مقالة منهجية

إعادة طلاء الخلايا العصبية المتمايزة المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< p class = "jove_content" >المصدر: Calabrese، B. et al. ، إعادة طلاء ما بعد التمايز للخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات للفحص عالي المحتوى لتكوين النواة ونضج المشبك. J. Vis. إكسب. (2019)

يعرض الفيديو طريقة لفصل وإعادة زرع الخلايا العصبية البشرية المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات باستخدام إنزيم محلل للبروتين خفيف. بعد الترشيح والطرد المركزي ، يتم إعادة طلاء الخلايا العصبية على صفيحة مغلفة متعددة الآبار للحضانة ، مما يعزز التعلق والنضج.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. فترة التمايز قبل إعادة الطلاء

  1. قم بتمييز الخلايا العصبية في أطباق 10 سم ، باستخدام بروتوكول من اختيارك ، حتى تشكل الخلايا العصبية شبكة سميكة بعملياتها وتعبر ليس فقط عن العلامات العصبية المبكرة مثل MAP2 أو TuJ1 ، ولكن أيضا عن العلامات المتأخرة مثل NeuN.
  2. قم بتغيير نصف الوسيط المفضل كل 4 أيام أثناء عملية التمايز العصبي.
    ملاحظه: تؤدي التغيرات المتوسطة الأكثر شمولا أو المتكررة إلى تخفيف العوامل الغذائية الأساسيةaq ويمكن أن تتعارض مع النضج.
    1. بالنسبة للخلايا العصبية WT126 المشتقة من iPSC ، استخدم وسائط الزراعة التالية بعد التمايز: 5 مل 100x N2 (عصبي) الملحق ، 10 نانوغرام / مل عامل التغذية العصبية المشتق من الدماغ (BDNF) ، 10 نانوغرام / مل عامل التغذية العصبية المشتق من خط الخلايا الدبقية (GDNF) ، 1 ميكروغرام / مل لامينين ، 200 ميكرومتر حمض الأسكوربيك ، 1 ميكرومتر ثنائي بوتيريل-سي كامبير و 10 مل SM1 ل 500 مل خليط النسر المتوسط / المغذي المعدل من Dulbecco F-12 (DMEM / F12). تدريجيا ، باستخدام تغييرات نصف الوسائط ، استبدل بالوسط القاعدي العصبي (جدول المواد) ونفس المكملات الغذائية.
    2. بالنسبة للخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات أو الخلايا العصبية CVB WT المشتقة من iPSC ، استخدم وسط زراعة ما بعد التمايز التالي: 500 مل متوسط عصبي قاعدي A (جدول المواد) و 500 مل وسط DMEM / F12 مع 2 ميكروغرام / مل لامينين ، 10 مل مكمل الجلوتامين (جدول المواد) ، 0.75 مجم / مل بيكربونات الصوديوم ، 5 مل الحد الأدنى من الأحماض الأمينية غير الأساسية المتوسطة (MEM) ، 0.2 ملي مولار حمض الأسكوربيك ، 10 نانوغرام / مل BDNF ، 20 مل 50x B27 ، و 10 مل 100x N2 مكمل.
فئة

2. طلاء الآبار المتعددة

  1. في اليوم السابق لإعادة الطلاء ، قم بتغطيته ب poly-L-ornithine (PLO). قم بإذابة PLO في ماء معقم لعمل محلول مخزون (10 مجم / مل). قم بتخزين هذا المرق عند -20 درجة مئوية. قم بتخفيف PLO 1: 100 في الماء للحصول على تركيز 50 ميكروغرام / مل عند طلاء الزجاج ونسبة 1: 1,000 (10 ميكروغرام / مل) عند طلاء البلاستيك.
  2. ضع الطلاء مباشرة على الألواح المستهدفة. استخدم حجم الطلاء المناسب لحجم اللوحة (على سبيل المثال ، بالنسبة للوحة 24 بئرا ، ضع 500 ميكرولتر من محلول PLO لكل بئر).
  3. اسمح للأطباق بالجلوس في الظلام طوال الليل في درجة حرارة الغرفة.
  4. استرجع الألواح المطلية في يوم إعادة الطلاء ونقلها إلى خزانة سلامة حيوية معقمة.
  5. استنشق محلول منظمة التحرير الفلسطينية واشطفه مرتين بالماء المعقم.
  6. تمييع اللامينين (1.15 مجم / مل) في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) عند 1: 400 تخفيف.
    ملاحظه: قم بإذابة اللامينين عند 4 درجات مئوية وأضفه بسرعة إلى PBS لتجنب تراكم اللامينين والطلاء غير المتساوي.
  7. استنشق الماء المعقم وقم بتطبيق 500 ميكرولتر من طلاء اللامينين على الآبار المطلية مسبقا ب PLO.
  8. ضع الأطباق في حاضنة 37 درجة مئوية لمدة 4-6 ساعات على الأقل. استخدم حضانات أطول ، حتى 16 ساعة ، للأسطح الزجاجية. استخدم أوقات حضانة ثابتة.
< p class = "jove_title" >3. إعادة طلاء الخلايا العصبية المتمايزة

  1. اشطف لوحة الخلايا العصبية المتمايزة باستخدام PBS مرة واحدة برفق. قم بتفريق PBS برفق أسفل جدار اللوحة ، وليس مباشرة على الخلايا ، لتجنب تعطيلها.
  2. قم
  3. بشفط PBS برفق ، مع الحرص على تجنب لمس الخلايا مباشرة ولكن للشفط من حافة الطبق أثناء قلبها نحو الباحث.
  4. ضع ما لا يقل عن 1 مل من الإنزيم المحلل للبروتين (جدول المواد) لكل لوحة مقاس 10 سم وأعد الخلايا إلى الحاضنة. أضف كميات أكبر قليلا إذا أظهرت غرفة زراعة الأنسجة معدل تبخر مرتفعا بسبب انخفاض الرطوبة.
  5. احتضان الخلايا بإنزيم المحلل للبروتين لمدة 40-45 دقيقة من أجل فصلها عن اللوحة وفصلها عن الخلايا العصبية الأخرى داخل الشبكة العصبية.
    ملاحظه: التوقيت في هذه الخطوة أمر بالغ الأهمية. يمكن أن يؤدي إخماد البروتياز في وقت مبكر جدا إلى زيادة موت الخلايا بعد إعادة الطلاء. توصي الشركة المصنعة للإنزيم المحلل للبروتين باستخدام درجات حرارة أقل بكثير من 37 درجة مئوية مع فترات حضانة أطول لخطوط الخلايا العابرة (على سبيل المثال ، بين عشية وضحاها عند 4 درجات مئوية). ومع ذلك ، يجب تجنب التعامل مع الخلايا العصبية عند 4 درجات مئوية ، لأنها غالبا ما تظهر ضعف البقاء على قيد الحياة بعد التعرض للبرد. تنص الشركة المصنعة أيضا على أن الحضانة لمدة 60 دقيقة مع الإنزيم عند 37 درجة مئوية تؤدي إلى تعطيله الأنزيمي. ومع ذلك ، في تجربة المؤلفين ، فإن حضانة 40-45 دقيقة من الثقافات العصبية المشتقة من hiPSC عند 37 درجة مئوية كافية للتفكك الفعال وبقاء الخلايا العصبية الممتازة عند إعادة الطلاء.
  6. افحص الخلايا العصبية على مجهر تباين الطور أثناء وقت الحضانة واسمح للعلاج بالبروتياز بالاستمرار حتى تنفصل الشبكة العصبية تماما عن اللوحة وتبدأ في التفكك إلى صفائح أصغر عند هز اللوحة لفترة وجيزة تحت المجهر.
  7. قم بإخماد نشاط البروتياز باستخدام 5 مل من وسائط DMEM الطازجة لكل 1 مل من البروتياز في صفيحة مقاس 10 سم لوقف الهضم. قم بإزالة الخلايا برفق على اللوحة 5-8 مرات لتعطيل الشبكة باستخدام الماصات المصلية. احرص على عدم ممارسة الكثير من الضغط عند التقليب ، لأن الخلايا العصبية المتمايزة هشة. لا تستخدم طرف P1000 ، لأن النهاية حادة جدا وضيقة ، وبالتالي يمكن أن تتسبب في تلف الخلايا العصبية.
  8. ضع المحلول مع الخلايا من خلال مصفاة خلوية بشبكة قطرها 100 ميكرومتر في أنبوب مخروطي جديد سعة 50 مل قطرة قطرة.
  9. اشطف المصفاة ب 5 مل إضافية من وسائط DMEM الطازجة ، بعد تصفية الخلايا.
  10. قم بتدوير الخلايا في جهاز طرد مركزي على الطاولة عند 1,000 × جم لمدة 5 دقائق.
  11. أعد الأنبوب المخروطي إلى خزانة السلامة الحيوية واستنشق معظم الوسائط ، مع ترك حوالي 250 ميكرولتر لضمان احتفاظ الخلايا بالرطوبة.
  12. أعد تعليق الخلايا برفق في 2 مل من وسائط DMEM الطازجة. لا تقم بسحب الحبيبات على جانب الأنبوب. بدلا من ذلك ، اقلب الأنبوب المخروطي برفق 2-3 مرات وقم بتمرير الخلايا عبر نهاية ماصة مصلية سعة 5 مل لإخراجها.
  13. ضع 10 ميكرولتر من الخلايا العصبية المعلقة على حافة مقياس كثافة الدم.
  14. أضف 8-10 ميكرولتر من التريبان الأزرق إلى قطرة الخلايا لتقييم صلاحية الخلية خلال خطوة إعادة التعليق هذه. ضع 10 ميكرولتر من هذا الخليط على مقياس كثافة الدم أو عدادات الخلايا الأوتوماتيكية الأخرى. قم بتقييم تلك الخلايا التي تكون مشرقة على أنها قابلة للحياة واستبعد صبغة التريبان الزرقاء.
  15. حدد كمية الخلايا القابلة للحياة / مل ، واستعد لتخفيف محتويات الأنبوب المخروطي وفقا لكثافة الخلية المطلوبة.
  16. لوحة ~ 10,000 خلية لكل بئر للوحة 384 بئر ؛ لوحة ~ 150,000-200,000 خلية لكل بئر للوحة 24 بئرا.
  17. أضف DMEM جديدا إلى الأنبوب المخروطي للخلايا المعلقة لتحقيق التخفيف المناسب وإضافة مكملات إضافية مناسبة مثل B27 و / أو BDNF ، اعتمادا على متطلبات خط الخلية المحدد.
  18. قم بإمالة الأنبوب المخروطي برفق للخلط 2-3 مرات.
  19. قم بشفط طلاء اللامينين من اللوحة المكونة من 24 بئرا أو من اللوحة متعددة الآبار المكونة من 384 بئرا باستخدام ماصة ذات 16 قناة واشطفها مرة واحدة باستخدام PBS.
  20. قم بشفط PBS باستخدام P1000 للوحة 24 بئرا أو ماصة 16 قناة لألواح 384 بئرا.
  21. ضع محلول الخلية على كل بئر بحركة على شكل ثمانية لتجنب التكتل. يمكن أيضا تحسين توحيد الطلاء باستخدام أجهزة معالجة السوائل الآلية.
    ملاحظه: تساعد إضافة اللامينين إلى الوسائط بدءا من 2-4 أيام بعد إعادة الطلاء أيضا في الحفاظ على توزيع متجانس للخلايا.
  22. كرر الخطوتين 3.19 و 3.20 لكل بئر.
  23. أعد اللوحة إلى الحاضنة ، واضبطها على 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون.
  24. بعد يومين ، ابدأ في تغيير نصف الوسيط كل 4 أيام باستخدام وسائط زراعة ما بعد التمايز الموضحة في القسم 1.2.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات حمض الأسكوربيك سيغما أ 4403 أضف 1 مل من مخزون 200 ملي إلى 1 لتر من وسائط N2B27 ديبوتيريل سي كامب سيغما د0627 أضف 1 ميكرومتر BDNF البشري بيبروتك 450-02 10 نانوغرام / مل التركيز النهائي B27 (50X) ثيرموفيشر العلمي 17504044 أضف 20 مل إلى وسائط N2B27 سعة 1 لتر DMEM / F12 مع Glutamax ثيرموفيشر العلمي 31331093 أضف N2 ووزع على 50 مل من الأشكال المخروطية ؛ أغطية التفاف البارافيلم GDNF البشري بيبروتك 450-10 10 نانوغرام / مل التركيز النهائي جلوتاماكس ثيرموفيشر العلمي 35050038 أضف 10 مل إلى 1 لتر من وسائط N2B27 ؛ مكمل الجلوتامين لامينين الفأر سيغما P3655-10 ملغ أضف 100 ميكرولتر إلى 50 مل N2B27 الأحماض الأمينية غير الأساسية MEM ثيرموفيشر العلمي 11140035 أضف 5 مل إلى 1 لتر N2B27 الوسائط مكمل N2 (100X) تقنيات الحياة 17502048 أضف 5 مل إلى 500 مل من الوسائط العصبي أ وسائل الإعلام ثيرموفيشر العلمي 10888022 تتحد مع DMEM/F12 لتوليد وسائط N2B27 لخلايا CVB wt؛ وسائط القاعدة العصبية A الوسائط العصبية القاعدية ثيرموفيشر العلمي 21103049 لخلايا WT126 ؛ الوسائط القاعدية العصبية مكمل SM1 تقنيات الخلايا الجذعية 5711 م إضافة 1:50 إلى الوسائط بيكربونات الصوديوم ثيرموفيشر العلمي 25080-094 أضف 10 مل إلى 1 لتر N2B27 الوسائط تحضير الطبق أطباق زراعة الأنسجة 10 سم فيشر ساينتيك 08772-ه أطباق بلاستيكية معالجة ب TC أطباق ثقافة الأنسجة 6-جيدا توماس العلمية 1194 سنة 80 لوحات NEST لامينين الفأر تقنيات الحياة 23017-015 أضف 1: 400 على البلاستيك بولي أورنيثين خامسا P3655-10 ملغ أضف 1: 1000 على البلاستيك ماء مقطر فائق النقاء تقنيات الحياة 10977-015 لتخفيف بولي إل أورنيثين الكواشف المطلية مصفاة خلية 100 ملي متر كورنينج 431752 معقم ، ملفوف بشكل فردي 384 بئر صفيحة, غير مطلي بيركين إلمر 6007550 معطف مع منظمة التحرير الفلسطينية واللامينين DPBS تقنيات الحياة 14190144 محلول ملحي Dulbecco المخزن بالفوسفات ألواح بولي دي ليسين مطلية مسبقا 384 بئر بيركين إلمر 6057500 اشطفها قبل الطلاء باللون اللاميني

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Human Pluripotent Stem CellsDifferentiated NeuronsProteolytic Enzyme TreatmentCell DetachmentNeuronal Network DisruptionCell Strainer FiltrationCentrifugation ResuspensionMulti well Plate ReplatingNeuronal MaturationViable Cell Counting

مقالات ذات صلة