يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف: نموذج الفئران من الاصابة ضخه الإسكيمية عضلي جلدي

13.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/50473

⸱

يونيو 8, 2013

 ,  , 
1Department of Surgery, Royal Infirmary of Edinburgh, 2Department of Nephrology, Royal Infirmary of Edinburgh

في هذه المقالة

ملخص

يعمل نقل الأنسجة الحرة على نطاق واسع في الجراحة الترميمية لاستعادة الشكل والوظيفة بعد استئصال الأورام والصدمات النفسية. شروط مسبقة هذا النسيج قبل الجراحة قد يحسن النتيجة. توضح هذه المقالة في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف (الترام) في الفئران كوسيلة لاختبار استراتيجيات شروط مسبقة.

الملخص

نقل الأنسجة الحرة هي معيار الذهب من الجراحة الترميمية لإصلاح العيوب المعقدة غير قابلة للخيارات المحلية أو تلك التي تتطلب الأنسجة المركبة. نقص التروية الاصابة ضخه (IRI) هو سبب معروف من فشل جزئي رفرف مجانا وليس له علاج فعال. يمكن إنشاء نموذج مختبر من هذا الضرر يكون مكلفا ماليا كما تستخدم تقليديا أكبر الثدييات والخبرة المطلوبة من صعوبة التقنية لهذه الإجراءات عادة ما يتطلب استخدام وmicrosurgeon ذوي الخبرة. هذا المنشور والفيديو شرح استخدام الفعال لنموذج IRI في الفئران التي لا تتطلب خبرة المجهرية. هذا الإجراء هو نموذج الموقع من عضلي جلدي البطنية المستعرضة (الترام) رفرف حيث تستخدم المشابك ارضحي إعادة إنشاء إصابة نقص التروية-ضخه المرتبطة بهذه الجراحة في. يتم توظيف دوبلر التصوير (LDI) الماسح الضوئي ليزر لتقييم نضح رفرف ومعالجة الصور softwaإعادة، J صورة لتقييم نسبة بقاء منطقة الجلد كإجراء النتيجة الأولية من الإصابة.

المقدمة

والهدف من هذا البروتوكول هو ليبرهن على وجود نموذج موثوق بها وقابلة للتكرار وقوع الضرر نقص تروية-ضخه لوحظ في نقل الأنسجة حرة لتمكين الاستراتيجيات التدخلية للتحقيق معهم.

يتم تعريف نقل الأنسجة مجانا كما مفرزة الأوعية الدموية من كتلة من الأنسجة المعزولة تليها زرع ذاتي من أن الأنسجة مع مفاغرة السفن رفرف في مقطوع على السفن الأم في موقع المتلقي. ومن المعروف أن الإجراء وFTT والأنسجة نقله ويشار إلى أن رفرف مجانا.

نقل الأنسجة الحرة هي نهج معيار الذهب لتصحيح، وعيوب المركبة المعقدة حيث الخيارات المحلية غير مناسبة أو غير متوفر. 1-4 الإسكيمية الاصابة ضخه (IRI) أمر لا مفر منه في نقل الأنسجة الحرة، ويسهم في فشل رفرف 5،6 وليس لديها العلاج الفعال. طبيعة العمليات الجراحية الاختيارية رفرف مجانية تسمح إدارة pharmacologiوكلاء كال إلى شرط مسبق ضد IRI.

النتائج IRI في تدفق من خلال ضعف دوران الأوعية الدقيقة من قبل التنشيط البطانية وضعف التمثيل الغذائي، 7 زيادة نفاذية الشعيرات الدموية وذمة لاحقة الخلالي 7، تدفق الخلايا الالتهابية، 8 الافراج عن وسطاء التهابات، وأنواع الاكسجين التفاعلية (9) وترسب مكملا 10 هذه العملية المعقدة من نقص الأكسجة والاصابة ضخه اللاحقة يؤدي في النهاية إلى موت الخلية. نموذج للعضلي جلدي IRI تمكن فعالية استراتيجيات شروط مسبقة على النتائج السريرية ليتم تقييمها. العمل الأخيرة قد صادق على استخدام نماذج حيوانية من دراسات المعهد الجمهوري الدولي كبديل للIRI الإنسان من خلال مقارنة التغيرات الجزيئية التي لوحظت في البشر والحيوان البيانات الموجودة. 10،11

الفئران عرضية المستقيمة البطنية عضلي جلدي (الترام) رفرف وقد وصفت لأول مرة في عام 1987 في 12 و الألمانية في عام 199313 في اللغة الإنجليزية. هذا النموذج اكتسب شعبية واسعة 13-25 كنموذج رخيصة وقوية للتحقيق استراتيجيات مختلفة للحد من IRI المرتبطة نقل الأنسجة الحرة. وقد صممت 14،17-22 غالبية هذه الدراسات واللوحات الترام unipedicled على أساس عميق، أقل شأنا، معقد شرسوفي الأوعية الدموية عنيق 15-18،20-22 مقارنة البيانات من هذه الدراسات من خلال استخدام الجزر الجلدي مختلفة الحجم (10،5 حتي 30 سم 2). وأطوال مختلفة من المتابعة بعد العملية الجراحية (2-10 يوما). ويبلغ متوسط ​​مساحة بلغت نسبة نخر رفرف في ذراع التحكم من هذه الدراسات هو 69 ± 6.2٪ (يعني ± SEM). وتجدر الإشارة إلى أن هذه الأوراق ستة توظيف جميع العضلات المستقيمة البطنية باعتبارها الناقل للعنيق الأوعية الدموية ولكن لا تعرض، وتقسيم microanastomose أو تضييق الأوعية. تشانغ وآخرون وقد وصفت 23 صحيح، مجانا الفئران رفرف الترام على أساس سفن شرسوفي متفوقة فيها ووأثيرت فات، سفن مقسمة ورفرف عضلي جلدي نقل وmicroanastomosed في الأوعية الفخذ. هذه التقنية الصعبة المطلوبة للمفاغرة مكروية من ،45-،5 مم السفن العيار. أجريت فقط خمسة عشر وهذه 67٪ نجا 23 نموذج صفها تشانغ وآخرون. 23 هو نموذج ممتاز للإنسان رفرف الترام مجانا كما أنه يعكس حقا الإصابة المتكبدة خلال FTT. نماذج أخرى نشرت من رفرف الترام الفئران تعكس بدقة أكبر الإصابات المتكبدة خلال ترام pedicled الإنسان، ولكن لا تعكس بدقة IRI لأن هذه رفرف في لا الخضوع لفترة الدماغية تليها ضخه كما عنيق الأوعية الدموية لا يتم فرضت أو تقسيم و إجراء مفاغرة مكروية. هذا البروتوكول والفيديو وصف نموذج جديد للنقل الأنسجة مجانا باستخدام الترام في الفئران التي يتم نسخ IRI باستخدام microclamps. هذا يعيد أكثر بأمانة IRI من سبقوه الترام عنيق لكن هو أسهل من الناحية التقنية من performiنانوغرام مفاغرة مكروية. وقد استخدمت على نطاق واسع Microclamps من قبل الباحثين لإعادة زرع IRI المرتبطة زرع الأعضاء الصلبة؛ 26-33 ومع ذلك، هذه هي المرة الأولى التي وصفت ذلك في رفرف الترام الفئران.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

يتم تنفيذ كل عملية جراحية وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها وزارة الداخلية في المملكة المتحدة وجامعة قسم الخدمات البيطرية في أدنبرة.

1. مجموعة المتابعة العملية الجراحية ملاحظات

  1. تغيير في الدعك نظيفة الجراحية، ثوب، وكأب وفرك القناع. تنظيف جميع الأسطح من غرفة العمليات بما في ذلك المعدات بالكلورهيكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪.
  2. قبل الجراحة، الأوتوكلاف جميع المستلزمات والأدوات التي سيتم استخدامها في العملية الجراحية. ينبغي حزم معقمة لكل عملية تشمل ما يلي: 3 الستائر والشاش وتطبيقها طرف القطن، والأغطية سيليكون والأدوات الجراحية، راجع الجدول من مواد جراحية محددة وأدوات والشكل 1. وزن الفئران وقياس من حجم مناسب من البوبرينورفين (0.04 ملجم / كجم) على أن تدار تحت الجلد 1 ساعة قبل إتمام الإجراء. وضع؛ 3 × 1 مل المحاقن لإدارة السوائل تحت الجلد خلال سورغريها، 2 × 6-0 ​​الغرز VICRYL، 1 × 5-0 الغرز Ethilon، علامة العقيمة مع الحاكم ومشرط المتاح 10 شفرة، 4-5 أزواج من القفازات المعقمة وحدة الكي باليد.
  3. المكان 4 × 10 مل العقيمة، 0.9٪ قارورة المياه المالحة في حمام مائي تحسنت إلى 37 درجة مئوية. سيتم استخدام هذا لاستبدال السوائل تحت الجلد (1 مل / كجم / ساعة)، وشطف موقع الجراحية. إعداد بطانية homeothermic، المستقيم التحقيق، مصباح الحرارة، مجهر جراحي ومخدر تلاعب. بدوره على الليزر وبرمجياتها، مجموعة المتابعة تلاعب مخدر آخر، ووضع وسادة الحرارة تحت حصيرة سوداء على الحيوان الذي سيضع أثناء الفحص.
  4. استخدام الذكور والفئران وزنها 250-300 ز لويس. يتم تنفيذ الفئران منزل لمدة 7 أيام مع الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية مع 12 ساعة الدوائر السوداء الخفيفة قبل أي عملية جراحية.

2. التخدير وتحضير الجلد

  1. وضع فأر في غرفة تحريض تلاعب مخدر وتدير 4٪ isoflurane ومع 1L/min O 2 لل2-3 دقيقة للحث على التخدير. إزالة الفئران تخدير من الغرفة ووضعه مستلق على حصيرة نظيفة، ساخنة. الحفاظ على isoflurane وبنسبة 1.5٪ باستخدام مخروط الأنف. تطبيق عامل lacrilube أو ما شابه ذلك لمنع تآكل القرنية أثناء العملية. إجراء اختبار قرصة القدم وسادة لضمان الحيوان هو تخدير كاف قبل المتابعة. كرر هذه التجربة الاخيرة قبل كل خطوة رئيسية في إجراء وضبط تركيز مخدر الاستنشاق وفقا لذلك.
  2. حلاقة عن كثب الأمامي البطن باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية بحيث يتعرض سطح البطن بأكمله. تطبيق السماط الكريم لمدة موصى بها من قبل المورد. إزالة كريم وشطف جيدا الجلد مع ملحي معقم تحسنت إلى إزالة كل آثار من القشدة. تطبيق الكلورهكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪ على الجلد والسماح ليجف قبل المتابعة. هذا هو إعداد الجلد القياسية في وحدتنا على أساس الأدلة الحالية للعدوى موضع الجراحة. فضلك د 34iscuss مع قسم الطب البيطري الخاص ما هو الإجراء القياسي في وحدتك قبل انتخاب بروتوكول إعداد الجلد.
  3. مكان 2 ستائر جانبي الفئران والحرص على الاحتفاظ بها العقيمة. وضعت على قفازات معقمة وبمساعدة مساعد فتح علب معقمة. وضع جميع الصكوك على الستارة واحد وخياطة الجروح، والشاش، القطن تطبيقها، والأغطية سيليكون وعلامة من ركلة جزاء العقيمة مع حاكم من ناحية أخرى.
  4. تحديد خط الوسط باستخدام xiphisternum والذيل كنقاط مرجعية. جعل خط الوسط. قياس 0.8 سم تحت xiphisternum وبمناسبة هذه النقطة. رسم خط عمودي على خط الوسط من هذه النقطة. اتخاذ خط الوسط كمركز للعلامة رفرف من 1 سم و 2 سم إلى اليسار واليمين من خط الوسط. رسم خطوط عمودية متوازية على خط الوسط من النقاط. قياس 4 سم تحت الخط الأفقي الأصلي ورسم آخر مواز له. باتباع هذه التعليمات ويرسم على 4 × 4 سم رفرف ينقسم إلى 4 شرائح متساوية(انظر الشكل 2).

3. دوبلر الليزر التصوير

  1. تحرك بحذر الفئران على مخروط الأنف من الثانية تلاعب مخدر في الماسح الضوئي LDI. يستمر التخدير عند 1.5٪ isoflurane و، 1L/min O 2. بدوره على الليزر واتبع إرشادات الشركة المصنعة لبدء المسح الضوئي. بعد حفظ الملف الممسوح ضوئيا عودة الفئران عودة إلى تلاعب الأولى وإعادة إدراج التحقيق المستقيم من بطانية homeothermic باستخدام البارافين الأبيض الطري ومواد التشحيم.

4 في الموقع رفرف الترام - نموذج عضلي جلدي من IRI

  1. الأيدي إعادة فرك وضعت على قفازات معقمة جديدة. قطع على دائرة قطرها 5 سم في وسط وثنى العقيمة المتبقية ووضع هذا على البطن يتعرض لإنشاء رايات العقيمة الميدان.
  2. إجراء شق على الناحية اليسرى الجانبية حافة ملحوظ (الشكل 3A وباء). تحقيق الارقاء. جعل شقوق مماثلة أسفل خطوط أفقيةإلى اليسار من خط الوسط. تحقيق الارقاء.
  3. المغطي الدهون يجب أن يكون اليسار السفلي غمد المستقيمة مرئية. باستخدام ملقط ومقص القزحية غرامة بعناية تحصل تحت هذه الدهون. والحرص على عدم تلف الثاقبة القادمة من خلال الجهة اليسرى الأمامية غمد المستقيمة. الطائرة التي تتيحها مثل تشريح هو أن مباشرة فوق البطن الأمامي اللفافة الجدار. يواصل تشريح في هذه الطائرة حول الهوامش المرسومة. في الحفرة الحرقفية اليسرى تكمن الكبيرة، وسطحية المنعطف الحرقفي السفن هذه يمكن أن تكون مرتبطة أو أكتوي. ثم توسيع تشريح إعلامي بحذر وفقط بقدر الهامش الجانبي للعضلة المستقيمة اليسرى. هناك تغير لونها واضح في هذه النقطة من الوردي إلى الأبيض بالقرب من (الشكل 3C). ري بعناية المنطقة مع ملحي معقم وتحقق من أن الارقاء قد تحقق قبل وضع الشاش الرطب على المنطقة.
  4. كرر الإجراء على الجانب المقابل ولكن هذه المرة تمديد ريا لينيا ألبا (منتصف خط). الحرص على تحديد ويكوي كل الثاقبة العضلي الجلدي الناشئة في وسط الحق المستقيمة البطنية العضلات (الشكل 3D). إذا لم يتم ذلك بشكل صحيح فإنه يمكن أن يؤدي إلى ورم دموي بعد العملية الجراحية والنتائج زائفة. وبالمثل تحقيق الإرقاء، لري ووضع الشاش الرطب على رفرف المثارة.
  5. العودة إلى الهامش السفلي للالمستقيمة الأمامية اليسرى (الشكل 3E و F). يكوي ثقب معظم أدنى ينظر إليها. انتقل إلى خفض نافذة صغيرة (حوالي 0.6 سم × 0.6 سم) في غمد المستقيمة الأمامية باستخدام microscissors وأشار منحني ملقط Graeffe. بلانت تشريح ببطء إلى أسفل الهامش الجانبي للعضلة حتى يخفف العضلات خارج ولكن قبل أن يتم اختراق غمد الخلفي. ثم تناوب على ملقط وتخفف من حدة تشريح إعلامي حتى البطن من العضلات هو فوق الحافة المنحنية من ملقط ونصائح أحرار في الهامش وسطي. إطعام تقريبيLY 6 سم من 5-0 Ethilon في فكي ملقط وربط قبالة غمد المستقيمة السفلية. عند الانتهاء من هذه الخطوة هو عزل رفرف عضلي جلدي على واحد مهيمن سفينة الأوعية شرسوفي متفوقة عميق. تغطية مع الشاش رطبة.
  6. قطع الأغطية سيليكون في الأشكال البيضاوية مع زوايا على نحو سلس، (الشكل 3G). وينبغي لهذه أن تكون كبيرة بما يكفي لتغطية معظم المنطقة المعرضة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. ومع ذلك، يجب اتخاذ الحذر لضمان أن حافة الجلد يمكن أن تكون مغلقة دون أي توتر ومنحنى الإنسي للبيضاوي قد تضطر إلى أن تقرن مرة أخرى لمنعها تدفق إضعاف من خلال الثاقبة المتبقية. ثم تتم خياطة هذه في مكان مع 6-0 VICRYL (الشكل 3H). تغطي بشاش رطبة.
  7. استخدام بسيطة المقاطعة 'ربط خارج' 5-0 الغرز Ethilon رفرف لتخفيض درجة الحرارة وفقدان الماء (الشكل 3I). تغطية مع الشاش رطبة.
  8. تمديد الجرح متفوق على يسارxiphisternum (الشكل 3I). خياطة هذا إلى الربع العلوي الأيسر لتحسين من رأي الميدان.
  9. قطع بعيدا أي الدهون المغطي للكشف عن متفوقة، اليسار، الأمامي غمد المستقيمة. قطع (0.6 سم × 0.6 سم) نافذة صغيرة في هذا غمد (الشكل 3J). تمديد الجرح بشكل إعلامي حتى تغيير في مسار الألياف العضلية من العمودي إلى وينظر منحرف والاتساق من معبأة بإحكام لييفات فضفاضة.
  10. إدراج ملقط المنحني بعناية بين هذه العضلات واثنين من فتح الطائرة من قبل تشريح حادة. قطع بعناية أسفل فقط بقدر السطح العلوي من هذه ملقط المنحني قطع طريق البطن من العضلات المستقيمة البطنية اليسرى لكشف الكامنة العميقة، متفوقة الشريان والوريد الشرسوفي (الشكل 3K).
  11. باستخدام الأدوات الدقيقة وعالية الطاقة على المجهر التشغيل، فصل بعناية الشريان والوريد وتجريدها من أي الدهون المحيطة بها.
  12. تطبيق المشابك أكلاند ارضحي إلى أحدrtery والوريد (B-1، "V" نوع) وبدء موقت العد التنازلي لفترة 30 دقيقة الدماغية. ري فرضت عنيق، وتغطي بشاش. ونحن لم تستخدم الموسعات السفينة مثل فيراباميل أو pabavarine لكن ينبغي أن يكون تشنج الأوعية مشكلة، وينبغي النظر في هذه الأدوية.
  13. إدارة البوبرينورفين (0.04 ملغ / كلغ) وتحسنت، ملحي معقم (1 مل / كغ / ساعة).
  14. بدءا من الزاوية اليسرى العليا، خياطة رفرف في مكان مع الغرز 6-0 تحت البشرة VICRYL وقف وربط قبالة في xiphisternum.
  15. عندما يوجد وقت الدماغية 30 قد انتهت، وإزالة بعناية والمشابك، ولري عنيق مع المياه المالحة حرارة. تأكد من أن تم إعادة تأسيس تدفق. يرجى ملاحظة أن هذه المرة الدماغية نص عليه المملكة المتحدة الرئيسية هيئة مكتب. الباحثين العاملين في السلطات الأخرى قد تكون قادرة على توسيع نطاق هذا الوقت. سوف تمديد الوقت الدماغية قد يؤدي إلى نتائج سريرية أسوأ.
  16. خياطة حواف قطع من المستقيمة إلى مكانه مرة أخرى مع 6-0 VICRYL.والحرص على عدم تطبيق الكثير من التوتر لأن ذلك يمكن أن يؤدي إلى مجعد من السفن.
  17. إكمال خياطة تحت الجلد مع الحرص على دفن كل عقدة تحت الجلد (الشكل 3K).
  18. تنظيف منطقة الجرح واتركه حتى يجف. إعادة رسم المناطق على رفرف.
  19. إعادة فحص الحيوان للحصول على صورة ما بعد الجراحة.
  20. إعادة تطبيق lacrilube لعيون الحيوان ومكان في حاضنة حرارة (37 درجة مئوية) لمدة 1 ساعة لاستعادة قبل أن يعود إلى وحدة تربية.

الخطوات الحاسمة في إطار بروتوكول

جوهر هذا الإجراء هو في تحديد العميق، سفن شرسوفي متفوقة. ويظهر هذا بوضوح في الفيلم المرافق له. وباختصار، هو قطع نافذة في غمد المستقيمة الأمامية لفضح الألياف العضلية الأساسية التي سيقوم بتشغيل طوليا. من خلال توسيع تشريح سطحي من غمد المستقيمة الأمامية بشكل إعلامي تغييرا في مسار الألياف العضلية لوحظ جمعةROM طولية لمنحرف. إدراج فظة انتهت، المنحنية، ملقط Graeffe (أو ما شابه) عند تقاطع هذه حزم من الألياف العضلية اثنين. بلانت تشريح أفقيا. خفض، وذلك باستخدام المقص الصغير، على السطح العلوي للملقط المنحني الذي عقد في هذه الطائرة بين حزم الألياف العضلية. على إزالة Graeffe ملقط الشريان الشرسوفي عميق، متفوقة وسيراعى الوريد في منتصف من الجسم البطنية العضلات المستقيمة. تجريدها من المغطي الدهون في الأوعية باستخدام الأدوات الدقيقة وتطبيق المشابك.

الأجزاء fasciocutaneous من رفرف الترام الفئران هي رقيقة بما فيه الكفاية للسماح للرفرف لاتخاذ كعضو كامل سماكة الجلد الكسب غير المشروع. لمنع هذا، وضمان أن هذا هو نموذج صحيح من IRI رقيقة، يتم وضع ورقة السيليكون مرنة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. اعتمد 35 هذه الخطوة من قبل الباحثين الآخرين بإجراء نماذج الترام الفئران. 17،21،25

الفئران مضغه throuعقدة GH لذلك تأكد من جميع الغرز هي تحت البشرة ويتم دفن كل عقدة. في الاضطلاع الدقيق autocannabilism خياطة من اللوحات كما ذكرت من قبل الباحثين الآخرين يمكن تجنبها. 24

بعد إدارة البوبرينورفين لحد التخدير الصيانة إلى 1٪ isoflurane و(1L/min O 2).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

نماذج الفئران هي أكثر اقتصادا من الحيوانات أكبر النماذج، 36 هي مقاومة للمرض في الطبيعة، ويمكن التلاعب بها وراثيا. ويعتقد أن الحيوانات البشرة فضفاضة، مثل القوارض، أن يكون لها ترتيب مختلف من إمدادات الدم الجلدي بالمقارنة مع الحيوانات البشرة الثابتة مثل البشر والخنازير. في الحيوانات البشرة فضفاضة، ويتم تزويد الجلد في المقام الأول عن طريق الأوعية الدموية الجلدية المباشرة التي تمر عبر الدهون تحت الجلد إلى الجلد المغطي (الشكل 4) وعلى النقيض، ثابتة الحيوانات ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

التعديلات ومعرفة الخلل

بروتوكول المعروضة هنا يستنسخ IRI ينظر في نقل الأنسجة الحرة في نظام تجريبي تمكين مزيد من الفهم لتلك العملية ويوفر وسيلة لتحقيق وسائل تخفيف IRI وتحسين النتيجة. يمكن بسهولة أن يتم تعديل هذا لإنتاج إصابة أكثر شدة إذا ما أعتمد على غير المهيمنة، عميق، أدنى شرسوفي عنيق أو إذا تم زيادة الوقت اللازم الدماغية.

القيود المفروضة على تقنية

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدينا الإفصاحات.

شكر وتقدير

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل مجلس البحوث الطبية المنحة G1000299.

فإن مؤلف كتاب المقابلة أود أن أشكر غاري BORTHWICK، جامعة أدنبرة، عن مساعدة أثناء الجراحة.

فإن الكتاب أود أن أنوه المشورة من هيلين دوغلاس وإيان ماكاي والسماح لنا أن نلاحظ شرسوفي الوضيعين العميق (ديب) إجراء رفرف (Canniesburn وحدة جراحة التجميل، غلاسكو مستشفى رويال، 84 شارع القلعة، غلاسكو G4 0SF، المملكة المتحدة).

فإن الكتاب أود أيضا أن أشكر غاري بلاكي في جامعة ادنبره لمساعدته في انتاج الفيديو على هذا المقال.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
التصوير بالليزر Moor LD12http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8< / a>
نظام بطانية حراري كامل مع مسبار مرن. صغير. 230 فولت تيار متردد ، 50 هرتز507221Fwww.harvardapparatus.com< / a>
ملقط Graeffe 0.8 مم أطراف منحنية11052-102 ، http://www.finescience.de< / a>
Acland clamps00398 VB-1 &# 8217; V&# 8217; المشابك النمطية المستخدمة في كل من الشريان والوريد. http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf< / a>
قضيب المشبكCAF-4http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf< / a>
Gemini وحدة726067www.harvardapparatus.com< / a>
موسعات الأوعية الدقيقة 11 سم 0.3 مم أطراف 00124D-5a.2http://www.merciansurgical.com< / a>
ملقط المجوهرات الصغيرة 11 سم بزاوية 00109JFA-5bhttp://www.merciansurgical.com< / a>
ملقط مجوهرات صغيرة 11 سم مستقيم 00108JF-5http://www.merciansurgical.com< / a>
Acland Single Clamps B-1V (زوج)396http://www.merciansurgical.com< / a>
مقص دقيق مقابض دائرية 15 سم مستقيم67http://www.merciansurgical.com< / a>
مقص قزحية 11.5 سم منحنيات EASY-CUTEA7613-11http://www.merciansurgical.com< / a>
Mayo مقص 14 سم شفرات مشطوفة مستقيمة EASY-CUTEA7652-14http://www.merciansurgical.com< / a>
Derf حاملات إبرة 12 سم TC703DE12http://www.merciansurgical.com< / a>
Ethilon 5-0W1618http://www.farlamedical.co.uk/< / a>
Vicryl rapide 6-0W9913http://www.millermedicalsupplies.com/< / a>
Instrapac - ملقط Adson Toothed (غرامة إضافية)7973http://www.millermedicalsupplies.com/< / a>
حاملات إبرة Castroviejo12565-14http://s-and-t.ne< / a>
heat lamphttp://www.chicken-house.co.uk< / a>
صفائح سيليكون 0.3 مم شفافةhttp://www.silex.co.uk/< / a>
برنامجhttp://rsbweb.nih.gov/ij/< / a>
Zeiss OPMI picohttp://www.zeiss.co.uk/< / a>
مجهر
جهاز التسوية التقنية البيطريةhttp://www.vet-tech.co.uk/< / a>
Vet Tech solutionrighttp://www.vet-tech.co.uk/< / a>
ماسح الكي Image Jالتشغيل isofluorane

المراجع

  1. Wang, X., et al. Free anterolateral thigh adipofascial flap for hemifacial atrophy. Ann. Plast. Surg. 55 (6), 617-622 (2005).
  2. Eckardt, A., Fokas, K. Microsurgical reconstruction in the head and neck region: An 18-year experience with 500 consecutive cases. J. Cranio. Maxill. Surg. 31 (4), 197-201 (2003).
  3. Yazar, S., et al. Safety and reliability of microsurgical free tissue transfers in paediatric head and neck reconstruction - a report of 72 cases. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (7), 767-771 (2008).
  4. Blondeel, P. N., Landuyt, K. H. V., Monstrey, S. J. Surgical-technical aspects of the free diep flap for breast reconstruction. Operat. Tech. Plast. Reconstr. Surg. 6 (1), 27-37 (1999).
  5. Siemonow, M., Arslan, E. Ischaemia/reperfusion injury: A review in relation to free tissue transfers. Microsurgery. 24, 468-475 (2004).
  6. Wang, W. Z. Investigation of reperfusion injury and ischaemic preconditioning in microsurgery. Microsurgery. 29, 72-79 (2009).
  7. Rucker, M., et al. Reduction of inflammatory response in composite flap transfer by local stress conditioning-induced heat-shock protein 32. Surgery. 129 (3), 292-301 (2001).
  8. Cetinkale, O., et al. Involvement of neutrophils in ischemia-reperfusion injury of inguinal island skin flaps in rats. Plast. Reconstr. Surg. 102 (1), 153-160 (1998).
  9. Korthuis, R. J., Granger, D. N., Townsley, M. I., Taylor, A. E. The role of oxygen-derived free radicals in ischemia-induced increases in canine skeletal muscle vascular permeability. Circ. Res. 57 (4), 599-609 (1985).
  10. Eisenhardt, S. U., et al. Monitoring molecular changes induced by ischemia/reperfusion in human free muscle flap tissue samples. Ann. Plast. Surg. 68 (2), 202-208 (2012).
  11. Dragu, A., et al. Gene expression analysis of ischaemia and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue transfer. J. Cell. Mol. Med. 15 (4), 983-993 (2011).
  12. Tilgner, A., Herrberger, U. [myocutaneous flap models in the rat. Anatomy, histology and preparation technic of the myocutaneous rectus abdominis flap]. Z. Versuchstierkd. 29 (5-6), 231-236 (1987).
  13. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The rat rectus abdominis myocutaneous flap: A true myocutaneous flap model. Ann. Plast. Surg. 31 (4), 352-357 (1993).
  14. Clugston, P. A., Perry, L. C., Fisher, J., Maxwell, G. P. A rat transverse rectus abdominis musculocutaneous flap model: Effects of pharmacological manipulation. Ann. Plast. Surg. 34 (2), 154-161 (1995).
  15. Ozgentas, H. E., Shenaq, S., Spira, M. Development of a tram flap model in the rat and study of vascular dominance. Plast. Reconstr. Surg. 94 (7), 1012-1017 (1994).
  16. Doncatto, L. F., da Silva, J. B., da Silva, V. D., Martins, P. D. Cutaneous viability in a rat pedicled tram flap model. Plast. Reconstr. Surg. 119 (5), 1425-1430 (2007).
  17. Lineaweaver, W. C., et al. Vascular endothelium growth factor, surgical delay, and skin flap survival. Ann. Surg. 239 (6), 866-873 (2004).
  18. Rezende, F. C., et al. Electroporation of vascular endothelial growth factor gene in a unipedicle transverse rectus abdominis myocutaneous flap reduces necrosis. Ann. Plast. Surg. 64 (2), 242-246 (2010).
  19. Zacchigna, S., et al. Improved survival of ischemic cutaneous and musculocutaneous flaps after vascular endothelial growth factor gene transfer using adeno-associated virus vectors. Am. J. Pathol. 167 (4), 981-991 (2005).
  20. Zhang, F., et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat tram flap model. Ann. Plast. Surg. 46, 314-319 (2010).
  21. Hijjawi, J., et al. Platelet-derived growth factor β, but not fibroblast growth factor 2, plasmid DNA improves survival of ischemic myocutaneous flaps. Arch. Surg. 139 (2), 142-147 (2004).
  22. Wong, M. S., et al. Basic fibroblast growth factor expression following surgical delay of rat transverse rectus abdominis myocutaneous flaps. Plast. Reconstr. Surg. 113 (7), 2030-2036 (2004).
  23. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14 (6), 420-423 (1993).
  24. Hallock, G. G., Rice, D. C. Comparison of tram and diep flap physiology in a rat model. Plast Reconstr Surg. 114 (5), 1179-1184 (2004).
  25. Qiao, Q., et al. Patterns of flap loss related to arterial and venous insufficiency in the rat pedicled tram flap. Annals of Plastic Surgery. 43 (2), 171(1999).
  26. Persy, V. P., Verhulst, A., Ysebaert, D. K., De Greef, K. E., De Broe, M. E. Reduced postischemic macrophage infiltration and interstitial fibrosis in osteopontin knockout mice. Kidney Int. 63 (2), 543-553 (2003).
  27. Li, Y., et al. Overexpression of cgmp-dependent protein kinase i (pkg-i) attenuates ischemia-reperfusion-induced kidney injury. Am. J. Physiol. Ren. Physiol. 302 (5), 561-570 (2012).
  28. Hunter, J. P., et al. Effects of hydrogen sulphide in an experimental model of renal ischaemia-reperfusion injury. Brit. J. Surg. 99 (12), 1665-1671 (2012).
  29. Hamada, T., Fondevila, C., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Metalloproteinase-9 deficiency protects against hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology. 47 (1), 186-198 (2008).
  30. Duarte, S., Hamada, T., Kuriyama, N., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Timp-1 deficiency leads to lethal partial hepatic ischemia and reperfusion injury. Hepatology. 56 (3), 1074-1085 (2012).
  31. Shen, X. D., et al. Cd154-cd40 t-cell costimulation pathway is required in the mechanism of hepatic ischemia/reperfusion injury, and its blockade facilitates and depends on heme oxygenase-1 mediated cytoprotection. Transplantation. 74 (3), 315-319 (2002).
  32. Liu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress modulates liver inflammatory immune response in the pathogenesis of liver ischemia and reperfusion injury. Transplantation. 94 (3), 211-217 (2012).
  33. Pan, G. Z., et al. Bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate hepatic ischemia/reperfusion injuries via inactivation of the mek/erk signaling pathway in rats. J. Surg. Res. 178 (2), 935-948 (2012).
  34. Darouiche, R. O., et al. Chlorhexidine-alcohol versus povidone-iodine for surgical-site antisepsis. New. Engl. J. Med. 362 (1), 18-26 (2010).
  35. Fukui, A., Inada, Y., Murata, K., Tamai, S. Plasmatic imbibition" in the rabbit flow-through venus flap, using horseradish peroxidase and fluoroscein. J. Reconstr. Mirosurg. 11, 255-264 (1995).
  36. Dunn, R. M., Mancoll, J. Flap models in the rat: A review and and reappraisal. Plast. Reconstr. Surg. 90 (2), 319-328 (1992).
  37. Taylor, G., Minabe, T. The angiosomes of the mammals and other vertebrates. Plast. Reconstr. Surg. 89 (2), 181-215 (1992).
  38. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The versatile deep inferior epigastric (inferior rectus abdominis) flap. Brit. J. Plast. Surg. 37 (3), 330-350 (1984).
  39. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The extended deep inferior epigastric flap: A clinical technique. Plast. Reconstr. Surg. 72 (6), 751-765 (1983).
  40. Tai, Y., Hasegawa, H. A tranverse abdominal flap for reconstruction after radical operations for recurrent breast cancer. Plast. Reconstr. Surg. 53 (1), 52-54 (1974).
  41. Scheflan, M., Dinner, M. I. The transverse abdominal island flap: Part i. Indications, contraindications, results, and complications. Ann. Plast. Surg. 10, 24-35 (1983).
  42. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Pripp, A. H., Tonseth, K. A. Monitoring microcirculatory changes in the deep inferior epigastric artery perforator flap with laser doppler perfusion imaging. Ann. Plast. Surg. 67 (2), 139-142 (2011).
  43. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Tonseth, K. A. Microcirculatory evaluation of deep inferior epigastric artery perforator flaps with laser doppler perfusion imaging in breast reconstruction. J. Plast. Surg. Hand. Surg. 45 (3), 143-147 (2011).
  44. Booi, D. I., Debats, I. B. J. G., Boeckx, W. D., van der Hulsi, R. R. W. J. A study of perfusion of the distal free-tram flap using laser doppler flowmetry. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, 282-288 (2008).
  45. Hallock, G. G. Physiological studies using laser doppler flowmetry to compare blood flow to the zones of the free tram flap. Ann. Plast .Surg. 47 (3), 229-233 (2001).
  46. Collin, T. Image j for microscopy. Biotechniques. Suppl. 43 (1), 25-30 (2007).
  47. Hallock, G., Rice, D. Physiologic superiority of the anatomic dominant pedicle of the tram flap in a rat model. Plast. Reconstr. Surg. 96, 111-118 (1995).
  48. Ozmen, S., Ayhan, S., Demir, Y., Siemionow, M., Atabay, K. Impact of gradual blood flow increase on ischaemia-reperfusion injury in the rat cremaster microcirculation model. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (8), 939-948 (2008).
  49. Rucker, M., Vollmar, B., Roesken, F., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Microvascular transfer-related abrogation of capillary flow motion in critically reperfused composite flaps. Brit. J. Plast Surg. 55 (2), 129-135 (2002).
  50. Rucker, M., Kadirogullari, B., Vollmar, B., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Improvement of nutritive perfusion after free tissue transfer by local heat shock-priming-induced preservation of capillary flowmotion. J. Surg. Res. 123, 102-108 (2005).
  51. Rucker, M., et al. New model for in vivo quantification of microvascular embolization, thrombus formation, and recanalization in composite flaps. J. Surg. Res. 108 (1), 129-137 (2002).
  52. Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon. Plast. Reconstr. Surg. 128 (6), 685e-692e (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

تصوير دوپلر الليزريتحليل برنامج إيميج جي (Image J)الملاقط غير الرضيةتقييم تروية السديلةقياس بقاء الجلدالإجراء الجراحي
في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف: نموذج الفئران من الاصابة ضخه الإسكيمية عضلي جلدي
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.