزياء الطيفالنموذج: insight X3مصدر ليزر قابل للضبط ومصدر ليزر ثابت عند 1045 نانومتر لتصوير SRS
مضخم القفلزيورخ إنسترومنتHF2LIإزالة التعديل لإشارات SRS
مكثف الزيتأوليمبوسU-AACNA 1.4
سودوموناس إيروجينوزا ATCC 47085 (PAO1)مجموعة ثقافة الأنواع الأمريكيةATCC 47085 
الفوتوديودهاماماتسوS3994-01الكاشف
أنبوب مخروطي بولي بروبيلين 15 ملفالكون14-959-53A 
مرشحات البولي بروبيلينثيرمو ساينتفيك726-2520حجم المسام: 0.2 ميكرومتر
أطباق البتري المعقمةكورنينغ07-202-031 
الحقنة 10 ملعلامة فيشر14955459 
مطياف الفوتومتر فوق بنفسجي/الرؤيةبيكمان كولترالطراز: DU 530قياس الكثافة الضوئية عند طول موجي 600 نانومتر
خلاط الدوامةVWR97043-562 
هدف الماءأوليمبوسUPLANAPO/IR60×، NA 1.2

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة