RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ar
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
هنا، نقدم بروتوكول لتسجيل الإيقاعي ثيتا شبكة العصبية وتذبذبات غاما من إعداد الحصين كله معزولة. نحن تصف الخطوات التجريبية من استخراج الحصين إلى تفاصيل الميدان، وحدوية وكل خلية التصحيح المشبك التسجيلات فضلا عن سرعة أوبتوجينيتيك من إيقاع ثيتا.
هذا البروتوكول يحدد إجراءات لإعداد وتسجيل من الحصين كله معزولة، من وت والفئران المعدلة وراثيا، جنبا إلى جنب مع التحسينات الأخيرة في المنهجيات والتطبيقات لدراسة التذبذبات ثيتا. يتم عرض توصيف بسيط لإعداد الحصين معزولة حيث يتم فحص العلاقة بين مؤشرات التذبذب الحصين ثيتا الداخلية جنبا إلى جنب مع نشاط الخلايا الهرمية، و غابايرجيك إنترنيورونس، من كورنو أمونيس -1 (CA1) والمناطق الفرعية (سوب) المناطق. عموما، وتبين لنا أن الحصين معزولة قادر على توليد التذبذبات ثيتا الجوهرية في المختبر ، وأن الإيقاع ولدت داخل الحصين يمكن التلاعب بها بدقة من قبل التحفيز أوبتوجينيتيك من البارفالبومين إيجابية (بف) إنترنيورونس. في المختبر معزولة إعداد الحصين يوفر فرصة فريدة لاستخدام في وقت واحد والتسجيلات داخل المشبك بين الخلايا من المشاهد بصريا تحديدها نيورونس لفهم أفضل للآليات الكامنة وراء جيل إيقاع ثيتا.
هيبوكامبال ثيتا التذبذبات (4-12 هرتز) هي من بين الأشكال الأكثر سائدة من النشاط الإيقاعي في الدماغ الثدييات ويعتقد أن تلعب أدوارا رئيسية في الوظائف المعرفية مثل معالجة المعلومات المكانية الزمانية وتشكيل ذكريات عرضية 1 ، 2 ، 3 . في حين أن العديد من الدراسات في الجسم الحي التي تسلط الضوء على العلاقة بين خلايا المكان ثيتا التضمين مع الملاحة المكانية والدراسات الآفة، وكذلك الأدلة السريرية، ودعم الرأي القائل بأن التذبذبات الحصين ثيتا تشارك في تشكيل الذاكرة 4 ، 5 ، 6 ، والآليات المرتبطة مع جيل من التذبذبات ثيتو الحصين لا تزال غير مفهومة تماما. في وقت مبكر من التحقيقات في الجسم الحي تشير إلى أن النشاط ثيتا تعتمد أساسا على مؤشرات التذبذب الخارجية، ولا سيما الإدخال الإيقاعيمن هياكل الدماغ وارد مثل الحاجز والقشرة المخية 7 ، 8 ، 9 ، 10 . تم أيضا افتراض دور العوامل الجوهرية - الربط الداخلي للشبكات العصبية قرن آمون مع خصائص الخلايا العصبية قرن آمون - استنادا إلى الملاحظات في المختبر 11 ، 12 ، 13 ، 14 ، 15 ، 16 ، 17 ، 18 . ومع ذلك، وبصرف النظر عن عدد قليل من الدراسات التاريخية 19 ، 20 ، 21 ، والصعوبات في تطوير النهج التي يمكن أن تكرر الأنشطة السكانية واقعية من الناحية الفسيولوجية في بسيطة في إعداد شريحة المختبرق، لفترة طويلة، تأخر الفحص التجريبي أكثر تفصيلا للقدرات الجوهرية للحصين والمناطق ذات الصلة لتوليد الذات التذبذبات ثيتا.
ومن الجوانب السلبية الهامة للمعيار في المختبر التجريبي شريحة رقيقة التجريبية هو أن التنظيم الخلوي 3D ومشبك من هياكل الدماغ وعادة ما يتعرض للخطر. وهذا يعني أنه لا يمكن دعم العديد من أشكال أنشطة الشبكات المتضافرة على أساس تجمعات الخلايا الموزعة مكانيا، والتي تتراوح بين المجموعات المحلية (نصف قطرها ≤1 ملم) لسكان الخلايا العصبية المنتشرة عبر واحد أو أكثر من مناطق المخ (> 1 مم). وبالنظر إلى هذه الاعتبارات، هناك حاجة إلى نوع مختلف من النهج لدراسة كيفية ظهور التذبذبات ثيتا في الحصين ونشرها إلى هياكل الانتاج القشرية والقشرية تحت القشرية ذات الصلة.
في السنوات الأخيرة، والتطور الأولي لل "كامل سيبتو الحصين" إعداد لدراسة إنتيرا ثنائي الاتجاهكتابات من اثنين من الهياكل 22 ، والتطور الذي أعقب ذلك من "الحصين معزولة" إعداد، كشفت أن تذبذبات ثيتا الجوهرية تحدث بشكل عفوي في الحصين تفتقر إلى المدخلات الإيقاعية الخارجية 23 . وتكمن قيمة هذه النهج في الرؤية الأولية التي مفادها أن الهيكل الوظيفي الكامل لهذه المناطق كان لا بد من الحفاظ عليه لكي يعمل كمولد إيقاع ثيتا في المختبر 22 .
وقد تم تنفيذ جميع الإجراءات وفقا للبروتوكولات والمبادئ التوجيهية التي وافقت عليها لجنة رعاية الحيوان جامعة ماكجيل والمجلس الكندي لرعاية الحيوان.
1. الحصين الحاد في إعداد المختبر
ملاحظة: عزل إعداد الحصين سليمة ينطوي على ثلاث خطوات رئيسية: (1) إعداد الحلول والمعدات، (2) تشريح الحصين و (3) إعداد نظام معدل نضح سريع اللازمة لتوليد التذبذبات ثيتا جوهرية. في هذا البروتوكول، والأداء في الوقت المناسب من الإجراءات - من تشريح لتسجيل - أهمية خاصة لأن الحصين معزولة يشكل مثل كثيفة، ولكن حساسة، وإعداد أن الحفاظ على الاتصال الوظيفي للهيكل في المختبر يتطلب عناية كبيرة. إعداد كل شيء مسبقا يضمن أن مستوى كاف من نضح متاح في أقرب وقت ممكن للحد من الخلية دأميج والحفاظ على وظيفة فسيولوجية.
2. كله الحصين تشريح
ملاحظة: طريقة لتشريح الحصين معزولة متطابقة أساسا إلى واحد وضعت ووصف في الأصل 22 ، ولكن مع تفاصيل إضافية والتغيرات المتعلقة بيمعدل رفوس وتقنيات التسجيل.
3. إعداد الإرواء السريع لتسجيل الحصين معزولة
4. الفيزيولوجيا الكهربية في الحصين معزولة
يوضح هذا القسم أمثلة من النتائج التي يمكن الحصول عليها من خلال دراسة ثيتا التذبذبات في الماوس معزولة إعداد الحصين في المختبر . ويوضح الإجراء تشريح لاستخراج الحصين معزولة في الشكل 1 . باستخدام هذا التحضير، يمكن فحص التذبذبات ثيتا جوهري خلال وضع أقطاب الحقل متعددة، وتسجيل النشاط العام ومدخلات متشابك متزامنة للسكان العصبية في مناطق مختلفة وطبقات الحصين معزولة ( الشكل 2 ). يتم عرض النتائج ممثل من في وقت واحد خلية كاملة المشبك التصحيح والتسجيلات خارج الخلية لتوصيف خصائص اطلاق النار و متشابك أنواع الخلايا محددة خلال التذبذبات الحصين ثيتا عفوية ( الشكل 3 )، وكذلك خلال التلاعب أوبتوجينيتيك من النشاط الإيقاعي (g "> الشكل 4).

الشكل 1: إجراء تشريح لتحرير معزولة سليمة الحصين.
( أ ) نظرة عامة على الإعداد تشريح. أعلى اليمين: كاربوجيناتد الجليد الباردة حل محلول السكروز (1)؛ أسفل اليسار: علبة بلاستيكية مليئة الجليد (2) عقد طبق تشريح مغطاة ورقة العدسة (3)؛ غرفة عقد الباردة تحتوي على محلول السكروز (4)؛ ومجموعة من الأدوات الجراحية (5). ( ب ) عرض الدماغ الماوس قبل هيميسكتيون على طبق تشريح. ( ج ) استعادة الدماغ هيميسكتد في غرفة عقد الباردة وعرض التكبير (أقحم) من نصف الكرة الدماغية اليسرى قبل إدراج نهاية صغيرة من ملعقة المغلفة تحت الحاجز. ( د ) ملعقة المغلفة وضعت تحت الحصين معزولة، على طول منطقة CA1 / سوب، مع الدماغ المتبقيةيتم سحب الأنسجة من أسفل. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: تكوين الإعداد للتسجيل في المختبر ثيتا التذبذبات من إعداد الحصين سليمة في غرفة تسجيل المغمورة.
( أ ) يظهر الحصين معزولة مع تخطيط مناطق قرن آمون وأقطاب متعددة وضعت في أربعة مواقع تسجيل مختلفة وزعت سيبوتيمبورالي (المشار إليها من قبل النجمة البيضاء). في رأي منصة غرفة التسجيل هو مبين أعلاه (أقحم ط)، يشار إلى مدخل ومخرج لتدفق سريع نضح بالأرقام (1، 2). في الصورة الموسع للحصين هو مبين أدناه (إنزيت إي)، يتم وضع قطب واحد في منتصف سيبوتيمبورال CA1 والألياف من ألفيوس مرئية بسهولة، تشغيل قطريا نحو المنهاج. S: الحاجز، T: الزماني، و / فكس: فيمبريا-فورنيكس. ( ب ) التمثيل التخطيطي لتنظيم طبقات CA1 مع آثار تمثيلية لفب سجلت في وقت واحد من الطبقة أوريينز (الرمادي) وطبقة مشع (أسود). لاحظ المرحلة مقلوب من الإشارات بين الطبقتين. ألف: الطبقة ألفيوس، بيأر: الطبقة بيراميدال، سر: الطبقة راديتوم. سلم: طبقة لاكونوسوم مولكولار. ( ج ) مثال لتتبع لفب يظهر تذبذب ثيتا عفوية مسجل من منطقة CA1 / سوب (مقطع 20 ثانية) وشريحتين موسعتين (أدناه) من إشارة لم تتم تصفيتها؛ باند-باس المصفاة للترددات ثيتا (0.5 - 12 هرتز)؛ غاما بطيئة (25 - 55 هرتز)؛ و غاما بسرعة (125 - 250 هرتز). الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
er.within الصفحات = "1"> 
الشكل 3: خلية من نوع نشاط محدد من الخلايا الهرمية و بف إنترنيورون خلال التذبذبات ثيتا عفوية في إعداد الحصين سليمة من بف-توم الماوس.
( أ ) نشاط متشابك سجلت من خلية هرمية خلال ثيتا التذبذبات. آثار الحالي المشبك (اللوحة اليسرى) تظهر عفوية ولكن لا اطلاق النار الإيقاعي في بقية، وإمكانات ما بعد المشبك المثبطة (إيبس) التي لم تكن متزامنة بشكل واضح مع التذبذب لفب ببطء الناشئة. تسجيلات الجهد المشبك (اللوحة اليمنى) تبين أن التيارات المشبكية بعد المثبطة المقابلة (إيبسس) لديها إمكانية انعكاس حول -70 مف. ( ب ) النشاط المتشابك المسجلة من الفلورسنت الفلورسنت الفلورسنت السريع خلال التذبذبات ثيتا. في المشبك الحالي (يسار)، كانت هذه الخلية تنفجر بشكل تلقائي في بقية، وكان مدفوعة بقوة من قبل إثارة إيقاعي بوإمكانات ستسينابتيك (إبس) التي كانت المرحلة مؤمن مع التذبذب لفب مستقرة. في تسجيلات الجهد المشبك (يمين)، كان احتمال الانتكاس الحالي بوستسينابتيك الحالي حوالي 0 مف. الرسوم التخطيطية على رأس تظهر الإعداد التجريبي جنبا إلى جنب مع وضع الأقطاب التصحيح والميدان في CA1 / سوب وعالية (40X) صور التكبير من الخلايا الهرمية المسجلة الفلورسنت الفلورسنت بف إنترنيورون. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 4: إمكانات المجال المحلي والتسجيلات المشبك التصحيح في وقت واحد من واحد CA1 / سوب الخلايا العصبية الهرمية والخلايا الكهروضوئية خلال عفوية و أوبتوجينيتيكالي يحركها التذبذبات ثيتا في الحصين معزولة.
( أ) ب ) توصيف الخلايا العصبية الهرمية تظهر نموذجية سبايكينغ (رس) خصائص (أعلى) وتكبير عالية (40X) صورة من الخلية المسجلة (أسفل). ( ج ) عينة تسجيل المشبك الحالي للخلية نفسها في احتمال غشاء ديبولاريزد (أسود) جنبا إلى جنب مع إشارة لفب (الرمادي) وتظهر إيبس متزامن إيقاع أثناء التذبذب التلقائي (يسار) وأثناء ثيتا تردد (6 هرتز) التحفيز الضوء ( حق). يتم تصوير نمط التحفيز الضوئي (التظليل الأزرق) على أعلى آثار الجهد. ( د ) الطيفية وأطياف السلطة من الموجي لفب قبل وأثناء وبعد 6 هرتز محاكاة الضوء (خط الأساس، والحفز، آخر). ( ه ) التكبير المنخفض مشرق الميدان وصور مضان من عزلةإعداد الحصين تظهر مضان إيف (باللون الأخضر) المترجمة في منطقة CA1 / سوب. ( و ) توصيف الخطوات الحالية التي تبين سلوك سريع التسرب (فس) مسجل بف-توم إنترنيورون (40X مضان الصورة أدناه). ( ز ) تسجيل الغشاء المحتملة تظهر إيبسس كبيرة وإطلاق النار الإيقاعي من الخلايا الكهروضوئية المسجلة متزامنة مع إشارة لفب خلال التذبذب الميداني العفوي (يسار) وخلال التحفيز الضوء (يمين) في 3 هرتز. ( ح ) المتوسطات الحقلية المحولة (فتا) للموجات فوق الصوتية الكهروضوئية على إشارة CA1 / سوب لفب. تم تحويل تصريف الخلايا الكهروضوئية على تجارب متعددة (تركز على قمم لفب) إلى اتفاقية التجارة الحرة من المسامير المسجلة خلال التذبذب التلقائي (خط الأساس) وخلال التحفيز الضوء (التحفيز). الرسوم البيانية المتوسطة والسفلى تظهر المؤامرات النقطية من المسامير وارتفاع الرسم البياني الاحتمالات (يظهر احتمال متوسط باللون الأحمر). الرسوم البيانية العليا تظهر المؤامرات من متوسط إشارة لفب التي زادت في السلطة خلال ليغهت التحفيز بالتوازي مع إطلاق متزامن للغاية من الخلايا الكهروضوئية مرحلة مقفلة إلى ذروة التذبذب لفب. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
| سوكروز سولوتيون (1X) ل هيبوكامبوس المعزولة | |||
| (حل الأسهم) | |||
| مركب | MW | كونك النهائي. (ملم) | المبلغ 1 لتر (ز) |
| سكر القصب | 342.3 | 252 | 86.26 جم |
| ناهكو 3 | 84.01 | 24 | 2.020 جم |
| جلوكوز | 180.2 | 10 | |
| بوكل | 74.55 | 3 | 0.223 جم |
| مغسو 4 | 120.4 | 2 | 0.241 جم |
| ناه 2 بو 4 | 120 | 1.25 | 0.150 جم |
| كاكل 2 .2H2O [1 M] الأسهم | 147 | 1.2 | 120 ميكرولتر / 0.1 لتر * |
| * إضافة 360 ميكرولتر كاكل 2 [1 M] ل 0.3 L محلول السكروز المؤكسج | |||
| الرقم الهيدروجيني = 7.4 عندما أكسجين، أوسم 310 - 320 |
الجدول 1.
| معيار أسف سولوتيون (5X) ل بيرفوسيون | |||
| (حل الأسهم) | |||
| مركب | MW | كونك النهائي. (ملم) | مبلغ 2 لتر 5X |
| كلوريد الصوديوم | 58.44 | 126 | 73.6 |
| ناهكو 3 | 84.01 | 24 | 20.2 |
| جلوكوز | 180.2 | 10 | 18 |
| بوكل | 74.55 | ♦ 4.5 | 3.355 |
| مغسو 4 | 120.4 | 2 | 2.41 |
| ناه 2 بو 4 | 120 | 1.25 | 1.5 |
| أسكوربات | 176.1 | 0.4 | 0.705 |
| كاكل 2 .2H2O [1 M] الأسهم | 147 | 2 | 2 مل / لتر * |
| * إضافة 2 مل كاكل 2 [1 م] ل 1 L أسف (1X) حل الأوكسجين | |||
| الرقم الهيدروجيني = 7.4 عندما أكسجين، أوسم 310 - 320 | |||
| ♦ يستخدم قليلا [K + ] س لهذا الحل أسف (مقارنة أسف العادي 2.5 ملي بوكل) لزيادة استثارة شبكات الحصين وتسهيل ظهور التذبذبات ثيتا. |
الجدول 2.
لا يعلن المؤلفون أي مصالح تجارية أو مالية متنافسة.
هنا، نقدم بروتوكول لتسجيل الإيقاعي ثيتا شبكة العصبية وتذبذبات غاما من إعداد الحصين كله معزولة. نحن تصف الخطوات التجريبية من استخراج الحصين إلى تفاصيل الميدان، وحدوية وكل خلية التصحيح المشبك التسجيلات فضلا عن سرعة أوبتوجينيتيك من إيقاع ثيتا.
وقد دعم هذا العمل المعاهد الكندية للبحوث الصحية والعلوم الطبيعية.
| <قوي > كواشف < / قوي > | |||
| كلوريد الصوديوم | سيجما ألدريتش | S9625 | |
| السكروز | سيجما ألدريتش | S9378 | |
| بيكربونات الصوديوم | سيجما ألدريتش | S5761 | |
| NaH 2< / sub>PO4< / sub> - فوسفات الصوديوم أحادي القاعدة | Sigma Aldrich | S8282 | |
| كبريتات المغنيسيوم | سيجما ألدريتش | M7506 | |
| كلوريد البوتاسيوم | سيجما ألدريتش | P3911 | |
| D- (+) - الجلوكوز | سيجما ألدريتش | G7528 | |
| كلوريد الكالسيوم ثنائي هيدرات | سيجما ألدريتش | C5080 | |
| أسكوربات الصوديوم | سيجما ألدريتش | A7631-25G | |
| <قوي>الاسم< قوي> | <قوي>الشركة | رقم الكتالوج | تعليقات |
| Equipment | |||
| قياسي مقص | تشريحفيشر Scientific | 08-951-25 | استخراج الدماغ |
| مقبض مشرط # 4 ، 14 سم | WPI | 500237 | مرشحاستخراج الدماغ |
| ملقط ، فكوك مسطحة ، مستقيم (11 سم) | WPI | 500456 | استخراج الدماغ |
| شفرات مشرط من الفولاذ المقاوم للصدأ # 20 | Ultident | 02-90010-20 | استخراج الدماغ |
| مقص تشريح منحني بنقطة | دقيقة Thermo Fisher Scientific | 711999 | استخراج الدماغ |
| التفلون (PTFE) - ملعقة رقيقة مطلية | VWR | 82027-534 | تحضير |
| الحصينهايمان ستايل ميكروملعقة | فيشر العلمية | 21-401-25A | تحضير الحصين |
| ملعقة مختبر | فيشر العلمية | 14-375-20 | تحضير الحصين |
| زجاج البورسليكات باستور بيبيتس | فيشر العلمي | 13-678-20A | تحضير الحصين |
| قطارة | فيشر إعداد الحصين العلمي | ||
| شفرات الحلاقة ذات حواف واحدة | VWR | 55411-055 | تحضير الحصين |
| ورق عدسة (4 × 6 بوصات) | VWR | 52846-001 | تحضير الحصين |
| أطباق بتري زجاجية (100 × 20 مم) | VWR | 25354-080 | تحضير الحصين |
| صينية بلاستيكية للثلج ؛ مقاس 30 × 20 × 5 سم | تحضير الحصين | ||
| محلول واحد مضمن سخان | وارنر إنسترومنتس | نظام التروية SH-27B | |
| أحجار هواء حوض السمك لنظام التروية الفقاعي | NANAna.Na.Rus | ||
| أنابيب Tygon E-3603 (المعرف 1/16 OD 1/8) | نظامالتروية | Fisherbrand | 14-171-129 |
| كهربائية | سوداء & نظام التروية Decker | n.a.perhoe | |
| 95٪ O2< / sub> / 5٪ CO2< / sub> خليط الغاز (الكربوجين)   ؛ | نظام التروية | SG466204A | Vitalaire |
| زجاجات زجاجية / قوارير (4 × 1 لتر) | نظام التروية NANA | ||
| مخصص لغرفة التسجيل المغمورة | (FM) | n.a.يمكن | استخدام البديل التجاري |
| الماصات الزجاجية (1.5 / 0.84 OD / ID (مم)) WPI | 1B150F-4 | الفيزيولوجيا الكهربية | |
| Hum Bug 50/60 هرتز مزيل الضوضاء | Quest Scientific | Q-Humbug | الفيزيولوجيا الكهربية |
| Multiclamp 700B مضخم التصحيح المشبك | الأجهزة الجزيئية | الفيزيولوجيا الكهربية | |
| Multiclamp 700B برنامج قائد | الأجهزة الجزيئية | الفيزيولوجيا الكهربية | متعددة المشابك |
| المحول الرقمي / التناظري | الأجهزة الجزيئية | DDI440 | الفيزيولوجيا الكهربية |
| PCLAMP10 | الأجهزة | الجزيئيةPCLAMP10 | الفيزيولوجيا الكهربية |
| جدول عزل الاهتزاز | نيوبورت | n.a.الفيزيولوجيا الكهربية | |
| Micromanipulators (تعمل يدويا) | Siskiyou | MX130 | الفيزيولوجيا الكهربية (LFP) |
| المعالجات الدقيقة (الآلية) | Siskiyou | MC1000e | الفيزيولوجيا الكهربية (رقعة)مراقب |
| الصوت | أنظمة AM | موديل 3300 | الفيزيولوجيا الكهربية |
| مجتذب الماصة الدقيقة / التصحيح مجتذب الماصة | Sutter | P-97 | الفيزيولوجيا الكهربية |
| مجهر مضان مستقيم مصمم خصيصا | Siskiyou | n.a.Imaging | |
| كاميرا فيديو تناظرية | COHU | 4912-2000/0000 | تصوير |
| ملتقط الإطار الرقمي مع برنامج التصوير | EPIX، Inc | PIXCI-SV7 | تصوير |
| أوليمبوس 2.5X الموضوعي | أوليمبوس | MPLFLN | التصوير |
| أوليمبوس 40X الغمر في الماء الهدف | أوليمبوس | UIS2 LUMPLFLN | التصوير |
| المخصص الصمام الثنائي الباعث للضوء (LED) نظام | التحفيز البصري الوراثي المخصص (Amhilon et al. ، 2015) | ||
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animals | |||
| PV::Cre (KI) الفئران | رقم مخزون مختبر جاكسون | 008069 | السماح التعبير الجيني الموجه ب Cre في الخلايا العصبية الداخلية الكهروضوئية |
| الفئران التأسيسية الشرطية Ai9 (R26-lox-stop-lox-tdTomato (KI)) رقم | مخزونمختبر جاكسون | 007905 | Express TdTomato بعد إعادة التركيب بوساطة |
| Cre Ai32 الفئران (R26-lox-stop-lox-ChR2 (H134R) -EYFP | مخزونمختبر جاكسون | رقم 012569 | عبر عن بروتين اندماج القناة المحسن رودوبسين -2 / EYFP بعد التعرض ل Cre إعادة تركيب |
| الفئران PVChY | في التربية المنزلية | n.a.النسل | الذي تم الحصول عليه من تهجين خط PV-Cre مع الفئران Ai32 (R26-lox-stop-lox-ChR2 (H134R) -EYFP |