< p class = "jove_title" >
1. صيانة الخلايا الجذعية
- حافظ على H9 hESCs على طبقة من مصفوفة الغشاء القاعدي المخفضة لعامل النمو (انظر جدول المواد ، يشار إليها ببساطة باسم المصفوفة) وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
- لتغليف طبق واحد مكون من 6 آبار أو طبق واحد بحجم 10 سم ، امزج 100 ميكرولتر من المصفوفة مع 5.9 مل من وسائط النسر المعدلة (DMEM) / F12 من Dulbecco المثلجة. لف الأطباق في غشاء البارافين واحفظها طوال الليل عند 4 درجات مئوية. استخدمها في اليوم التالي لتمرير الخلايا بعد شفط المصفوفة / الوسائط الزائدة.
- استزراع الخلايا من أسبوع لآخر بنسبة انقسام 1:12 تقريبا كل 7 أيام. حافظ على الخلايا باستخدام وسائط mTESR-1 في حاضنة منخفضة الأكسجين 37 درجة مئوية (5٪ O2 ، 5٪ CO2). قم بتحديث الوسائط يوميا. تخلص من الخلايا المميزة عن الثقافة بين الممرات باستخدام أدوات زجاجية.
- يجب تمرير خلايا H9 قبل أربعة إلى ستة أيام من استخدامها لإنتاج العضيات. يجب تمرير الخلايا بنسبة 1: 8 تقريبا من مجموعات الخلايا. للقيام بذلك ، ابدأ بشطف الخلايا باستخدام وسائط Eagle المتوسطة / خليط المغذيات المعدلة من Dulbecco F-12 (DMEM / F12) وفصل الخلايا ببروتياز محايد (على سبيل المثال ، التباين ، يشار إليه من الآن فصاعدا باسم البروتياز) ، اشطفه باستخدام DMEM / F-12 ، ولوحة على شكل 30-60 مجموعات خلوية عبر 4 لوحات (6 آبار أو 10 سم) عند ~ 20٪ التقاء. قبل يومين من الحصاد ، قم بنقلها إلى حاضنة عادية (21٪ O2 ، 5٪ CO2). يجب أن تصل الألواح إلى ~ 80٪ من التقاء عند بدء تكوين العضوية.
2. تفكك hESCs للثقافة العضوية
- Aliquot محلول مخزون البروتياز (5 U / mL).
ملاحظه: عادة ما نقوم بتجميد 1 مل من الحصص عند -20 درجة مئوية للاستخدام على مدى عدة أشهر.
قم - بتخفيف محلول مخزون البروتياز إلى تركيز العمل عن طريق إضافة 1 مل من محلول المخزون بالإضافة إلى 5 مل من DMEM / F12 لكل لوحة 6 بئر أو 10 سم من hESCs.
- قم بشفط وإزالة وسائط زراعة الخلايا ، ثم قم بتغطية hESCs بمحلول البروتياز. ضع الأطباق في الحاضنة لمدة 10-15 دقيقة أو حتى تدور حواف المستعمرات لأعلى وتبدأ في الانفصال عن المصفوفة.
- قم بإمالة اللوحة ، واستنشاق محلول البروتياز ، واغسل الخلايا برفق باستخدام DMEM / F12 ثلاث مرات. استخدم 2 مل / بئر لكل غسلة عند استخدام طبق 6 آبار و 6 مل عند استخدام طبق 10 سم. تأكد من بقاء المستعمرات متصلة بالمصفوفة عند تنفيذ هذه الخطوة.
- أضف حوالي 1.5 مل من وسائط mTESR الطازجة إلى كل بئر (أو 5 مل للوحة مقاس 10 سم) وقم بإخراج الخلايا من اللوحة باستخدام ماصة لطيفة.
- باستخدام ماصة سعة 10 مل، قم بشفط hESC وتوزيعه برفق داخل اللوحة حتى تصل إلى 1/30 من حجمها الأصلي تقريبا. يجب أن تشبه مجموعات المستعمرات مربعات بحجم ~ 250-350 ميكرومتر عند الانتهاء من هذه الخطوات.
< p class = "jove_title" >
3. توليد العضيات
- انقل الخلايا إلى قارورة T75 واحدة منخفضة للغاية تحتوي على 30 مل من وسائط mTESR بدون عامل نمو الخلايا الليفية الأساسي (bFGF).
- في اليوم التالي ، قم بإمالة القوارير (القوارير) بحيث تتجمع الخلايا الحية في الزاوية (قد يستغرق ذلك من 5 إلى 10 دقائق في اليوم الأول ، ولكنه سيصبح أسرع مع زيادة حجم العناقيد).
ملاحظه: إذا كان هناك عدد كبير من الخلايا التي التصقت بأسفل القارورة في هذه الخطوة أو أي خطوات لاحقة ، فقم بنقل الخلايا إلى قارورة جديدة. من الطبيعي أن يكون لديك عدد كبير من الخلايا الميتة في اليومين الأولين. عند إجراء تغييرات في الوسائط ، تأكد من إزالة أكبر قدر ممكن من بقايا الخلية.
- بمجرد أن تستقر الخلايا ، استنشق الوسائط والخلايا الميتة ، تاركا حوالي 10 مل من الوسائط التي تحتوي على الخلايا الحية.
- أضف ~ 20 مل من وسائط bFGF منخفضة (DMEM / F12 مكملا ب 1x N2 ، 1x B27 ، 1x L-glutamine ، 1x من الأحماض الأمينية غير الأساسية (NEAA) ، 0.05٪ ألبومين مصل البقر (BSA) ، و 0.1 ملي مولار أحادي الجلسرين (MTG) مكمل ب 30 نانوغرام / مل bFGF).
- افحص الزنازين في اليوم 2. إذا كانت معظم الخلايا تبدو صحية ومشرقة ، فلا داعي لفعل أي شيء. ومع ذلك ، إذا بدا أكثر من ثلث الخلايا مظلمة ، فاستبدل الوسائط (باستخدام نفس تقنية الإمالة كما في الخطوة 3.2) ب ~ 20 مل من وسائط bFGF منخفضة مكملة ب 20 نانوغرام / مل bFGF.
- في اليوم 3، استبدل نصف الوسائط (باستخدام تقنية الإمالة في الخطوة 3,2) ب 20 مل من وسائط bFGF منخفضة مكملة ب 10 نانوغرام/مل bFGF.
- في اليوم 5 ، استبدل نصف الوسط (باستخدام تقنية الإمالة في الخطوة 3.2) ب 20 مل من وسائط الحث العصبي (NIM: DMEM / F12 ، 1x N2 الملحق ، 0.1 ملي MEM NEAA ، 2 ميكروغرام / مل هيبارين).
ملاحظه: إذا كانت هناك أي مجموعات كبيرة من الخلايا أو العضيات أكبر بكثير من غيرها ، فيجب إزالتها من المزرعة. يقدر الحجم بالمظهر تحت المجهر. على سبيل المثال ، استخدام العدسة ذات الشبكة. غالبية العضيات متشابهة الحجم (حوالي 100 ± 20 ميكرومتر). أزلنا العضيات التي كانت أصغر أو أكبر بمقدار 2x تقريبا من غيرها.
- استبدل نصف الوسط (~ 15 مل) (باستخدام تقنية الإمالة) ب NIM كل يومين.
- بعد 3 أسابيع في المزرعة ، أضف 100x البنسلين / الستربتومايسين إلى الوسائط (NIM: DMEM / F12 ، 1x N2 supplement ، 0.1 mM MEM NEA ، 2 ميكروغرام / مل من الهيبارين) بتركيز نهائي قدره 1x إذا رغبت في ذلك. قم بتحديث الوسائط كل يوم.
ملاحظه: بهذه الطريقة ، حافظنا على العضيات لمدة تصل إلى 6 أشهر في الثقافة.