كروماتوغرافيا الألفة بالهيبارين قم بتحضير 250 مل من المنظم C (50 ملي مولار من هيدروكلوريد تريس(هيدروكسي ميثيل) أمين ميثان (Tris-HCl)، والرقم الهيدروجيني 7.5، و10 ملي مولار من ديثيوثريتول (DTT)، و0.1 ملي مولار من حمض إيثيلين ثنائي أمين رباعي الخليك (EDTA)، و500 ميكرومولار من فينيل ميثيل سلفونيل فلورايد (PMSF)) و250 مل من المنظم D (50 ملي مولار Tris-HCl، والرقم الهيدروجيني 7.5، و10 ملي مولار DTT، و0.1 ملي مولار EDTA، و500 ميكرومولار PMSF، و1 مولار NaCl). ملاحظة: في هذا البروتوكول، يتم الاحتفاظ بنظام الكروماتوغرافيا السائلة السريعة للبروتينات (FPLC) والمحاليل المنظمة والعينة في غرفة باردة عند درجة حرارة 4 مئوية. قم بترشيح المنظمين C وD تعقيمياً باستخدام وحدات ترشيح مخصصة للاستخدام مرة واحدة بمسامية 0.2 ميكرومتر. وبناءً على نظام FPLC المستخدم، اغسل المضخة A والمضخة B بالمنظم C والمنظم D على التوالي. مرر 80% من المنظم C و20% من المنظم D عبر النظام حتى تستقر قراءات الموصلية والأشعة فوق البنفسجية (UV). يعتمد الحد الأقصى لمعدل التدفق على الجهاز؛ ونحن نستخدم عادةً معدل تدفق قدره 5 مل/دقيقة مع حد أقصى للضغط يبلغ 1.0 ميجا باسكال. قم بتجهيز عمود FPLC بطول 80 ملم وقطر 5 ملم يحتوي على 1 مل من راتنج heparin Sepharose (سعة الارتباط القصوى 2.0 مجم من مضاد الثرومبين III البقري لكل مل من الراتنج؛ والضغط الأقصى 1.4 ميجا باسكال). يمكن تجهيز العمود في اليوم السابق لعملية التنقية وتخزينه عند درجة حرارة 4 مئوية. صِل العمود بجهاز FPLC. قم بموازنة العمود باستخدام 20 مل من 80% منظم C و20% منظم D (200 ملي مولار NaCl) بمعدل تدفق 0.5 مل/دقيقة مع حد أقصى للضغط يبلغ 1 ميجا باسكال. يجب أن يجمع الجهاز بيانات في الوقت الفعلي عن الموصلية وامتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 280 نانومتر (A280). يجب أن تستقر قراءات الموصلية والأشعة فوق البنفسجية، وإذا لم تستقر هذه القراءات، استمر في تمرير المحاليل المنظمة عبر العمود حتى تستقر. قلل تركيز NaCl في عينة إنتيجريز الفيروس الرغوي الأولي (PFV IN) إلى 200 ملي مولار بإضافة 1.5 حجم من المنظم C. على سبيل المثال، أضف 15 مل من المنظم C إلى 10 مل من PFV IN. عادةً ما يكون الحجم الإجمالي لدينا حوالي 25 مل. حمِّل عينة PFV IN المخففة على عمود heparin Sepharose بمعدل تدفق 0.5 مل/دقيقة مع حد أقصى للضغط يبلغ 1.0 ميجا باسكال. يظل معدل التدفق وضغط العمود ثابتين طوال عملية التنقية. اجمع السائل المار (flow-through) في أنبوب مخروطي سعة 50 مل. اغسل العمود بـ 20 مل من 80% منظم C و20% منظم D (200 ملي مولار NaCl)، مع جمع ناتج الغسل في أنبوب مخروطي سعة 50 مل. قم بشطف العمود باستخدام تدرج خطي بحجم 30 مل يتراوح من 20% إلى 100% من المنظم D (من 200 ملي مولار إلى 1 مولار NaCl). اغسل العمود بـ 5 مل من 100% منظم D. اجمع التدرج والغسلة النهائية في أجزاء بحجم 0.37 مل. حلل العينة المحملة، والسائل المار، وناتج الغسل، والأجزاء باستخدام الفصل الكهربائي للهلام بولي أكريلاميد-دوديسيل كبريتات الصوديوم (SDS-PAGE) بتركيز 8%. يمتلك PFV IN، بعد قطع وسم السداسي هيستيدين، وزناً جزيئياً قدره 44,394 دالتون، ويظل معامل الانقراض 59,360 سم-1 مولار-1 بدون وسم السداسي هيستيدين. خزن جميع الأجزاء عند درجة حرارة 4 مئوية حتى اكتمال مقايسة النيوكلياز. لوبيز الابن، م. وآخرونالكشف عن التلوث بالنوكلياز وإزالته أثناء تنقية إنزيم integrase الخاص بفيروس Prototype Foamy المأشوب. مجلة التجارب المرئية (J. Vis. Exp). (2017)
يوضح هذا الفيديو إجراء تنقية إنزيم التكامل الفيروسي من التلوث بالنوكلياز البكتيري باستخدام كروماتوغرافيا عمود heparin Sepharose، متبوعة بتحليل SDS-PAGE للتأكد من نقاء البروتين.