مقالة منهجية

دوبلر الليزر: أداة لقياس البنكرياس جزيرة فاسوموشن ميكروفاسكولار في فيفو

7.7K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/56028

⸱

مارس 8, 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Microcirculation, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College

في هذه المقالة

ملخص

ينظم توزيع الدم في جزيرة ايميا البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموتيون ويحافظ وظيفة فسيولوجية الخلايا β جزيرة ليلى. ويصف هذا البروتوكول باستخدام جهاز دوبلر ليزر لتحديد الحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس فاسوموشن ميكروفاسكولار في فيفو وتقييم المساهمات المقدمة من جزيرة ليلى البنكرياس دوران الأوعية الدقيقة لأمراض البنكرياس.

الملخص

كحالة وظيفية لدوران الأوعية الدقيقة، فاسوموشن ميكروفاسكولار مهم لإيصال الأوكسجين والمواد المغذية، وإزالة ثاني أكسيد الكربون والفضلات. الانتقاص فاسوموشن ميكروفاسكولار قد يكون خطوة حاسمة في تطور الأمراض المتصلة بدوران الأوعية الدقيقة. وباﻹضافة إلى ذلك، جزيرة البنكرياس vascularized العالية تكييف لدعم وظيفة الغدد الصماء. وفي هذا الصدد، يبدو من الممكن أن نستنتج أن الحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن قد يؤثر على وظيفة البنكرياس جزيرة ليلى. تحليل التغيرات المرضية للحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن قد تكون استراتيجية ممكنة لتحديد المساهمات يجعل ذلك البنكرياس جزيرة دوران الأوعية الدقيقة للأمراض ذات الصلة، مثل السكري، التهاب البنكرياس، إلخ. ولذلك، يصف هذا البروتوكول باستخدام جهاز تدفق دم دوبلر ليزر لتحديد الحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموتيون، ووضع بارامترات (بما في ذلك نضح الدم متوسط والسعة والتردد والنسبية السرعة من جزيرة ليلى البنكرياس فاسوموشن microvascular) لتقييم الحالة الوظيفية microcirculatory. في طراز ماوس السكري الناجم عن بالستريبتوزوتوسين، لاحظنا حالة وظيفية البصر من جزيرة ليلى البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن. وفي الختام، قد تكشف عن هذا النهج لتقييم البنكرياس جزيرة فاسوموشن ميكروفاسكولار في فيفو الآليات المتعلقة بأمراض البنكرياس جزيرة ليلى.

المقدمة

كمعلمة للحالة الوظيفية لدوران الأوعية الدقيقة، فاسوموشن ميكروفاسكولار يأخذ المسؤولية عن تسليم وتبادل الأوكسجين والمواد الغذائية، والهرمونات، وأمر حاسم لإزالة منتجات الأيض، مثل ثاني أكسيد الكربون والنفايات الخلية 1-فاسوموشن ميكروفاسكولار وأيضا ينظم توزيع تدفق الدم ونضح الأنسجة، مما يؤثر على ضغط الدم microcirculatory المحلية والاستجابات للالتهاب، التي يمكن أن تحدث وذمة في العديد من الأمراض. ولذلك، فاسوموشن ميكروفاسكولار بالغة الأهمية للحفاظ على الوظيفة الفسيولوجية للأجهزة2،،من34والأنسجة والخلايا المكونة. الانتقاص فاسوموشن ميكروفاسكولار قد تكون إحدى الخطوات الرئيسية في تطوير الأمراض المتصلة بدوران الأوعية الدقيقة5.

ووضعت في البداية دوبلر الليزر للمراقبة والقياس الكمي في المجال البحوث دوران الأوعية الدقيقة6. وقد اعتبر هذا الأسلوب، جنبا إلى جنب مع غيرها من النهج التقني (مثلاً، ليزر البقع واللطخ7، transcutaneous الأكسجين، إلخ)، كالمعيار الذهبي لتقييم تدفق الدم في دوران الأوعية الدقيقة. المنطقي أن التروية الدموية لدوران الأوعية الدقيقة المحلية (أي، الشعيرات الدموية، الشرايين، الأوردة، إلخ) يمكن تحديد بواسطة أجهزة مزودة بالليزر دوبلر، يستند إلى مبدأ التحول دوبلر. تغيير الطول الموجي والتردد لحفز انبعاث الضوء عندما تواجه الجسيمات الخفيفة تتحرك خلايا الدم في ميكروفيسيلس، أو أنها لم تتغير. ولذلك، في دوران الأوعية الدقيقة، العدد وسرعة خلايا الدم هي من العوامل الرئيسية المتعلقة بحجم وتوزيع التردد على ضوء تحول دوبلر، بينما اتجاه تدفق الدم microvascular غير ذي صلة. باستخدام أساليب مختلفة، استخدمت مجموعة متنوعة من الأنسجة للدراسات ميكروسيركولاتوري، بما في ذلك ميسينتيريس والظهريه الدوائر skinfold من الفئران، الجرذان، قداد، وحتى البشر8. ومع ذلك، في البروتوكول الحالي، علينا أن نركز على الفنية وضع جزيرة ليلى البنكرياس فاسوموشن ميكروفاسكولار، التي يتم تقييمها باستخدام الليزر دوبلر ونظام معلمة تقييم محلية صنع.

تتكون أساسا من ميكروفيسيلس البنكرياس جزيرة ايميا البنكرياس دوران الأوعية الدقيقة ومعارض السمات المميزة. شبكة شعرية جزيرة البنكرياس تظهر بكثافة أعلى خمس مرات من شبكة الشعيرات الدموية بنظيره إفرازات9. توفير قناة لإيصال الجلوكوز إدخال ونشر الأنسولين، تسليم جزيرة خلايا بطانية الأوكسجين إلى الخلايا أيضي نشطة في جزيرة ليلى خلايا بيتا. وعلاوة على ذلك، تبرز الأدلة يوضح أيضا أن جزيرة ليلى ميكروفيسيلس تشارك في تنظيم التعبير الجيني الأنسولين وبقاء خلايا بيتا، بل أيضا في التأثير على وظيفة خلايا بيتا؛ تعزيز انتشار الخلايا β؛ وإنتاج عدد من فعال في الأوعية، المواد وعوامل نمو الأوعية10. ولذلك، وفي هذا الصدد، نستنتج أن الحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن قد يؤثر على وظيفة خلايا بيتا جزيرة ليلى والحصول على المشاركة في الآلية المرضية لأمراض مثل التهاب البنكرياس الحاد/المزمن، ومرض السكري، وغيرها أمراض البنكرياس.

تحليل التغيرات المرضية للحالة الوظيفية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن قد تكون استراتيجية ممكنة لتحديد مساهمات البنكرياس جزيرة دوران الأوعية الدقيقة لهذه الأمراض المذكورة أعلاه. إجراء خطوة بخطوة مفصلة تصف النهج المتبع في تحديد جزيرة البنكرياس فاسوموشن ميكروفاسكولار في فيفو تقدم هنا. ثم تظهر قياسات نموذجية في نتائج الممثل. أخيرا، الضوء على فوائد وتقييدات للأسلوب في المناقشة، جنبا إلى جنب مع المزيد من التطبيقات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وقد أعدم جميع التجارب على الحيوانات امتثالا لجميع المبادئ التوجيهية ذات الصلة، واللوائح، والوكالات التنظيمية. وأجرى هذا البروتوكول يتم شرحها تحت التوجيه والموافقة عليها للمعهد من دوران الأوعية الدقيقة الحيوان الأخلاقيات اللجنة (إيمايك) في بكين الاتحاد الطبي كلية (غوث).

1-الحيوانات

  1. قبل البدء التجربة، تبقى ثلاث بالب/ج الفئران في قفص، مع درجة الحرارة التي تسيطر عليها (24 ± 1 درجة مئوية) والرطوبة (55 ± 5%)، تحت دائرة الضوء الظلام 12-ح. الفئران السماح بحرية الوصول إلى المياه والأغذية العادية.
  2. تقسيم الفئران عشوائياً إلى مجموعة عناصر تحكم غير السكري ومجموعة السكري. دقة تزن كل الماوس الفردية وحساب حجم الحقن باستخدام كتلة الجسم لكل الماوس.
  3. الفئران ح 4 قبل حقن بالستريبتوزوتوسين (STZ) بسرعة، وتوفير المياه العادية كالمعتاد يوم التجريبية 1.
  4. إعداد المخزن المؤقت سترات الصوديوم 0.1 M في pH 4.3. وضع 1 مل الحل في أنبوب ميكروسينتريفوجي 1.5 مل ولف الأنبوب ميكروسينتريفوجي في رقائق الألومنيوم لتجنب التعرض للضوء.
  5. حل STZ في سترات الصوديوم العازلة (pH 4.3) بتركيز 5 ملغ/مل قبل استخدام عامل نهائي.
  6. إعطاء الفئران للحقن داخل مجموعة السكري من STZ بجرعة من 40 مغ/كغ باستخدام حقنه 1 مل وابرة 25-ز. حقن الفئران لعنصر التحكم غير السكري بنفس الحجم من سترات الصوديوم العازلة (pH 4.3).
  7. إعادة وضع الفئران في أقفاص وتزويدهم بالمواد الغذائية العادية والمياه السكروز 10%.
  8. كرر الخطوات من 1.3-1.7 في أيام التجريبية 2 إلى 5 (أي، على بعد 4 أيام متتالية).
  9. استبدال الماء السكروز 10% مع الماء العادية بعد حقن STZ الماضي.
  10. سريع الفئران ح 6، بل تعطي لهم حرية الوصول إلى المياه، وقياس مستويات جلوكوز الدم بعد تسعة أيام (14 يوم التجريبية). جمع عينة دم من الوريد الذيل للتأكد من ارتفاع السكر في الدم باستخدام نظام مراقبة جلوكوز دم.
    ملاحظة: تعتبر السكري الفئران مع مستويات جلوكوز الدم > 200 ملغ/ديسيلتر.

2-إعداد الصك

  1. تنظيف السطوح البصرية من طرف المسبار وموصل التحقيق جهاز دوبلر الليزر باستخدام قطعة قماش ناعمة، غير الكاشطة لإزالة أي الغبار أو الجسيمات. توصيل الكبل في منفذ الصك (الشكل 1A).
  2. تجميع حامل المعايرة بالسماح التدفق قياسي لتكون في حالة توازن حراري مع محيطة التجريبية (درجة حرارة الغرفة، عادة لمدة 30 دقيقة). اهتز التدفق القياسية برفق ل 10 s واسمحوا الراحة لمدة 2 دقيقة.
  3. ضع حاوية قياسية التمويه في منتصف قاعدة المعايرة. ضبط المشبك إلى أقصى ارتفاع وتأمين التحقيق في المشبك مثل يشير نزولا إلى الحاوية. تأكد من أن يتم وضع معيار الجريان بشكل صحيح تحت التحقيق.
  4. تتحرك ببطء التحقيق إلى أسفل حتى التلميح هو مغمورة بشكل صحيح في مستوى التمويه. حدد واضغط "معايرة" على جهاز دوبلر الليزر واختر قناة العمل التي تتصل التحقيق. قم بتشغيل برنامج المعايرة حتى إشعار "معايرة ناجحة" يتم عرض على شاشة جهاز دوبلر الليزر.
  5. تأمين التحقيق باستخدام مسبار أصحاب. تأمين التحقيق معه لتجنب الحركة يدوياً.
  6. الحفاظ على الغرفة التجريبية في درجة حرارة ثابتة (24 ± 1 درجة مئوية) والرطوبة (~ 50-60 في المائة).
  7. إيقاف تشغيل أي ضوء خارجي (مثل مصابيح الفلورسنت وبقعة) قبل القيام بالتجربة لتجنب التغيرات المستحثة بالضوء الخارجية.

3-إعداد الحيوانات

  1. اﻷوتوكﻻف العمليات الجراحية من الصكوك، والسماح لها لتبرد لدرجة حرارة الغرفة قبل الاستعمال.
  2. إعطاء الفئران 10 دقيقة للتأقلم على البيئة التجريبية قبل الكشف عن جزيرة البنكرياس فاسوموشن microvascular بالليزر دوبلر.
  3. ملء حقنه 1 مل مع 1 مل صوديوم بينتوباربيتال 3%. حقن الحل الصوديوم بينتوباربيتال (القائمة 75 مغ/كغ) لتخدير الفئران.
  4. تغطية عيون الماوس مع الشاش الطبي ترطب مسبقاً لمنع جفاف.
  5. ضمان أن الماوس يفقد وعيه تماما، ولم يعد يستجيب للذيل أو هيندفوت يؤلم بالملقط. رصد التخدير طوال الحدث مخدر والمنطوق داخل كل 15 دقيقة الحفاظ على التخدير باستكمال بنسبة 10% حجم الحقن الأولى بينتوباربيتال الحل عند الضرورة.
  6. ضع وسادة تدفئة بطبقة شبه عازلة أدناه الحيوان ومكان الحيوان في موقف ضعيف وأنه نقل إلى محطة العمل من جهاز دوبلر الليزر. إصلاح الماوس لمنهاج العمل مع الشريط الجراحي.
  7. يتم استخدام مسحه الجلد البطني للماوس مع تدين، ومن ثم الإيثانول 75% لمسحه منطقة البطن نظيفة.
  8. حقن 2% lidocaine/0.5% bupivacaine (50/50) المخلوط تحت الجلد.  قطع سم ~ 3-حفرة قطرها في المركز من الأسفنج الشاش. وتغطي منطقة البطن مع الأسفنج الشاش.
  9. رفع جلد البطن بالملقط وجعل شق عمودي أولية على طول خط الوسط من استخدام مقص مشرط أو الجلد البطن.
  10. فهم العضلات الأساسية مع الملقط وجدا لدخول تجويف البطن. لا تجرح أي الأجهزة. أمثال في الجلد والعضلات الأساسية على الصدر للكشف عن تجويف البطن. بلطف تعرض الجسم البنكرياس والطحال باستخدام زوج من ملقط الآنف بلانت.

4-البيانات اقتناء للتحليل

  1. تشغيل برنامج جهاز دوبلر الليزر بالنقر على "ملف" ← "جديد" لإنشاء ملف جديد في قياس. لتكوين أجهزة متصلة، ضمن علامة التبويب "عام"، إعداد مدة الرصد "تشغيل حرة". استخدام إعدادات المصنع الافتراضية لعلامة التبويب "رصد LDF" انقر فوق "التالي".
  2. قم بإعداد عرض الرسم البياني في "عرض مربع الحوار إعداد." تحديد القنوات "سرعة الجريان، الزيركونيم،" بالتحقق من المربعات الخاصة بكل منها. تحديد المعلمات التالية: "البيانات المصدر للقناة" وأضاف التسمية، والوحدات والألوان. انقر فوق "التالي".
  3. أدخل معلومات المستخدم حول هذا الموضوع والقياس (أي اسم ورقم الموضوع، المشغل، ورصد الوقت، تعليقات، إلخ) في "ملف معلومات مربع الحوار" وانقر فوق "التالي" لإنهاء تكوين القياس.
    ملاحظة: يتم تلقائياً إنشاء نافذة قياس بالبرنامج (الشكل 1B).
  4. تقدم الكهربائي يدوياً إلى البنكرياس. تأكد من أن المسافة بين الأنسجة المسبار والبنكرياس يقع داخل 1 مم. ويعطي على مسافة غير مناسبة قراءة تدفق دم اصطناعياً زيادة أو نقصان.
  5. انقر فوق رمز شريط الأدوات "بدء" لبدء تشغيل تسجيل البيانات وحدات (PU) التروية الدموية ميكروفاسكولار. جمع البيانات بو باستمرار لمدة 1 دقيقة كل تشغيل. انقر فوق "إيقاف" لإيقاف القياس. حدد "ملف" ← "حفظ باسم" إلى اسم وحفظ الملف القياس انتهى.
  6. يدوياً إعادة تحديد موضع التحقيق بعد كل تشغيل لتجنب الآثار المضافة واستنفاد مترجمة من الهوس، وقدرة الاسترخاء. كرر الخطوات من 4.1-4.4 حصاد البيانات بو microvascular متعددة النقاط (أي ثلاث نقاط الذي تم اختياره عشوائياً من أنسجة البنكرياس) لكل الماوس. قياس بيانات بو صفيحة غير العاكسة كعنصر تحكم خط أساس.
  7. إغلاق طبقة العضلات البطن وطبقة الجلد مع خياطة. ضع الحيوانات في أقفاص نظيفة بعد التجارب.
  8. تبقى الحارة الحيوان بوضع القفص الانتعاش في النصف من لوحة التدفئة.
    ملاحظة: الاهتمام بالدفء والنظافة والسوائل وتناول الطعام والإصابة. تول الفئران مع 2 مغ/كغ والايبوبروفين ح 48 كإدارة الألم بعد العمل الجراحي.  تنفيذ القتل الرحيم بالحقن 150 مغ/كغ الصوديوم بينتوباربيتال القائمة عند ملاحظة الفئران لتكون في حالة من الألم الشديد أو المعاناة التي لا يمكن التخفيف من حدة.

5-حساب معلمات فاسوموشن ميكروفاسكولار

  1. استخدام الأمر "تصدير" للبرمجيات دوبلر الليزر للتصدير في الوقت والبيانات الخام بو كملف *.xlsx وفتح الملف في جدول بيانات.
  2. حساب وحدة نضح خط متوسط (بوب) (راجع الخطوة 4، 6).
  3. حساب نضح الدم متوسط (بو) لمدة 1 دقيقة للقياس على النحو التالي: متوسط التروية الدموية (بو) = بو-بوب (معادلة 1).
  4. حساب التردد (دورة/دقيقة) لكل 1 دقيقة للقياس.
    ملاحظة: يتم تعريف تواتر فاسوموشن ميكروفاسكولار كعدد القمم التي حدثت في موجه فاسوموشن ميكروفاسكولار في الدقيقة.
  5. حساب السعة (ΔPU) لكل 1 دقيقة للقياس.
    1. حساب السعة فاسوموشن ميكروفاسكولار كالفرق بين الحد الأقصى (بوكحد أقصى) والحد الأدنى (بودقيقة): السعة (ΔPU) = بوماكس -بودقيقة (المعادلة 2).
  6. حساب السرعة النسبية (PU) لكل 1 دقيقة للقياس.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

ويبين الشكل 1Aصورة فوتوغرافية لليزر قياس فاسوموشن ميكروفاسكولار جهاز دوبلر مجهزة صمام ثنائي ليزر أشباه الموصلات. ويرد في الشكل 1Bالبرنامج واجهة المستخدم. باستخدام الطريقة المذكورة أعلاه، تم الكشف عن المعلمات الفسيولوجية لجزيرة البنكرياس ميكروفاسكولار فاسوموشن لعنصر التحكم غير السكري والسكري في الفئران. مجموعة متنوعة من التقنيات، بما في ذلك ليزر دوبلر flowmetry، تنعكس ومتناثرة مطيافية الأشعة تحت الحمراء، والضوء، والتصوير تقنيات، ق...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وفي الحالات التي تنطوي على خلل microvascular (مثل داء السكري، التهاب البنكرياس الحاد، وأمراض ميكروفاسكولار الطرفية، إلخ)، بعض الأمراض تؤدي إلى تدفق الدم مخفضة. خلاف التغيرات في تدفق الدم، وهناك مؤشرات هامة، مثل فاسوموشن ميكروفاسكولار، التي تعكس الحالة الوظيفية لدوران الأوعية الدقيقة. ويعرف مؤشر معين، فاسوموشن ميكروفاسكولار، عموما بالتذبذب لهجة ميكروفاسكولار في أسرة ميكروفاسكولار. في البروتوكول الحالي، يسمح نضح دم microvascular نظام رصد للتصور المباشر والتحليل الكمي للحالة الوظيفية من فاسوموشن ميكروفاسكو...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

وأيد هذا العمل منح من صندوق اتحاد الشباب الكلية الطبية بكين وأموال البحوث الأساسية للجامعات المركزية (المنحة رقم 3332015200).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
يمكن استخدام MoorVMS-LDF2Moor InstrumentsGI80PeriFlux 5000 (Perimed Inc.) كجهاز بديل لجمع البيانات
MoorVMS-PC SoftwareMoor InstrumentsGI80-1برنامج MoorVMS-LDF2
معايرةMoor InstrumentsGI-calمعايرة
قاعدة المعايرةMoor InstrumentsGI-cal
المعايرة القياسي لتدفقالقمر أدواتGI-calمعايرة
بلمسة واحدة مقياس السكر UltraEasyJohnson and Johnson#1955685تأكيد ارتفاع السكر في الدم
UltraEasy بلمسة واحدة جونسونوجونسون#1297006تأكيد ارتفاع السكر في الدم
StreptozotocinSigma-AldrichS0130تذوب في عازلة سترات الصوديوم (درجة الحموضة 4.3)
بنتوباربيتال الصوديومسيجما ألدريتشP3761تركيز العمل 3٪
الإيثانولسينوفارم ، Inc.200121تركيز العمل 75٪
السكروزأمريسكو335تركيز العمل 10٪
شاش طبيشركة الصين للمواد الصحيةS-7112الأنف الحاد الجراحي
Shang Hai Surgical Instruments Inc.N-551الجراحية الجراحية
3M شركة3664CU
إسفنجة الشاشفو كانغ سين للأجهزة الطبية CO.BB5447مشرط جراحي
يو لين للأدوات الجراحية Inc.175Cمقص الجلد الجراحي
Carent255-17
خياطةNing Bo Surgical Instruments Inc.3325-77جراحية
وإبرة 25 جرامMISAWA Inc.3731-2011مقياس: 1 مل
حامل أداة أداة معايرة مقياس أداة شرائط ملقط الأشرطة الجراحي جراحية حقنة

المراجع

  1. Aalkjaer, C., Nilsson, H. Vasomotion: cellular background for the oscillator and for the synchronization of smooth muscle cells. Br J Pharmacol. 144 (5), 605-616 (2005).
  2. Serne, E. H., de Jongh, R. T., Eringa, E. C., IJzerman, R. G., Stehouwer, C. D. Microvascular dysfunction: a potential pathophysiological role in the metabolic syndrome. Hypertension. 50 (1), 204-211 (2007).
  3. Carmines, P. K. Mechanisms of renal microvascular dysfunction in type 1 diabetes: potential contribution to end organ damage. Curr Vasc Pharmacol. 12 (6), 781-787 (2014).
  4. Holowatz, L. A. Human cutaneous microvascular ageing: potential insights into underlying physiological mechanisms of endothelial function and dysfunction. J Physiol. 586 (14), 3301(2008).
  5. De Boer, M. P., et al. Microvascular dysfunction: a potential mechanism in the pathogenesis of obesity-associated insulin resistance and hypertension. Microcirculation. 19 (1), 5-18 (2012).
  6. Nilsson, G. E., Tenland, T., Oberg, P. A. Evaluation of a laser Doppler flowmeter for measurement of tissue blood flow. IEEE Trans Biomed Eng. 27 (10), 597-604 (1980).
  7. Chen, D., et al. Relationship between the blood perfusion values determined by laser speckle imaging and laser Doppler imaging in normal skin and port wine stains. Photodiagnosis Photodyn Ther. 13 (1), 1-9 (2016).
  8. Fuchs, D., Dupon, P. P., Schaap, L. A., Draijer, R. The association between diabetes and dermal microvascular dysfunction non-invasively assessed by laser Doppler with local thermal hyperemia: a systematic review with meta-analysis. Cardiovasc Diabetol. 16 (1), 11-22 (2017).
  9. Yaginuma, N., Takahashi, T., Saito, K., Kyoguku, M. The microvasculature of the human pancreas and its relation to Langerhans islets and lobules. Pathol Res Pract. 181 (1), 77-84 (1986).
  10. Brissova, M., et al. Islet microenvironment, modulated by vascular endothelial growth factor-A signaling, promotes beta cell regeneration. Cell Metab. 19 (3), 498-511 (2014).
  11. de Moraes, R., Van Bavel, D., Gomes Mde, B., Tibirica, E. Effects of non-supervised low intensity aerobic excise training on the microvascular endothelial function of patients with type 1 diabetes: a non-pharmacological interventional study. BMC Cardiovasc Disord. 16 (1), 23-31 (2016).
  12. Humeau-Heurtier, A., Guerreschi, E., Abraham, P., Mahe, G. Relevance of laser Doppler and laser speckle techniques for assessing vascular function: state of the art and future trends. IEEE Trans Biomed Eng. 60 (3), 659-666 (2013).
  13. Park, H. S., Yun, H. M., Jung, I. M., Lee, T. Role of Laser Doppler for the Evaluation of Pedal Microcirculatory Function in Diabetic Neuropathy Patients. Microcirculation. 23 (1), 44-52 (2016).
  14. Sun, P. C., et al. Microcirculatory vasomotor changes are associated with severity of peripheral neuropathy in patients with type 2 diabetes. Diab Vasc Dis Res. 10 (3), 270-276 (2013).
  15. Pan, Y., et al. Effects of PEMF on microcirculation and angiogenesis in a model of acute hindlimb ischemia in diabetic rats. Bioelectromagnetics. 34 (3), 180-188 (2013).
  16. Jumar, A., et al. Early Signs of End-Organ Damage in Retinal Arterioles in Patients with Type 2 Diabetes Compared to Hypertensive Patients. Microcirculation. 23 (6), 447-455 (2016).
  17. Nguyen, H. T., et al. Retinal blood flow is increased in type 1 diabetes mellitus patients with advanced stages of retinopathy. BMC Endocr Disord. 16 (1), 25-33 (2016).
  18. Forst, T., et al. Retinal Microcirculation in Type 1 Diabetic Patients With and Without Peripheral Sensory Neuropathy. J Diabetes Sci Technol. 8 (2), 356-361 (2014).
  19. Hu, H. F., Hsiu, H., Sung, C. J., Lee, C. H. Combining laser-Doppler flowmetry measurements with spectral analysis to study different microcirculatory effects in human prediabetic and diabetic subjects. Lasers Med Sci. 31 (1), 1-8 (2016).
  20. Klonizakis, M., Manning, G., Lingam, K., Donnelly, R., Yeung, J. M. Effect of diabetes on the cutaneous microcirculation of the feet in patients with intermittent claudication. Clin Hemorheol Microcirc. 61 (3), 439-444 (2015).
  21. Khazraei, H., Shafa, M., Mirkhani, H. Effect of ranolazine on cardiac microcirculation in normal and diabetic rats. Acta Physiol Hung. 101 (3), 301-308 (2014).
  22. Fujita, T., et al. Increased inner ear susceptibility to noise injury in mice with streptozotocin-induced diabetes. Diabetes. 61 (11), 2980-2986 (2012).
  23. Wiernsperger, N., Nivoit, P., De Aguiar, L. G., Bouskela, E. Microcirculation and the metabolic syndrome. Microcirculation. 14 (4-5), 403-438 (2007).
  24. Chawla, L. S., et al. Vascular content, tone, integrity, and haemodynamics for guiding fluid therapy: a conceptual approach. Br J Anaesth. 113 (5), 748-755 (2014).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

STZ

مقالات ذات صلة