يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

بي ار بي كنهج جديد للوقاية من العدوى: إعداد و

21.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/50351

⸱

أبريل 9, 2013

 , 
1Department of Orthopaedics, School of Medicine, West Virginia University , 2Department of Orthopaedics, Stem Cell Research Center, University of Pittsburgh, 3WVNano Initiative, 4Mary Babb Randolph Cancer Center

في هذه المقالة

ملخص

العدوى المرتبطة بالزرع هي مضاعفات سريرية كبيرة. تصف هذه الدراسة نهجا باستخدام البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP) للوقاية من الالتهابات المرتبطة بالزرع ، وتقدم بروتوكول تحضير البلازما الغنية بالصفائح الدموية بتركيز ثابت للصفائح الدموية ، وتبلغ عن الخصائص المضادة للميكروبات المحددة حديثا للبلازما الغنية بالصفائح الدموية والبروتوكولات ذات الصلة لفحص هذه الخصائص المضادة للميكروبات في المختبر.

الملخص

زرع المرتبطة العدوى أصبحت أكثر وأكثر تحديا لقطاع الرعاية الصحية في جميع أنحاء العالم نتيجة لزيادة المقاومة للمضادات الحيوية، ونقل البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية بين الحيوانات والبشر، وارتفاع تكلفة علاج التهابات.

في هذه الدراسة، ونحن تكشف عن استراتيجية جديدة قد تكون فعالة في منع الإصابة زرع المرتبطة يعتمد على خصائص مضادة للميكروبات المحتملة للالصفيحات الغنية البلازما (PRP). نظرا لخصائص مدروسة من أجل تعزيز الشفاء، وقد تم PRP (منتج البيولوجية) تستخدم بشكل متزايد للتطبيقات السريرية بما في ذلك جراحة العظام، جراحة اللثة والفم، والعمليات الجراحية الوجه والفكين، عمليات التجميل، الطب الرياضي، الخ.

يمكن أن تكون بديلا PRP متقدمة للعلاجات بالمضادات الحيوية التقليدية في منع زرع المرتبطة الالتهابات. فإن استخدام PRP يكون من المفيد مقارنة العلاج بالمضادات الحيوية التقليدية الاشتراكيةNCE PRP هو أقل عرضة للحث على مقاومة المضادات الحيوية ومضادات الميكروبات وPRP والخصائص العلاجية المعززة للقد يكون له تأثير متناغم لمنع العدوى. فمن المعروف أن مسببات الأمراض والخلايا البشرية تتسابق للأسطح زرع، وخصائص الشفاء PRP لتعزيز يمكن أن تحسن مرفق الإنسان الخلية مما يقلل من احتمالات للعدوى. وبالإضافة إلى ذلك، هو PRP حيويا بطبيعتها، وآمنة وخالية من خطر الأمراض المعدية.

لدراستنا، وقد اخترنا عدة سلالات بكتيرية السريرية التي توجد عادة في التهابات العظام وفحص ما إذا كانت لديه PRP في خصائص مضادة للميكروبات المختبر ضد هذه البكتيريا. قمنا بإعداد PRP باستخدام نهج الطرد المركزي مرتين والذي يسمح ليتم الحصول على نفس التركيز الصفائح الدموية لجميع العينات. حققنا نتائج متسقة المضادة للميكروبات، ووجدت أن لديه PRP قوية في خصائص مضادات الميكروبات في المختبر ضد البكتيريا مثل ميثيسيلين حساسة ومقاومة للميثيسيلين المكورات العنقودية الذهبية، العقدية المجموعة A، والنيسرية البنية. لذلك، فإن استخدام PRP لديها القدرة على منع العدوى والحد من الحاجة للعلاج بعد العملية مكلفة من زرع المرتبطة الالتهابات.

المقدمة

زرع المرتبطة العدوى هو اختلاط كبير السريرية. المكورات العنقودية الذهبية (S. المذهبة) هي واحدة من الكائنات الدقيقة الأكثر شيوعا معزولة عن زرع المرتبطة الالتهابات. أنها قادرة على إنتاج بيوفيلم التي تغطي أسطح يزرع وربما يؤدي إلى الإصابة 1،2 المقاومة للمضادات الحيوية. علاج العدوى المرتبطة زرع يتطلب في كثير من الأحيان على المدى الطويل في المستشفى لفترات طويلة ومتكررة debridements العلاج بالمضادات الحيوية الوريدية. في الحالات المقاومة للمضادات الحيوية، قد إزالة زرع يكون ضروريا. كما تم المقاومة ارتفاع البكتيريا للمضادات الحيوية المشار إليها من قبل مراكز السيطرة على الأمراض والوقاية منها (CDC) بأنها "واحدة من المشاكل الصحية في العالم الأكثر إلحاحا." في الوقت المناسب، دون تطوير علاجات المضادة للميكروبات جديدة وفعالة، فمن الممكن أن للأدوية المتعددة العوامل الممرضة المقاومة سيكون غير قابل للعلاج بالمضادات الحيوية التقليدية. منع المرتبط زرعلذا فمن المهم العدوى وهناك حاجة إلى وكلاء وقائية أو رواية نهج لمنع حدوث إصابات من هذا القبيل.

الصفائح الدموية الغنية البلازما (PRP) هو تركيز الدم الذاتي الذي يحتوي عوامل النمو أكثر من 30 التي يمكن أن تساعد مع العظام والتئام العظام الكسب غير المشروع 3-5. وقد تم تطبيق لتعزيز PRP تجديد العظام والأنسجة الناعمة النضج ذكرت على نحو متزايد في العيادات بسبب تركيز عال من عوامل النمو المختلفة الصادرة عن الصفائح الدموية.

خصائص عدة من PRP تشير إلى أن PRP قد يكون لها أيضا خصائص مضادة للميكروبات 6-9. PRP يحتوي على عدد كبير من الصفائح الدموية، على نسبة عالية من الكريات البيضاء (التي قد تكون في حوزتها المضيف الدفاع عن الإجراءات ضد البكتيريا والفطريات)، والببتيدات المضادة للميكروبات متعددة 7،8،10. في دراسة حديثة لفوج كبير من المرضى لعمليات جراحية في القلب، وتبين أن استخدام جراحة داخلية من خلال PRP جل الجرح إغلاق signifانخفض icantly وقوع العدوى القص سطحي وعميق 11. لهذه الأسباب والملاحظات، ونحن افترضنا أن PRP، إلى جانب خصائصه الشفاء تعزيز مدروسة، له خصائص مضادة للميكروبات. قد المزايا المحتملة لاستخدام PRP للوقاية من العدوى ما يلي: (ط) PRP هو أقل عرضة للحث على مقاومة المضادات الحيوية مقارنة مع العلاجات التقليدية. (الثاني) PRP أيضا الخصائص التي التئام الجروح التي قد يكون لها تأثير متناغم على الوقاية من العدوى؛ PRP الشفاء المعززة للخصائص يمكن أن يوفر الختم لمنع التصاق البكتيريا مما يقلل من احتمالات للعدوى والجراثيم والخلايا البشرية تتسابق للأسطح زرع 12 ، 13. (الثالث) هو PRP حيويا بطبيعتها، وآمنة وخالية من خطر الأمراض المعدية.

لدينا على المدى الطويل الهدف من ذلك هو استخدام PRP كنهج جديد لمنع زرع المرتبطة infectiإضافات. كان الهدف من هذه الدراسة هو إعداد PRP باستخدام نهج الطرد المركزي مرتين، لدراسة وPRP في المختبر الخصائص المضادة للميكروبات، ووصف بروتوكولات لتقييم مثل هذه الخصائص المضادة للميكروبات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

< p class = "jove_title" >1. إعداد وتفعيل PRP

< p class = "jove_step" >1.1 سحب الدم

  1. تخدير الأرانب عن طريق استنشاق الأيزوفلوران (2٪ في O2 للحث و 1٪ للصيانة).
  2. اسحب 2 مل 0.129 M ثلاثي سترات الصوديوم (محلول مضاد للتخثر) في حقنة سعة 20 مل. يتم تحضير محلول سترات ثلاثي الصوديوم عن طريق إذابة 1.897 جم من سترات ثلاثي الصوديوم في 50 مل H2O مقطر والترشيح بفلتر معقم 0.22 ميكرومتر.
  3. تعقيم أذن الأرنب باستخدام 70٪ إيثانول.
  4. سحب الدم (على سبيل المثال 5 مل) من وريد أذن الأرنب عبر إبرة فراشة (25 جم) متصلة بالمحقنة.
  5. امزج الدم مع محلول سترات الصوديوم الثلاثي عن طريق التحريك اللطيف. نسبة حجم الدم ومحلول سترات ثلاثي الصوديوم هي 9: 1.
< p class = "jove_step" >1.2 تحضير PRP (الشكل 1)

  1. انقل الدم المضاد للتخثر إلى أنبوب طرد مركزي بلاستيكي سعة 50 مل. خذ حصة من 10 ميكرولتر من الدم لتحديد عدد الصفائح الدموية الأساسية باستخدام قياس الدم.
  2. قم بالطرد المركزي للدم عند 300 × جم لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة (RT) في جهاز طرد مركزي باستخدام دوار متأرجح. اضبط سرعة التسارع والفرامل على منخفضة (الشكل 1).
  3. بعد الطرد المركزي ، يتم فصل الدم إلى ثلاث طبقات. الطبقة السفلية هي خلايا الدم الحمراء بشكل أساسي ، وتتكون الطبقة الوسطى (يشار إليها عادة باسم "المعطف الصافي") من الصفائح الدموية المركزة والكريات البيض ، والطبقة العليا هي البلازما بشكل أساسي ، وهي المكون السائل للدم ، والصفائح الدموية (الشكل 1). انقل أنبوب الطرد المركزي بعناية إلى غطاء مزرعة الخلية ؛ لا تزعج الطبقات. انقل كل طبقة البلازما والطبقة المصفرية وطبقة خلايا الدم الحمراء بسمك 2-3 مم إلى أنبوب بلاستيكي سعة 15 مل باستخدام ماصة بلاستيكية سعة 1 مل.
  4. جهاز الطرد المركزي العينة المنقولة مرة ثانية عند 3,000 × جم لمدة 15 دقيقة في RT. تعتبر الطبقة العليا (المادة الطافية) بلازما فقيرة للصفائح الدموية (PPP) ويتم نقلها إلى أنبوب جديد.
  5. احصل على البلازما الغنية بالصفائح الدموية عن طريق ضبط تركيز الصفائح الدموية في عينة الدم المتبقية باستخدام PPP للحصول على 2.0 × 106 صفائح ضفائحية / ميكرولتر (يتم تحديدها بواسطة قياس الدم).

1.3 تنشيط PRP

  1. قم بإعداد محلول تنشيط البلازما الغنية بالصفائح الدموية عن طريق إذابة 5,000 وحدة دولية من الثرومبين البقري مع 5 مل 10٪ كلوريد الكالسيوم بتركيز عمل يبلغ 1,000 وحدة دولية / مل.
  2. أضف محلول التنشيط إلى PRP و PPP ، واخلط المحلول عن طريق سحب العينات بشكل متكرر لتشكيل المواد الهلامية PRP و PPP. نسبة حجم محلول التنشيط إلى PRP أو PPP هي 1: 4.
< p class = "jove_title" >2. اختبار مضادات الميكروبات في المختبر للبلازما الغنية بالصفائح الدموية باستخدام مقايسة منحنى القتل (الشكل 2)

  1. باستخدام حلقة تلقيح معقمة ، أضف عدة مستعمرات من المكورات العنقودية الذهبية من مزرعة الألواح الليلية إلى 5 مل من مرق مولر هينتون (MHB) في أنبوب بلاستيكي. دوامة لفترة وجيزة ثم احتضان العينة لمدة ساعتين عند 37 درجة مئوية. بعد ذلك ، تم تحديد الكثافة البصرية للوسائط البكتيرية باستخدام مقياس الطيف الضوئي وتعديلها على كثافة بصرية تساوي ~ 1 × 108 CFU / ml بناء على المنحنى القياسي المحدد مسبقا.
  2. قم بعمل تخفيف 100x باستخدام PBS للحصول على 1 × 106 CFU / مل ووضع اللقاحات على الثلج.
  3. قم بإعداد ووضع ملصقات على أنابيب البوليسترين المعقمة التي يمكن التخلص منها سعة 5 مل ، وقم بإعداد مجموعات العينات التالية كما هو موضح في الجدول 1 للحجم النهائي البالغ 2 مل في كل أنبوب.
  4. أضف PRP أو PPP أو PBS أولا إلى أنابيب البوليسترين ، متبوعا بمحلول الثرومبين للتنشيط (تكوين الجل). بعد ذلك ، أضف MHB ثم المكورات العنقودية الذهبية اللقاحات (1 × 106 CFU / مل) للحصول على التركيز النهائي 1 × 105 CFU / مل.
  5. احتضان الأنابيب عند 37 درجة مئوية مع التحريك المداري عند 150 دورة في الدقيقة.
  6. في النقاط الزمنية المحددة مسبقا (على سبيل المثال 0 و 1 و 2 ساعة) ، امزج المحاليل في كل أنبوب عن طريق إعادة سحب العينة (هذه الخطوة مهمة لأن البكتيريا قد تكون محاصرة داخل هلام البلازما الغنية بالصفائح الدموية). خذ 10 ميكرولتر من العينة ، وقم بتخفيفه بشكل متسلسل باستخدام محلول ملحي معقم بنسبة 0.9٪ ، وقم بتقطيع 100 ميكرولتر من كل تخفيف على صفيحة أجار الصويا Tryptic (TSA ، مع 5٪ من دم الأغنام) لعد CFU.
  7. استزراع ألواح الأجار بين عشية وضحاها عند 37 درجة مئوية ، ثم عد وسجل مستعمرات الصفائح. رسم البيانات على مقياس لوغاريتمي مع الوقت (ساعة) على المحور x و CFU / ml على المحور y.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يتم تحضير PRP بشكل قابل للتكرار باستخدام منهجية الطرد المركزي المزدوج (الشكل 1). وقد وُجد أن PRP يمتلك خصائص قوية مضادة للميكروبات in vitro (تصل إلى خفض عدد الوحدات المكونة للمستعمرات CFUs بمقدار 100 ضعف) ضد بكتيريا S. aureus المقاومة للميثيسيلين (MRSA) (الشكل 3)، والتي توجد بشكل شائع في المستشفيات حول العالم 14. وبالمثل، يمتلك PRP خصائص قوية مضادة للميكروبات ضد بكتيريا S. aureus الحساسة للميثيسيلين (MSSA)، وبكتيريا Streptococcus من المجموعة...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم استخدام البلازما الغنية بالصفائح الدموية بشكل متزايد للتطبيقات السريرية نظرا لخصائصها المعززة للشفاء 15-17. في هذه الدراسة ، تم تقديم البلازما الغنية بالصفائح الدموية كنهج جديد للوقاية من العدوى. وجد أن البلازما الغنية بالصفائح الدموية لها خصائص قوية مضادة للميكروبات ضد MRSA و MSSA و Streptococcus من المجموعة A و Neisseria gonorrhoeae. تشمل المزايا الرئيسية للبلازما الغنية بالصفائح الدموية ، مقارنة بعلاجات المضادات الحيوية التقليدية ، للوقاية من العدوى ما يلي: (1) تواجه علاجات المضادات الح...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

يشكر المؤلفون ثيروا حمزة وجون إي تيدويل ونينا كلوفيس وسوزان سميث على المساعدة التجريبية وسوزان سميث على التدقيق اللغوي. يشكر المؤلفون أيضا جون توماس ، دكتوراه على توفير العزلات السريرية البكتيرية وجون ب. بارنيت ، دكتوراه على دعمه واستخدام مختبر السلامة البيولوجية في قسم علم الأحياء الدقيقة والمناعة وبيولوجيا الخلية في جامعة وست فيرجينيا. يقر المؤلفون بالدعم المالي المقدم من مؤسسة تخليق العظام ورعاية الصدمات والمؤسسة الوطنية للعلوم (# 1003907). كما تم إجراء تجارب المجهر وتحليل الصور في مرفق التصوير بجامعة ويست فيرجينيا ، والذي يدعمه جزئيا مركز ماري باب راندولف للسرطان ومنحة المعاهد الوطنية للصحة P20 RR016440.

تمت الموافقة على استخدام لسحب الدم من قبل لجنة رعاية واستخدام المؤسسية بجامعة وست فرجينيا. تم تنفيذ جميع التجارب وفقا لجميع الإرشادات واللوائح والوكالات التنظيمية ذات الصلة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الثرومبين البقريKing Pharmaceuticals، Inc60793-215-05الثرومبين (أصل بقري)
كلوريد الكالسيومKing Pharmaceuticals، Inc60793-215-0510٪ كلوريد الكالسيوم
الإيثانولسيجما ألدريتشE7023
IsofluraneBaxter1001936060
مرق مولر هينتونبيكتون ، ديكنسون وشركاه275710
محلول ملحي مخزن بالفوسفاتسيجما ألدريتشD8662
سترات ثلاثية الصوديومسيجما ألدريتشW302600
الصويا الترابيتيةفيشر ScientificR01202
أجهزة الطرد المركزيKendro منتجاتمختبر 750043077
مرشح حقنةMilliporeSLGP033RS
أجار

المراجع

  1. Gristina, A. G. Biomaterial-centered infection: microbial adhesion versus tissue integration. Science. 237, 1588-1595 (1987).
  2. Gristina, A. G., Costerton, J. W. Bacterial adherence to biomaterials and tissue. The significance of its role in clinical sepsis. J. Bone Joint Surg. Am. 67, 264-273 (1985).
  3. Everts, P. A., et al. Reviewing the structural features of autologous platelet-leukocyte gel and suggestions for use in surgery. Eur. Surg. Res. 39, 199-207 (2007).
  4. Marx, R. E. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP. Implant. Dent. 10, 225-228 (2001).
  5. Toscano, N., Holtzclaw, D. Surgical considerations in the use of platelet-rich plasma. Compend. Contin. Educ. Dent. 29, 182-185 (2008).
  6. Cieslik-Bielecka, A., Gazdzik, T. S., Bielecki, T. M., Cieslik, T. Why the platelet-rich gel has antimicrobial activity? Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 103, 303-306 (2007).
  7. Yeaman, M. R. The role of platelets in antimicrobial host defense. Clin. Infect. Dis. 25, 951-970 (1997).
  8. Tang, Y. Q., Yeaman, M. R., Selsted, M. E. Antimicrobial peptides from human platelets. Infect Immun. 70, 6524-6533 (2002).
  9. El-Sharkawy, H., et al. Platelet-rich plasma: growth factors and pro- and anti-inflammatory properties. J. Periodontol. 78, 661-669 (2007).
  10. Krijgsveld, J., et al. Thrombocidins, microbicidal proteins from human blood platelets, are C-terminal deletion products of CXC chemokines. J. Biol. Chem. 275, 20374-20381 (2000).
  11. Trowbridge, C. C., et al. Use of platelet gel and its effects on infection in cardiac surgery. J. Extra Corpor. Technol. 37, 381-386 (2005).
  12. Gristina, A. G., Naylor, P., Myrvik, Q. Infections from biomaterials and implants: a race for the surface. Med. Prog. Technol. 14, 205-224 (1988).
  13. Subbiahdoss, G., Kuijer, R., Grijpma, D. W., vander Mei, H. C., Busscher, H. J. Microbial biofilm growth vs. tissue integration: "the race for the surface" experimentally studied. Acta Biomater. 5, 1399-1404 (2009).
  14. Klevens, R. M., et al. Invasive methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in the United States. JAMA. 298, 1763-1771 (2007).
  15. Foster, T. E., Puskas, B. L., Mandelbaum, B. R., Gerhardt, M. B., Rodeo, S. A. Platelet-rich plasma: from basic science to clinical applications. Am. J. Sports Med. 37, 2259-2272 (2009).
  16. Carlson, N. E., Roach, R. B. Platelet-rich plasma: clinical applications in dentistry. J. Am. Dent. Assoc. 133, 1383-1386 (2002).
  17. Man, D., Plosker, H., Winland-Brown, J. E. The use of autologous platelet-rich plasma (platelet gel) and autologous platelet-poor plasma (fibrin glue) in cosmetic surgery. Plast. Reconstr. Surg. 107, 229-237 (2001).
  18. Fridkin, S. K., et al. Epidemiological and microbiological characterization of infections caused by Staphylococcus aureus with reduced susceptibility to vancomycin, United States, 1997-2001. Clin. Infect. Dis. 36, 429-439 (1997).
  19. Jackson, C. R., Fedorka-Cray, P. J., Davis, J. A., Barrett, J. B., Frye, J. G. Prevalence, species distribution and antimicrobial resistance of enterococci isolated from dogs and cats in the United States. J. Appl. Microbiol. 107, 1269-1278 (2009).
  20. Murray, C. K., et al. Recovery of multidrug-resistant bacteria from combat personnel evacuated from Iraq and Afghanistan at a single military treatment facility. Mil. Med. 174, 598-604 (2009).
  21. Durr, M., Peschel, A. Chemokines meet defensins: the merging concepts of chemoattractants and antimicrobial peptides in host defense. Infect Immun. 70, 6515-6517 (2002).
  22. Hancock, R. E. Peptide antibiotics. Lancet. 349, 418-422 (1997).
  23. Dohan Ehrenfest, D. M., Rasmusson, L., Albrektsson, T. Classification of platelet concentrates: from pure platelet-rich plasma (P-PRP) to leucocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF). Trends Biotechnol. 27, 158-167 (2009).
  24. Kalen, A., Wahlstrom, O., Linder, C. H., Magnusson, P. The content of bone morphogenetic proteins in platelets varies greatly between different platelet donors. Biochem. Biophys. Res. Commun. 375, 261-264 (2008).
  25. Weibrich, G., Kleis, W. K., Hafner, G., Hitzler, W. E. Growth factor levels in platelet-rich plasma and correlations with donor age, sex, and platelet count. J. Craniomaxillofac. Surg. 30, 97-102 (2002).
  26. Mazzucco, L., Balbo, V., Cattana, E., Guaschino, R., Borzini, P. Not every PRP-gel is born equal. Evaluation of growth factor availability for tissues through four PRP-gel preparations: Fibrinet, RegenPRP-Kit, Plateltex and one manual procedure. Vox Sang. 97, 110-118 (2009).
  27. Lei, H., Gui, L., Xiao, R. The effect of anticoagulants on the quality and biological efficacy of platelet-rich plasma. Clin. Biochem. 42, 1452-1460 (2009).
  28. Redler, L. H., Thompson, S. A., Hsu, S. H., Ahmad, C. S., Levine, W. N. Platelet-rich plasma therapy: a systematic literature review and evidence for clinical use. Phys. Sportsmed. 39, 42-51 (2011).
  29. Whitman, D. H., Berry, R. L., Green, D. M. Platelet gel: an autologous alternative to fibrin glue with applications in oral and maxillofacial surgery. J. Oral Maxillofac. Surg. 55, 1294-1299 (1997).
  30. Anitua, E. Plasma rich in growth factors: preliminary results of use in the preparation of future sites for implants. Int. J. Oral Maxillofac. Implants. 14, 529-535 (1999).
  31. Whitman, D. H., Berry, R. L. A technique for improving the handling of particulate cancellous bone and marrow grafts using platelet gel. J. Oral. Maxillofac. Surg. 56, 1217-1218 (1998).
  32. Currie, L. J., Sharpe, J. R., Martin, R. The use of fibrin glue in skin grafts and tissue-engineered skin replacements: a review. Plast. Reconstr. Surg. 108, 1713-1726 (2001).
  33. Nikulin, A. A. Effect of calcium, thrombin and nucleotides (ADP, cAMP, cGMP) on blood platelet glycolysis and energy metabolism. Farmakol. Toksikol. 43, 585-590 (1980).
  34. Hantgan, R. R., Taylor, R. G., Lewis, J. C. Platelets interact with fibrin only after activation. Blood. 65, 1299-1311 (1985).
  35. Hantgan, R., Fowler, W., Erickson, H., Hermans, J. Fibrin assembly: a comparison of electron microscopic and light scattering results. Thromb. Haemost. 44, 119-124 (1980).
  36. Li, B., Jiang, B., Boyce, B. M., Lindsey, B. A. Multilayer polypeptide nanoscale coatings incorporating IL-12 for the prevention of biomedical device-associated infections. Biomaterials. 30, 2552-2558 (2009).
  37. Li, B., Jiang, B., Dietz, M. J., Smith, E. S., Clovis, N. B., Rao, K. M. K. Evaluation of local MCP-1 and IL-12 nanocoatings for infection prevention in open fractures. J. Orthop. Res. 28, 48-54 (2010).
  38. Boyce, B. M., Lindsey, B. A., Clovis, N. B., Smith, E. S., Hobbs, G. R., Hubbard, D. F., Emery, S. E., Barnett, J. B., Li, B. Additive effects of exogenous IL-12 supplementation and antibiotic treatment in infection prophylaxis. J. Orthop. Res. 30 (2), 196-202 (2012).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

البلازما الغنية بالصفائح الدمويةتحضير البلازما الغنية بالصفائح الدمويةاللقاح البكتيريالتنشيط بالثرومبينالوحدات المكونة للمستعمراتخفض الوحدات المكونة للمستعمراتالطرد المركزي المزدوجالمكورات العنقودية الذهبية المقاومة للميثيسيلينخصائص التئام الجروح
بي ار بي كنهج جديد للوقاية من العدوى: إعداد و
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.