مقالة منهجية

بروتوكولات قوية مبيدات الأعشاب اختبار المقاومة بأنواع الأعشاب مختلفة

DOI:

10.3791/52923

⸱

يوليو 2, 2015

 ,  ,  , 
1Institute of Agro-environmental and Forest Biology (IBAF), National Research Council (CNR), Italy

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتم تقديم نهج قوي ومرن لتأكيد مقاومة مبيدات الأعشاب في مجموعات الأعشاب الضارة. يسمح هذا البروتوكول باستنتاج مستويات مقاومة مبيدات الأعشاب وتطبيقها على مجموعة واسعة من أنواع الحشائش ومبيدات الأعشاب مع تكيفات طفيفة.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تعد البروتوكولات القوية لاختبار مجموعات الحشائش المفترضة المقاومة لمبيدات الأعشاب على مستوى النبات بالكامل ضرورية لتأكيد حالة المقاومة. يمكن تكييف البروتوكولات المقدمة ، بناء على المقايسات الحيوية للنبات الكامل التي يتم إجراؤها في دفيئة ، بسهولة مع مجموعة واسعة من أنواع الحشائش ومبيدات الأعشاب من خلال المتغيرات المناسبة. يتم جمع عينات البذور من النباتات التي نجت من معالجة مبيدات الأعشاب الحقلية وتخزينها جافة في درجة حرارة منخفضة حتى يتم استخدامها. تختلف طرق الإنبات وفقا لأنواع الحشائش ونوع سكون البذور. يتم زرع الشتلات في مرحلة نمو مماثلة والحفاظ عليها في الدفيئة في ظل ظروف مناسبة حتى تصل النباتات إلى مرحلة النمو الصحيحة لمعالجة مبيدات الأعشاب. الدقة مطلوبة لتحضير محلول مبيدات الأعشاب لتجنب الأخطاء التي لا يمكن التحقق منها. يتم أيضا تقييم الخطوات الهامة الأخرى مثل حجم التطبيق وسرعة الرش. ترتبط مزايا هذا البروتوكول ، مقارنة بغيره من البروتوكولات القائمة على المقايسات الحيوية للنبات الكامل باستخدام جرعة واحدة من مبيدات الأعشاب ، بالموثوقية العالية وإمكانية استنتاج مستوى المقاومة. تم اقتراح اختبارات فحص تشخيصية أسرع وأقل تكلفة في الجسم الحي أو في المختبر (المقايسات الحيوية لطبق بتري ، واختبارات القياس الطيفي) ، لكنها توفر معلومات نوعية فقط ويعوق استخدامها على نطاق واسع الإعداد الشاق الذي قد تتطلبه بعض الأنواع. لاختبار المقاومة الروتينية ، يمكن تطبيق الاختبار الحيوي للنبات بالكامل المقترح بجرعة واحدة فقط من مبيدات الأعشاب ، وبالتالي تقليل التكاليف.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

مبيدات الأعشاب هي الأكثر استخداما على نطاق واسع التدبير مكافحة الأعشاب الضارة، وهو ما يمثل ما يصل إلى 50٪ من السوق العالمي وقاية النبات 1. هم أدوات رخيصة نسبيا، وتجنب الممارسات زراعة التربة وتستغرق وقتا طويلا كثيفة العمالة، ويؤدي في نهاية المطاف إلى إنتاج وآمنة فعالة من حيث التكلفة والمواد الغذائية مربحة 2. ومع ذلك، فإن الفيزيولوجية والوراثية كبير الحاضر تقلب في العديد من أنواع الأعشاب، جنبا إلى جنب مع الاعتماد المفرط على استخدام مبيدات الأعشاب، والنتائج في كثير من الأحيان في اختيار السكان الاعشاب مقاومة لمبيدات الأعشاب. إدخال مبيدات الأعشاب انتقائية مع هدف الأيض محددة للغاية 05/03 قد ازداد بشكل ملحوظ عدد الحالات المقاومة على مر السنين. حتى الآن، 240 أنواع الأعشاب (140 dicots و 100 ذوات الفلقة) في جميع أنحاء العالم تطورت المقاومة لمبيدات الأعشاب مواقع مختلفة عمل (SOA) 4 من. هذا هو مصدر قلق كبير لإدارة الاعشاب وأكثر من ذلك في عام لإنتاج المحاصيل المستدام.

e_content "> الكشف المبكر عن المقاومة، بناء على اختبارات موثوقة، يقوم في كثير من الأحيان في دفيئة، هو خطوة رئيسية لإدارة الحشائش المقاومة لمبيدات الأعشاب. وقد تم تطوير مناهج مختلفة وفقا لأهداف والمستوى المطلوب من الدقة والوقت والموارد المتاحة، و كذلك أنواع الأعشاب تعتبر 12/06. ومع ذلك، عندما يطلب تأكيد حالة مقاومة الحشائش نمط حيوي جديد (أي مجموعة من الأفراد التي تشترك العديد من الخصائص الفسيولوجية، بما في ذلك القدرة على البقاء على قيد الحياة واحد أو أكثر مبيدات الأعشاب ينتمي إلى مجموعة معينة تستخدم في جرعة من شأنها أن تتحكم عادة لهم)، يحتاج إلى قوة الأحيائي مصنع كامل ليتم تنفيذها في بيئة تسيطر عليها 4، 11.

A نمط حيوي نادرا ما تكون مقاومة لمبيدات الأعشاب واحدة فقط. ولذلك يتميز كل نمط حيوي من نمط المقاومة معين، أي عدد ونوع الخدمية للمبيدات الأعشاب هو مقاومة ل، ومقاومة معينةالمستوى إلى كل مبيدات الأعشاب 13. تحديد أوائل وموثوق بها لنمط الصليب أو مقاومة متعددة 5، 14 مهم لإدارة المقاومة المجال.

ومن الجدير بالذكر أن مقاومة مبيدات الأعشاب له علاقة مع التسامح الطبيعي شيئا أن بعض أنواع الأعشاب المعرض نحو بعض مبيدات الأعشاب، مثل الأنواع dicot مقابل ACCase المثبط للمبيدات الأعشاب، والأنواع monocot مقابل 2،4-D، كنباث الحقول مقابل الغليفوسات.

تقدم هذه الورقة نهجا قويا لاختبار biotypes المقاومة لمبيدات الأعشاب المفترض عينات في المجالات التي تم الإبلاغ عن ضعف الرقابة من قبل مبيدات الأعشاب (ق). وتعرض المتغيرات ذات الصلة البروتوكولات القياسية فيما يتعلق الحشائش المعنية. ترتبط المزايا أكثر من التقنيات البديلة / البروتوكولات على أساس إما اختبارات بيولوجية مصنع كامل باستخدام واحد فقط جرعة مبيدات الأعشاب 15، أو بذور علاج في أطباق بتري 8 إلى reliab العاليility وإمكانية استنتاج مستوى المقاومة بسبب إدراج جرعتين مبيدات الأعشاب في التجارب. ومع ذلك، لاختبار مقاومة الروتيني، نفس الأساليب يمكن تطبيقها في جرعة مبيد واحد فقط، مما يقلل من التكاليف.

فضلا عن السماح تأكيدا للمكانة المقاومة، فإن المعلومات التي تم الحصول عليها يمكن استخدامها على حد سواء الاستفادة المثلى من خطوات البحث التالية و / أو وضع استراتيجيات الإدارة السليمة للمقاومة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. بذور أخذ العينات والتخزين

  1. مراقبة الحقول المزروعة عن مبرر ضعف الأداء مبيدات الأعشاب، أي ليس بسبب الظروف المناخية المعاكسة أو منخفضة العلاجات مبيدات الأعشاب الجودة.
  2. جمع عينة البذور من نوع واحد في وقت واحد وتعيين رمز فريد من نوعه. وعادة ما جمعت البذور الناضجة قبل الحصاد المحاصيل من النباتات التي قد نجا من العلاج مبيدات الأعشاب (ق). رصد في الوقت المناسب لمراقبة إذا تم التخلص من البذور النباتية الأم عندما تنضج.
  3. ملء استمارة لكل عينة مما يدل على رمز فريد المعينة، اسم الأنواع، وتاريخ جمع، الإحداثيات GPS، بلدية، اسم المزارع، حجم الحقل، ومستوى الإصابة، والمحاصيل، مبيدات الأعشاب (ق) المستخدمة خلال موسم والسجلات التاريخية للمجال .
  4. جمع البذور من لا يقل عن 30 النباتات المختارة عشوائيا التي تمثل الإصابة المجال. تأكد من أن عينة البذور تحتوي على ما لا يقل عن 5000 البذور الناضجة. لتلزم التهجين أنواع الأعشاب (على سبيل المثال، Lolium النيابة. Amaranthus أو النيابة.)، والحد من عدد من النباتات إلى 10-15، والحفاظ على عدد من البذور في جميع أنحاء 5000 11.
  5. فرعية عينة مجال إذا تتناثر بقع من الأعشاب على مساحات واسعة (أكثر من هكتار) ويتم اختيار مختلفة كما biotypes مقاومة مبيدات الأعشاب.
  6. بذور تخزينها في أكياس الورق تفض المسمى مع رمز فريد معين.
  7. السماح للرطوبة بالتبخر ولكن لا تعرض البذور لدرجة حرارة عالية (أي تجنب تركهم في السيارة تحت الشمس) أو لتقلبات كبيرة في درجات الحرارة لتجنب تحريض السكون الثانوي.
  8. نظيفة (إزالة القشر والبذور دي البدن، وما إلى ذلك) وتخزينها في درجة حرارة الغرفة في غرفة جافة. بعد إجراء اختبارات المقاومة الأولى، وتخزين البذور لفترات طويلة من الوقت في غرفة مظلمة في 4 درجات مئوية، ويفضل أن يكون في أكياس بلاستيكية مختومة فراغ. بهذه الطريقة بذور الحفاظ على بقائها لفترة أطول بكثير.

= "jove_title"> 2. البذور الخمول يكسر

يوفر السكون البذور آلية مرنة وفعالة تمكن الحشائش على التكيف والاستمرار في الأنظمة الإيكولوجية الزراعية: ملاحظة. لكسر السكون والسماح إنبات البذور، وبروتوكولات مختلفة لا بد من استخدامها اعتمادا على أنواع الأعشاب، أي نوع من السكون 16.
هناك ثلاث طرق رئيسية لإزالة السكون:

  1. Vernalization
    ملاحظة: للحصول على الإنبات في وقت واحد وظهور البادرات، وهي فترة من vernalization البذور تتراوح بين بضعة أيام إلى أسبوع مطلوب لإزالة السكون الفسيولوجي من العديد من الأنواع: على سبيل المثال، Amaranthus retroflexus، رجل الوز الألبوم، Lolium النيابة، أفينا fatua، persicaria بوليغونوم ، التناقضي الميلاد فالاريس 17-19. مطلوب فترة أطول تصل إلى 15 يوما لخشخاش منثور، difformis السعدة وAmmania coccinea وتصل إلى 30 يوما لSchoenoplectus mucronatus 20.
    1. وضع بعض الماء منزوع الأيونات في أطباق بلاستيكية. قطع طبقتين من ورق الترشيح ونقع عليها في المياه، وإزالة أي فائض. وضع البذور المجفف في الهواء على ورقة. نقل أطباق بلاستيكية لثلاجة عند 4 درجة مئوية لمدة الفترة المطلوبة من الزمن.
  2. تشطيب
    ملاحظة: بعض أنواع الأعشاب هي أكثر المتمردة على الإنبات من غيرها بسبب السكون الميكانيكية، أي الخصائص غلاف البذرة، وتتطلب استخدام خدش الكيميائية باستخدام حمض الكبريتيك على الإنبات 21.
    1. إعداد كوب مع حمض الكبريتيك المركز (95-98٪). إعداد كوب كامل من الماء. وضع البذور في مغلف من الأقمشة غير المنسوجة.
    2. نقع على سبيل المثال، Echinochloa النيابة. أو الذرة بذور halepense لمدة 20 دقيقة أو 5 دقائق، على التوالي، في حامض الكبريتيك المركز.
    3. اتخاذ المغلف من الدورق باستخدام زوج من ملاقط ووضعه في كوب كامل من الماء. افتح المغلف، وضع البذور في مصفاة صغيرة وشطف لهم جيدا تحت الماء الجاري.
    البديل: A. لسان الحمل-أكواتيكا يحتاج بروتوكول آخر 22، 23
    1. نقع البذور لمدة 2 دقيقة في الكلوروفورم. شطف البذور مع الماء منزوع الأيونات وتجفيفها مع ورقة ماصة. دونك البذور في حامض الكبريتيك 80٪ لمدة 5 دقائق.
    2. وضع البذور في مصفاة صغيرة وشطف لهم جيدا تحت الماء الجاري.
  3. ما بعد الحصاد نضج البذور
    ملاحظة: بذور الحشائش الأخرى لا تنبت في كل لبضعة أشهر بعد النضج، بغض النظر عن الطريقة المستخدمة لكسر السكون.
    1. تخزين البذور لمدة 3-4 أشهر على الأقل في RT وانخفاض نسبة الرطوبة وثم اتبع البروتوكولات المذكورة أعلاه لكسر السكون (على سبيل المثال، أوريزا ساتيفا فار. sylvatica أو rhoeas P.).

إنبات البذور 3.

  1. بذور المكان المراد نبتت في بلاسأطباق التشنج التي تحتوي على 0.6٪ (م / ت) أجار مع نترات البوتاسيوم 0.1٪ (كنو 3) وأضافت:
    1. يعد حل أجار عند 0.6٪ + 0.1٪ كنو 3 باستخدام الماء منزوع الأيونات. حل أجار في فرن الميكروويف.
    2. من أجل حل أجار في أطباق بلاستيكية. تبريد الركيزة ومن ثم وضعت في البذور.
    البديل: يمكن أيضا أن تستخدم التربة باعتبارها الركيزة في أطباق بلاستيكية. هذه الممارسة هي فعالة بشكل خاص لEchinochloa النيابة.، S. halepense وLolium النيابة.
  2. وضع أطباق بلاستيكية في خزانة الإنبات لمدة اسبوع تقريبا مع الضوء ودرجة الحرارة الظروف اعتمادا على الظروف المثلى لكل أنواع الأعشاب. بالنسبة لمعظم الأنواع فصل الشتاء، وتتراوح درجة الحرارة هو 15/25 ° C يلة / يوم و 12 ساعة الضوئية مع أنابيب النيون توفير الكثافة الضوئي الفوتون الجريان (PPFD) من 15-30 ميكرومول م -2 ثانية -1. بالنسبة لكثير من الأنواع الصيف، وتتراوح درجة الحرارة هو 15/30 ° C يلة / يوم.
    البديل: Sلى بعد الأنواع، مثل S. halepense، في حاجة الى المعالجة الحرارية. لذلك بعد تخديش، بذور S. يتعرض halepense للشروط التالية: دورات 4 ساعة على 45 درجة مئوية و 20 ساعة على 24 درجة مئوية لمدة ثلاثة أيام في مجلس الوزراء الإنبات، ثم ثلاثة أيام في الظروف العادية.

4. الشتلات زرع والنمو

  1. زراعة خمسة عشر إلى عشرين الشتلات في صواني بلاستيكية (325 X 265 × 95 ملم) مليئة مزيج القياسية بوتينغ (60٪ طمي التربة والرمل 15٪، 15٪ و 10٪ agriperlite الجفت - من حيث الحجم).
    ملاحظة: زرع، بدلا من البذر المباشر، ويسمح موقف موحد من النباتات في مرحلة النمو نفسها التي يمكن الحصول عليها، وهو شرط مسبق هام لتحسين أداء معالجة مبيدات الأعشاب.
  2. تحديد كل علبة مع الباركود بما في ذلك جميع المعلومات عن هوية فريدة: كود السكان، مبيدات الأعشاب التي يجري اختبارها، وتكرار عدد وعدد صينية التدريجي <./ لى>
  3. مكان الصواني في ساخنة المسببة للاحتباس الحراري والمياه النباتات حسب الحاجة للحفاظ على الركيزة عند أو بالقرب من السعة الحقلية.
    ملاحظة: درجة حرارة النمو تتفاوت تبعا للأنواع الأعشاب الضارة. وغالبا ما تتم الاختبارات خلال فصل الخريف / الشتاء / الربيع، بحيث يتم استكمالها ضوء باستخدام 400 W مصابيح هاليد المعدنية، والتي توفر PPFD من حوالي 150 ميكرومول م -2 ثانية -1 والضوئية 12 ساعة 24، 19. الحشائش الصيفية مع C 4 دورة الضوئي وعادة ما يتطلب شدة الضوء أعلى، وبالتالي يتم عمل اختبارات في أواخر الربيع والصيف أو شدة الضوء تستكمل حوالي 400 ميكرومول م -2 -1 المجلس الأعلى للتعليم مع الضوئية 14 ساعة.
  4. استخدام بروتوكول آخر لبعض أنواع الأعشاب التي تصيب الأرز الشعير، على سبيل المثال، A. لسان الحمل-أكواتيكا، S. mucronatus وC. difformis كما هو موضح في 22.
    1. زرع الشتلات في صواني البوليسترين مع 24 خلايا الجولة (55 مم، 64 مم عميق) فيلقاد مع 60٪ طمي التربة والرمل 30٪ و 10٪ الجفت (من حيث الحجم).
    2. تعيين الصواني في 12 سم حاويات أو أواني بلاستيكية عميقة مملوءة بالماء واستعدت بنسبة قضبان الفولاذ المقاوم للصدأ مشدود إلى منعهم العائمة (الشكل 1).
    3. الحفاظ على منسوب المياه في حاويات في 1-2 سم تحت مستوى سطح التربة وإضافة 1.5 غرام من كبريتات النحاس في كل حاوية (الذي يحتوي على 10-12 لتر من الماء) لتجنب انتشار الطحالب.

5. علاجات الاعشاب

  1. العلاج بالمبيدات قبل ظهور:
    1. بعد حوالي ثلاثة أيام في مجلس الوزراء إنبات كما وصفها في الباب 3، زرع بذور الإنبات في صواني بلاستيكية تحتوي على الركيزة المذكورة أعلاه، وتغطي بطبقة من التربة (حوالي 1 سم). هذا هو خطوة حاسمة من أجل ضمان الشتلات لن تظهر بسبب تأثير مبيدات الأعشاب بدلا من عمق الدفن المفرط.
    2. اتخاذ الركيزة لكابا الحقلالمدينة عن طريق وضع الصواني، والتي لديها عدد قليل من الثقوب في الجزء السفلي، على الصحون مملوءة بالماء.
    3. بعد يوم واحد زرع، وعلاج الصواني مع المبيد قبل ظهور 25.
    4. الحفاظ على الركيزة عند أو بالقرب من السعة الحقلية من خلال إضافة الماء حسب الحاجة، سواء من فوق وتحت كتبها الشعرية من الصحن. تفضل هذا الإجراء الدوام من مبيدات الأعشاب على عمق مناسب (أي، حيث البذور النابتة هي) لفعالية العلاج جيدة.
  2. العلاجات مع مبيدات الأعشاب بعد ظهور:
    1. رش النباتات عندما تصل إلى مرحلة 2-3 أوراق (أي مرحلة النمو 12-13 من تمديد نطاق النمو BBCH 26).
    2. ابتداء من اليوم بعد العلاج، وتعيين نظام الري وفقا لمتطلبات المياه من أنواع الأعشاب وموسم (على سبيل المثال، لEchinochloa النيابة. ايصاله الماء لمدة 3 دقائق 4 مرات في اليوم الواحد، على فترات منتظمة من الساعة 9 صباحا الى 9 مساء). المياه ديسtributed باستخدام نظام الري بالرش التلقائي.
      يتم تطبيق الغليفوسات في مصنع مرحلة BBCH 14-21: البديل.
  3. إعداد مبيدات الأعشاب والتوزيع.
    ملاحظة: جميع الأعشاب (قبل وبعد ظهور) يجري تطبيقها على المستحضرات التجارية مع السطحي الموصى بها في جرعتين، الجرعة الموصى بها الميدان (1X) وثلاثة أضعاف (3X).
    1. إذا لزم الأمر، وإعداد حل للتوتر السطحي في معظم فقا لتعليمات التسمية. عادة ما يتم التعبير عن التركيز النهائي كنسبة مئوية من الحجم النهائي (على سبيل المثال، 0.3٪) أو من حيث حجم التجارة ليتم توزيعها في وحدة المساحة (على سبيل المثال، 1 L هكتار -1).
    2. استخدام الحل السطحي كمذيب من أجل حل مبيدات الأعشاب (المذاب) من اجل الحفاظ على الحق في تركيز المادة الفعالة. إعداد الحل مبيدات الأعشاب الأكثر تركيزا أولا (3X). حساب كمية من منتج تجاري لتحل في حل السطحي (أو في الماء منزوع الأيونات إذا كانالسطحي ليس من الضروري) باستخدام المعادلة التالية:
      جرعة عشب = [(الجرعة المجال س الجرعة كحد أقصى) س V زعنفة] / V ديل
      حيث: الجرعة عشب = جرعة مبيدات الأعشاب (مل)، الجرعة جرعة مجال = الحقل مبيدات الأعشاب (مل هكتار -1)، الجرعة الحد الأقصى = الجرعة القصوى تسليمها، V = زعنفة الحجم النهائي من الحل (L)، V = ديل حجم أدلى به بخاخ مقاعد البدلاء (L هكتار -1).
    3. تمييع (2: 1، V / V) الحل 3X مبيدات الأعشاب لإعداد واحد أقل تركيزا (1X). يقلل هذا الإجراء من فرص الوقوع في الخطأ عندما وزنها أو pipetting لمبيدات الحشائش. وأعرب عن مبيدات الأعشاب تركيز المحلول من حيث حجم التجارة ليتم توزيعها في وحدة المساحة (L هكتار -1).
    4. بدء تسلسل العلاج مع أقل جرعة مبيدات الأعشاب (1X). في هذه الطريقة ليست هناك حاجة لغسل مجلس الوزراء الرش بين اثنين من العلاجات بنفس مبيدات الأعشاب.
    5. توزيع solutio مبيدات الأعشابن باستخدام البخاخ الدقة مقاعد البدلاء تقديم 300 L هكتار -1 (± 1٪)، عند ضغط 215 كيلو باسكال، وبسرعة 0.75 متر في الثانية -1، مع طفرة مجهزة ثلاثة مروحة مسطحة (المدى الموسعة) فوهات هيدروليكية .
    6. غسل مجلس الوزراء الرش مرتين عند تغيير المبيد استخدام التبييض 1٪ (ت / ت)، ثم شطف.
      يتم تطبيق جلايوفوسات مع حجم الرش من 200 L هكتار -1 27: البديل.
      ملاحظة: اهتمام خاص يجب أن يدفع عند المبيدات البيولوجية للغاية، مثل وsulfometuron السلفونيل يوريا أو flazasulfuron، وتستخدم. في الحالة الأخيرة قيام غسل واحد مع محلول التبييض وآخر مع الأمونيا (2.5٪ V / V)، تليها شطف بعناية بالماء.

6. جمع وتحليل البيانات

  1. من خلال قارئ الباركود، الذي يحدد تلقائيا كل علبة، تسجيل عدد من النباتات التي نجت من العلاج وكذلك الكتلة الحيوية البصرية التقديرية (VEB). النباتات هي الحمارإسيد كونه ميتا إذا كانت تظهر أي نمو نشط بغض النظر عن اللون أو المظهر الآخر.
    1. جعل التقييم بعد ثلاثة أو أربعة أسابيع من المعالجة (WAT) تبعا لمبيدات الأعشاب اختبار (على سبيل المثال، ثلاثة WAT لمثبطات ACCase وأربعة WAT لمثبطات ALS أو جلايوفوسات).
    2. تقييم فعالية العلاج العامة من قبل بما في ذلك السكان عرضة (راجع S) في جميع التجارب، أي السكان التي تم جمعها في الموقع الذي كان أبدا أو نادرا ما تعامل مع الأعشاب.
    3. البقاء على قيد الحياة النباتية صريح كنسبة مئوية من عدد من محطات المعالجة، وتحسب فقط قبل العلاج مبيدات الأعشاب، وحساب الخطأ المعياري (SE) في القيمة المتوسطة (يعني قيمة مكررات اثنين).
    4. يتم الحصول على VEB من خلال المقارنة البصرية من الكتلة الحيوية النباتية بين المعالجة والاختيار من نفس السكان 25 و 28 لم يتم علاجها. والنتيجة، التي تتراوح بين 10 لمحطات لم تتأثر مبيدات الأعشاب (مقارنة مع الاختيار لم تعالج) 0 متىالنباتات قد لقوا حتفهم بشكل واضح، ويعطى لكل علبة المعالجة.
  2. السكان قدموا لأربع فئات استنادا إلى نتائج التي تم الحصول عليها من العلاجات بجرعتين مبيدات الأعشاب: S عندما نجا أقل من 5٪ من مصانع 1X جرعة مبيدات الأعشاب، SR عندما تراوح الناجين من 5٪ إلى 20٪ في 1X جرعة مبيدات الأعشاب، R عند أكثر من نجا 20٪ من مصانع 1X جرعة مبيدات الأعشاب وRR عندما الناجين أكثر من 20٪ في جرعة مبيدات الأعشاب 1X وأكثر من 10٪ في جرعة مبيدات الأعشاب 3X 17.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لتقييم حالة مقاومة للسكان مقاومة المفترض، أنه أمر أساسي لتشمل الاختيار عرضة في الفحص من أجل التأكد من فعالية مبيدات الأعشاب. نتائج اختبار الفحص التي أجريت على P. السكان rhoeas، والأعشاب الضارة التي تغزو حقول القمح، والتي أعلن عنها في الشكل 2، حيث تم عرض فعالية أربعة مبيدات الأعشاب بعد ظهور على الاختيار عرضة (09-36) وعلى ما يشتبه في واحدة مقاومة (10-91). السكان 09-36 وتمت السيطرة تماما على المرض المانع iodosulfuron في حين نجا مصنع واحد فقط جرعة 1X...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عدة خطوات داخل البروتوكولات هي حاسمة لتقييم النجاح في مقاومة مبيدات الأعشاب في عدد السكان: 1) يجب أن يتم جمع البذور عندما تنضج من النباتات التي قد نجا من العلاج مبيدات الأعشاب (ق). نضج البذور على النبات الأم هو أمر حاسم لتجنب الصعوبات في إنبات البذور في وقت لاحق. 2) ينصح التخزين السليم للبذور لتجنب انتشار القوالب التي من شأنها أن تمنع انبات؛ 3) يجب أن تعامل الشتلات في مرحلة النمو المناسبة، كما ورد على تسمية حزمة مبيدات الأعشاب. يجب توخي الحذر حتى أن النباتات في أن يعامل وصلت إلى م...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم البحث من قبل المجلس الوطني للبحوث (CNR) في إيطاليا. يشكر المؤلفون أعضاء GIRE على جمع عينات البذور ويشعرون بالامتنان لأليسون جارسايد لمراجعة اللغة الإنجليزية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أكياس ورقيةCelcar SAS
أطباق بلاستيكيةISI بلاست S.p.A.SO600البلاستيك الشفاف
حامض الكبريتيك 95-98٪سيجما ألدريتش320501
قماش غير منسوجCarretta TessituraArt.TNT17الوزن 17 جم م < سوب > -2 < / سوپ >
الكلوروفورم >99.5٪سيجما ألدريتشC2432
أجارسيجما ألدريتشA1296
نترات البوتاسيوم >99.0٪Sigma-AldrichP8394
حاويات بلاستيكيةGiganplast1875 / M600 × 400 × 110 مم
صواني بلاستيكيةPiber plastG1210A325 × 265 × 95 مم
صواني البوليسترينPlastisavioS24537 × 328 × 72 مم ، 24 خلية مستديرة (6 × 4)
كبريتات النحاسSigma-Aldrich451657
AgriperliteBlu Agroingross sasAGRI100
الخثبلو Agroingross sasTORBA250
خزانة الإنباتKWW87R
فوهاتTeejetXR11002-VK ، TP11001-VHيتم استخدام النوع الثاني من الفوهات فقط لمولد الباركود الغليفوسات
Toshiba TECSX4
Labels مع الباركودFelgaTT20200Stick-in الملصقات ذات الزوايا الدائرية
قارئ الباركودCipherlab8300-Lمحطة بيانات محمولة
بخاخمدمج في المنزل
< قوي > منتج تجاري < / قوي >< قوي > المكون النشط < / قوي >< قوي > شركة < / قوي>تعليقات
AltoreximazamoxBASF
AzimutflorasulamDow AgroSciences
BiopowerBayer Crop ScienceSurfact لاستخدامها مع Hussar WG
DashBASFSurfact لاستخدامها مع Altorex
Granstartribenuron-methylDupont
جاليفرأزيمسولفوروندوبونت
هوسار دبليو جييودوسولفورونباير لعلوم
المرشحbispyribac-Naباير علوم المحاصيل
تقرير اخبارىغليفوساتمونسانتو
ترينددوبونتسوركتوب لاستخدامها مع جرانستار وجاليفر
فايبربينوكسسولامداو للعلوم الزراعية
Weedone LV42،4-DIsagro
مقاعد البدلاء < td colspan = "4" ><قوي > مبيدات الأعشاب المدرجة في النتائج: < / قوي >المحاصيل

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Massa, D., Kaiser, Y. I., Andújar-Sánchez, D., Carmona-Alférez, R., Mehrtens, J., Gerhards, R. Development of a geo-referenced database for weed mapping and analysis of agronomic factors affecting herbicide resistance in Apera spica-venti L. Beauv. (Silky Windgrass). Agronomy. 3 (1), 13-27 (2013).
  2. Powles, S. B., Shaner, D. L. Herbicides Resistance and World Grains. , CRC Press LLC. Raton, FL. 308(2001).
  3. Sattin, M. Herbicide resistance in Europe: an overview. Proc. BCPC International Congress. , Crop Science & Technology. UK. 131-138 (2005).
  4. Heap, I. M. International Survey of Herbicide Resistant Weeds. , Available from: http://www.weedscience.org (2015).
  5. Jasieniuk, M., Le Corre, V. Deciphering the evolution of herbicide resistance in weeds. Trends Genet. 29 (11), 649-658 (2013).
  6. Heap, I. M. Identification and documentation of herbicide resistance. Phytoprotection. 75 (4), 85-90 (1994).
  7. Beckie, H. J., Heap, I. M., Smeda, R. J., Hall, L. M. Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technol. 14 (2), 428-445 (2000).
  8. Tal, A., Kotoula-Syka, E., Rubin, B. Seed-bioassay to detect grass weeds resistant to acetyl coenzyme A carboxylase inhibiting herbicides. Crop Prot. 19, 467-472 (2000).
  9. Boutsalis, P. Syngenta Quick-Test: a rapid whole-plant test for herbicide resistance. Weed Technol. 15 (2), 257-263 (2001).
  10. Menchari, Y., et al. Weed response to herbicides: regional-scale distribution of herbicide resistance alleles in the grass weed Alopecurus myosuroides. New Phytol. 171 (4), 861-874 (2006).
  11. Burgos, N. R., et al. Review: confirmation of resistance to herbicides and evaluation of resistance levels. Weed Sci. 61 (1), 4-20 (2013).
  12. Owen, M. J., Martinez, N. J., Powles, S. B. Multiple herbicide-resistant Lolium rigidum. (annual ryegrass) now dominates across the Western Australian grain belt. Weed Res. 54 (3), 314-324 (2014).
  13. Herbicide Resistance Action Committee. Classification of herbicides according to site of action. , Available from: http://www.hracglobal.com/Education/ClassificationofHerbicideSiteofAction.aspx (2015).
  14. Beckie, H. J., Tardif, F. J. Herbicide cross resistance in weeds). Crop Prot. 35, 15-28 (2012).
  15. Moss, S. R., et al. The occurrence of herbicide-resistant grass-weeds in the United Kingdom and a new system for designating resistance in screening assays. Proc. BCPC Weeds. , Brighton. 179-184 (1999).
  16. Baskin, C. C., Baskin, J. M. Seeds, Ecology, Biogeography and Evolution of dormancy and Germination. , Academic Press. San Diego, USA. 27-42 (1998).
  17. Sattin, M., Gasparetto, M. A., Campagna, C. Situation and management of Avena sterilis. ssp. ludoviciana. and Phalaris paradoxa. resistant to ACCase inhibitors in Italy. Proc. BCPC - Weeds. , Brighton, UK. 755-762 (2001).
  18. Scarabel, L., Varotto, S., Sattin, M. A European biotype of Amaranthus retroflexus. cross-resistant to ALS inhibitors and response to alternative herbicides. Weed Res. 47 (6), 527-533 (2007).
  19. Collavo, A., Panozzo, S., Lucchesi, G., Scarabel, L., Sattin, M. Characterisation and management of Phalaris paradoxa. resistant to ACCase-inhibitors. Crop Prot. 30 (3), 293-299 (2011).
  20. Scarabel, L., Carraro, N., Sattin, M., Varotto, S. Molecular basis and genetic characterisation of evolved resistance to ALS-inhibitors in Papaver rhoeas. Plant Sci. 166 (3), 703-709 (2004).
  21. Panozzo, S., Scarabel, L., Tranel, P. J., Sattin, M. Target-site resistance to ALS inhibitors in the polyploid species Echinochloa crus-galli. Pestic. Biochem. Phys. 105 (2), 93-101 (2013).
  22. Sattin, M., Berto, D., Zanin, G., Tabacchi, M. Resistance to ALS inhibitors in rice in north-western Italy. Proc. BCPC. Weeds. , Brighton. 783-790 (1999).
  23. Scarabel, L., Berto, D., Sattin, M. Dormancy breaking and germination of Alisma plantago-aquatica. and Scirpus mucronatus. Aspects of Applied Biology. 69, Wellesbourne, UK. 285-292 (2003).
  24. Collavo, A., Strek, H., Beffa, R., Sattin, M. Management of an ACCase-inhibitor-resistant Lolium rigidum. population based on the use of ALS inhibitors: weed population evolution observed over a 7 years field-scale investigation. Pest Manag. Sci. 69 (2), 200-208 (2013).
  25. Scarabel, L., Panozzo, S., Savoia, W., Sattin, M. Target-site ACCase-resistant Johnsongrass (Sorghum halepense). selected in summer dicot crops. Weed Technol. 28 (2), 307-315 (2014).
  26. Hess, M., Barralis, H., Bleiholder, H., Buhur, L., Eggers, T., Hack, H., Strauss, R. Use of the extended BBCH scale - general for the description of the growth stages of mono- and dicotyledonous weed species. Weed Res. 37 (6), 433-441 (1997).
  27. Collavo, A., Sattin, M. First glyphosate-resistant Lolium. spp. biotypes found in a European annual arable cropping system also affected by ACCase and ALS resistance. Weed Res. 54 (4), 325-334 (2014).
  28. Scarabel, L., Cenghialta, C., Manuello, D., Sattin, M. Monitoring and management of imidazolinone-resistant red rice (Oryza sativa. L., var. sylvatica.) in Clearfield® Italian paddy rice. Agronomy. 2 (4), 371-383 (2012).
  29. Zelaya, I. A., Anderson, J. A. H., Owen, M. D. K., Landes, R. D. Evaluation of spectrophotometric and HPLC methods for shikimic acid determination in plants: Models in glyphosate-resistant and-susceptible crops. J. Agric. Food Chem. 59 (6), 2202-2212 (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Whole Plant BioassaySeed VernalizationPrecision Bench SprayerGreenhouse CultivationBarcode TrackingVisual Estimated BiomassDose Response AnalysisSeed Germination ProtocolWeed Species Adaptation

مقالات ذات صلة