تم تنفيذ جميع الإجراءات التي تنطوي على جمع العينات وفقا لإرشادات IRB الخاصة بالمعهد.
< ص الفئة = "jove_title" >
1. تعقيم المواد
ملاحظة: يجب تعقيم جميع المواد والمحاليل قبل الاستخدام.
- تعقيم جميع الأدوات الجراحية ومواد التقطيع الاهتزازية (حامل السكين ، قرص العينة ، الصينية العازلة) في فرن تعقيم جاف لمدة 4 ساعات عند 180 درجة مئوية.
- تعقيم المواد أو المعدات الحساسة لدرجة الحرارة عن طريق الأشعة فوق البنفسجية أو تشعيع جاما.
- تعقيم الوسائط والمحاليل عن طريق التعقيم أو الترشيح من خلال أغشية المسام 0.22 ميكرومتر.
< p class = "jove_title" >
2. إعداد الحلول
- تحضير 15-20 مل من محلول النقل: 50٪ حجم / حجم محلول الملح المتوازن من هانكس (HBSS) درجة الحموضة 7.4 ، 50٪ حجم / حجم متوسط قاعدي للحفاظ على الخلايا العصبية في الدماغ بعد الولادة والبالغين (جدول المواد) ، مكمل ب 10 ملي مولار 4- (2-هيدروكسي إيثيل) -1-بيبرازي إيثان سلفونيك (HEPES) ، 3 مجم / مل جلوكوز ، و 33 ميكروغرام / مل جنتا><ميسين.
ملاحظه: يجب تبريد محلول النقل وتزويده بالأكسجين (فقاعات بغاز الكربوجين) لمدة 20 دقيقة على الأقل قبل جمع العينة.
- قم بإعداد 300 مل من محلول التقطيع (HBSS مكمل ب 10 ملي مولار HEPES و 3 مجم / مل من الجلوكوز) وقم بتبريده في الفريزر إلى نقطة تكوين البلورات الأولي.
- تحضير 20 مل من وسط الاستزراع: وسط قاعدي لصيانة الخلايا العصبية الدماغية بعد الولادة والبالغين (جدول المواد) مكمل بمشتق L-glutamine 1٪ (جدول المواد) ، مكمل 2٪ للزراعة العصبية (جدول المواد) ، 1٪ بنسلين / ستربتومايسين ، و 0.25 ميكروغرام / مل أمفوتريسين B.
< p class = "jove_title" >
3. إعداد جهاز التقطيع
ملاحظة: يتم تنفيذ هذا البروتوكول بشكل مثالي بمساعدة زميل بسبب الخدمات اللوجستية لجمع العينات في غرفة الجراحة.
- في دلو من الثلج المضاف إلى الملح ، اترك محلول التقطيع يرتاح تحت فقاعات خليط الكربوجين (95٪ O2 ، 5٪ CO2) لمدة 20 دقيقة على الأقل قبل الاستخدام.
- قم بإعداد كتلة من 3٪ agarose (حوالي 2 سم × 2 سم × 2 سم) وقم بلصقها على قرص عينة الاهتزاز من أجل إنشاء دعم ميكانيكي إضافي لعينة الأنسجة أثناء التقطيع (الشكل 1E).
- اضبط الاهتزاز للتقطيع: سمك المقطع 200 ميكرومتر ، وتردد الاهتزاز 100 هرتز ، وسرعة التقطيع بين 0.5-1.0 مم / ثانية.
- أغلق صينية الاهتزاز العازلة في قاعدة الاهتزاز وأضف الثلج لإبقائها مبردة قبل استلام محلول التقطيع والعينة ، وطوال عملية التقطيع.
< p class = "jove_title" >
4. جمع العينات
ملاحظة: في هذا البروتوكول ، تم جمع الأنسجة القشرية الحديثة البشرية في غرفة الجراحة ونقلها إلى المختبر.
تنبيه: عند التعامل مع العينات البشرية ، اتبع بروتوكولات السلامة المناسبة التي وضعتها المؤسسة.
- قم بإعداد جهاز النقل (الشكل 1 ج) الذي يتكون من: أسطوانة غاز محمولة بخليط كربوجين متصل بصمام ضغط / تدفق يتحكم في خرج الغاز المتصل بأنبوب سيليكون يربط خرج الغاز بوعاء النقل ؛ سفينة نقل ، عادة ما يكون أنبوب طرد مركزي مخروطي 50 مل مع غطاء مثقب لإدخال الغاز ، تحتوي على محلول النقل ؛ والثلج لتبريد العينة أثناء النقل.
- اجمع العينة وانقلها (الشكل 1 ب) على الفور إلى المختبر. اغمر العينة في محلول النقل البارد (فقاعات باستمرار بخليط الكربوجين).
5. التقطيع
- انقل العينة إلى طبق بتري (100 مم × 20 مم) يحتوي على محلول تقطيع ، وباستخدام أدوات جراحية دقيقة ، قم بإزالة أكبر قدر ممكن من السحايا المتبقية في العينة بعناية (الشكل 1 د).
- اختر أفضل اتجاه للعينة لإنتاج شرائح ذات خصائص خاصة للتصميم التجريبي ، وباستخدام شفرة مشرط رقم 24 ، قم بقص سطح مستو ليكون القاعدة الملصقة على قرص العينة.
- باستخدام ملعقة بلاستيكية يمكن التخلص منها وفرشاة رسم دقيقة ، اجمع الجزء من طبق بتري وجفف المحلول الزائد باستخدام ورق الترشيح (يجف عن طريق الشعيرات الدموية وتجنب لمس جزء الأنسجة بالورق).
- باستخدام الغراء الفائق ، قم بتوصيل الأنسجة بقرص عينة الاهتزاز حتى يتم التصاقها بإحكام بالقرص وتلامس مع كتلة الاغاروز (الشكل 1 ه).
- ضع قرص عينة الاهتزاز (مع تركيب الأنسجة بشكل صحيح) في صينية المخزن المؤقت الاهتزازية المملوءة بمحلول التقطيع الذي يجب أن يغلي أثناء العملية برمتها.
- أغلق حامل السكين في مكانه مع تثبيت شفرة الحلاقة بإحكام.
- يجب أن يغطي محلول التقطيع كلا من العينة والشفرة ، وعندها فقط يبدأ في التقطيع (الشكل 1F).
- قطع العينة إلى شرائح 200 ميكرومتر.
ملاحظه: على الرغم من أن بعض الاهتزازات تقطع العينات تلقائيا ، إلا أن المراقبة الدقيقة والتعديلات الطفيفة في سرعة التقطيع أثناء العملية قد تساعد في إنتاج شرائح أفضل. تجاهل الشرائح الأولية غير المنتظمة.
- انقل الشرائح من الصينية العازلة إلى طبق بتري بمحلول التقطيع وقم بقص الحواف السائبة والأم البيضاء الزائدة إلى نسبة حوالي 70٪ قشرة / 30٪ مادة بيضاء.
< p class = "jove_title" >
6. الثقافة
ملاحظة: قم بتنفيذ هذه الخطوة في خزانة تدفق رقائقي تحت بيئة معقمة.
- أضف 600 ميكرولتر من وسط الاستزراع لكل بئر (في طبق 24 بئر) واحتضنه لمدة 20 دقيقة على الأقل عند 36 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيدالكربون 2 قبل طلاء الشرائح.
- ضع شريحة واحدة لكل بئر باستخدام فرشاة رسم (الشكل 1 ز).
- إذا كان هناك أي آبار غير مستخدمة في اللوحة ، فاملأها ب 400 ميكرولتر من الماء المعقم.
- احتضان اللوحة عند 36 درجة مئوية ، 5٪ ثاني أكسيد الكربون2.
ملاحظه: يجب أن يتم الاستبدال المتوسط الأول في ما بين 8-16 ساعة بعد الطلاء اعتمادا على حجم الشريحة.
- مكمل 10 مل من وسط الثقافة المعد مسبقا مع 50 نانوغرام / مل عامل التغذية العصبية المشتق من الدماغ (BDNF).
ملاحظه: خلال أول 8-16 ساعة ، يتم تحضين الشرائح في 600 ميكرولتر من الوسط لتجنب الحرمان من المغذيات والتحمض ، حيث يتم تسريع الاستهلاك المتوسط في هذه المرحلة. من الخطوة التالية ، يتم ضبط حجم الوسط لكل بئر إلى 400 ميكرولتر.
- قم بإزالة 333 ميكرولتر من الوسط المكيف من كل بئر وأضف 133 ميكرولتر من الوسط الطازج المكممل ب BDNF.
- كرر عملية الاستبدال المتوسط كل 24 ساعة عن طريق استبدال ثلث الوسط المكيف بوسط جديد مكمل BDNF.