يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

الشعيرات الدموية المغذية الفحص يقيس كمية الطعام في

19.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/55024

⸱

مارس 17, 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

في هذه المقالة

ملخص

اختبار CApillary FEeder (CAFE) هو طريقة بسيطة وصديقة للميزانية وموثوقة للغاية للتحقيق في الآليات الكامنة وراء تناول الطعام. يستخدم مع الكائن الحي النموذجي الجيني متعدد الاستخدامات ذبابة الفاكهة السوداء ، ويوفر وسيلة قوية لاكتساب رؤى جديدة حول الآليات التنظيمية لتناول الطعام.

الملخص

بالنسبة لمعظم ، تعتبر التغذية سلوكا أساسيا لضمان البقاء على قيد الحياة ، وتؤثر على النمو والحركة والصحة والتكاثر. وبالتالي فإن تناول النوع والكمية المناسبين من الطعام له تأثير كبير على نوعية الحياة. تركز الأبحاث حول سلوك التغذية على العمليات الأساسية التي تضمن التغذية الفعلية وتكشف عن دور العوامل التي تنظم توازن الطاقة الداخلية والقواعد العصبية لاتخاذ القرار. الكائن الحي النموذجي ذبابة الفاكهة السوداء ، مع مجموعة كبيرة ومتنوعة من الأدوات التي يمكن تتبعها وراثيا لوضع العلامات على الخلايا العصبية المفردة ومعالجتها ، يسمح برسم خرائط للشبكات العصبية وتحديد شلالات الإشارات الجزيئية المشاركة في تنظيم تناول الطعام. يوضح هذا التقرير اختبار CApillary FEeder (CAFE) ويوضح كيفية قياس تناول الطعام في مجموعة من الذباب لفترات زمنية تتراوح من ساعات إلى أيام. يتكون هذا الاختبار سهل الاستخدام من شعيرات دموية زجاجية مملوءة بالطعام السائل الذي يمكن للذباب الوصول إليه والتغذية عليه بحرية. يتم تحديد استهلاك الغذاء في الفحص بدقة باستخدام أدوات قياس بسيطة. نصف هنا خطوة بخطوة الطريقة من الإعداد إلى التنفيذ الناجح لمقايسة CAFE ، ونقدم أمثلة عملية لتحليل تناول الطعام لمجموعة من الذباب في ظل ظروف خاضعة للرقابة. يتم توجيه القارئ من خلال القيود المحتملة للفحص ، ويتم تقييم مزايا وعيوب الطريقة مقارنة بمقايسات التغذية الأخرى في D. melanogaster.

المقدمة

الأكل ضروري. ومع ذلك، رفع القيود عن تناول الطعام مما يؤدي إلى اضطرابات الأكل مثل الشره المرضي، وفقدان الشهية أو الاتجاه العام إلى وجبة دسمة يفرض تكاليف على الأفراد والمجتمع 1، 2، 3. الهدف من هذا البحث هو الكشف عن الآليات التنظيمية لتناول الطعام، وتوفير استراتيجية للتحايل على تشكيل اضطراب. وقد وفرت العديد من الدراسات باستخدام الكائنات نموذج الثدييات رؤى جديدة من الدوائر ودور نظم الإنذار في اضطرابات الأكل 4، 5، 6. ومع ذلك، لدينا معرفة الأسس العصبية والجزيئية الكامنة وراء هذه الاضطرابات لا تزال بعيدة عن الاكتمال. في السنوات الأخيرة، وذبابة الفاكهة ذبابة الفاكهة أصبح نظام نموذجا قيما للكشف رؤى الآلية الأساسية في تنظيم metabolisم 7، 8، 9. تأسست الشعرية المغذية (CAFE) فحص لذبابة الفاكهة في مختبر سيمور بنزر في عام 2007 مستوحاة من العمل في وقت سابق من قبل DETHIER في الذبابة 10 و 11. جعل فحص CAFE من الممكن قياس مباشرة تناول الطعام في ذبابة الفاكهة. في هذا النظام الاختبار السلوكي، الذباب تتغذى على المواد الغذائية السائلة الواردة في الشعيرات الدموية الزجاج متدرجة وضعها داخل القارورة. تراجع الغضروف المفصلي الشعرية يشير فقدان حل الغذائية عن طريق التبخر والاستهلاك الغذائي. تحديد سعر التبخر التي كتبها قارورة دون الذباب يسمح للتقدير دقيق لتناول الطعام.

فحص CAFE هو واحد من عدة نماذج سلوكية تستخدم لقياس التغذية في ذبابة الفاكهة ويجب على الباحثين اختيار الأنسب لالمحددة لهاسؤال. قرار استخدام فحص معين يجب النظر في النقاط التالية: طبيعة الطعام المقدم؛ في حالة التغذية. قياس كمية أو امتصاص العناصر الغذائية والتحقيق استهلاك الغذاء أو الاستجابة للطعام.

فحص CAFE كما هو موضح في هذا التقرير هو المثالي لتناول الطعام التالية من مصدر المواد الغذائية السائلة في ظل حالة التغذية في وضع مستقيم. بدلا من تناول الطعام يمكن قياسها لمجموعة ذبابة على مصدر الغذاء الملون في قارورة أو على طبق من ذهب. والذباب قتل عادة أو تخدير بعد الرضاعة ويتم تحديد كمية من الصبغة تناولها من قبل الطيف أو الفحص البصري من البطن الملون. الذباب تبدأ في إفراز المواد الغذائية تناولها سوى 30 دقيقة بعد تناول وبالتالي هذا النهج من الصعب استخدام لتحليل التغذية أطول مستمرة السلوكيات 12، 13.

في المقابل يتم الاحتفاظ الذباب على حالها عند صبغ امتصاصيتم استخدام الصورة مع استشفاف المشعة وسجل استهلاكها من النظائر المشعة في عداد التلألؤ 14 و 15. امتصاص radiolabel من قبل الجهاز الهضمي ذبابة يجعل طويلة الأجل قياس امتصاص الغذاء ممكن، ولكن قد يؤدي إلى التقليل من استهلاك بسبب جزيئات غير استيعابها وتفرز التتبع. وثمة نهج آخر لقياس استجابة في الغذاء في ذبابة الفاكهة هو الرد خرطوم تمديد (PER)، والذي يحدث عادة لتناول الطعام (16). يقيس هذا الأسلوب الأنيق الاستجابة الأولية لحافز الطعام ولكن لا يسجل كمية السعرات. يتم ضبط الاستهلاك الغذائي حيوي أثناء الرضاعة باستخدام عدة إشارات ردود الفعل بعد الهضمية التي تعتبر بالغة الأهمية لتنظيم التغذية 17 و 18. وقد بذلت عدة محاولات في السنوات الأخيرة لجمع البيانات شبه أتمتة في مقايسة PER 19، 20. يتم الكشف عن PER عن طريق لوحة كهربائية أو مجموعة من الأقطاب الكهربائية وتحسب عن طريق الكمبيوتر. الجمع بين فحص PER مع امتصاص النظائر المشعة كشف أن هذا الاختبار محدودة بسبب انخفاض الحساسية للكشف عن الاختلافات التغذية كمية 18. الفحص اليدوي التغذية (MAFE) 21، والتي يتم تغذيتها ذبابة يدويا مع الزجاج الشعرية، وقد وضعت مؤخرا لقياس امتصاص المواد الغذائية في ذبابة يجمد واحد. فحص MAFE يلغي التدخلات من البحث عن الطعام والتغذية بدء ولديه قرار وقت ثانية، وبدء PER ويمكن رصد استهلاك المواد الغذائية بشكل مستقل في الفحص. ومع ذلك، فإن الطريقة التي تجميد الطاير يؤثر على جوانب معينة من السلوك التغذية (مثل الحركة، والتحفيز) لا تزال بحاجة إلى التحقيق. للاستعراضات المقارنة ممتازة من فحوصات مختلفة لقياس استهلاك الغذاء في ذبابة الفاكهة ليlanogaster ولمساعدة الباحثين في العثور على واحدة الأنسب، انظر التقارير التي ديشباندي وماركس 13، 22.

فحص CAFE يتجنب بعض من مساوئ فحوصات أخرى المذكورة أعلاه، ويجمع بين سهولة الاستخدام مع قياس موثوق من تناول الطعام. هنا، يتم تقديم وصفا مفصلا لفحص CAFE ونظهر تعديل الإعداد بسيطة للحد من تبخر. وأظهرت نتائج ممثلة بما في ذلك اختيار لفحص اثنين من المواد الغذائية (على المدى القصير والطويل) وامتصاص السكروز من الذباب. في مناقشة قارنا طريقة موضح لدينا مع طرق بديلة لأداء الفحص CAFE، وتسليط الضوء على أوجه القصور المحتملة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. الفحص CAFE

ملاحظة: يتكون الاختبار من ثلاثة عناصر هي: قارورة التجريبية، غطاء معين والشعيرات الدموية الدقيقة. ويستخدم مربع من البلاستيك مع غطاء لنقل قنينات مستعدة وللسيطرة على الرطوبة بشكل أكثر كفاءة.

  1. استخدام ذبابة الفاكهة البلاستيكية ثقافة البطن قارورة (اختياري 8 سم ارتفاع، 3.3 سم القطر) كما أنبوب للفحص.
  2. ختم قارورة مع غطاء زجاجي المصنعة التي تحتوي على الدائري O (أرقام 1A، 1B). الحمل عن طريق الذباب التنصت أو مع أنبوب النفخ من خلال فتح غطاء المركزي (0.9 سم القطر)، والذي يسمح أيضا لتدوير الهواء وإمدادات المياه، وإغلاق الفتحة مع كدر الاسفنج. ست فتحات المخروطية أصغر (0.4 سم قطرها العلوي، 0.3 سم القطر الداخلي) تحيط حفرة المركزي وتناسب نصائح ماصة من 2-20 حجم ميكرولتر لعقد الشعيرات الدموية في المكان. (انظر الشكلين التكميلية للاطلاع على التفاصيل الفنية للغطاء.)
    ملاحظة: استخداممن سدادة الإسفنج مع فتحات للالشعيرات الدموية بدلا من الغطاء مصنوعة خصيصا المستخدمة في مخطوطة لدينا هو ممكن. لدينا غطاء مخصصة يسمح التداول الآمن للقارورة مستعدة التقليل من خطر الشعيرات الدموية التي تقع أسفل.
  3. لتقديم المواد الغذائية السائلة، استخدم 5 microcapillaries ميكرولتر مع 1 علامات ميكرولتر. ضع الشعيرات الدموية في فتحات المخروطية في غطاء عن طريق قطع الجزء العلوي من 2-20 ميكرولتر ماصة وإدراج معلومات سرية إلى الحفرة (الشكل 1B، مع وضع علامة الحافة الحمراء). لمنع الذباب من الهرب، إدراج تقطيعه 2-20 ميكرولتر ماصة في نفس الافتتاح.
  4. للتعامل مع بأمان متعددة قارورة مستعدة، ووضعها في علبة بلاستيكية مع ترصيع الشبكية (الشكل 2A).

2. إعداد الذباب

  1. إبعاد الذباب على الغذاء القياسية عند 25 درجة مئوية والرطوبة النسبية 60٪ و/ 12 ساعة دورة ضوء الظلام 12 ساعة.
  2. للسيطرة على ظروف التكاثر، وإدخال 35 الإناث البكر لد 15 من الذكور لكل مجموعة التجريبية في قارورة الثقافة البلاستيكية (9.8 سم ارتفاع، 4.8 سم القطر) تحتوي على 50 مل تطير الغذاء. السماح الذباب لتضع بيضها لأول 3 أيام، ثم نقل الكبار الذباب إلى قارورة المواد الغذائية الطازجة والسماح لهم وضع البيض لمدة يومين آخرين. بعد هذا تكرار نقل مرة أخرى. الذباب الكبار نبذ بعد 2 ايام اخرى.
  3. كما تناول الطعام يعتمد على حجم ذبابة، وتحديد الوزن من مجموعة من 100 الذباب من قبل التخدير 2- إلى الكبار من العمر 3 يوما الذباب باستخدام وسادة ذبابة CO 2 وجمع بينهما في أنبوب من البلاستيك 1.5 مل وقياس مع معيار نطاق المختبر. تحديد الوزن الرطب للأربع مجموعات على الأقل ذبابة مستقلة مرتبة حسب الجنس (الجدول 1). استخدام الوزن لحساب ميكرولتر الاستهلاك الغذائي في ذبابة ملغ. استخدام القيمة لتحديد كمية الطعام الذي يغذي ذبابة واحدة في التجربة وضبط عدد من الشعيرات الدموية مليئة المواد الغذائية وفقا لذلك لتجنب تفريغ الشعيرات الدموية عن طريق تغذية.
    1. ل3 ساعات فحص، واستخدام20 الذباب واثنين من الشعيرات الدموية شغلها. لتجربة طويلة الأجل (> 3 ساعات ويصل إلى 9 أيام)، استخدم مجموعة من ثمانية الذباب مع العرض من أربعة الشعيرات الدموية شغل (لا يمكن الحصول على نتائج موثوقة مع أقل من ثمانية الذباب في ظل ظروف وصفها).
  4. الذباب منفصلة إلى مجموعات (8 أو 20 الذباب) بعد قياس الوزن تحت التعرض CO 2. نقل المجموعة إلى قارورة الغذائية الجديدة (التي تحتوي على 15 مل الغذاء القياسية) للسماح للانتعاش من CO 2 التخدير لمدة 48 ساعة قبل التجربة. استخدام الذباب البالغ من العمر 6-اليوم-4- لللمقايسة CAFE.
  5. كما تتغذى الذباب غير المتعطشة النوع البري بشكل هامشي فقط 19 و 21، قبل تجويع الذباب للتجارب التغذية 3 ساعات. لا يلزم الصوم عندما يتم رصد استهلاك الغذاء على مدى عدة أيام. للصيام، ونقل الذباب من 16 إلى 20 ساعة قبل الاختبار عن طريق النقر عليها بلطف إلى قارورة تحتوي فقط على قطر ورقة مطوية مرشح 45 ملم مبلل مع ~ 0.5 مل ده2 O (انقر نقرا مزدوجا الماء المقطر)، وعلى مقربة مع توصيل غطاء CAFE الفحص.

3. إعداد الأغذية السائلة

  1. إعداد 3 M (10٪، ث / ت) حل سهم السكروز عن طريق ملء 102.6 غرام السكروز (C 12 H 22 O 11) إلى 100 مل ده 2 O. ماصة 3 ميكرولتر، 33 ميكرولتر، 333 ميكرولتر و 3.3 مل و 6.6 مل من محلول المخزون إلى أنبوب بلاستيكي 15 مل. إضافة 2 مل من لون الطعام (للأحمر: قرمزي [E124]؛ فعلى الأزرق: نيلي اللون القرمزي [E132]) وملء إلى 10 مل مع DDH 2 O. تركيزات الناتجة 0.001، 0.01، 0.1، 1، و 2 M السكروز .
    ملاحظة: إن صبغة الطعام يسمح تصور الغضروف المفصلي أكثر سهولة. لكن الصبغة قد يكون لها تأثير على تناول الطعام. لتجنب التحيز بسبب الصبغة الاستغناء عن صبغة الطعام أو عشوائية استخدام الأصباغ على عينات من المواد الغذائية خلال التجربة والجماعات.
  2. لاختبار ماصة تفضيل الكحول 333 ميكرولتر من محلول المخزون 3 M السكروز في أنبوب بلاستيكي 15 مل.إضافة 1.5 مل (2.3 مل) من 100٪ ETOH (الإيثانول) وإضافة ده 2 O ما يصل إلى 10 مل أن تسفر عن 15٪ (0.25 ملم) وبنسبة 23٪ (0.39 ملم) حلول العمل.
  3. الحفاظ حلول السهم عند -20 درجة مئوية، وحلول العمل في 4 درجات مئوية. استخدام في غضون أسبوع 1.
  4. تعبئة ما يصل إلى 10 الشعيرات الدموية في نفس الوقت مع حل الغذائية الملونة، بالقوة الشعرية. إدراج نهايات الشعيرات الدموية في محلول السكروز (عقد الشعيرات الدموية في زاوية 45 درجة إلى الحل). تتوقف إذا السائل يصل أعلى (5 ميكرولتر) علامة الشعرية، وإزالة حل الزائد في الخارج والداخل مع المناديل الورقية.

4. الجمعية والمسرحية والشعرية الفحص الطاعم

  1. إذا لم يكن هناك حاجة إلى الصيام، ونقل الذباب التجريبية للفحص عن طريق النقر أو عن طريق ضربة الأنابيب. تأكد من تضمين ثلاث قوارير السيطرة من دون الذباب لقياس التبخر.
  2. إزالة بعناية طرف ماصة (2-20 حجم ميكرولتر) التي تم إغلاق واحد من فتح والخارجيع، وإدراج ملء كوب الشعرية، من أسفل إلى نهاية البداية. تأمين الشعرية عن طريق وضع طرف ماصة الظهر بجانب الشعرية. إذا كان يتم اختبار العديد من الحلول الغذائية، كرر هذا الإجراء وفقا لذلك.
  3. ضع الشعرية ينتهي داخل كل قارورة على نفس المستوى لتجنب التحيز التي يمكن أن تحدث إذا كانت موجودة في مصادر الغذاء على ارتفاعات مختلفة (3-4 سم من غطاء)؛ الحفاظ على مسافة لورقة الترشيح لمنع الشعرية من تسرب عن طريق لمس عن طريق الخطأ ورقة الترشيح أو اللزوجة مختلفة من مصادر الغذاء.
  4. تسمية الطرف العلوي من السائل الملون باستخدام علامة من ركلة جزاء (علامة البداية). لضمان ويمكن تحديد الشعيرات الدموية المختلفة، تسمية منهم على حدة باستخدام لون أو شريط التعليمات البرمجية.
  5. وضع عدة فحوصات CAFE أعدت داخل مربع من البلاستيك مع البطانة الشبكية ونقل مربع (الشكل 2A) إلى وضع آمن تحت ظروف المختبر أو في temperature-، CLIM الخفيف والرطوبة التي تسيطر عليهاأكل غرفة (معلمات: 25 ° C، 60٪ الرطوبة النسبية، 12 ساعة / 12 ساعة دورة ضوء الظلام) للفترة التجريبية (على سبيل المثال 3 ساعات أو أيام).
  6. كما يجف ورق الترشيح أسفل ما إذا كان يتم إجراء فحص على مدى عدة أيام، وتطبيق المياه العذبة كل 24 ساعة عبر كدر الإسفنج (100 ميكرولتر) للحفاظ على ثابت الرطوبة داخل الفحص. استخدام أربع عبوات منفصلة (8 سم ارتفاع، 3.3 سم القطر) مليئة 30 مل ده 2 O كأجهزة الرطوبة ووضعها بجانب فحوصات CAFE في مربع من البلاستيك. استخدام غطاء للصندوق من البلاستيك لخلق الرطوبة بيئة تسيطر عليها أثناء التجربة (الشكل 2A).
    ملاحظة: التباين الكبير يحدث تحت ظروف المختبر. ومع ذلك، فمن الممكن لإجراء فحص CAFE في درجة حرارة الغرفة (على سبيل المثال، في أحد الفصول). استخدام جهاز الترطيب (ورق الترشيح، مع أو من دون كدر اسفنجة رطبة، وشغل قوارير المياه وغطاء للصندوق من البلاستيك) وشجعت غاية لتقليل التبخر ( الشكل 2B).
  7. استبدال الشعيرات الدموية بأخرى مملوءة حديثا للتجارب طويلة المدى كل 24 ساعة. جعل علما من الذباب الميت قبل كل فاصل زمني ح 24 واستخدام عدد من الذباب حية لحساب معدل الاستهلاك الطيران للفترة التالية. تجاهل الشعرية القديمة بعد قياس تدهور الغضروف المفصلي (انظر 5.1).
    ملاحظة: أثناء تجربة 3 ساعات نحن بالكاد نرى أي الذباب الميت. خلال دراسة 4 أيام نجد عادة 1-3 الذباب الميت.
  8. في نهاية الفحص أو قبل استبدال الشعرية، بمناسبة الغضروف المفصلي أقل من الشعرية (علامة النهاية) مع القلم علامة في حين أن الفحص CAFE لا يزال في وضع مستقيم. تجاهل البيانات إذا علامة نهاية ليست تحت علامة الأولية (علامة البداية). لا تقم بإزالة الغطاء، لأن هذا قد يغير الغضروف المفصلي.
  9. بعناية إزالة الشعيرات الدموية من الفحص وتخزينها لجمع البيانات. تحقق مما إذا وصل السائل داخل الشعيرات الدموية في الطرف الأدنى إن لم يكن discarد البيانات، كما كان الطعام ليس في متناول الذباب. جمع كل الشعيرات الدموية في قارورة كمجموعة. إدراج نصائح ماصة تقطيعه إلى جميع الفتحات لمنع الذباب من الهرب. تفكيك الإعداد وغسل قارورة، أغطية وسدادات الإسفنج في حمام الصابون وبين عشية وضحاها جاف في درجة حرارة الغرفة لاستخدامها مرة أخرى.
    ملاحظة: الذباب يمكن تحليلها بعد الفحص. تأكيد امتصاص المواد الغذائية عن طريق العين أو تحت المجهر تشريح.
  10. كرر التجارب مع نفس المورثات على الأقل في ثلاث أيام مختلفة.

5. جمع وتحليل البيانات

  1. قياس المسافة بين علامة بداية ونهاية علامة على شعري باستخدام الفرجار أو مسطرة. لنقل البيانات مباشرة إلى جدول بيانات، واستخدام USB (الناقل التسلسلي العالمي) متصلة الفرجار الرقمية (الشكل 1E). تجاهل الشعيرات الدموية بعد القياس.
  2. حساب حجم الشعرية لحساب امتصاص الغذاء أو التبخر. على سبيل المثال، والنظر في سقفillary التي هي 73 مم طويل ويحتوي على 5 ميكرولتر من محلول الغذاء. انخفاض 14.6 ملم في الغضروف المفصلي يعكس الإقبال على 1 حل ميكرولتر. حساب امتصاص المواد الغذائية التي تستخدم الصيغة التالية:
    امتصاص المواد الغذائية (ميكرولتر) = المسافة قياس (مم) / 14.6 ملم
  3. استبعاد تأثير التبخر في تناول الطعام، وحساب يعني تبخر في قارورة الثلاث لمراقبة (على الأقل) دون الذباب. طرح هذه القيمة المتوسطة من القيمة التي تم الحصول عليها للاستهلاك الغذائي عن طريق الذباب.
  4. استخدام الصيغة التالية لتحديد الاستهلاك الكلي في الطيران:
    استهلاك المواد الغذائية (ميكرولتر) = (الغذاء امتصاص [ميكرولتر] - الخسارة بالبخر [ميكرولتر]) / إجمالي عدد الذباب في القارورة. على المدى الطويل تجارب استخدام عدد من الذباب على قيد الحياة قبل بداية فترة 24 ساعة.
  5. لمراعاة الفروق في حجم الجسم، مثل بين الذكور والإناث الذباب، وتطبيع استهلاك المواد الغذائية إلى وزن الجسم (ميكرولتر الغذاء / ذبابة ملغ).
  6. استخدام البرامج الإحصائية لتحليل البيانات. للقاعدةالبيانات الموزعة حليف، -tests T استخدام الطالب لتحديد الاختلافات بين الجماعات ذبابة اثنين، واستخدام ANOVA (تحليل التباين) مع اللاحق توكي كريمر اختبارات لأكثر من مجموعتين. في حالة الاختيار، تحليل الاختلافات من اختيار عشوائي باستخدام اللامعلمية عينة واحدة علامة الاختبار.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

وتستخدم الذباب من النمط الجيني ث 1118 لشرح كيفية يتم تنفيذ الفحص. وتستخدم المسوخ ث 1118 عادة لتوليد خطوط المعدلة وراثيا وللسيطرة على الخلفية الوراثية الجينات المحورة ملحوظ مع الجين الأبيض. عادة، لإجراء التجارب السلوكية، وbackcrossed جميع خطوط المعدلة وراثيا لمدة خمسة أجيال نفس الرصيد ث 1118، والذي يستخدم كعنصر تحكم التجريبية. وتبين لنا تجارب مختلفة: مقارنة بين الخسارة التبخر من أج...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

ويصف التقرير فحص CAFE بطريقة خطوة بخطوة، مع التركيز على الإعداد التقني والأداء الناجح في المختبر. نظرا لبساطته، ويمكن أيضا أن هذا الاختبار أن تستخدم تربويا كتجربة المدرسة. وتبين الأمثلة التي مقايسة يسمح التحقيق في الاستشعار عن الطعام، وتفضيل والاستهلاك في ذبابة الفاكهة على مدى فترات زمنية قصيرة وطويلة (ساعات إلى أيام). وقد استخدم الفحص CAFE على نطاق واسع في مجال التحقيق في المواضيع بما في ذلك المواد الغذائية واستهلاك المخدرات، والإدمان، توازن الطاقة والسيطرة العصبية التغذ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

نشكر الأعضاء السابقين والحاليين في مختبر شولتز على المناقشة ونشكر هيلغا دورينغ على الدعم الفني الممتاز. نشكر بشكل خاص أعضاء ورشة عمل المركز الحيوي بجامعة كولونيا على دعمهم وإبداعهم. يتم دعم العمل من قبل SFB 1340 و SysMedAlc و DAAD-Siemens.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
قوارير (تربية)قواريرGreiner Bio-One960177www.greinerbioone.com
(فحص CAFE)ورشةفحص Greiner Bio-One217101www.greinerbioone.com
Lid-CAFE––
صندوق بلاستيكي ، غطاء منخفض الجدارPlastime353www.plastime.it
لورشة عمل الصندوق البلاستيكي&ndash ؛–
الشعيرات الدمويةBLAUBRAND المرجع 7087 07www.brand.de
نصائح الماصةGreiner Bio-One771290www.greinerbioone.com
دوائر ورق الترشيحWhatman10 311 804www.sigmaaldrich.com
D (+) -السكروزAppliChem57-50-1www.applichem.com
الإيثانول المطلقVWR Chemicals20،821،330www.vwr.com
لون الطعام (أحمر ، E124)Backfun10027www.backfun.de
لون الطعام (أزرق ، E133) Backfun10030
www.backfun.de محلول الصابون (CVK 8) CVH103220www.cvh.de
الفرجار الرقميGARANT412,616www.hoffmann-group.com
قارورة (تربية) الارتفاع9.8 سم ، القطر 4.8 سم & nbsp ؛
قوارير (فحص CAFE)ارتفاع 8 سم ، قطر 3.3 سم
مقايسةتم إنتاجها في ورشة جامعية ، الرسم الفني المزود
الرجاء النقر هنا لتنزيل هذا الملف.< / a>
صندوق بلاستيكي ، جدارتم تصميم ترصيع الشبكة البلاستيكية خصيصا ل 8 × 10 مواضع قارورة   ؛
غطاء الصندوقالبلاستيكي الأبعاد (37 × 29 × 18 سم)
الشعيرات الدمويةDIN ISO 7550 المعيار,  IVD-guideline 98/79 EG ، نهايات أطراف ماصة
قطع ماصات الدائرة الخارجية وفقا للغطاء
دوائربقطر 45 مم تعمل بشكل جيد إذا تم طيها للقوارير المستخدمة
D (+) -السكروزغير ضار
بالإيثانول المطلقسائل شديد الاشتعال
وبخار لون الطعام (أحمر ، E124)لون الطعام غير مذكور
(أزرق ، E133)محلول صابون غير مذكور
(CVK 8)صابون محايد الرائحة
الفرجار
طعامقياسي (20 لترا)
أجار160 جرام
خميرة299.33 جرام
دقيق1,200 جم
دبسالسكر 1.6 لتر
البروبيونيك57.3 مل
نيباجين 30٪160 مل
Lid-CAFE منخفض مصقولة يتم ورق الترشيح الرقمي ذباب البيرة الذرة حمض

المراجع

  1. Krauth, C., Buser, J., Vogel, K. How high are the costs of eating disorders - anorexia nervosa and bulimia nervosa - for German society. Eur. J. Health Econ. 3 (4), 244-250 (2002).
  2. Cawley, J., Meyerhoefer, C. The medical costs of obesity and instrumental variables approach. J. Health Econ. 31, 219-230 (2012).
  3. PriceWaterhouse Coopers LLP. The costs of eating disorders: Social, health and economic impacts. Assessing the impact of eating disorders across the UK on behalf of BEAT. PwC. , Available from: https://www.beat.co.uk/assets/000/000/302/The_costs_of_eating_disorders_Final_original.pdf (2015).
  4. Lenard, N. R., Berthoud, H. R. Central and peripheral regulation of food intake and physical activity: pathways and genes. Obesity. 16, S11-S22 (2008).
  5. Magni, P., et al. Feeding behavior in mammals including humans. Trends in Comp. Endocrinology and Neurobiology. 1163, 221-232 (2009).
  6. Morton, G. J., Meek, T. H., Schwartz, M. W. Neurobiology of food intake in health and disease. Nature Reviews Neuroscience. 15, 367-378 (2014).
  7. Bharuchka, K. N. The epicurean fly: using Drosophila melanogaster to study metabolism. Pediatr. Res. 65 (2), 132-137 (2009).
  8. Smith, W. W., Thomas, J., Liu, J., Li, T., Moran, T. H. From fat fruit fly to human obesity. Physiol. Behav. 136, 15-21 (2014).
  9. Rajan, A., Perrimon, N. Of flies and men: insights on organismal metabolism from fruit flies. BMC Biology. 11, (2013).
  10. Ja, W. W., et al. Prandiology of Drosophila and the CAFE assay. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104 (20), 8253-8256 (2007).
  11. Dethier, V. G. The Hungry Fly: A Physiological Study of the Behavior Associated with Feeding. , Harvard Univ Press. Cambridge, MA. (1976).
  12. Albin, S. D., Kaun, K. R., Knapp, J., Chung, P., Heberlein, U., Simpson, J. H. A subset of serotonergic neurons evokes hunger in adult Drosophila. Curr. Biol. 25, 2435-2440 (2015).
  13. Deshpande, S. A., et al. Quantifying Drosophila food intake: comparative analysis of current methodology. Nat. Methods. 11 (5), 535-540 (2014).
  14. Geer, B. W., Olander, R. M., Sharp, P. L. Quantification of dietary choline utilization in adult Drosophila melanogaster by radioisotope methods. J. Insect Physiol. 16, 33-43 (1970).
  15. Thompson, E. D., Reeder, B. A., Bruce, R. D. Characterization of a method for quantitating food consumption for mutation assays in Drosophila. Environ. Mol. Mutagen. 18, 14-21 (1991).
  16. Wong, R., Piper, M. D., Wertheim, B., Partridge, L. Quantification of food intake in Drosophila. PLoS One. 4 (6), e6063(2009).
  17. Scheiner, R., Steinbach, A., Classen, G., Strudthoff, N., Scholz, H. Octopamine indirectly affects proboscis extension response habituation in Drosophila melanogaster by controlling sucrose responsiveness. J. Insect Physiol. 69, 107-117 (2014).
  18. Liu, Y., Luo, J., Carlsson, M. K., Nässel, D. R. Serotonin and insulin-like peptides modulate leucokinin-producing neurons that affect feeding and water homeostasis in Drosophila. J. Comp. Neurol. 523, 1840-1863 (2015).
  19. Ro, J., Harvanek, Z. M., Pletcher, S. D. FLIC: high-throughput, continuous analysis of feeding behaviors in Drosophila. PLoS One. 9 (6), e101107(2014).
  20. Itskov, P. M. Automated monitoring and quantitative analysis of feeding behavior in Drosophila. Nat. Commun. 5, 4560(2014).
  21. Qi, W., Yang, Z., Lin, Z., Park, J. Y., Suh, G. S. B., Wang, L. A quantitative feeding assay in adult Drosophila reveals rapid modulation of food ingestion by its nutritional value. Mol. Brain. 8, 87(2015).
  22. Marx, V. Metabolism: feeding fruit flies. Nat. Methods. 12 (7), 609-612 (2015).
  23. Spieth, H. T. Courtship behavior in Drosophila. Annu. Rev. Entomol. 19, 385-405 (1974).
  24. Devineni, A. V., Heberlein, U. Preferential ethanol consumption in Drosophila models features of addiction. Curr. Biol. 19 (24), 2126-2132 (2009).
  25. Lee, K. P., et al. Lifespan and reproduction in Drosophila: New insights from nutritional geometry. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105 (7), 2498-2503 (2008).
  26. Pohl, J. B., et al. Ethanol preference in Drosophila melanogaster is driven by its caloric value. Alcohol Clin. Exp. Res. 36 (11), 1903-1912 (2012).
  27. Vargas, M. A., Luo, N., Yamaguchi, A., Kapahi, P. A role for S6 kinase and serotonin in postmating dietary switch and balance of nutrients in D. melanogaster. Curr. Biol. 20 (11), 1006-1011 (2010).
  28. Masek, P., Scott, K. Limited taste discrimination in Drosophila. Proc. Natl. Acad. Sci. 107 (33), 14833-14838 (2010).
  29. Pool, A. H., Scott, K. Feeding regulation in Drosophila. Curr. Opin. Neurobiol. 29, 57-63 (2014).
  30. Luo, J. N., Lushchak, O. V., Goergen, P., Williams, M. J., Nässel, D. R. Drosophila insulin-producing cells are differentially modulated by serotonin and octopamine receptors and affect social behavior. Plos One. 9 (6), e99732(2014).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

قياس تناول الغذاءاستهلاك الغذاء السائلطريقة الأنبوب الشعري الزجاجيبيئة محكومة الرطوبةمقايسة محلول السكروزاختبار تفضيل الإيثانولمقارنة بين الذكور والإناثتجربة طويلة الأمد