Method Article

وضع العمود الفقري مكتبة الببتيد دوري كما المحتملة ضد الطفيليات التداوي عن طريق الميكروويف تشعيع

DOI:

10.3791/53589

January 26th, 2016

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تحديد طريقة بسيطة وعامة لتخليق الببتيدات الدورية باستخدام تشعيع الميكروويف. يتيح هذا الإجراء تخليق الببتيدات الدورية الأساسية مع مجموعة من المطابقات المختلفة مع الاحتفاظ بالسلاسل الجانبية والشقوق الدوائية., وبالتالي, يسمح بفحص التشكل النشط بيولوجيا.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تفاعلات البروتين البروتين (مثبطات مضخة البروتون) هي المعنية عن كثب في جميع العمليات الحيوية تقريبا، وترتبط لكثير من الأمراض البشرية. ولذلك، هناك جهد كبير لاستهداف مثبطات مضخة البروتون في مجال البحوث الأساسية وصناعة الأدوية. واجهات البروتين البروتين عادة ما تكون كبيرة، شقة، وغالبا ما تفتقر إلى جيوب، تعقيد اكتشاف الجزيئات الصغيرة التي تستهدف هذه المواقع. نهج استهداف بديلة باستخدام أجسام مضادة لها قيود بسبب سوء التوافر الحيوي عن طريق الفم، وانخفاض الخلية النفاذية، وعدم كفاءة الإنتاج.

استخدام الببتيدات لاستهداف واجهات PPI ديها العديد من المزايا. الببتيدات لديها أعلى من المرونة بتكوين وزيادة الانتقائية، وعادة ما تكون غير مكلفة. ومع ذلك، الببتيدات لها حدودها الخاصة بما في ذلك سوء الاستقرار وعدم الكفاءة عبور أغشية الخلايا. للتغلب على هذه القيود، الببتيد cyclization لا يمكن أن يؤديها. وقد تجلى Cyclization لتحسين الببتيد الانتقائيةوالاستقرار الأيض، والتوافر البيولوجي. ومع ذلك، توقع التشكل النشطة بيولوجيا من الببتيد دوري ليست تافهة. للتغلب على هذا التحدي، واحدة نهج جذابة على الشاشة مكتبة مركزة على الشاشة فيه جميع الببتيدات الحلقية العمود الفقري لها تسلسل الأساسي نفسه، ولكنها تختلف في المعايير التي تؤثر على التشكل، مثل حجم الحلقة والموقف.

وصفنا بروتوكول مفصلة لتجميع مكتبة من العمود الفقري الببتيدات الحلقية التي تستهدف مثبطات مضخة البروتون الطفيلي محددة. باستخدام نهج التصميم الرشيد، وضعنا الببتيدات المستمدة من البروتين سقالة L eishmania مستقبلات لتنشيط C-كيناز (قلة). افترضنا أن تسلسل في LACK التي يتم حفظها في الطفيليات، ولكن ليس في homolog المضيف الثدييات، قد تمثل مواقع التفاعل البروتينات التي تعتبر بالغة الأهمية لبقاء الطفيليات. تم توليفها الببتيدات الحلقية باستخدام أشعة المايكروويف لتقليل زمن رد الفعل وزيادةكفاءة. تطوير مكتبة العمود الفقري الببتيدات الحلقية مع أحجام رنين مختلفة تسهل شاشة منهجية لالتشكل النشطة الأكثر البيولوجي. يوفر هذا الأسلوب بشكل عام، وبسرعة، والسطحية لتجميع الببتيدات الحلقية.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تفاعلات البروتين البروتين (مثبطات مضخة البروتون) تلعب دورا محوريا في معظم العمليات الحيوية، من داخل الخلايا نقل الإشارة إلى خلية الموت 1. وبالتالي، تستهدف مثبطات مضخة البروتون هي ذات أهمية أساسية لالبحوث الأساسية والتطبيقات العلاجية. مثبطات مضخة البروتون يمكن تنظيمها من قبل الأجسام المضادة محددة ومستقرة، ولكن الأجسام المضادة هي مكلفة وصعبة لتصنيع ويعانون من ضعف التوافر البيولوجي. بدلا من ذلك، مثبطات مضخة البروتون يمكن أن تكون مستهدفة من قبل الجزيئات الصغيرة. الجزيئات الصغيرة هي أسهل لتجميع وغير مكلفة بالمقارنة مع الأجسام المضادة. ومع ذلك، فهي نسبيا أقل مرونة وتناسب أفضل لتجاويف صغيرة بدلا من واجهات كبيرة من البروتين البروتين 2،3. وقد أثبتت الدراسات المتنوعة التي الببتيدات، والتي هي أبسط وأرخص من الأجسام المضادة وأكثر مرونة من جزيئات صغيرة، يمكن ربط واجهات البروتين وتنظيم مثبطات مضخة البروتون 4،5. وتقدر قيمة سوق الببتيد العلاجي العالمي حول 15000000000 دولار في عام 2013 وينمو 10.5٪ أنواLLY 6. وعلاوة على ذلك، هناك أكثر من 50 الببتيدات تسويقها، نحو 270 الببتيدات في مراحل مختلفة من الاختبارات السريرية، وحوالي 400 الببتيدات في مراحل ما قبل السريرية المتقدمة 7. على الرغم من أن العديد من الببتيدات تستخدم كأدوية، والببتيدات لا تزال تشكل العديد من التحديات التي تحد من تطبيق على نطاق واسع من بينها قلة التوافر البيولوجي والاستقرار، وعدم الكفاءة في أغشية الخلايا المعبر، والمرونة بتكوين 8،9. بديل واحد لتجاوز هذه العوائق هو تطبيق تعديلات مختلفة مثل المحلي (حمض أميني-D و N-الألكلة) والعالمي (cyclization) القيود 8،10-12. كما تحدث هذه التعديلات بشكل طبيعي. على سبيل المثال، السيكلوسبورين A، الببتيد الطبيعي دوري المناعة، ويحتوي على الأحماض الأمينية-D واحد ويخضع لتعديلات N-الألكلة 13،14.

تعديل الأحماض الأمينية الطبيعية للحث على القيود المحلية، مثل D- وN-الألكلة، وغالبا ما يؤثر على الببتيد9؛ ق النشاط البيولوجي. ومع ذلك، cyclization، التي تتابع الفائدة يمكن أن يبقى كما هو، هو أكثر عرضة للحفاظ على النشاط البيولوجي. Cyclization هو وسيلة جذابة للغاية لتقييد مساحة بتكوين الببتيد عن طريق الحد من التوازن بين التشكل مختلفة. فإنه عادة ما يزيد من النشاط البيولوجي والانتقائية من خلال الحد من الببتيد إلى التشكل النشط الذي يتوسط وظيفة واحدة فقط. Cyclization أيضا يحسن الاستقرار الببتيد عن طريق الحفاظ على الببتيد في التشكل الذي أقل معترف بها من قبل الانزيمات المهينة. في الواقع، عرضت الببتيدات الحلقية قد تحسنت الاستقرار الأيض، التوافر البيولوجي، والانتقائية مقارنة مع نظرائهم الخطية 15-17.

ومع ذلك، يمكن cyclization أن يكون سلاح ذو حدين لأنه في بعض الحالات قد يمنع تقييد الببتيدات من تحقيق التشكل النشطة بيولوجيا. للتغلب على هذه العقبة، مكتبة مركزة فيه جميع الببتيدات لديها نفس sequenc الأوليةيمكن توليفها الإلكترونية وبالتالي ثابتة pharmacophores. الببتيدات في المكتبة تختلف في المعايير التي تؤثر على هيكلها، مثل حجم الحلبة، والموقف، وذلك لفحص في وقت لاحق لالتشكل الأكثر النشطة بيولوجيا 9،18.

الببتيدات يمكن توليفها في كل حل ونهج التوليف الببتيد الحالة الصلبة (SPPS)، والتي هي الآن نهج التوليف الببتيد أكثر انتشارا وسيجري بحثه باستفاضة. SPPS هو العملية التي تتم التحولات الكيميائية على دعم قوي من خلال رابط لإعداد مجموعة واسعة من المركبات الاصطناعية 19. SPPS يتيح تجميع الببتيدات بواسطة اقتران التوالي من الأحماض الأمينية بطريقة متدرجة من C-المحطة، التي يتم تركيبها على دعم قوي، إلى N-المحطة. يجب أن ملثمين الحامض الجانب سلاسل N-α-الأمينية مع حماية الفئات التي هي مستقرة في ظروف التفاعل استخدمت خلال الببتيد استطالة لضمان إضافة حمض أميني واحد في كل شارعالجيش الشعبي. في الخطوة النهائية، يتم تحرير الببتيد من الراتنج والجانب سلسلة حماية الفئات تتم إزالة متزامنة. في الوقت الذي يجري تصنيعه الببتيد، يمكن إزالة جميع الكواشف القابلة للذوبان من الدعم مصفوفة الببتيد الصلبة عن طريق الترشيح وجرفت في نهاية كل خطوة اقتران. مع مثل هذا النظام، وفائض كبير من المواد الكيميائية في تركيز عال يمكن أن تدفع ردود الفعل اقتران على الانتهاء وجميع الخطوات التوليف لا يمكن أن يؤديها في السفينة نفسها دون أي نقل للمواد 20.

على الرغم من SPPS بعض القيود مثل إنتاج ردود فعل غير مكتملة، التفاعلات الجانبية، الكواشف النجسة، فضلا عن الصعوبات رصد رد فعل 21، جعلت من "المعيار الذهبي" لتخليق الببتيد مزايا SPPS. وتشمل هذه المزايا خيار دمج الأحماض الأمينية غير طبيعية، والأتمتة، وتنقية سهلة، والخسائر المادية مصغر، واستخدام الكواشف الزائدة، مما أدى إلىعوائد عالية. وقد تبين SPPS أن تكون مفيدة للغاية في تركيب سلاسل صعبة 21،22، التعديلات الفلورسنت 23، والمكتبات الببتيد 24،25. SPPS هو أيضا مفيد جدا لغيرها من التجمعات بولي سلسلة مثل [أليغنوكليوتيد 26،27، 28،29 يغوساكاريدس، والببتيد الأحماض النووية 30،31. ومن المثير للاهتمام، في بعض الحالات، تبين SPPS ليكون من المفيد لتجميع الجزيئات الصغيرة التي تتم عادة في حل 32،33. يستخدم SPPS سواء في نطاق ضيق للبحث والتدريس 34،35 وكذلك على نطاق واسع في صناعة 36-38.

استراتيجيات تركيب اثنين من التي تستخدم بشكل رئيسي في منهجية SPPS لتركيب الببتيدات هي butyloxycarbonyl (بوك) و 9 fluorenylmethoxycarbonyl (Fmoc). كانت الاستراتيجية الأصلية قدم لSPPS بوك، الأمر الذي يتطلب شروط حمض قوية لإزالة جانب سلسلة حماية الفئات ويلتصق الببتيد من صESIN. التوليف الببتيد تستند Fmoc، ومع ذلك، يستخدم الظروف قاعدة المعتدلة ويعتبر بديل أكثر اعتدالا لحمض عطوب بروتوكول بوك 39. استراتيجية Fmoc تستخدم المتعامدة تي بوتيل (TBU) حماية جانبية السلسلة التي تم إزالتها في الخطوة الأخيرة من التوليف بينما الشق الببتيد من راتنج تحت الظروف الحمضية.

ويرد المبدأ العام لتخليق الببتيد على دعم قوي في الشكل 1. والأحماض الأمينية الأولي، من قبل ملثمين مجموعة حماية مؤقتة على N-α-المحطة، يتم تحميل على الراتنج من C-المحطة. ويستخدم فريق حماية شبه دائمة لإخفاء سلسلة الجانب أيضا إذا لزم الأمر (الشكل 1، الخطوة 1). يتم تجميع توليف الببتيد الهدف من C-محطة إلى N-محطة بدورات متكررة من deprotection من مجموعة حماية N-α-مؤقتة (الشكل 1، الخطوة 2) واقتران المقبل الأحماض الأمينية المحمية (الشكل 1 أونج> الخطوة 3). بعد تحميل الماضي الأحماض الأمينية (الشكل 1، الخطوة 4)، هو المشقوق الببتيد من الدعم الراتنج وطرد الجماعات حماية شبه دائمة (الشكل 1، الخطوة 5).

figure-introduction-1
الشكل 1. مخطط عام للنفايات الصلبة الببتيد مرحلة التوليف. ويرتكز هذا الحمض الأميني N-α محمية باستخدام مجموعة الكربوكسيل عن طريق رابط لالراتنج (الخطوة 1). يتم تجميعها الببتيد المطلوب بطريقة خطية من C-محطة إلى N-محطة بدورات متكررة من deprotection من مجموعة حماية مؤقتة (TPG) من N-α (الخطوة 2) واقتران الأحماض الأمينية (الخطوة 3). بعد إنجاز عملية التوليف (الخطوة 4)، وdeprotected المجموعات حماية شبه دائمة (SPG) أثناء الانقسام الببتيد (الخطوة 5).الحصول = "_ فارغة"> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

بعد تجميع سلسلة الببتيد كاملة، لا يمكن أن يتحقق cyclization عدة بدائل: (A) وجها لالذيل cyclization - وهذا هو وسيلة مريحة ولكن محدودة لأنها توفر خيار واحد فقط لcyclization (الشكل 2A)، (B) cyclization باستخدام الأحماض الأمينية من سلسلة من الفائدة التي تحتوي على المجموعات الوظيفية النشطة بيولوجيا - ومع ذلك، فإن استخدام هذه الأحماض الأمينية قد تؤثر على النشاط البيولوجي (الشكل 2B)، و (C) cyclization بإضافة الأحماض الأمينية (أو اللبنات الأخرى) من دون إزعاج تسلسل النشطة بيولوجيا. إدخال هذه الجزيئات هي على نطاق واسع لأنه يتيح إنتاج المكتبات تركز دون تعديل تسلسل الفائدة (الشكل 2C).

figure-introduction-2
Figure 2. استراتيجيات cyclization الببتيد البديل (A) الرأس الى الذيل cyclization، من خلال السندات الببتيد بين C-محطة وN-محطة؛ (B) cyclization بين المجموعات الوظيفية مثل السندات ثاني كبريتيد بين السيستين المخلفات (1)، أو سندات أميد بين السلاسل الجانبية من ليسين لالأسبارتيك / حمض الجلوتاميك (2)، أو سلسلة جانبية لN- أو C-محطة (3 -4)؛ (C) cyclization بإضافة الأحماض الأمينية إضافية أو مشتقات الأحماض الأمينية أو الجزيئات الصغيرة، على سبيل المثال قبل (R0) وبعد (R7) تسلسل النشطة بيولوجيا. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

يستخدم توليف أشعة الميكروويف لتسخين ردود الفعل، وبالتالي تسريع الكيميائية العضوية التي يساعدها الميكروويف التحولات 40،41. ويستند كيمياء الموجات الصغيرة على قدرة كاشف / مذيب لاستيعابالميكروويف الطاقة وتحويله إلى حرارة 42. قبل أن تصبح هذه التكنولوجيا على نطاق واسع، وكان من العوائق الرئيسية التي يجب التغلب عليها، بما في ذلك التحكم واستنساخ بروتوكولات التوليف وعدم وجود نظم المتاحة لدرجة الحرارة والضغط ضوابط كافية 43،44. وقد تم التقرير الأول من التوليف الببتيد بمساعدة الميكروويف باستخدام الميكروويف المطبخ لتجميع عدة الببتيدات قصيرة (7-10 الأحماض الأمينية) مع تحسن ملحوظ في كفاءة اقتران ونقاء 45. وعلاوة على ذلك، وقد تبين طاقة الميكروويف إلى تقليل سلسلة التجميع، والحد من التفاعلات الجانبية، والحد من تروسم، وتحسين معدلات اقتران، وكلها حيوية لتسلسل صعبة وطويلة 46-53.

حاليا استخدام الإشعاع الميكروويف لتركيب الببتيدات أو المركبات ذات الصلة على دعم قوي واسعة النطاق، بما في ذلك (A) التوليف في الماء بدلا من المذيبات العضوية 54؛ (B) توليف الببتيدات معالتعديلات بعد متعدية المشتركة، مثل glycopeptides 55-58 أو 59-61 phosphopeptides، الذي التوليف يصعب عادة بسبب كفاءة اقتران منخفضة من إعاقة sterically مشتقات الأحماض الأمينية. (C) توليف الببتيد مع تعديل في العمود الفقري، مثل azapeptides، والتي يمكن أن يشكلها استبدال C (α) من بقايا الأحماض الأمينية مع ذرة النيتروجين 62، أو peptoids، التي يتم توصيلها إلى سلسلة جانبية النيتروجين أميد بدلا من الذرة Cα 63،64. (D) التوليف من الببتيدات الحلقية 65-71. و (E) توليف المكتبات اندماجي 51،72. وفي العديد من الحالات، ذكرت والكتاب كفاءة أعلى وتخفيض الوقت التوليف باستخدام أشعة الميكروويف بالمقارنة مع البروتوكول التقليدي.

باستخدام تصميم عقلاني 73-75، وضعنا الببتيدات المضادة للالطفيلية التي كانت مستمدة من مستقبلات السقالة L eishmania في FOص تنشيط C-كيناز (قلة). LACK تلعب دورا هاما في المرحلة المبكرة من العدوى الليشمانيا 76. الطفيليات معربا عن مستويات أدنى نقص تفشل في تتطفل حتى الفئران خطر المناعية 77 كما تشارك نقص في عمليات الطفيلي يشير الأساسية وتخليق البروتين 78. لذلك، وعدم هو بروتين سقالة الرئيسي 79 وهدف المخدرات قيمة. التركيز على تسلسل في LACK التي يتم حفظها في الطفيليات، ولكن ليس في البلد المضيف الثدييات homolog RACK، حددنا من الأحماض الأمينية الببتيد 8 (RNGQCQRK) إنخفاضا الليشمانيا ليرة سورية. الجدوى في الثقافة.

هنا، نحن تصف بروتوكول لتركيب العمود الفقري دوري الببتيدات المستمدة من تسلسل البروتين LACK المذكورة أعلاه. تم توليفها الببتيدات على دعم قوي باستخدام الميكروويف التدفئة عن طريق منهجية SPPS مع بروتوكول Fmoc / TBU. تم مترافق الببتيدات إلى TAT 47-57 (YGRKKRRQRRR) الناقل الببتيد من خلال السندات أميد كماجزء من SPPS. وقد استخدم النقل استنادا TAT من مجموعة متنوعة من البضائع إلى داخل الخلايا لأكثر من 15 عاما، وقد تم تأكيد تسليم البضائع إلى العضيات التحت خلوية 80. أربعة linkers مختلفة، السكسينيك وأنهيدريد الغلوتاريك وكذلك الأديبيك وحمض البيميليك، استخدمت لأداء cyclization لتوليد linkers حمض الكربوكسيلية من 2-5 الكربون. وقد تم Cyclization باستخدام طاقة الميكروويف، وأجريت الانقسام وجنبا إلى سلسلة خطوات deprotection النهائية يدويا بدون طاقة الميكروويف. استخدام المزج الميكروويف الآلي تحسين نقاء المنتج، وزيادة المحصول المنتج، وتخفيض مدة التوليف. ويمكن تطبيق هذا البروتوكول العام للدراسات الأخرى التي تستخدم الببتيدات لفهم الآلية الجزيئية مهمة في المختبر والمجراة وتطوير العقاقير المحتملة لعلاج أمراض الإنسان.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

معدات 1. وتحضير الكواشف

  1. معدات إعداد
    1. تنفيذ كافة الخطوات داخل غطاء الدخان استخدام معدات الوقاية الشخصية المناسبة.
    2. توليف كيميائيا الببتيدات على دعم قوي باستخدام الميكروويف الببتيد مركب مع وحدة إضافية من اكتشاف مجهزة الألياف الضوئية مسبار درجة الحرارة للسيطرة على تسليم الميكروويف السلطة في وعاء التفاعل تفلون (30 مل، مع فريت الزجاج) أو في البولي بروبلين القابل للتصرف خرطوشة (12 مل، مع فريت الخشنة).
    3. لخلط الصحيح، توصيل التيار النيتروجين في وعاء التفاعل، أو بدلا من ذلك ختم طرفي خرطوشة البولي بروبلين، ووضع على شاكر دوارة.
    4. لاستنزاف خليط من رد فعل أو يغسل، الاتصال فراغ المنزل عن طريق فخ النفايات.
    5. وضع مسبار الألياف الضوئية إلى وعاء التفاعل.
  2. إعداد الكواشف
    1. إعداد الراتنج وزنها عن طريق تزلج أميد الراتنج AM 100-200 شبكة (0.204 ملغ)إضافة 5 مل 1: 1 خليط من N، N -dimethylformamide (DMF) / ثنائي كلورو ميثان (DCM) إلى رد فعل خرطوشة السفينة / البولي بروبلين لغسل الراتنج أسفل، يهز لمدة 2-4 ساعة إلى تضخم بشكل صحيح، واستنزاف.
    2. إعداد 0.2 M 9-fluorenylmethoxycarbonyl (Fmoc) -amino الحلول الحمضية عن طريق إذابة المقابلة حمض Fmoc-الأمينية في DMF ودوامة الخليط حتى تذوب الأحماض الأمينية (الجدول 1).
    3. إعداد 0.45 M المنشط مزيج حل عن طريق إذابة 18.96 ز O - (benzotriazol-1-يل) - N، N، N، N 'يذوب hexafluorophosphate -tetramethyluronium (HBTU) في 100 مل DMF وvortexing لالخليط حتى صلب (الجدول 1).
    4. إعداد 2 M قاعدة المنشط مزيج حل من خلال الجمع بين 34.8 مل N، N -diisopropylethylamine (DIEA) مع 65.2 مل 1-ميثيل-2-pyrrolidinone (NMP) (الجدول 1).
    5. إعداد 0.1 M deprotection مزيج حل عن طريق إذابة هيدرات 3.37 ز 1-hydroxybenzotriazole (HOBt)في 250 مل من 20٪ ت / ت حل تأكسد في DMF وvortexing لالخليط حتى يذوب الصلبة (الجدول 1).

2. Fmoc المحمية الأحماض الأمينية اقتران

  1. اقتران الأحماض الأمينية
    1. إضافة الأحماض الأمينية (2.5 مل) / المنشط (1 مل) / قاعدة المنشط (0.5 مل) إلى رد فعل خرطوشة السفينة / البولي بروبلين، والسماح للرد فعل المضي قدما لمدة 300 ثانية (25 W، 75 ° C، الجدول 2). استنزاف الحل.
    2. غسل الراتنج مع DMF. إضافة DMF إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، RT) واستنزاف الحل. كرر خمس مرات.
  2. deprotection Fmoc
    1. إضافة 7 مل من 20٪ تأكسد في DMF مع 0.1 M HOBt إلى رد فعل خرطوشة السفينة / البولي بروبلين واحتضان لمدة 30 ثانية (45 W، 75 ° C، الجدول 2).
    2. استنزاف خليط التفاعل.
    3. إضافة 7 مل من 20٪ تأكسد في DMF مع 0.1 M HOBt إلى رد فعل خرطوشة السفينة / البولي بروبلين واحتضان لمدة 180 ثانية (45 W، 75 ° C، الجدول 2).
    4. استنزاف خليط التفاعل.
    5. غسل الراتنج مع DMF. إضافة DMF إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر خمس مرات.
      ملاحظة: اختياريا، وقفة الإجراء هنا وتستأنف في وقت لاحق.
  3. بعد الأحماض الأمينية خطوة اقتران، وغسل الراتنج مع DCM ومخزن لعدة أيام على الأقل في 4 ° C (لمتجر فترة أطول الراتنج في - 20 ° C).
    1. نقل الراتنج من وعاء التفاعل على خرطوشة البولي بروبلين.
    2. غسل الراتنج مع DCM. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.
    3. ختم خرطوشة البولي بروبلين بإحكام مع الغطاء العلوي ومحبس.
    4. قبل البدء في تركيب جديد، تنتفخ الراتنج لمدة 3-4 ساعة في DMF (7 مل).
  4. رصد التوليف
    1. استخدام اختبار كايزر (النينهيدرين) أو الكلورانيل اختبار لتحديد بسرعة التقدم للالتوليف. اختياريا، نفذ رد فعل الانقسام على نطاق صغير لتحديد النقاء وكتلة الببتيد توليفها. انظر القسم 9.
      ملاحظة: لمزيد من استكشاف الأخطاء وإصلاحها انظر الجدول 3.
  5. كرر الخطوات من 2.1 و 2.2 كما هو مطلوب لتجميع الببتيد المستهدفة: Arg(Pbf)-Asn(Trt)-Gly-Gln(Trt)-Cys(Trt)-Gln(Trt)-Arg(Pbf)-Lys(Boc)-Lys(Mtt)-Gly-Gly-Tyr(But)-Gly-Arg(Pbf)-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Arg(Pbf)-Arg(Pbf)-Gln(Trt)-Arg(Pbf)-Arg(Pbf)-Arg(Pbf).

3. الاندريد / حمض اقتران

  1. اقتران أنهيدريد
    1. غسل الراتنج مع NMP. إضافة NMP إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.
    2. حل 10 يعادله من أنهيدريد المقابلة في NMP (5 مل)، إضافة 1 أي ما يعادل 4-Dimethylaminopyridine (DMAP) و 10 في حكمه DIEA إلى حل (الجدول 1).
    3. إضافة 10: 10 خليط من الخل / DMAP / DIEA إلى الراتنج واحتضان لمدة 300 ثانية (25: 1W، 75 ° C، الجدول 2). استنزاف الحل.
    4. غسل الراتنج مع NMP. إضافة NMP إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.
  2. حمض اقتران
    1. غسل الراتنج مع DMF. إضافة DMF إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.
    2. حل 10 يعادله من حمض ثنائي الكربوكسيل المقابلة في DMF (5 مل). إضافة 1 DMAP أي ما يعادل 10 في حكمه وN، N '-Diisopropylcarbodiimide (DIC) إلى حل (الجدول 1).
    3. قبل تفعيل الخليط عن طريق خلط لمدة 30 دقيقة.
    4. إضافة الخليط إلى الراتنج واحتضان لمدة 300 ثانية (25 W، 75 ° C، الجدول 2)، واستنزاف الحل.
    5. غسل الراتنج مع DMF. إضافة DMF إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف حل. كرر الخطوة ثلاث مرات.

4. N-methyltrityl (الإنتقالي العسكري) حماية المجموعة Deprotectأيون

ملاحظة: تم محمية سلسلة الجانب يسين مع N-methyltrityl (الإنتقالي العسكري) 81، وهي مجموعة حماية التي يمكن deprotected بشكل انتقائي في ظل ظروف عطوب الحمضية 82،83. Deprotect الإنتقالي العسكري حماية مجموعة يدويا على شاكر بدون طاقة الميكروويف.

  1. نقل الراتنج على خرطوشة البولي بروبلين مجهزة المكونات الغطاء ومحبس.
  2. غسل الراتنج مع DCM. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.
  3. إضافة 15-25 مل من خليط من 1٪ حمض Trifluoroacetic (TFA)، و 5٪ Triisopropylsilane (TIS)، و 94٪ DCM لخرطوشة البولي بروبلين في غرام واحد من الراتنج.
    ملاحظة: TFA هو حمض قوي وتآكل وغير مزعجة للغاية على الجلد والعينين، وأنسجة الرئة.
    1. الحفاظ حلول مركزة من TFA في غطاء محرك السيارة في جميع الأوقات.
    2. استخدام معدات الوقاية الشخصية المناسبة (حماية العين، معطف المختبر وقفازات) والعمل في غطاء جيد التهوية. تغيير القفازات فوراإذا كانت تأتي في اتصال مع TFA وتنظيف فورا أي تسرب. اذا كانت بشرتك أو عينيك تأتي في اتصال مع الحامض، مسح المنطقة المصابة على الفور بالماء ويغسل لمدة 15 دقيقة إضافية.
  4. وضع خرطوشة البولي بروبلين على شاكر ويهز لمدة 5 دقائق على RT.
  5. استنزاف الحل من خرطوشة البولي بروبلين من خلال تطبيق فراغ.
  6. كرر الخطوات من 4،3-4،5، ثلاث مرات.
  7. غسل الراتنج مع DCM. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر خمس مرات.

5. Cyclization من الخطي الببتيد

  1. غسل الراتنج مع DCM. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر خمس مرات.
  2. في 50 مل أنبوب البولي بروبلين، ويحل 5 حكمه Benzotriazole-1-لاي-أوكسي تريس، pyrrolidinophosphonium hexafluorphosphate (PyBOP) في Dibromomethane (DBM، 5 مل)، وإضافة 10 المعادل DIEA إلى حل (الجدول 1).
  3. إضافة الخليط إلى الراتنج واحتضان لمدة 300 ثانية (25 W، 75 ° C، الجدول 2). استنزاف الحل.
  4. غسل الراتنج مع DCM. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر ثلاث مرات.

6. الشق وDeprotection من المجموعات الجانبية سلسلة

  1. غسل الراتنج مع DCM وايثر.
    1. إضافة DCM إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر مرتين.
    2. إضافة ايثر إلى الراتنج لمدة 120 ثانية (7 مل، 0 W، غ)، واستنزاف الحل. كرر مرتين.
  2. تجفيف الراتنج في فراغ مجفف في RT لا يقل عن 3 ساعة على هيدروكسيد البوتاسيوم (KOH، 1-10 ز).
  3. تزن الراتنج المجففة وتحويلها إلى خرطوشة البولي بروبلين.
  4. إضافة 10 مل من تبريده قبل trifluoroacetic حمض (TFA) انشقاق كوكتيل (على سبيل المثال، 90٪ TFA 2.5٪ ماء، 2.5٪ TIS و 5٪ الفينول) إلى كل غرام واحد من الراتنج.
  5. يهز لمدة 3 ساعاتفي RT.
  6. جمع الحل انشقاق TFA من خلال تصفية الراتنج في أنبوب البولي بروبلين 50 مل. لوالترشيح، واستخدام فريت التي هي في خرطوشة البولي بروبلين 12 مل.
  7. إضافة ايثر الباردة (35 مل) إلى أنبوب.
  8. أجهزة الطرد المركزي لمدة 5 دقائق في 1207 x ج في 4 درجات مئوية.
  9. صب طبقة الأثير.
  10. كرر الخطوة 6،7-6،9، خمس مرات.

7. تجفيف العمود الفقري دوري الببتيد

  1. الحفاظ على الببتيد عجلت في نفس الأنبوب وتجف في غطاء محرك السيارة لمدة 30 دقيقة.
  2. حل الببتيد في 1: 1 خليط من الماء والأسيتونتريل (ACN).
  3. تجميد الحل المنتج النهائي في النيتروجين السائل.
  4. يجفد المنتج النهائي.

8. تميز العمود الفقري دوري الببتيد

  1. حل عينة صغيرة (1 ملغ) من الناتج في الماء (400 ميكرولتر).
  2. حقن ببتيد المنحل (10-200 ميكرولتر) إلى مرحلة العكسي عالية الأداء chromatograp السائلHY (RP-HPLC) نظام لاختبار الببتيد نقاء 34.
  3. تحقق كتلة الببتيد باستخدام مطياف الكتلة مصفوفة بمساعدة الليزر الامتزاز التأين (MS-MALDI) 84.
    1. مزيج 1 ميكرولتر (100 ميكرومتر) الببتيد في 1: 1 (ت / ت) خليط من الأسيتونتريل: الماء مع 1 ميكرولتر من المصفوفة (حمض 5 ملغ / مل، α-cyano-4-hydroxycinnamic) في 1: 1 (الخامس / V) خليط من الأسيتونتريل: المياه مع TFA (0.1٪).
    2. بقعة 1 ميكرولتر على لوحة MS-MALDI.
    3. تجفيف العينات ووضعه في مطياف الكتلة.
  4. تزن الببتيد وحساب العائد في المئة.
  5. تخزين في درجة حرارة -20 درجة مئوية.

9. رصد التجميعي

  1. كايزر (النينهيدرين) اختبار 85
    1. إعداد الحلول كاشف.
      1. إعداد الحل A عن طريق إذابة 16.5 ملغ من البوتاسيوم السيانيد (KCN) في 25 مل من الماء المقطر. تمييع 1 مل من محلول أعلاه مع 49 مل من البريدين.
      2. إعداد الحل Bعن طريق إذابة 1 غرام من النينهيدرين في 20 مل من الايثانول.
      3. إعداد الحل C عن طريق إذابة 40 جم فينول في 20 مل ايثانول.
    2. استخدام اختبار كايزر للتحقق من إنجاز اقتران الأحماض الأمينية أو deprotection من مجموعة حماية.
      1. نقل بضع حبات من الراتنج إلى أنبوب اختبار.
      2. إضافة ثلاث قطرات (~ 100 ميكرولتر) من كل حل (A، B و C) وتخلط.
      3. حرارة أنبوب الاختبار على كتلة التدفئة في 110 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
        ملاحظة: الخرز الملون الأزرق (نتيجة إيجابية) إلى رد فعل اقتران كاملة أو deprotection من Fmoc مجموعة حماية.
  2. الكلورانيل اختبار 86
    1. إعداد الكواشف التالية جديدة لكل اختبار.
      1. تحضير محلول 2٪ الكلورانيل في DMF، حل A.
      2. تحضير محلول 2٪ الأسيتالديهيد في DMF، حل B.
    2. إجراء اختبار الكلورانيل للتحقق من إنجاز اقتران الأحماض الأمينية أو تيانه deprotection من مجموعة حماية.
      1. مزيج 100 ميكرولتر من محلول A مع 100 ميكرولتر من محلول B في أنبوب 1.5 مل.
      2. إسقاط حبات في ويهز بلطف لمدة 5 دقائق.
        ملاحظة: الخرز الملون البني الداكن (نتيجة إيجابية) تشير deprotection من مجموعة حماية Fmoc أو رد فعل اقتران غير مكتملة.
  3. رد فعل الانقسام على نطاق صغير
    1. إزالة كمية صغيرة من الراتنج لخرطوشة البولي بروبلين 3 مل مجهزة المكونات الغطاء ومحبس.
    2. علاج بمزيج 2 مل من 95٪ TFA، و 2.5٪ و 2.5٪ ماء TIS.
    3. يهز الخليط لمدة 30 دقيقة في RT.
    4. إزالة الراتنج عن طريق الترشيح باستخدام فريت من خرطوشة البولي بروبلين وتتبخر المذيبات من قبل تيار من النتروجين.
    5. حل هذه البقايا في الماء وتحليل المنتج باستخدام HPLC و / أو MS.

10. الليشمانيا الدونوفانية المشيقة الجدوى في الثقافة الفحص

    <لى> الليشمانيا الدونوفانية (L. اللشمانيا الحشوية) ظروف النمو والعلاج
    1. ثقافة L. الطور السوطي اللشمانيا الحشوية في تعديل Dulbecco والنسر والمتوسطة (DMEM) مع 4.5 جم / L الجلوكوز، L-الجلوتامين، والبيروفات الصوديوم في 26 ° C.
    2. علاج L. اللشمانيا الحشوية الطور السوطي مع الببتيدات الحلقية (100 ميكرومتر) لمدة 24 ساعة على 26 ° C.
  1. الليشمانيا الدونوفانية (L. اللشمانيا الحشوية) الجدوى فحص
    1. تقييم الجدوى الطفيلي مع 20 ميكرولتر alamarBlue وفقا لبروتوكول الشركة الصانعة.
    2. تحديد الحد alamarBlue عن طريق قياس مضان (في 570 نانومتر الإثارة و 590 نانومتر الانبعاثات). قيم مضان أعلى تشير إلى زيادة نشاط الأيض وزيادة قابلية الطفيلي.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نحن هنا وصف وضع مكتبة صغيرة مركزة من العمود الفقري الببتيدات الحلقية التي تستهدف على وجه التحديد مثبطات مضخة البروتون حيوية للطفيل الليشمانيا وبمثابة وكلاء ضد الطفيليات (للمراجعة عن الببتيدات التي تستهدف مثبطات مضخة البروتون كعوامل مضادة للطفيليات 87). من خلال تركيب العمود الفقري رواية الببتيدات الحلقية، يتم حفظها pharmacophores في سقالة من حجم قابلة للتمديد. قوة المكتبة المركزة المقترحة هنا هي القدرة على تغيير أحجام الببتيد سقالة في حين يسمح بدرجة محدودة من حر...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوصف تركيب مكتبة مركزة من العمود الفقري الببتيدات الحلقية المستمدة من البروتين عدم وجود طفيل الليشمانيا في استخدام المزج الميكروويف مؤتمتة بالكامل. وقد وضعت مكتبة مركزة من الببتيدات الحلقية مع pharmacophores التمايز ومختلف linkers. إضافة linkers مختلفة مثل أنهيدريد الغلوتاريك، السكسينك، حمض الأديبيك وحمض البيميليك، ليسين، الأورنيثين، واللبنات الأخرى يمكن استخدامها لزيادة متنوعة من مساحة بتكوين من الببتيدات الحلقية. تركيب مكتبة الببتيدات الحلقية مركزة يسمح للباحثين للكشف ع...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نشكر لورين فان فاسينهوف، Sunhee هوانج، وداريا Mochly روزين لإجراء مناقشات مفيدة. وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة NIH منح RC4 TW008781-01 C-IDEA (SPARK) لكيو زيارتها للممولين أي دور في تصميم الدراسة وجمع البيانات وتحليلها، قرار نشر أو إعداد المخطوطة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
<قوي > كواشف < / قوي >
دعم قوي ، راتنج Rink Amide AM MLCBLBR-1330التحميل: 0.49 مليمول / جم
Fmoc-Ala-OHAdvanced ChemtechFA2100
Fmoc-Arg (Pbf) -OHAdvanced ChemtechFR2136
Fmoc-Asn (Trt) -OHAdvanced ChemtechFN2152
Fmoc-ASP (OBut) -OHAdvanced ChemtechFD2192
Fmoc-Cys (TRT) -OHAdvanced ChemtechFC2214
Fmoc-Gln (TRT) -OHAdvanced ChemtechFQ2251
Fmoc-Glu (OtBu) -OHAdvanced ChemtechFE2237
Fmoc-Gly-OHAdvanced ChemtechFG2275
Fmoc - His (TRT) -OHAdvanced ChemtechFH2316
Fmoc-Ile-OHAdvanced ChemtechFI2326
Fmoc-Leu-OHAdvanced ChemtechFL2350
Fmoc-Lys(Boc) -OHAdvanced ChemtechFK2390
Fmoc-Met-OHAdvanced ChemtechFM2400
Fmoc-Phe-OHAdvanced ChemtechFF2425
Fmoc-Pro-OHAdvanced ChemtechFP2450
Fmoc-Ser- (tBu) -OHAdvanced ChemtechFS2476
Fmoc-Thr (tBu) -OHAdvanced ChemtechFT2518
Fmoc-Trp (Boc) -OHAdvanced ChemtechFW2527
Fmoc-Tyr (لكن) -OHAdvanced ChemtechFY2563
Fmoc-Val-OHAdvanced ChemtechFV2575
1-ميثيل -2-بيروليدينون (NMP)سيجما328634<قوي > حذر < / قوي > سام / شديد الاشتعال / مهيج.
<م > ن ، ن < م > ثنائي ميثيل فورماميد (DMF) ألفاإيسار43465<قوي > تحذير < / قوي > سام.< / > استخدم DMF عالي الجودة للتخلص من التفاعلات الجانبية مثل إزالة Fmoc نتيجة لآثار ثنائي ميثيل أمين من تحلل DMF.
ثنائي كلورو ميثان (DCM)سيجماD65100<قوي > تحذير < قوي >
بروموميثان ضار (DBM)سيجماD41868<قوي > حذر < / قوي >
حمض ثلاثي فلورو أسيتيك ضار (TFA)سيجماT62200<قوي > تحذير < / قوي >
حمض ثلاثي فلورو أسيتيك تآكل / سام ، درجة HPLC (TFA)سيجما91707<قوي > تحذير < / قوي > تآكل / سام
ثنائي إيثيل إيثرسيجما31690<قوي > حذر < / قوي > ثلاثي إيزوبروبيل سيلان شديد الاشتعال / ضار
(TIS)سيجما233781<قوي > حذر < / قوي > مهيج / قابل للاشتعال
، HPLC درجةسيجما270733
أسيتونيترويل ، درجة HPLC (ACN)فيشر ScientificA998-4<قوي > تحذير < / قوي > قابل للاشتعال / مهيج / ضار
< م > N ، N < / em > ثنائي isopropylethylamine (DIEA)Sigma3440<قوي > تحذير < / قوي > تآكل / شديد الاشتعال
بيبيريدينسيجماW290807<قوي > تحذير < / قوي > سام / شديد الاشتعال
بيريدينسيجما270970<قوي > تحذير < قوي >
الاشتعال / ضار (EtOH)سيجما459844<قوي > تحذير < / قوي > شديد الاشتعال / مهيج
1-هيدروكسي بنزوتريازول هيدرات (HOBt)سيجما157260<قوي > حذر < قوي > شديد الاشتعال / مهيج / ضار
O< / em>-(Benzotriazol-1-yl)-N,N,N′,N′,N′ < / em>- رباعي ميثيل يورونيوم سداسي فلورو فوسفات (HBTU)سيجما12804<قوي > تحذير < / قوي > مهيج / ضار
بنزوتريازول -1-ليك-أوكسي تريس بيروليدينوفوسفونيوم سداسي فلور فوسفات (PyBOP) AdvancedChemtechRC8602<قوي > الحذر < / قوي > مهيج
نينهيدرينسيجما454044<قوي > الحذر < / قوي > ضار
فينولسيجماP3653<قوي > تحذير < / قوي >
(KCN)سيجما11813<قوي > الحذر < / قوي >
هيدروكسيد البوتاسيوم شديد السمية (KOH)سيجما221473<قوي > الحذر < / قوي > سام
< م > ن ، ن ' < / م > ثنائي الأيزوبروبيل كاربوديميد (DIC)سيجما38370<قوي > الحذر < / قوي > قابل للاشتعال / سام
4-ثنائي ميثيل أمينوبيريدين (DMAP)سيجما522805<قوي > تحذير < / قوي >
أنهيدريد جلوتاريكسيجماG3806<قوي > تحذير < / قوي > قابل للاشتعال / مهيج / ضار
أنهيدريد السكسينيكسيجما239690<قوي>الحذر< القوي> مهيج / ضار
حمض أديبيكسيجماA26357<قوي>الحذر< القوي> سام/مهيج
حمض بيميليكسيجماP45001<قوي>الحذر سام / مهيج
الكلورانيلسيجما23290<قوي>الحذر< القوي> سام/مهيج
أسيتالديهايدسيجما402788<قوي > الحذر < / قوي > قابل للاشتعال / سام
< قوي > المعدات < / قوي >
جهاز طرد مركزيبيكمان كولترأليجرا 6R جهاز
مجففالمياه Labconcoالمنطقة الحرة 4.5
فراغفرانكلين إلكتريكموديل 1101101416 مع 3/4 حصانالكاتيل مضخة مع فرانكلين موتور 
خرطوشة البولي بروبلين 12 ملالفصل التطبيقي2419
قابس الغطاء لخرطوشة البولي بروبلين 12 ملالفصل التطبيقي8157
خرطوشة البولي بروبلين 3 ملالفصل التطبيقي2413
قابس الغطاء لخرطوشة البولي بروبلين 3 ملالفصل التطبيقي8054
إيقاف الديوك PTFEالفصل التطبيقي2406
أنابيب مسطحة ، 50 ملVWR21008-240
مشعب استخراج ، 20 نقاط البيع ، أنابيب 16 × 100 ممووترزWAT200609
شاكر ، BD adams خلاط المغذياتفيشر العلمي22363152
Nalgene HDPE زجاجات IP2 ضيقة الفم ، 125 & nbsp ؛ ملفيشر العلمي03-312-8
قارورة Erlenmeyerفيشر ScientificFB-501 ، 500 مل
كتلة تسخينThermolyne1760 حمام
أنابيب زجاجية من البورسليكات يمكن التخلص منها بنهاية عاديةفيشر Scientific14-961-25
ماصات دقيقة ونصائح FinnpipetteThermo20 & ndash ؛ 200 و 100 & - - - 1,000 مو ؛ ل
قوارير HPLC - مايكرو VL PP 400 & مايكرو ؛ ل PK100   ؛  VWR69400-124
قارورة HPLC- غطاء أزرق Snap-ItVWR66030-600
عمود HPLC التحليليPeeke ScientificU1-5C18Q-JJultro 120 5 & micro ؛ م C18Q ، معرف 4.6 مم 150 مم
عمود HPLC الإعدادي ، XBridge & nbsp ؛ووترزOBD C18 5 & مايكرو ؛ م العمود19 مم & 150 مم
مطياف الكتلةApplied BiosystemsVoyager DE-RP & nbsp ؛
مجفف
أسطوانة
نظام RP-HPLC التحليلي Shimadzu LC-20مجهز بما يلي: وحدة تحكم في نظام CBM-20A ، كاشف SPD-20A ، فرن عمود CTO-20A ، وحدة توصيل المذيبات LC-20AD ، جهاز أخذ العينات الآلي SIL-20AC ، مزيل الغازات DGU-20A5 (شيمادزو ، دكتوراه في الطب ، الولايات المتحدة الأمريكية).
نظام RP-HPLC التحضيري Shimadzu LC-20مجهز بما يلي: وحدة تحكم في نظام CBM-20A ، كاشف SPD-20A ، فرن عمود CTO-20A ، وحدة توصيل المذيبات LC-6AD 2 × ومجمع الكسر FRC-10A (Shimadzu ، MD ، الولايات المتحدة الأمريكية).
Fmoc-His (TRT) -OH Advanced Chemtech FG2275 ثنائي شديد سيانيد البوتاسيوم التآكل / السام سام / مهيج طرد مركزي مضخة دريالنيتروجين

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Wells, J. A., McClendon, C. L. Reaching for high-hanging fruit in drug discovery at protein-protein interfaces. Nature. 450 (7172), 1001-1009 (2007).
  2. Arkin, M. R., Wells, J. A. Small-molecule inhibitors of protein-protein interactions: progressing towards the dream. Nat Rev Drug Discov. (4), 301-317 (2004).
  3. Mandell, D. J., Kortemme, T. Computer-aided design of functional protein interactions. Nat. Chem. Biol. 5 (11), 797-807 (2009).
  4. Friedler, A., et al. Backbone cyclic peptide, which mimics the nuclear localization signal of human immunodeficiency virus type 1 matrix protein, inhibits nuclear import and virus production in nondividing cells. Biochemistry. 37 (16), 5616-5622 (1998).
  5. Brandman, R., Disatnik, M. H., Churchill, E., Mochly-Rosen, D. Peptides derived from the C2 domain of protein kinase C epsilon (epsilon PKC) modulate epsilon PKC activity and identify potential protein-protein interaction surfaces. J. Biol. Chem. 282 (6), 4113-4123 (2007).
  6. Vlieghe, P., Lisowski, V., Martinez, J., Khrestchatisky, M. Synthetic therapeutic peptides: science and market. Drug discov today. 15 (1-2), 40-56 (2010).
  7. Marx, V. Watching Peptide Drugs Grow Up. Chemical & Engineering News. 83, American Chemical Society. 17-24 (2005).
  8. Denicourt, C., Dowdy, S. F. Medicine. Targeting apoptotic pathways in cancer cells. Science. 305 (5689), 1411-1413 (2004).
  9. Qvit, N., et al. Synthesis of a novel macrocyclic library: discovery of an IGF-1R inhibitor. J Comb Chem. 10 (2), 256-266 (2008).
  10. Patch, J. A., Barron, A. E. Mimicry of bioactive peptides via non-natural, sequence-specific peptidomimetic oligomers. Curr. Opin. Chem. Biol. 6 (6), 872-877 (2002).
  11. Kessler, H. Peptide Conformations .19. Conformation and Biological-Activity of Cyclic-Peptides. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 21 (7), 512-523 (1982).
  12. Gazal, S., Gelerman, G., Gilon, C. Novel Gly building units for backbone cyclization: synthesis and incorporation into model peptides. Peptides. 24 (12), 1847-1852 (2003).
  13. Fesik, S. W., et al. NMR studies of [U-13C]cyclosporin A bound to cyclophilin: bound conformation and portions of cyclosporin involved in binding. Biochemistry. 30 (26), 6574-6583 (1991).
  14. Kornfeld, O. S., et al. Mitochondrial Reactive Oxygen Species at the Heart of the Matter: New Therapeutic Approaches for Cardiovascular Diseases. Circ. Res. 116 (11), 1783-1799 (2015).
  15. Boguslavsky, V., Hruby, V. J., O'Brien, D. F., Misicka, A., Lipkowski, A. W. Effect of peptide conformation on membrane permeability. J. Pept. Res. 61 (6), 287-297 (2003).
  16. Eguchi, M., et al. Solid-phase synthesis and structural analysis of bicyclic beta-turn mimetics incorporating functionality at the i to i+3 positions. J. Am. Chem. Soc. 121 (51), 12204-12205 (1999).
  17. Altstein, M., et al. Backbone cyclic peptide antagonists, derived from the insect pheromone biosynthesis activating neuropeptide, inhibit sex pheromone biosynthesis in moths. J. Biol. Chem. 274 (25), 17573-17579 (1999).
  18. Cheng, M. F., Fang, J. M. Liquid-phase combinatorial synthesis of 1,4-benzodiazepine-2,5-diones as the candidates of endothelin receptor antagonism. J. Comb. Chem. 6 (1), 99-104 (2004).
  19. Merrifield, R. B. Solid Phase Peptide Synthesis I. the Synthesis of a Tetrapeptide. J. Am. Chem. Soc. 85, 2149-2154 (1963).
  20. Pfeiffer, C. T., Schafmeister, C. E. Solid phase synthesis of a functionalized bis-peptide using 'safety catch' methodology. J Vis Exp. (63), e4112(2012).
  21. Coin, I., Beyermann, M., Bienert, M. Solid-phase peptide synthesis: from standard procedures to the synthesis of difficult sequences. Nat. Protoc. 2 (12), 3247-3256 (2007).
  22. Qvit, N., et al. Design and synthesis of backbone cyclic phosphorylated peptides: the IκB model. Biopolymers. 91 (2), 157-168 (2009).
  23. Sainlos, M., Imperiali, B. Tools for investigating peptide-protein interactions: peptide incorporation of environment-sensitive fluorophores through SPPS-based 'building block' approach. Nat. Protoc. 2 (12), 3210-3218 (2007).
  24. Hilpert, K., Winkler, D. F., Hancock, R. E. Peptide arrays on cellulose support: SPOT synthesis, a time and cost efficient method for synthesis of large numbers of peptides in a parallel and addressable fashion. Nat. Protoc. 2 (6), 1333-1349 (2007).
  25. Qi, X., Qvit, N., Su, Y. C., Mochly-Rosen, D. A novel Drp1 inhibitor diminishes aberrant mitochondrial fission and neurotoxicity. J. Cell Sci. 126 (Pt 3), 789-802 (2013).
  26. Beaucage, S. L. Solid-phase synthesis of siRNA oligonucleotides. Curr. Opin. Drug Discovery Dev. 11 (2), 203-216 (2008).
  27. Dhanawat, M., Shrivastava, S. K. Solid-Phase Synthesis of Oligosaccharide Drugs: A Review. Mini Rev Med Chem. 9 (2), 169-185 (2009).
  28. Seeberger, P. H., Werz, D. B. Synthesis and medical applications of oligosaccharides. Nature. 446 (7139), 1046-1051 (2007).
  29. Plante, O. J., Palmacci, E. R., Seeberger, P. H. Automated solid-phase synthesis of oligosaccharides. Science. 291 (5508), 1523-1527 (2001).
  30. Komiyama, M., Aiba, Y., Ishizuka, T., Sumaoka, J. Solid-phase synthesis of pseudo-complementary peptide nucleic acids. Nat. Protoc. 3 (4), 646-654 (2008).
  31. Christensen, L., et al. Solid-Phase synthesis of peptide nucleic acids. J. Pept. Sci. 1 (3), 175-183 (1995).
  32. Qvit, N., et al. Development of bifunctional photoactivatable benzophenone probes and their application to glycoside substrates. Biopolymers. 90 (4), 526-536 (2008).
  33. O'Neill, J. C., Blackwell, H. E. Solid-phase and microwave-assisted syntheses of 2,5-diketopiperazines: small molecules with great potential. Comb Chem High Throughput Screen. 10 (10), 857-876 (2007).
  34. Qvit, N., Barda, Y., Shalev, D., Gilon, C. A Laboratory Preparation of Aspartame Analogs Using Simultaneous Multiple Parallel Synthesis Methodology. J. Chem. Educ. 84 (12), 1988-1991 (2007).
  35. Truran, G. A., Aiken, K. S., Fleming, T. R., Webb, P. J., Markgraf, J. H. Solid phase organic synthesis and combinatorial chemistry: A laboratory preparation of oligopeptides. J. Chem. Educ. 79 (1), 85-86 (2002).
  36. Verlander, M. Industrial applications of solid-phase peptide synthesis - A status report. Int. J. Pept. Res. Ther. 13 (1-2), 75-82 (2007).
  37. Bray, B. L. Large-scale manufacture of peptide therapeutics by chemical synthesis. Nature reviews. Drug discovery. 2 (7), 587-593 (2003).
  38. Qvit, N. Development and therapeutic applications of oligonucleotides and peptides. chimica Oggi / CHEMISTRY today. 29 (2), 4-7 (2011).
  39. Carpino, L. A., Han, G. Y. 9-Fluorenylmethoxycarbonyl Amino-Protecting Group. J. Org. Chem. 37 (22), 3404-3409 (1972).
  40. Gedye, R., et al. The use of microwave ovens for rapid organic synthesis. Tetrahedron Lett. 27 (3), 279-282 (1986).
  41. Giguere, R. J., Bray, T. L., Duncan, S. M., Majetich, G. Application of commercial microwave ovens to organic synthesis. Tetrahedron Lett. 27 (41), 4945-4948 (1986).
  42. Kappe, C. O., Dallinger, D. The impact of microwave synthesis on drug discovery. Nature reviews. Drug discovery. 5 (1), 51-63 (2006).
  43. Kappe, C. O. Controlled microwave heating in modern organic synthesis. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 43 (46), 6250-6284 (2004).
  44. de la Hoz, A., Diaz-Ortiz, A., Moreno, A. Microwaves in organic synthesis. Thermal and non-thermal microwave effects. Chem. Soc. Rev. 34 (2), 164-178 (2005).
  45. Yu, H. M., Chen, S. T., Wang, K. T. Enhanced coupling efficiency in solid-phase peptide synthesis by microwave irradiation. J. Org. Chem. 57 (18), 4781-4784 (1992).
  46. Mingos, D. M. P., Baghurst, D. R. Tilden Lecture. Applications of microwave dielectric heating effects to synthetic problems in chemistry. Chem. Soc. Rev. 20 (1), 1-47 (1991).
  47. Gabriel, C., Gabriel, S., Grant, E. H., Halstead, B. S. J., Mingos, D. M. P. Dielectric parameters relevant to microwave dielectric heating. Chem. Soc. Rev. 27 (3), 213-224 (1998).
  48. Sabatino, G., Papini, A. M. Advances in automatic, manual and microwave-assisted solid-phase peptide synthesis. Curr. Opin. Drug Discovery Dev. 11 (6), 762-770 (2008).
  49. Banerjee, J., Hanson, A. J., Muhonen, W. W., Shabb, J. B., Mallik, S. Microwave-assisted synthesis of triple-helical, collagen-mimetic lipopeptides. Nat. Protoc. 5 (1), 39-50 (2010).
  50. Bacsa, B., Kappe, C. O. Rapid solid-phase synthesis of a calmodulin-binding peptide using controlled microwave irradiation. Nat. Protoc. 2 (9), 2222-2227 (2007).
  51. Murray, J. K., Gellman, S. H. Parallel synthesis of peptide libraries using microwave irradiation. Nat. Protoc. 2 (3), 624-631 (2007).
  52. Palasek, S. A., Cox, Z. J., Collins, J. M. Limiting racemization and aspartimide formation in microwave-enhanced Fmoc solid phase peptide synthesis. J Pept Sci. 13 (3), 143-148 (2007).
  53. Murray, J. K., Aral, J., Miranda, L. P. Solid-Phase Peptide Synthesis Using Microwave Irradiation. Methods Mol. Biol. 716, 73-88 (2011).
  54. Galanis, A. S., Albericio, F., Grotli, M. Solid-Phase Peptide Synthesis in Water Using Microwave-Assisted Heating. Organic Letters. 11 (20), 4488-4491 (2009).
  55. Rizzolo, F., Sabatino, G., Chelli, M., Rovero, P., Papini, A. M. A convenient microwave-enhanced solid-phase synthesis of difficult peptide sequences: Case study of Gramicidin A and CSF114(Glc). Int. J. Pept. Res. Ther. 13 (1-2), 203-208 (2007).
  56. Matsushita, T., Hinou, H., Kurogochi, M., Shimizu, H., Nishimura, S. Rapid microwave-assisted solid-phase glycopeptide synthesis. Org Lett. 7 (5), 877-880 (2005).
  57. Nagaike, F., et al. Efficient microwave-assisted tandem N- to S-acyl transfer and thioester exchange for the preparation of a glycosylated peptide thioester. Org Lett. 8 (20), 4465-4468 (2006).
  58. Naruchi, K., et al. Construction and structural characterization of versatile lactosaminoglycan-related compound library for the synthesis of complex glycopeptides and glycosphingolipids. J. Org. Chem. 71 (26), 9609-9621 (2006).
  59. Brandt, M., Gammeltoft, S., Jensen, K. J. Microwave heating for solid-phase peptide synthesis: General evaluation and application to 15-mer phosphopeptides. Int. J. Pept. Res. Ther. 12 (4), 349-357 (2006).
  60. Harris, P. W. R., Williams, G. M., Shepherd, P., Brimble, M. A. The Synthesis of Phosphopeptides Using Microwave-assisted Solid Phase Peptide Synthesis. Int. J. Pept. Res. Ther. 14 (4), 387-392 (2008).
  61. Qvit, N. Microwave-assisted Synthesis of Cyclic Phosphopeptide on Solid Support. Chem. Biol. Drug Des. 85 (3), 300-305 (2014).
  62. Kato, D., Verhelst, S. H., Sexton, K. B., Bogyo, M. A general solid phase method for the preparation of diverse azapeptide probes directed against cysteine proteases. Org Lett. 7 (25), 5649-5652 (2005).
  63. Olivos, H. J., Alluri, P. G., Reddy, M. M., Salony, D., Kodadek, T. Microwave-assisted solid-phase synthesis of peptoids. Org Lett. 4 (23), 4057-4059 (2002).
  64. Gorske, B. C., Jewell, S. A., Guerard, E. J., Blackwell, H. E. Expedient synthesis and design strategies for new peptoid construction. Org Lett. 7 (8), 1521-1524 (2005).
  65. Grieco, P., et al. Design and microwave-assisted synthesis of novel macrocyclic peptides active at melanocortin receptors: discovery of potent and selective hMC5R receptor antagonists. J. Med. Chem. 51 (9), 2701-2707 (2008).
  66. Boutard, N., Jamieson, A. G., Ong, H., Lubell, W. D. Structure-Activity Analysis of the Growth Hormone Secretagogue GHRP-6 by alpha- and beta-Amino gamma-Lactam Positional Scanning. Chem. Biol. Drug Des. 75 (1), 40-50 (2010).
  67. Jamieson, A. G., et al. Positional scanning for peptide secondary structure by systematic solid-phase synthesis of amino lactam peptides. J. Am. Chem. Soc. 131 (22), 7917-7927 (2009).
  68. Hossain, M. A., Bathgate, R. A. D., Tregear, G., Wade, J. D. De Novo Design and Synthesis of Cyclic and Linear Peptides to Mimic the Binding Cassette of Human Relaxin. Annals of the New York Academy of Sciences. 1160, 16-19 (2009).
  69. Fowler, S. A., Stacy, D. M., Blackwell, H. E. Design and synthesis of macrocyclic peptomers as mimics of a quorum sensing signal from Staphylococcus aureus. Org Lett. 10 (12), 2329-2332 (2008).
  70. Cemazar, M., Craik, D. J. Microwave-assisted Boc-solid phase peptide synthesis of cyclic cysteine-rich peptides. J Pept Sci. 14 (6), 683-689 (2008).
  71. Miles, S. M., Leatherbarrow, R. J., Marsden, S. P., Coates, W. J. Synthesis and bio-assay of RCM-derived Bowman-Birk inhibitor analogues. Org Biomol Chem. 2 (3), 281-283 (2004).
  72. Murray, J. K., et al. Efficient synthesis of a beta-peptide combinatorial library with microwave irradiation. J. Am. Chem. Soc. 127 (38), 13271-13280 (2005).
  73. Churchill, E. N., Qvit, N., Mochly-Rosen, D. Rationally designed peptide regulators of protein kinase. C. Trends Endocrinol. Metab. 20 (1), 25-33 (2009).
  74. Mochly-Rosen, D., Qvit, N. Peptide inhibitors of protein-protein interactions. chimica Oggi / CHEMISTRY today. 28 (1), 14-16 (2010).
  75. Qvit, N., Mochly-Rosen, D. Highly specific modulators of protein kinase C localization: applications to heart failure. Drug Discov. Today Dis. Mech. 7 (2), e87-e93 (2010).
  76. Mougneau, E., et al. Expression cloning of a protective Leishmania antigen. Science. 268 (5210), 563-566 (1995).
  77. Kelly, B. L., Stetson, D. B., Locksley, R. M. Leishmania major LACK antigen is required for efficient vertebrate parasitization. J. Exp. Med. 198 (11), 1689-1698 (2003).
  78. Choudhury, K., et al. Trypanosomatid RACK1 orthologs show functional differences associated with translation despite similar roles in Leishmania pathogenesis. PLoS One. 6 (6), e20710(2011).
  79. Gonzalez-Aseguinolaza, G., Taladriz, S., Marquet, A., Larraga, V. Molecular cloning, cell localization and binding affinity to DNA replication proteins of the p36/LACK protective antigen from Leishmania infantum. Eur. J. Biochem. 259 (3), 909-916 (1999).
  80. Gump, J. M., Dowdy, S. F. TAT transduction: the molecular mechanism and therapeutic prospects. Trends Mol. Med. 13 (10), 443-448 (2007).
  81. Aletras, A., Barlos, K., Gatos, D., Koutsogianni, S., Mamos, P. Preparation of the very acid-sensitive Fmoc-Lys(Mtt)-OH. Application in the synthesis of side-chain to side-chain cyclic peptides and oligolysine cores suitable for the solid-phase assembly of MAPs and TASPs. Int. J. Pept. Protein Res. 45 (5), 488-496 (1995).
  82. Li, D., Elbert, D. L. The kinetics of the removal of the N-methyltrityl (Mtt) group during the synthesis of branched peptides. J. Pept. Res. 60 (5), 300-303 (2002).
  83. Bourel, L., Carion, O., Gras-Masse, H., Melnyk, O. The deprotection of Lys(Mtt) revisited. J Pept Sci. 6 (6), 264-270 (2000).
  84. Tran, H., Gael, S. L., Connolly, M. D., Zuckermann, R. N. Solid-phase submonomer synthesis of peptoid polymers and their self-assembly into highly-ordered nanosheets. J Vis Exp. (57), e3373(2011).
  85. Kaiser, E., Colescot, R. L., Bossinge, C. D., Cook, P. I. Color Test for Detection of Free Terminal Amino Groups in Solid-Phase Synthesis of Peptides. Anal. Biochem. 34 (2), 595-598 (1970).
  86. Christensen, T. Qualitative Test for Monitoring Coupling Completeness in Solid-Phase Peptide-Synthesis Using Chloranil. Acta Chem. Scand. Ser.B-Org. Chem. Biochem. 33 (10), 763-766 (1979).
  87. Qvit, N., Crapster, J. A. Peptides that Target Protein-Protein Interactions as an Anti-Parasite Strategy. chimica Oggi / CHEMISTRY today. 32 (6), 62-66 (2014).
  88. Byk, G., et al. Synthesis and biological activity of NK-1 selective, N-backbone cyclic analogs of the C-terminal hexapeptide of substance P. J. Med. Chem. 39 (16), 3174-3178 (1996).
  89. King, D. S., Fields, C. G., Fields, G. B. A cleavage method which minimizes side reactions following Fmoc solid phase peptide synthesis. Int. J. Pept. Protein Res. 36 (3), 255-266 (1990).
  90. Pedersen, S. L., Tofteng, A. P., Malik, L., Jensen, K. J. Microwave heating in solid-phase peptide synthesis. Chemical Society Reviews. 41 (5), 1826-1844 (2012).
  91. Colangelo, A. M., et al. A new nerve growth factor-mimetic peptide active on neuropathic pain in rats. J. Neurosci. 28 (11), 2698-2709 (2008).
  92. Mesfin, F. B., Andersen, T. T., Jacobson, H. I., Zhu, S., Bennett, J. A. Development of a synthetic cyclized peptide derived from alpha-fetoprotein that prevents the growth of human breast cancer. J. Pept. Res. 58 (3), 246-256 (2001).
  93. Mizejewski, G. J., Muehlemann, M., Dauphinee, M. Update of alpha fetoprotein growth-inhibitory peptides as biotherapeutic agents for tumor growth and metastasis. Chemotherapy. 52 (2), 83-90 (2006).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Backbone Cyclic PeptidesMicrowave IrradiationProtein Protein InteractionsLeishmania ReceptorPeptide CyclizationSolid Phase SynthesisMass SpectrometryHPLC AnalysisAntiparasitic TherapeuticsConformational Diversity

Related Articles