تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على عينات من والموافقة عليها من قبل لجنة المراجعة الأخلاقية الحيوانية المناسبة.
- مقايسة FISH متبوعة بالكيمياء المناعية باستخدام مستضد / RNA الناجم عن الحرارة
- قبل البدء ، قم بإعداد جميع المواد المطلوبة:
- سخني فرن التهجين إلى 40 درجة مئوية وضعي صينية تحتوي على ماء مقطر في الفرن لخلق بيئة رطبة.
- خذ صندوقا منزلقا وضع مناشف ورقية مبللة بالماء المقطر بالداخل لترطيبها. ثم ضع صندوق الشرائح في فرن التهجين.
- قم بإزالة المجسات (المجسات السالبة والمستهدفة) من الثلاجة وقم بتسخينها في فرن التهجين لمدة 10 دقائق. بعد ذلك ، دع المجسات تبرد في RT.
- كواشف تضخيم التوازن AMP 1-4 (مضمنة في مجموعة كاشف تعدد الإرسال الفلوري) في RT.
- تحضير محلول استرجاع المستضد: 10 ملي مولار سترات الصوديوم (الرقم الهيدروجيني 6) ، 0.05٪ توين 20. }ملاحظة: يمكن تخزين المحلول في RT إلى أجل غير مسمى واستخدامه للتلوين في المستقبل.
- قم بإعداد 1x مخزن غسيل يخفف محلول المخزون 50x (في مجموعة الكاشف المتعدد الفلورسنت) في المياه الخالية من RNase أو المعالجة DEPC.
ملاحظة: يمكن تخزين 1x المخزن المؤقت للغسيل في RT لمدة شهر واحد واستخدامه للتلوين في المستقبل. قد يترسب المخزن المؤقت للغسيل 50x. إذا كان الأمر كذلك ، فقم بتسخين محلول الغسيل 50 ضعفا عند 40 درجة مئوية لمدة 10 دقائق قبل تحضير محلول 1x.
- قم بإزالة الشرائح من الإيثانول بنسبة 100٪ وجففها في الهواء لمدة 5 دقائق في RT.
- قم بإعداد برطمان كوبلين يحتوي على 50 مل من محلول استرجاع المستضد. اغمر الشرائح في محلول استرجاع المستضد واغليها لمدة 10 دقائق في فرن الميكروويف.
ملاحظة: بدلا من ذلك ، ضع الشرائح أفقيا في طبق زجاجي دائري بقطر 100 مم يحتوي على 100 مل من محلول الاسترجاع. - املأ دورق سعة 1 لتر بالماء المقطر وضعه في الميكروويف.
ملاحظة: سيقوم الماء "بتخزين الحرارة" عند إجراء إزالة القناع. - ضع الشرائح في محلول استرجاع المستضد داخل الميكروويف. تغلي الشرائح بقوة عالية لمدة 5 دقائق. مباشرة بعد توقف العينات عن الغليان ، تنزلق الحرارة مرة أخرى بقوة عالية لمدة 5 دقائق إضافية.
- قم بتبريد الشرائح في RT.
ملاحظة: خطوة حرجة: يجب تحديد مدة الغليان وإجراءه من قبل المستخدم ، اعتمادا على خصائص الميكروويف. كلما بدأ الغليان بشكل أسرع ، زادت فرص تبخر المحلول. في هذه الحالة ، يوصى بغلي العينات لفترات زمنية أقصر أكثر من مرتين لإكمال وقت الكشف الإجمالي البالغ 10 دقائق. على العكس من ذلك ، إذا تم إجراء التسخين بطاقة متوسطة أو منخفضة ، فيمكن إجراء الكشف مرة واحدة لمدة 10 دقائق. ومع ذلك ، إذا لم تغلي العينات بشكل مستمر لمدة 10 دقائق تقريبا ، فقد يؤدي ذلك إلى الكشف الجزئي عن كل من الحمض النووي الريبي المستهدف والبروتين المراد اكتشافه.
- اغسل الشرائح ثلاث مرات باستخدام 1x PBS.
- أضف 2-3 قطرات (~ 100 ميكرولتر) من dapB مجموعة إلى شرائح الدماغ المستخدمة لتقييم تلطيخ الخلفية. ملاحظة: تستهدف مجموعة المسبار dapB جينا بكتيريا ويجب ألا تتعرف على أي حمض مضمض رمبي للثدييات.
- أضف 2 - 3 قطرات من مجموعة مسبار الاستهداف إلى شرائح الدماغ المستخدمة لاكتشاف الحمض النووي الريبي محل الاهتمام. ملاحظة: يتم استخدام مجموعة مسبار تستهدف بقايا 20 - 1,381 من الفأر Atf4 mRNA في هذا المثال.
- قم بتغطية الشرائح بالبارافيلم لتجنب تبخر المسبار ، وضعها في صندوق الشرائح المرطب داخل فرن التهجين ، واحتضانها عند 40 درجة مئوية لمدة ساعتين.
NOTE: اختياري: يمكن تهجين شرائح الدماغ الإضافية باستخدام مجموعة مسبار تستهدف الماوس Polr2A واستخدامها كعناصر تحكم إيجابية. - اغسل الشرائح مرتين باستخدام مخزن مؤقت للغسيل 1x لمدة دقيقتين في RT.
- أضف 2 - 3 قطرات من كاشف التضخيم AMP 1-FL إلى كل شريحة دماغية ، وقم بتغطية الشرائح بالبارافيلم ، وضعها في صندوق الشرائح ، واحتضانها عند 40 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة في فرن التهجين.
- اغسل الشرائح مرتين باستخدام مخزن مؤقت للغسيل 1x لمدة دقيقتين في RT.
- أضف 2-3 قطرات من كاشف التضخيم AMP 2-FL إلى كل شريحة دماغية ، وقم بتغطية الشرائح بالبارافيلم ، وضعها في صندوق الشرائح واحتضانها عند 40 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة في فرن التهجين.
- اغسل الشرائح مرتين باستخدام مخزن مؤقت للغسيل 1x لمدة دقيقتين في RT.
- أضف 2-3 قطرات من كاشف التضخيم AMP 3-FL إلى كل شريحة دماغية ، وقم بتغطية الشرائح بالبارافيلم ، وضعها في صندوق الشرائح واحتضانها عند 40 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة في فرن التهجين.
- اغسل الشرائح مرتين باستخدام مخزن مؤقت غسيل 1x لمدة دقيقتين في RT.
- أضف 2-3 قطرات من كاشف التضخيم AMP 4-FL إلى كل شريحة دماغية ، وقم بتغطية الشرائح بالبارافيلم ، وضعها في صندوق الشرائح واحتضانها عند 40 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة في فرن التهجين.
- اغسل الشرائح مرتين باستخدام مخزن غسيل 1x لمدة دقيقتين في RT ومرتين باستخدام 1x PBS.
- أضف 100 - 200 ميكرولتر (أو حجم كاف لتغطية الشرائح بالكامل) من محلول مانع يحتوي على 3 مجم / مل BSA و 100 ملي مولار جلايسين و 0.25٪ تريتون X-100 في PBS (درجة الحموضة 7.4) إلى الشرائح ، وقم بتغطيتها بالبارافيلم ، واحتضانها لمدة 30 دقيقة في RT.
- أضف 100 - 200 ميكرولتر من الجسم المضاد ل ChAT المخفف في محلول مانع (1/100) إلى الشرائح ، قم بتغطيتها بالبارافيلم ، واحتضانها لمدة يومين عند 4 درجات مئوية. تأكد من عدم جفاف شرائح الدماغ. إذا لزم الأمر ، أعد تطبيق محلول الأجسام المضادة ل ChAT على شرائح الدماغ بعد 24 ساعة من الحضانة.
- اغسل الشرائح ثلاث مرات في 1x PBS لمدة 5 دقائق في RT.
- أضف 100 - 200 ميكرولتر من الجسم المضاد الثانوي المناسب مع Alexa ( على سبيل المثال .، Alexa-594 Donkey Anti-goat لهذا المثال بالذات) إلى الشرائح ، وقم بتغطيتها ببارافيلم ، واحتضانها لمدة ساعة واحدة في RT.
- اغسل الشرائح ثلاث مرات في 1x PBS لمدة 5 دقائق في RT.
- اغسل الشرائح مرة واحدة بالماء المقطر.
- قم بتركيب الشرائح بوسيط تركيب يحتوي على DAPI.
- تخيل شرائح الدماغ تحت المجهر الفلوري.