< p class = "jove_title" >
1. مراقبة الانتشار عبر الخلايا للبروتينات الشبيهة بالبريون عن طريق التصوير بفاصل زمني In Vivo
ملاحظة: تنمو C. ايليجانس من النوع البري (WT) (N2) والخطوط المعدلة وراثيا وفقا للطرق القياسية وتحكم بعناية في درجة حرارة الزراعة.
- قم بإنشاء خطوط معدلة وراثيا من C. ايليجانس تعبر عن البروتين الشبيه بالبريون ، الموسوم ببروتين فلوري أحمر أحادي (mRFP).
- تحضير مجموعات متزامنة عن طريق وضع البيض أو التبييض وفقا للطرق القياسية.
- التزامن عن طريق وضع البيض
- انقل 10-20 بالغا على طبق واتركهم يضعون البيض لمدة 1-2 ساعة.
- التزامن عن طريق التبييض
- اجمع مجموعة غير متزامنة من البالغين الحاملين وتبييضهم بمحلول هيبوكلوريت قلوي (250 ملي مولار هيدروكسيد الصوديوم (NaOH) و 1: 4 (حجم / حجم) تخفيف المبيض التجاري في الماء (H2O)). اغسل البيض مرتين (218 × جم لمدة دقيقة واحدة) باستخدام M9 buffer (21 ملي مولار Na2HPO4 ·7H2O (ثنائي فوسفات هيدروجين ثنائي الصوديوم هيبتاهيدرات) ، 22 ملي مولار (فوسفات ثنائي هيدروجين البوتاسيوم) KH2PO4 ، 86 ملي كلوريد الصوديوم (NaCl) ، 1 ملي ملي MgSO4 ·7H2O (سباعي كبريتات المغنيسيوم) ، أضف dH2O حتى 1 لتر).
- اسمح لهم بالفقس في المخزن المؤقت M9 مع تحريك لطيف بين عشية وضحاها (O / N) عند 20 درجة مئوية ، وسيتم إيقاف تطور الدودة في المرحلة L1 في حالة عدم وجود مصدر غذائي ، مما يترك مجموعة سكانية متزامنة. انقل L1s إلى صفائح وسائط نمو الديدان الخيطية الطازجة (NGM) المصنفة ببكتيريا OP50 الإشريكية القولونية واترك النسل يتطور حتى العمر المطلوب.
- تحضير 2٪ وسادات الاغاروز (في H2O) على شريحة مجهرية كما هو موضح.
- قم بإعداد شريحتين مجهريين مع وضع شريط لاصق على طولهما بالكامل لاستخدامهما كفواصل للفواصل ضع شريحة مجهر ثالثة بينهما.
- قم بإذابة 2٪ من الاغاروز في H2O وقم بوضع قطرة واحدة على الشريحة النظيفة.
- ضع شريحة رابعة عموديا على الشرائح الثلاث الأخرى أعلى قطرة الأجار. اضغط عليه برفق لأسفل لتسطيح الوسادة بنفس سمك شريط الملصق.
- اتركه يجف لمدة 1 دقيقة قبل إزالة الفواصل وسحب الشرائح برفق. سوف تلتصق وسادة أجار بأحدها.
- ماصة ~ 10 ميكرولتر مخدر (2 ملي ليفاميسول في المخزن المؤقت M9) إلى الوسادة ونقل ~ 10 باستخدام معول سلك بلاتيني. قم بتغطيتها بزلة غطاء (~ 22 × 22 مم) والتقط الصور في غضون ساعة واحدة.
- بدلا من ذلك ، للحصول على الأفلام على مدى فترة زمنية أطول أو لتقليل احتمالية أي حركة للحيوانات ، استخدم مزيجا من التخدير وتثبيت الخرز.
- قم بإعداد وسادات الاغاروز بنسبة 10٪ (في المخزن المؤقت M9) كما هو موضح وأضف الديدان إلى محلول معايير حجم الكرة النانوية 3 ميكرولتر (حبات البوليسترين ، 100 نانومتر) بالإضافة إلى 3 ميكرولتر مخدر (4 ملي ليفاميسول في المخزن المؤقت M9). غطيها برفق مع زلة غطاء. لتجنب الجفاف ، أغلق الغطاء باستخدام VALAP (خليط من كميات متساوية من الفازلين واللانولين وشمع البارافين).
- صور الديدان المجمدة باستخدام مجهر متحد البؤر.
ملاحظة: يتم الحصول على النتائج باستخدام مجهر متحد البؤر AF للقرص الدوار المجهز بكاميرا EM-CCD وأتمتة الفحص المجهري وبرنامج تحليل الصور مثل MetaMorph الذي يحدد التفاصيل أدناه ، ولكن يمكن أيضا استخدام أنظمة تصوير متحد البؤر الأخرى المماثلة.
- استخدم هدف الزيت 63X أو 100X / 1.4NA وضع شريحة المجهر التي تحتوي على ديدان في حامل شريحة المجهر.
- افتح البرنامج. اضبط طاقة الليزر والمرشحات لتصوير mRFP. استخدم ليزر 561 نانومتر بقدرة 10٪ ومرشح انبعاث >600 نانومتر.
- افتح "الاستحواذ متعدد الأبعاد". ضمن علامة التبويب "الرئيسية"، حدد مربعات "اللقطات المتتابعة" و"تشغيل المجلات" (التركيز التلقائي للأجهزة: إيقاف).
- ضمن علامة التبويب "حفظ" ، حدد أو أنشئ مجلد الدليل حيث يجب حفظ الملفات. قم بتعيين اسم للملف.
- ضمن علامة التبويب "طول الموجة" ، حدد الإضاءة المناسبة واضبط التعريض الضوئي والكسب. استخدم "YokoQuad Red" (أو إعداد إضاءة مكافئ لتصوير mRFP) مع تعريض يتراوح بين 100 و 300 مللي ثانية وكسب الكاميرا بين 100 و 300 ، اعتمادا على العينة الفردية (التي تم تقييمها باستخدام الصورة الحية).
- ضمن علامة التبويب "الفاصل الزمني" ، حدد "عدد النقاط الزمنية" = 301 ، و "المدة" = 5 دقائق ، و "الوقت / الفاصل الزمني" = 1 ثانية.
- ضمن علامة التبويب "اليوميات"، حدد دفتر اليومية: "AFC SET Z HOLD" و "AFC Return to Z HOLD"، اكتب: "خاص" (مرتين)، النقطة الأولية: "بداية النقطة الزمنية" و "نهاية النقطة الزمنية". يعد خيار التركيز البؤري التلقائي هذا مهما لتصوير نفس القسم على مدى فترة زمنية أطول.
- عند اكتمال الإعداد ، اضغط على "اكتساب". يتم حفظ فيديو الفاصل الزمني كملفات TIFF منفصلة.