مقالة منهجية

تلطيخ التألق المناعي لتصور الخلايا الجذعية العصبية المتكاثرة في أقسام دماغ الفئران

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Quintanilla, L. J., et al. فحص التنظيم المحدد لدائرة الحصين لخلايا السلائف العصبية للحصين البالغة. J. Vis. Exp. (2019)

يوضح هذا الفيديو إجراء تلطيخ الخلايا الجذعية العصبية المتكاثرة حديثا في أقسام أنسجة المخ باستخدام دمج EdU ، متبوعا بالتألق المناعي لتصور بروتينات معينة ، مما يعزز فهم ديناميكيات الخلايا والانتشار.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على عينات حيوانية والموافقة عليها من قبل لجنة المراجعة الأخلاقية الحيوانية المناسبة.

< p class = "jove_title" >1. الكيمياء المناعية

  1. تلطيخ الثايميدين التناظري
    1. ضع أقسام الأنسجة في PBS (محلول ملحي مخزن بالفوسفات) وقم بتركيب 5-8 أقسام على شريحة موجبة الشحنة ، مع الحفاظ على الترتيب التسلسلي من الأمام إلى الخلفي ونفس الاتجاه. اترك أقسام الأنسجة تجف لتلتصق تماما بالشرائح ، ثم ارسم حدا باستخدام قلم مسعور أو قلم PAP.
    2. نفاذية الأقسام مع المخزن المؤقت للنفاذية (0.5٪ TBS (محلول ملحي مخزن مؤقتا) -تريتون) لمدة 20-30 دقيقة. ثم اغسل الأقسام 2x باستخدام TBS-triton لمدة 5 دقائق لكل منهما.
      ملاحظة: يساعد النفاذية في اختراق الأجسام المضادة داخل الخلايا. يمكن تعديل وقت النفاذية اعتمادا على سمك الأنسجة وكفاءة الجسم المضاد. بدلا من ذلك ، يمكن للمرء زيادة تركيز المنظف لزيادة فاعلية النفاذية. ومع ذلك ، يجب توخي الحذر حتى لا تتخلل لفترة طويلة جدا لأن هشاشة الأنسجة تزداد مع وقت النفاذية الطويل.
    3. قم بإعداد محلول تفاعل Edu (5-ethynyl-2'-deoxyuridine) وفقا للجدول 1. التركيز النهائي ل Alexa488-azide هو 15 ميكرومتر في 1 مل من محلول تفاعل Edu.
    4. احتضان الأقسام في محلول تفاعل Edu لمدة 30 دقيقة إلى 1 ساعة ثم اغسل 3x في TBS-triton لمدة 5 دقائق لكل منها. بعد هذه الخطوة ، قم بتغطية الشرائح بورق الألمنيوم لحمايتها من الضوء. في هذه المرحلة ، تحقق مما إذا كان تفاعل Edu يعمل باستخدام مجهر الفلورسنت. سوف تتألق الخلايا التي تحمل علامة Edu تحت مجهر epifluorescence.
  2. بروتوكول قسم الأنسجة المثبتة
    1. أقسام الأنسجة المجمعة على شريحة من الخطوة 1.1.4 باستخدام المخزن المؤقت المانع الذي يتم رفعه في نفس مثل الجسم المضاد الثانوي ، على سبيل المثال ، مصل الحمير ، لمدة 30 دقيقة إلى 1 ساعة ثم اغسل 2x في TBS-triton لمدة 5 دقائق لكل منهما.
    2. قم بإعداد محلول الجسم المضاد الأولي (أي الدجاج المضاد للنيستين) أثناء خطوة الحجب عن طريق خلط الأجسام المضادة الأولية في محلول مانع عند 1: 200. 250 ميكرولتر لكل شريحة كافية لضمان غمر الأنسجة بالكامل في المحلول.
    3. احتضان أقسام الأنسجة في محلول الجسم المضاد الأولي طوال الليل في RT بعد منع الغسيل. قم بتعديل هذه الخطوة بناء على الجسم المضاد الأساسي المستخدم.
      ملاحظه: إذا كانت الأجسام المضادة ذات خلفية عالية أو ارتباط غير محدد ، فإن الحضانة عند 4 درجات مئوية بدلا من RT (درجة حرارة الغرفة) قد تحسن النتائج. يمكن ترك الأجسام المضادة ذات اختراق الأنسجة الضعيفة للاحتضان لمدة يومين إذا لزم الأمر.
    4. احتضان أقسام الأنسجة 3x في TBS-triton لمدة 5 دقائق لإزالة الجسم المضاد الأساسي الزائد. بعد ذلك ، قم باحتضان أقسام الأنسجة في الأجسام المضادة الثانوية المترافقة بالفلوروفور (على سبيل المثال ، Alexa 647 المضاد للدجاج في الساعة 1: 200) المحضرة في محلول عازل مانع لمدة ساعتين في RT.
    5. احتضان أقسام الأنسجة 3x في TBS-triton لمدة 5 دقائق لإزالة الأجسام المضادة الثانوية الزائدة وتطبيق محلول 300 ميكرومتر DAPI (4 ′ ، 6-diamidino-2-phenylindole) في 1: 100 في PBS لمدة 15 دقيقة في RT.
    6. احتضان أقسام الأنسجة 3x في PBS لمدة 5 دقائق لإزالة DAPI الزائد وإزالة دائرة قلم عنق الرحم من حول الأنسجة باستخدام قطعة قطن أو مسح مهمة دقيق. اترك الأقسام تجف ، ثم قم بتطبيق وسائط التثبيت والغطاء. اترك وسائط التركيب تجف قبل شرائح التصوير.

الجدول 1: المحاليل المستخدمة في الكيمياء المناعية

محلول مضاد للتجمد إيثيلين جلايكول 150 مل + سكروز 150 جم + تعبئة إلى 500 مل 0.1 م PB لمحلول 500 مل عازلة السترات 9 مل من مخزون حامض الستريك + 41 مل من محلول سترات ثلاثي الصوديوم + 450 مل من DDH2O مخزون حامض الستريك [0.1 م] حامض الستريك 21 جم/1 لتر DDH2O مخزون سترات ثلاثي الصوديوم [0.1 م] سترات ثلاثية الصوديوم 29.4 جم/1 لتر DDH2O تريس محلول ملحي مخزن -تريتون (TBS -Triton) 0.05٪ 100-x Triton في TBS المخزن المؤقت للنفاذية 0.5٪ 100-x Triton في TBS المخزن المؤقت للحجب 0.33 مل مصل الحمار في 10 مل TBS-Triton حل رد فعل Edu اصنع محلول CuSO4 · 5 H2O عن طريق إضافة 1 مجم من CuSO4 · 5 H2O في محلول 4 مل من [0.1 م] Tris pH 8.5. ثم أضف 1: 40 من محلول 600 ميكرومتر Alexa488-azide و 10 مجم / مل من L-Na + ascorbate إلى محلول CuSO4 · 5H2O قبل وضعه على الأنسجة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات 5-إيثينيل -2 '-ديوكسيوريدين (إيدو) الكربوسينث NE08701 اليكسا -488 أزيد ثيرمو فيشر العلمي أ 10266 مضاد للدجاج نيستين أفيس متنوعه; RRID: AB_2314882 مكافحة الماعز DCX سانتا كروز القط # SC_8066 ؛ RRID: AB_2088494 مضاد للفأر Tbr2 ثيرمو فيشر العلمي 14-4875-82 ؛ RRID: AB_11042577 برنامج متحد البؤر (Zen Black) الفحص المجهري زايس Zen 2.3 SP1 FP1 (أسود) كبريتات النحاس (II) خماسي الهيدرات ثيرمو فيشر العلمي AC197722500 غطاء دينفيل العلمية م 1100-02 بالإضافة إلى الشريحة المشحونة دينفيل العلمية م 1021 محلول الفوسفات المخزن (PBS) ثيرمو فيشر العلمي 10010031 قلم PAP فائق 4 مم العلوم المتعددة هاتف: 24230 حل تريس المخزن المؤقت (TBS) سيجما ألدريتش تي 5912 تريتون X-100 سيجما ألدريتش 93443

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Immunofluorescence StainingNeural Stem CellsEdU IncorporationFluorescence MicroscopyConfocal MicroscopyPrimary AntibodiesSecondary AntibodiesDAPI StainingHydrophobic MarkingMounting Media

مقالات ذات صلة