$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
< p class = "jove_title" >
1. حصاد الخلايا OL (OL) وثقافتها
ملاحظة: يجب تنفيذ هذه الخطوات في غطاء التدفق الصفحي في ظل ظروف معقمة.
- في اليوم التالي للاهتزاز ، قم بإعداد وسط Bottenstein-Sato (BS) وفقا للجدول 1.
- اشطف أطباق بتري المطلية 3 مرات بالماء المقطر المعقم.
- حصاد قوارير طافية تحتوي بشكل أساسي على خلايا سلالة OL ولكن أيضا بعض الخلايا الدبقية الصغيرة وقم بوضعها على أطباق بتري غير المطلية 100 مم.
ملاحظه: تسمح هذه الخطوة بإزالة الخلايا الدبقية الصغيرة من خلال التصاق سريع تفاضلي على سطح الطبق.
- احتضن أطباق بتري لمدة 15 دقيقة في حاضنة مرطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيد الكربون2.
- املأ كل قارورة T150 ب 25 مل من وسط الاستزراع الدافئ الطازج واحتضنه في حاضنة رطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 حتى الرج الثاني.
- انقل المادة الطافية من أطباق بتري إلى أطباق بتري جديدة غير مطلية مقاس 100 مم للسماح بالتصاق الخلايا الدبقية الصغيرة المتبقية.
- احتضن أطباق بتري لمدة 15 دقيقة في حاضنة مرطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيد الكربون2.
- قم بإزالة المادة الطافية ، التي تحتوي على خلايا سلالة OL غير ملتصقة ، ونقلها إلى أنابيب سعة 50 مل (طافية من 2 طبق بتري لأنبوب 50 مل). تخلصي من أطباق بتري المطلية بالخلايا الدبقية الصغيرة.
- جهاز الطرد المركزي الطافي لمدة 5 دقائق عند 423 × جم. قم بإزالة المادة الطافية بعناية وأعد تعليق حبيبات الخلية ب 1 مل من وسط BS. قم بتجميع جميع الكريات في أنبوب مشترك سعة 50 مل واضبط الحجم على 10 مل مع وسيط BS.
- تحديد كثافة الخلية عن طريق عد الخلايا تحت المجهر.
ملاحظه: يجب الحصول على كثافة خلية تتراوح بين 3 × 105 خلايا / مل و 5 × 105 خلايا / مل.
- أضف 20 مل من BS إذا كانت كثافة الخلايا أعلى من أو تساوي 4 × 105 خلايا / مل للحصول على حجم نهائي قدره 30 مل ، أو أضف 10 مل فقط من BS إذا كانت كثافة الخلايا أقل من 4 × 105 خلايا / مل للحصول على حجم نهائي قدره 20 مل.
- صفيحتين أو ثلاثة أطباق بتري مطلية مسبقا مقاس 100 مم مع 10 مل من تعليق الخلية. احتضن في حاضنة مرطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيدالكربون 2.
- قم بإزالة الحطام من أطباق Petri عن طريق تحديث كل BS medium 2 ساعة لاحقا.
ملاحظه: افحص المزرعة تحت المجهر قبل وبعد التطهير للتحقق من كثافة الخلايا وكفاءة إزالة الحطام.
- احتضان لمدة يومين في وسط BS في حاضنة مرطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيد الكربون2.
ملاحظه: افحص الثقافة تحت المجهر. يجب أن يكون التقاء 70٪ إلى 80٪.
فئة
2. إنتاج OCM
ملاحظة: قم بتنفيذ هذه الخطوات في غطاء التدفق الصفحي في ظل ظروف معقمة.
- قم بإعداد NB-B27low medium وفقا للجدول 2.
- جدد وسط الاستزراع ب 10 مل من الوسط الدافئ NB-B27low. احتضان لمدة يومين في حاضنة رطبة عند 37 درجة مئوية تحت 5٪ ثاني أكسيد الكربون2.
- احصد OCM ، أي المادة الطافية التي تحتوي على عوامل تفرز OL. قم بتعقيم OCM باستخدام مرشح 0.22 ميكرومتر.
ملاحظه: قم بتخزين OCM في درجة حرارة 4 درجات مئوية لمدة أقصاها شهرين.
الجدول 1: تحضير وسائط Bottenstein-Sato (BS).
وسائل الإعلام Bottenstein-Sato (BS)
التركيز النهائي
وسط النسر المعدل من Dulbecco
البنسلين - ستربتومايسين
100 وحدة دولية / مل
apo-Transferrin الإنسان
100 ميكروغرام / مل
BSA (ألبومين مصل الأبقار)
100 ميكروغرام / مل
إنسولين
5 ميكروغرام / مل
PDGF
10 نانوغرام / مل
البروجسترون
62 نانوغرام / مل
بوتريسين ثنائي هيدروكلوريد
16 ميكروغرام / مل
سيلينيت الصوديوم
40 نانوغرام / مل
T3 (ملح الصوديوم 3،3 '، 5-Triiodo-L-thyronine)
30 نانوغرام / مل
T4 (ل-هرمون الغدة الدرقية)
40 نانوغرام / مل
< p class = "jove_content" >
الجدول 2: تحضير وسائط NB-B27low و NB-B27.
NB-B27 الوسائط المنخفضة
التركيز النهائي
العصبي العصبي
مكمل B27
0.5 ضعف
ل-جلوتامين
0.5 ملي
البنسلين - ستربتومايسين
100 وحدة دولية / مل
NB-B27 الوسائط
التركيز النهائي
العصبي العصبي
مكمل B27
1x
ل-جلوتامين
0.5 ملي
البنسلين - ستربتومايسين
100 وحدة دولية / مل