$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
تم تنفيذ جميع الإجراءات التي تنطوي على جمع العينات وفقا لإرشادات IRB الخاصة بالمعهد.
فئة
1. تفكك الأنسجة
ملاحظة: يتم تنفيذ جميع الإجراءات التالية في خزانة سلامة حيوية مخصصة لزراعة الأنسجة المعقمة باستخدام تقنية معقمة ومواد معقمة.
- أضف 1 مل من 0.05٪ تريبسين يحتوي على 0.53 ملي EDTA إلى كل أنبوب مخروطي سعة 15 مل سعة 9 مل من DMEM والأنسجة لبدء تحلل الأنسجة.
ملاحظه: يحتوي DMEM على كمية عالية من كلوريد الكالسيوم ، والذي يمكن أن يعمل كمثبط للتربسين. إذا لم يكتمل التفكك باتباع الخطوات الموضحة ، فيمكن استخدام محلول الملح المتوازن من هانكس بدون الكالسيوم أو المغنيسيوم. بعد التربسين ، يمكن تحييد الإنزيم عن طريق إضافة مثبط التربسين ، على الرغم من أنه يجب إضافة الكالسيوم مرة أخرى إلى المحلول لأنه عامل مساعد ل DNase I ، والذي يستخدم في الخطوات اللاحقة.
- قم بترتيبات ماصة سعة 10 مل بمعدل 20 ضعفا تقريبا.
- انقل معلقات الخلية إلى أنابيب مخروطية فارغة سعة 50 مل.
- احتضان المحلول عند 37 درجة مئوية ، 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة 15 دقيقة ، مع تحريك المحللات برفق بعد 8 دقائق.
- أضف 5 مل من MGM و 200 ميكرولتر (5 مجم / مل) DNase I إلى كل أنبوب للحصول على تركيز نهائي قدره 50 ميكروغرام / مل.
- قم بترقيم كل محللة بماصة سعة 10 مل 10x.
- دع معلقات الخلية تجلس لمدة 3 دقائق في درجة حرارة الغرفة للسماح للأنسجة غير المنفصلة بالاستقرار في قاع الأنابيب.
- انقل معلقات الخلية إلى أنابيب مخروطية جديدة سعة 50 مل ، تاركة وراءها الأنسجة غير المنفصلة.
ملاحظه: تحد خطوات التحلل والخلية الموضحة أعلاه بشكل كبير من كمية الأنسجة غير المنفصلة.
- الطرد المركزي الأنابيب عند 300 × جم لمدة 3 دقائق عند 4 درجات مئوية بدون فرامل.
- استنشق المادة الطافية وأعد تعليق كريات الخلية المتبقية في 5 مل من MGM.
- قم بترتيورث الحبيبات بماصة 5 مل 20x.
- ضع تعليق الخلية سعة 5 مل على قوارير T25 المطلية.
- احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية ، 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 وقم بتغيير الوسائط في البداية بعد 24 ساعة لإزالة بقايا الخلية.
ملاحظه: توصي بعض البروتوكولات بتغيير أولي للوسائط بعد 72 ساعة. قد تكون هناك حاجة إلى تحسين هذه الخطوة.
- قم بإجراء تغيير الوسائط بنسبة 100٪ باستخدام MGM كل 48-72 ساعة حتى تتلاقى الخلايا بنسبة 80٪ (حوالي 5-7 أيام).
ملاحظة: يجب تسخين جميع الوسائط إلى 37 درجة مئوية قبل تغيير الوسائط.
< p class = "jove_title" >
2. عزل الخلايا السليفة قليلة التغصن
< ص الفئة = "jove_content">عند طلاء OPCs بعد العزل الأولي ، يجب أن تكون مطلية على سطح مطلي ب poly-D-lysine (لوحة معقمة أو غطاء). قم بإعداد هذه المواد قبل إكمال هذا القسم.
- بعد 15 ساعة من الرج ، قم بإزالة المادة الطافية من القوارير وطبقها على طبق بتري معقم مقاس 100 مم.
- احتضان المادة الطافية عند 37 درجة مئوية ، 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة 30 دقيقة ، مع الدوران بعد 15 دقيقة لإزالة الخلايا الدبقية الصغيرة المتبقية ، حيث ستلتصق بسرعة كبيرة بالطبق. يمكن استخدام أطباق بتري غير المعالجة بزراعة الأنسجة لهذه الخطوة.
- قم بإزالة المادة الطافية غير الملتصقة للخلايا والعد واللوحة على سطح مطلي ب poly-D-lysine. عادة, 7,500-10,000 OPCs مطلية / سم2.
- احتضان عند 37 درجة مئوية ، 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة ساعة واحدة على الأقل (حتى 6 ساعات) ، ثم استنشق 95٪ من الوسائط برفق ، وأضف ببطء وسائط OPC الدافئة ، وسحب الوسائط على جدار البئر لتقليل اضطراب OPCs. قم بتغيير الوسائط كل 48 ساعة حتى تصبح الخلايا جاهزة للاستخدام.
ملاحظة: من الأهمية بمكان تغيير بئر واحد فقط في كل مرة. OPCs حساسة ولا تتسامح بشكل خاص مع الظروف الجافة. تؤدي إضافة PDGF-AA في وسائط OPC إلى تأخير نضوج OPC إلى الخلايا قليلة التغصن. يمكن استبعاد هذا العامل من وسائط الاستزراع إذا كان التركيز التجريبي هو الخلايا قليلة التغصن الناضجة.
الجدول 1: وصفات المخزن المؤقت والوسائط.
< p class = "jove_content" >
وسائط الدبقية المختلطة (MGM)
88 مل
1X DMEM (ارتفاع الجلوكوز ، مع L - الجلوتامين ، مع البيروفات الصوديومية)
10 مل
FBS معطل بالحرارة
1.0 مل
ل-جلوتامين (100X)
1.0 مل
مضاد حيوي / مضاد للفطريات
فئة
OPC Media (50 مل)
49 مل
الوسائط العصبية القاعدية
1.0 مل
مكمل B27 (50X)
10 نانوغرام / مل
PDGF-AA
ملاحظة: تتم إضافة PDGF-AA طازجا قبل كل تغيير في الوسائط.