مقالة منهجية

تقييم النشاط الجذاب أو المثير للاشمئزاز للبروتينات باستخدام الخلايا العصبية في الحصين

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< p class = "jove_content" >المصدر: Yamagishi، S. et al. ، مقايسة شريطية لدراسة النشاط الجذاب أو المثير للاشمئزاز لركيزة بروتينية باستخدام الخلايا العصبية الحصين المنفصلة. J. Vis. Exp. (2016)

يوضح هذا الفيديو طريقة لتقييم نشاط البروتين باستخدام الخلايا العصبية في الحصين على مناطق البروتين المنقوشة. تظهر الخلايا العصبية تنافر في مناطق البروتين التجريبي والتعلق في مناطق البروتين الضابط ، مما يسلط الضوء على آثار نشاط البروتين الجذاب أو المثير للاشمئزاز.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

< p class = "jove_title" >1. تحضير المصفوفات

  1. قم بغلي 4-8 مصفوفات سيليكون في الميكروويف أو على طبق ساخن لمدة 5 دقائق واتركها تجف تماما لمدة 1 ساعة تحت التدفق الرقائقي (الجانب المخطط لأعلى).
    ملاحظه: يجب تنفيذ الإجراءات التالية تحت التدفق الصفحي.
  2. نفخ الهواء المضغوط أو استخدم شريطا لاصقا شفافا لإزالة أي غبار من الجانب المخطط للمصفوفات. حافظ على نظافة الجانب المخطط حتى يلتصق بقوة بسطح اللوحة.
  3. ضع المصفوفات بحذر على أطباق بلاستيكية مقاس 6 سم عن طريق الضغط بإصبع (مصفوفة واحدة لكل طبق ؛ جانب شريطي لأسفل). تجنب ظهور فقاعات هواء بين المصفوفة والطبق. حدد موقع الخطوط على الجانب السفلي من طبق الثقافة.
  4. إذا فشلت المصفوفة في التوصيل ، كرر من الخطوة 1.2.
< p class = "jove_title" >2. توليد الشريط وطلاء Laminin لثقافة الخلايا العصبية

  1. قم بإعداد بروتين مؤتلف مسمى بالفلورسنت (25 ميكرولتر لكل منهما للحقن [الخطوة 2.2] أو 100 ميكرولتر لكل منهما لطريقة التنسيب [الخطوة 2.2.1]) عن طريق خلط البروتين الموسوم ب FC (10-50 ميكروغرام / مل) والجسم المضاد المضاد للجسم الفلوري المضاد للجسم البشري (نسبة 1 إلى 3: 30-150 ميكروغرام / مل) في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS). ثم احتضن الخليط لمدة 30 دقيقة في RT.
  2. باستخدام حقنة 22 جم ، قم بحقن 25 ميكرولتر من البروتين المؤتلف المحضر في الخطوة السابقة (2.1) من خلال الفتحة الصغيرة الموجودة على جانب المصفوفة (الأسهم في الشكل 1A و 1C و 1E).
    1. بدلا من ذلك ، ضع 100 ميكرولتر من البروتين المؤتلف في الشق العلوي للمصفوفة واستنشق ما يقرب من نصف المحلول من الفتحة الصغيرة (الأسهم في الشكل 1A و 1C و 1E) ، بحيث يظل البروتين المؤتلف في المناطق المخططة.
  3. احتضن الطبق لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية في حاضنة زراعة الخلايا.
  4. ضع 300 ميكرولتر من PBS في الشق العلوي (الشكل 1 ب) واستنشق من الفتحة الصغيرة الموجودة على جانب المصفوفة (الأسهم في الشكل 1 أ و ج و ه) لإزالة البروتينات المؤتلفة غير المتصلة. لا تستنشق PBS تماما ، لأن البروتينات سوف تجف. كرر هذه الخطوة مرتين. (إجمالي 3 أضعاف)
  5. قم بإزالة المصفوفة بعناية وضع على الفور ~ 100 ميكرولتر من بروتين التحكم (10-50 ميكروغرام / مل ؛ FC) لتغطية المنطقة المخططة بأكملها ، مما يخلق طبقة بديلة. ثم احتضان الطبق لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية في حاضنة زراعة الخلايا.
  6. بعد غسل سطح الطبق ثلاث مرات باستخدام PBS ، قم بتغطيته ب ~ 100 ميكرولتر من 20 ميكروغرام / مل من اللامينين في PBS.
    ملاحظه: يجب إذابة اللامينين على الجليد لمنع التصلب.
  7. احتضان الطبق لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية في حاضنة زراعة الخلايا.
  8. اغسل سطح الطبق ثلاث مرات باستخدام PBS وأضف وسط الثقافة. ضع الطبق المطلي بوسط الثقافة في حاضنة 5٪ CO2 عند 37 درجة مئوية حتى الاستخدام.
فئة

3. زراعة الخلايا العصبية في الحصين من أجنة الفئران E15.5

  1. القتل الرحيم للأم عن طريق خلع عنق الرحم وعزل ثلاثة أجنة E15.5.
  2. قطع الجلد والجمجمة السهمية عند خط الوسط من الرأس بالمقص ، وإزالة الدماغ باستخدام ملعقة صغيرة. انقل الدماغ بعناية إلى طبق بتري مقاس 60 مم يحتوي على 3 مل من محلول الملح المتوازن من هانك (HBSS).
  3. باستخدام مشرط ، قم بقطع نصفي الكرة الأرضية بما في ذلك القشرة والحصين والمخطط (الشكل 2 أ). بعد ذلك ، قم بتشريح منطقة الحصين عن طريق إزالة السحايا بعناية ، ونقل أنسجة الحصين المقطعة إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل يحتوي على 2 مل من محلول HBSS ، على الجليد (الشكل 2B-C). اجمع 6 حصين من 3 أجنة في الأنبوب ، وهي كافية لزراعة الخلايا العصبية في 8 أطباق.
  4. استبدل محلول HBSS بمحلول حمض رباعي الأسيتيك التربسين / الإيثيلين ديامين (التربسين / EDTA) (2 مل) واحتضان الأنبوب عند 37 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة في حمام مائ><ي. ملاحظه: شفط HBSS بدون طرد مركزي ولا تصب محلول HBSS عن طريق إمالة الأنبوب.
  5. قم بتحييد نشاط التربسين عن طريق إضافة 500 ميكرولتر من مصل الجنين البقري (FBS).
  6. قم بالطرد المركزي للخليط على حرارة 100 × جم لمدة 5 دقائق. كرر هذه الخطوة مرة أخرى.
  7. قم بتحريك الحصين لأعلى ولأسفل 10 مرات في وسط استزراع باستخدام طرف 1,000 ميكرولتر مع ثقب كبير (طرف مقطوع) لفصل الأنسجة.
  8. قم بالتغيير إلى طرف منتظم (غير مقطوع) سعة 1,000 ميكرولتر وقم بسحب الأنسجة المفككة لأعلى ولأسفل للحصول على تعليق أحادي الخلية.
  9. افصل الخلايا المفردة عن طريق تمريرها عبر مصفاة خلية شبكية 80-100 ميكرومتر.
  10. جهاز الطرد المركزي التعليق أحادي الخلية المصفى عند 150 × جم لمدة 5 دقائق.
  11. قم بإزالة المادة الطافية عن طريق الشفط ، وأعد تعليق الحبيبات (الخلايا العصبية) في 2 مل من وسط الاستزراع.
  12. عد الخلايا باستخدام مقياس كثافة الدم مع تلطيخ التريبان الأزرق لتحديد الكثافة والجدوى. بعد ذلك ، قم بلوحة 10,000 خلية عصبية في 150 ميكرولتر من وسط الثقافة لكل مجموعة من الخطوط. يجب وضع التعليق بعناية لتغطية منطقة الشريط بأكملها.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
الشكل 1. تستخدم مصفوفة السيليكون لإنشاء ختم البروتين المخطط. (أ ، ب) منظر علوي لمصفوفة السيليكون. حجم المصفوفة 30 مم × 25 مم × 5 مم. يشير السهم الأبيض في A إلى ثقب صغير حيث يتم حقن البروتين المؤتلف (الخطوة 2.2). يشير رأس السهم في B إلى شق حيث يتم تطبيق البروتين المؤتلف بدلا من ذلك (الخطوة 2.2.1). (ج، د) منظر سفلي لمصفوفة السيليكون. حجم المنطقة المخططة 7 مم × 9 مم. عرض كل شريط 90 ميكر...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات أنبوب الطرد المركزي 15 مل فيولامو 1-3500-01 Alexa Fluor 488 الماعز المضاد للإنسان IgG الترمو: العلمية أ 11013 Alexa Fluor 594 الحمار المضاد للفأر IgG المضاد الترمو: العلمية أ -21203 التخفيف 1/500 مكمل B27 الترمو: العلمية 17504-044 التخفيف 1/50 ألبومين مصل الأبقار سيغما 01-2030-2 مصفاة الخلية 100 ميكرومتر بي دي فالكون هاتف: 352360 آلة الطرد المركزي كوبوتا 2410 قلم داكو داكو S2002 يمكن استخدام قلم بديل طارد للماء مشرط يمكن التخلص منه ريشة 2975 # 11 FBS الترمو: العلمية هاتف: 10437-028 ملقط رقم 5 أدوات العلوم الدقيقة 11254-20 جلوتاماكس الترمو: العلمية 35050-061 التخفيف 1/200 حقنة هاميلتون هاملتون 805 نيوتن مقياس 22 ، 50 ميكرولتر HBSS الترمو: العلمية 14170-112 IgG البشري ، جزء FC جاكسن 009-000-008 لامينين الترمو: العلمية 23017-015 العصبي العصبي الترمو: العلمية هاتف: 21103-049 برنامج تلفزيوني ناكالاي 14249-24 البنسلين - ستربتومايسين الترمو: العلمية 15070-063 التخفيف 1/100 صحن استزراع بلاستيكي ، 60 مم الترمو: العلمية 150288 مصفوفات السيليكون متاح وقابل للشراء من البروفيسور مارتن باستماير (bastmeyer@kit.edu) مجهر ستيريو أوليمبوس ش.ز61 نصيحة ، 1000 ميكرولتر واتسون 125-1000 ثانية شريط لاصق شفاف 57315 يمكن استخدام شريط لاصق بديل أزرق تريبان ، 0.4٪ بيو راد 145-0013 التربسين / EDTA الترمو: العلمية هاتف: 25300-054 وسط الثقافة Neurobasal مكمل ب B27 و GlutaMAX و Penicillin-Streptomycin.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

PBS

مقالات ذات صلة