مقالة منهجية

الكيمياء المناعية لتحديد منطقة الموضع الخشبي في أقسام دماغ الفئران

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Schmidt، K. et al.، توطين الموضع coeruleus في دماغ الفأر. J. Vis. Exp. (2019)

يحدد هذا البروتوكول استخدام الكيمياء النسيجية المناعية لتحديد مناطق الموضع الخشبي في أقسام دماغ الفئران. من خلال استهداف الدوبامين β-هيدروكسيلاز بالأجسام المضادة المسماة بالفلوروفور الأخضر ، يتم تصور الخلايا العصبية المنتجة للنورادرينالين على أنها مضان أخضر تحت المجهر.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على عينات حيوانية والموافقة عليها من قبل لجنة المراجعة الأخلاقية الحيوانية المناسبة.

< p class = "jove_title" >1. تقطيع الدماغ

  1. لشل حركة وتخدير الفئران عن طريق تطبيق 3٪ إيزوفلوران.
    1. انقع كرة قطنية مع قطرات من الأيزوفلوران وضعها في أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 15 مل. ضع أنف في الأنبوب واتركه يستنشق الأيزوفلوران. تحقق من عمق التخدير من خلال عدم الاستجابة لقرص إصبع القدم.
  2. ضع على ظهره وقم بتثبيته عن طريق تثبيت أطرافه لأسفل بدبوس T أثناء الوصول إلى بطنه.
  3. اقطع بمقص جراحي ، وقص جلد البطن وقطع الجلد في منطقة الصدر. قم بتثبيت الجلد لأسفل باستخدام دبابيس T. ثم ، قم بكسر الغشاء البريتوني حتى الصدر. كشف القلب عن طريق تكسير التجويف الصدري وقطع الحجاب الحاجز.
  4. اقطع الأذين الأيمن للسماح للدم بالتدفق من. أدخل حقنة سعة 10 مل بإبرة قياس 25 في البطين الأيسر وقم بنفخ 10 مل من المحلول الملحي المخزن بالفوسفات (PBS).
    ملاحظه: هذا يسمح للمحلول بالتدفق عبر الدورة الدموية الجهازية والخروج من خلال الأذين الأيمن.
  5. قم بإزالة المحقنة سعة 10 مل وأدخل إبرة قياس 25 متصلة بحقنة 60 مل. يتدفق من خلال البطين الأيسر مع 50 مل من المثلج البارد 4٪ بارافورمالدهيد (PFA).
    1. قم بإعداد محلول PFA المثلج البارد بنسبة 4٪ عن طريق تخفيف محلول PFA بنسبة 10٪ في H2O وتبريد محلول PFA النهائي بنسبة 4٪ عند 4 درجات مئوية.
  6. اعزل رأس الفأر وإزالة الدماغ من الجمجمة.
    1. قطع الجلد من الرقبة ، ثم قطع باتجاه العينين لفضح الجمجمة. اكسر الجمجمة من الرقبة إلى الأنف ، ثم من مقلة عين إلى أخرى. انزع الجمجمة واستئصال الدماغ كله.
  7. احتضان الدماغ في 4٪ PFA لمدة 24 ساعة عند 4 درجات مئوية.
  8. انقل الدماغ بالملقط إلى أنبوب مخروطي سعة 50 مل مملوء ب 25 مل من محلول السكروز بنسبة 30٪. احتفظ بها عند 4 درجات مئوية لمدة 48-72 ساعة حتى يغرق الدماغ في قاع الأنبوب.
  9. قطع الدماغ باستخدام مصفوفة تقطيع دماغ الفأر البالغ الإكليلية من خلال الدماغ الأوسط (~ 3 مم خلف بريجما). احتفظ بقسم الدماغ الذي يحتوي على جذع الدماغ.
    ملاحظه: سينتج عن ذلك قسمين للدماغ - أحدهما يحتوي على معظم القشرة (الجزء الأمامي من الجرح) والآخر يحتوي على جذع الدماغ / المخيخ (الجزء الخلفي من الجرح). استخدم قسم جذع الدماغ للخطوات التالية.
  10. قم بتضمين قسم جذع الدماغ مع وضع السطح المقطوع في الجزء السفلي من قالب التضمين ، محاطا بمركب درجة حرارة القطع الأمثل (OCT) ؛ انقل الدماغ المدمج إلى فريزر -80 درجة مئوية وقم بتجميده لمدة 12 ساعة على الأقل - حتى الاستخدام الآخر.
  11. القطع في ناظم البرد: ضع قالب التضمين الذي يحتوي على الدماغ في OCT في ناظم البرد ؛ احتضنه في ناظم البرد لعدة ساعات لضبط درجة حرارة كتلة الدماغ مع درجة حرارة ناظم البرد.
  12. انزع قالب التضمين لكشف كتلة OCT التي تحتوي على الدماغ.
  13. استخدم شفرات الحلاقة لإزالة OCT الزائد من سطح الكتلة دون لمس الدماغ.
  14. قم بتركيب كتلة OCT على ظرف ناظم التبريد ، مما يكشف السطح المقطوع للدماغ باتجاه الأمام.
  15. اضبط السطح المقطوع للدماغ بحيث يتم توجيهه بالتوازي مع شفرات الحلاقة في الناظم الكريوستات.
  16. قم بقص الدماغ بدءا من النخاع ، وقطع أقسام 100 ميكرومتر بشكل روحي.
  17. تقليم الرأس حتى يتم قطع المخيخ وجذع الدماغ كشريحة واحدة متواصلة. ابدأ في جمع الشرائح بسمك 50 ميكرومتر.
    ملاحظه: عندما يقطع المرء بشكل منحرف من النخاع ، سيتم قطع جذع الدماغ والمخيخ كقسمين منفصلين. في الأقسام المنقارية ، سيندمج جذع الدماغ والمخيخ في النهاية على مستوى البطين الرابع. بمجرد أن تتشكل الحواف الجانبية للبطين الرابع بشكل جيد ، سيخرج المخيخ وجذع الدماغ كشريحة واحدة مستمرة.
    1. اجمع شريحة دماغ محاطة ب OCT بالملقط وضعها في بئر من صفيحة 24 بئرا مملوءة ب PBS (الشكل 1 أ). سيكون الموضع اللولبي (LC) أكثر بروزا عندما يلتقي المخيخ والقولون السفلي ببعضهما البعض عند ~ -5.52 مم خلف بريجما (الشكل 2 ب).
      ملاحظه: سيختفي الجزء الأمامي من LC بمجرد تقسيم المخيخ بالكامل ولم يعد يحيط بالقولون السفلي عند ~ -5.34 مم خلف بريجما (الشكل 2 ج).
< p class = "jove_title" >2. الكيمياء المناعية للدوبامين β-هيدروكسيلاز (DBH) أو تيروزين هيدروكسيلاز (TH) (الشكل 1)

  1. اليوم 1
    1. اغسل الشرائح المحددة ثلاث مرات لمدة 5 دقائق في PBS.
    2. نفاذية لمدة 24 ساعة في محلول ملحي مخزن بالفوسفات بنسبة 0.5٪ مع منظف (PBSD) عند 4 درجات مئوية.
      1. خفف 125 ميكرولتر من المنظفات في 25 مل من PBS.
  2. اليوم 2
    1. اغسل الشرائح ثلاث مرات لمدة 5 دقائق في 0.5٪ PBSD.
    2. أضف الجسم المضاد الأساسي ، المضاد ل DBH أو مضاد TH ، لمدة 18 ساعة عند تخفيف 1: 500 في 0.5٪ PBSD عند 4 درجات مئوية.
  3. اليوم 3
    1. اغسل الشرائح ثلاث مرات لمدة 10 دقائق في 0.5٪ PBSD.
    2. أضف الجسم المضاد الثانوي المطلوب (488 حمار مضاد للأرانب للتألق الأخضر) عند تخفيف 1: 1000 في 0.5٪ PBSD لمدة 16 ساعة.
    3. لف اللوحة المكونة من 24 بئرا بالألمنيوم وضعها على حرارة 4 درجات مئوية.
    4. اغسل الشرائح ثلاث مرات لمدة 5 دقائق في 0.5٪ PBSD.
    5. يغسل لمدة 5 دقائق في PBS.
    6. انقل الشرائح بفرشاة قلم رصاص إلى وعاء ماء.
    7. قم بتركيب شرائح تطفو في الماء على شرائح مشحونة.
    8. أقسام Coverslip مع وسائط التثبيت الصلبة الدوبامين بيتا هيدروكسيلاز
    9. جفف أقسام الدماغ المركبة لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
    10. صور شرائح الدماغ في مجهر متحد البؤر أو الفلورسنت مع إعدادات لاكتشاف الإشارات من الطول الموجي الفلوروفوري للأجسام المضادة الثانوية المناسبة.
    11. اضبط المجهر على المستوى البؤري لشريحة الدماغ والتقط صورة واحدة بتكبير 10X.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
الشكل 1: الكشف عن LC عن طريق تلطيخ شرائح الدماغ المناعية ل DBH أو TH. (أ) تم تقسيم دماغ فأر واحد إلى شرائح بحجم 50 ميكرومتر حول جذع الدماغ وتم جمعه في طبقين من 24 بئرا. تم تركيب كل شريحة دماغية مجمعة من 5 إلى 8 على غطاء مغطى بالفيلم للتصوير عبر XFM. يتم تصنيف هذه الشرائح بأرقام زرقاء بين الآبار. تم تلطيخ الشرائح المجاورة العائمة في PBS من أجل DBH للكشف عن LC (المسمى بالصليب الأحمر على الآبار). تشير ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
مصفوفة تقطيع دماغ الفأر البالغزيفيك للصناعاتBSMAS001-1
الجسم المضاد الثانوي المضاد للأرانب ، Alexa Fluor 488 (المصدر - حمار) ثيرمو فيشر العلميأ-21206
شرائح زجاجية مشحونةجينيسي 29-107
مجهر متحد البؤرزايسLSM 800
CryostatMicrom GmbHHM 505E
شفرات القطع الناجمة عن الجليدثيرمو فيشر العلميMX35
مقص صغير، 9.5 سمتشخيص Antech503241
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole)سيجما ألدريتش D9542-10MG
الدوبامين β-هيدروكسيلاز (DBH) الجسم المضاد - الإنتاج الداخلي (المصدر - الأرنب) ب. إيبر -
الدوبامين β-هيدروكسيلاز (DBH) الجسم المضاد - متوفر تجاريا (المصدر - أرنب)إشارات الخلية 8586
أنابيب الصقر، 50 ملالولايات المتحدة الأمريكية العلمية339652
الفوران (الأيزوفلوران) باكسترNDC 1019-360-60
ملقط مايكرو أدسونتشخيص Antech501245
وسائط تركيب الثابتةعلوم EM17984-24
مجهرباسكالLSM 5
ألواح متعددة الآبار ، 24 بئرا ثيرمو فيشر العلمي930186
مركب درجة حرارة القطع الأمثل (OCT) VWR / تقنية الأنسجة102094-106
بارافورمالدهايد (PFA) / الفورمالين 10٪ فيشر العلميSF98-4
قوالب التضمين التي يمكن التخلص منها من Peel-A-Way شركة Polysciences Inc. 18646A
فرشاة قلم رصاص
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) تكنولوجيا الحياة14190250
شفرات الحلاقةأمازونASIN: B000CMFJZ2
ملاعق تشخيص Antech14374
دبابيس Tمستودع الأوفيس344615
دماغ الفأر في الإحداثيات التجسيمية ، باكسينوس وفرانكلين ، الطبعة الثالثة أمازونرقم ال ISBN: 978-0123694607
Triton-X 100 (لإعداد PBSD)سيجما ألدريتش T8787
توين 20سيجما ألدريتش P7949-500ml
التيروزين هيدروكسيلاز (TH) الجسم المضاد (المصدر - الأرنب) EMD ميليبور AB152
مجهر فلوري واسع المجالزايسAxio Zoom.V16

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة