$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. إعداد البكتيريا تغذية
ملاحظة: يصف هذا القسم إعداد البكتيريا تغذية (E. القولونية سلالة OP50).
- عزل مستعمرة واحدة من E. القولونية سلالة OP50 من مرق استذابة (LB) لوحة أجار وجو معقم و مطهر تطعيم في 300 مل من مرق LB تعقيمها.
- السماح للثقافة تلقيح لتنمو بين عشية وضحاها في شاكر في 200 دورة في الدقيقة و 37 درجة مئوية، حتى يتم التوصل التشبع.
- نقل OP50 إلى 6 العقيمة، 50 مل أنابيب مخروطية وزنه مسبقا. بيليه البكتيريا عن طريق الطرد المركزي لمدة 5 دقائق عند 6،000 دورة في الدقيقة (5،000 x ج).
- تجاهل طاف ويغسل البكتيريا مع 50 مل من العقيمة M9. كرر مرتين.
- بعد غسل الثاني إزالة M9 المتبقية، وضمان أن لا M9 المتبقي في الأنبوب.
- تحديد وزن بيليه عن طريق وزن الأنبوب الذي يحتوي على بيليه البكتيريا وطرح وزن 50 مل أنبوب مخروطي الشكل.
- Resuspend وأنا بيليهن M9 بتركيز 100 ملغ / مل.
- تخزين حل OP50 في 4 درجات مئوية حتى يتم استخدامه للثقافة دودة.
2. إعداد نيماتودا النمو المتوسطة لوحات (NGM) بيتري
ملاحظة: يصف هذا القسم إعداد لوحات NGM بيتري، والتي هي لوحات حيث C. تتم المحافظة على الديدان ايليجانس بشكل روتيني في المختبر.
- الأوتوكلاف آغار المتوسطة NGM.
- باستخدام الإجراءات العقيمة، والاستغناء 17 مل من NGM حل أجار إلى 6 سم لوحات بيتري باستخدام مضخة تمعجية.
ملاحظة: هناك كمية ثابتة من أجار في لوحات يقلل من الحاجة إلى إعادة تركيز المجهر عند التبديل من لوحة إلى أخرى. - ترك لوحات في درجة حرارة الغرفة لمدة 2-3 أيام قبل الاستخدام للسماح للأجار يصلب والسماح للرطوبة الزائدة لتتبخر.
- البذور لوحات NGM باستخدام تقنية معقمة. تطبيق 1-2 قطرات من الثقافة السائلة OP50 وتنتشر باستخدام قضيب الزجاج. تأكد من عدملنشر العشب البكتيريا على طول الطريق إلى حواف الصفائح.
- اسمحوا العشب OP50 لتنمو لمدة 1-2 أيام في درجة حرارة الغرفة قبل استخدام لوحات لتنمو الديدان.
3. إعداد السكان دودة متزامن
ملاحظة: دورة حياة C. وتتألف ايليجانس من المرحلة الجنينية، وأربع مراحل اليرقات (L1-L4) والبلوغ. يصف هذا القسم إعداد السكان في سن متزامن من الديدان. جميع المواد القادمة في اتصال مع C.elegans بعد العلاج التبييض يجب أن تكون معقمة.
- يوم 1 - إعداد حامل دودة السكان
- استخدام لوحات NGM فيها غالبية السكان دودة تتكون من تجويع اليرقات L1.
- جمع اليرقات L1 مع دودة تعقيمها انتقاء ونقلها إلى الطازج 6 لوحات سم NGM المصنف مع OP50. احتضان لمدة ما يقرب من 65 ساعة على 20 درجة مئوية حتى غالبية الديدان هم من البالغين حامل. إلىتجنب لوحة الاكتظاظ والسماح للديدان أن ينمو دون استنفاد البكتيريا، لا نقل أكثر من واحد أو اثنين مجموعات من L1 اليرقات إلى كل لوحة NGM الطازجة.
- يوم 4 - إنشاء المتزامنة L1 اليرقات السكان
- جمع الديدان الحاملة للبيض من لوحات NGM من قبل غسلها مع 1-2 مل من M9 ونقلها إلى أنبوب مخروطي 15 مل.
- السماح للديدان الحاملة للبيض الرواسب في قاع 15 مل أنبوب مخروطي لحوالي 5-10 دقيقة. إزالة طاف دون الإخلال بيليه دودة.
- نقل بيليه الدودة إلى 2-4 أنابيب microcentrifuge وإضافة 1 مل من التبييض / هيدروكسيد الصوديوم الحل. احتضان لمدة 2-3 دقيقة في RT. رصد التقدم المحرز في رد الفعل تحت stereomicroscope لتأكيد كل الديدان قد لقوا حتفهم. لا التبييض أطول من 5 دقائق كما الأجنة يمكن أن يموت.
- جمع الديدان بواسطة الطرد المركزي لمدة 1 دقيقة في 3،000 دورة في الدقيقة (900 x ج). إزالة طاف وإضافة 1 مل من العقيمة M9 لتحييد رد فعل.
- غسل الديدان مرتين من قبل الطرد المركزي لمدة 1 دقيقة في 3،000 دورة في الدقيقة (900 x ج).
- إزالة طاف وإضافة M9 ليصل الى 100-200 ميكرولتر.
- باستخدام الزجاج ماصة باستير إضافة قطرة من دودة / M9 مزيج لمسح لوحات NGM واحتضان لهم لمدة 24 ساعة على الأقل عند 20 درجة مئوية للسماح للأجنة ليفقس.
ملاحظة: بدون الغذاء سيتم توقف نمو اليرقات في المرحلة L1.
- اليوم 5 - إنشاء المتزامنة L4 اليرقات السكان
- جمع اليرقات L1 من لوحات NGM واضحة من قبل غسل لوحات مع 1-2 مل من M9 ونقلها إلى أنبوب مخروطي 15 مل.
- السماح للالديدان البالغة ميت الرواسب إلى أسفل أنبوب 15 مل المخروطية لمدة 5 دقائق تقريبا.
- جمع طاف، حيث الديدان L1 هي، في الجديد مخروطي 15 مل أنبوب، ويعجل الديدان بواسطة الطرد المركزي لمدة 2 دقيقة في 2،600 دورة في الدقيقة (1،000 x ج).
- إزالة طاف جنيهأفينغ ما يقرب من 500 ميكرولتر.
- تحديد تركيز الديدان في حل M9 عن طريق حساب عدد من الديدان في 10 ميكرولتر قطرات باستخدام stereomicroscope. عدد لا يقل عن 5 قطرات.
- ضبط تركيز الديدان إلى 20-25 الديدان / ميكرولتر وإضافة 50 ميكرولتر من دودة / M9 مزيج لوحات NGM المصنف مع OP50.
- احتضان لمدة 65 ساعة على 15 درجة مئوية (للحضانة من خلال نهاية الأسبوع) السماح للسكان متزامنة L1 لتنمو حتى تصل إلى مرحلة L4.
4. التعرض للديدان للمواد الكيميائية في لوحات 96-جيدا
ملاحظة: يصف هذا القسم استخدام Pxol1 :: مراسل النسخي GFP تحتوي على C. سلالة ايليجانس للكشف عن تحريض عدم توازن الصبغيات.
- جمع اليرقات L4 من لوحات NGM واضحة من قبل غسل لوحات مع 1-2 مل من M9 ونقلها إلى أنبوب مخروطي 15 مل.
- السماح للL4 الديدان الرواسب إلى أسفل15 مل أنبوب مخروطي لحوالي 5-10 دقيقة. إزالة طاف دون الإخلال بيليه دودة.
- إضافة 3-5 مل من M9 وتحديد تركيز الديدان في حل M9 عن طريق حساب عدد من الديدان في 10 ميكرولتر قطرات باستخدام stereomicroscope. عدد لا يقل عن 5 قطرات لكل عينة.
- Resuspend والديدان بتركيز 1،000 الديدان / مل في M9.
- تمييع البكتيريا OP50 من الباب 1 10 أضعاف مع M9. تأكد من أن البكتيريا معلق تصل درجة حرارة الغرفة لانخفاض درجة الحرارة تؤثر تطوير دودة.
- باستخدام ماصة الأقنية، أولا إضافة 100 ميكرولتر من دودة / M9 مزيج (من الخطوة 4.4) ثم قم بإضافة 400 ميكرولتر من البكتيريا OP50 المخفف (من الخطوة 4.5) إلى كل بئر من 2 مل جولة عميقة أسفل لوحة 96-جيدا. في النهاية، سوف يكون كل بئر 100 الديدان في 500 ميكرولتر.
- إضافة 0.5 ميكرولتر من إما الكيميائية الاختبار أو عنصر التحكم المناسب إلى آبار المطلوب، لتحقيق concentr النهائي المقترحأوجه من 100 ميكرومتر، وتركيز تستخدم عادة في شاشات الكيميائية في C. ايليجانس 12. كشف الإيثانول أو DMSO الضوابط المذيبات في تركيز النهائي من 0.1٪.
ملاحظة: نوصي استخدام نوكودازول (100 ميكرومتر)، ومراقبة إيجابية. - ختم لوحة باستخدام فيلم لاصقة. تأكد من ختم لوحة جيدا لمنع التلوث المتبادل بين الآبار.
- التفاف لوحة مع رقائق الألومنيوم.
- نقل لوحة لشاكر (170-180 دورة في الدقيقة) من درجة حرارة مناسبة لطول مناسب من الزمن (24 أو 65 ساعة). درجة حرارة الغرفة يؤثر على نمو الديدان. الحفاظ على درجة الحرارة نحو 20 درجة مئوية.
5. اكتساب صورة حامل الديدان في لوحة 384 جيدا
ملاحظة: يصف هذا القسم استخدام المجهر نسبة عالية لصورة Pxol1 يتعرض :: الديدان GFP، لتصور التعبير عن GFP في الأجنة داخل الرحم من المنحرفين الكبار. إلىكل لوحة 384 جيدا ليتم عرضه، واستخدام الديدان من لوحات 4 × 96-جيدا.
- بعد التعرض للمواد الكيميائية في شاكر، والسماح للوحة 96-جيدا بقية لمدة 10-15 دقيقة للسماح للالديدان البالغة من رسوبيات إلى الجزء السفلي من لوحة.
- باستخدام ماصة متعدد القنوات، وإزالة 350 ميكرولتر من M9، والحرص جدا على عدم تعكير صفو الديدان في الجزء السفلي من لوحة.
- غسل الديدان مع 1 مل من M9 وكرر الخطوة 5.1.
- باستخدام ماصة متعدد القنوات، وإزالة 1 مل من M9، والحرص على VEY عدم تعكير صفو الديدان في الجزء السفلي من لوحة.
- باستخدام ماصة الأقنية، resuspend والديدان في M9 المتبقية وجمع 100 ميكرولتر من دودة / M9 مزيج من لوحات 96-جيدا وتحميله في الآبار من الجدران السوداء / واضحة أسفل لوحة 384 جيدا. كرر العملية باستخدام الديدان من لوحات 4 × 96-جيدا، حتى يتم تحميل جميع الآبار من لوحة 384 جيدا.
ملاحظة: من المهم لجميع الآبار لديهم نفس حجم من أجل زيادةكفاءة وسرعة ضبط تلقائي للصورة أثناء عملية الحصول على الصور. وينبغي أن تتضمن كل بئر بين 80 و 100 الديدان. - إضافة 1 ميكرولتر من الليفاميزول (100 ميكرومتر) إلى كل بئر والسماح للديدان احتضان لحوالي 30 دقيقة.
ملاحظة: الليفاميزول بمثابة مستقبلات ناهض أستيل ويشل الديدان. - نقل لوحة إلى أعلى مستوى المجهر المحتوى widefield قادرة على توفير التصوير الآلي.
- لاقتناء الصور، واستخدام عالية المحتوى الحصول على الصور وتحليل البرامج وفقا للمبادئ التوجيهية للشركة المصنعة. حدد الهدف 4X لاكتساب 1 صورة لكل بئر.
- قبل البدء في الحصول على الصور، وضبط المعلمات التصوير GFP إلى 45 ميللي ثانية من التعرض ودقة وضوح الصورة إلى 2،160 X 2،160.
- جمع البيانات مثل عدد الديدان إيجابية GFP مقسوما على إجمالي عدد الديدان في البئر، هذا الاجراء الأخير هو ثابت نسبيا بين الآبار.