$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
وكان الهدف من هذا البروتوكول لوصف عزلة الفئران الابتدائي VICs والثقافة منهم لإجراء تجارب في المختبر تكلس. باستخدام الطريقة الموصوفة أعلاه، يمكن بنجاح معزولة الفئران VICs وتوسيعها لدراسة الآليات المسؤولة عن كافد.
فأر تعريب VICs الابتدائي المشترك مع علامات فيك المنشأة:
أكد النمط الظاهري فيك الخلايا المعزولة من خلال الفلورة التدقيق في علامات فيك: فيمنتين و α-SMA (أحمر، وأخضر، على التوالي، الشكل 1A)، وهو ما يتفق مع التقارير السابقة11،12. عناصر سلبية الممثل باستخدام الماوس غير مترافق وارنب مفتش مبينة في الشكل 1 باء. بالإضافة إلى ذلك، تم تأكيد التعبير عن مركز فيينا الدولي-نمو منظم TGFβ-1 و TGFβ-2 استخدام تحليل PCR (الشكل 1). من أجل تأكيد أن الفئران المعزولة VICs الأولية كانت خالية من التلوث بطانية، أجرى تحليل لطخة غربية للتحقق من أن الفئران كانت VICs السلبية لعلامة الخلية البطانية، CD31، استخدام الكلاب تقدم التاجي كعنصر إيجابي ( الشكل 1).
كاليفورنيا وبي حمل تكلس فيك الفئران:
عادة محرك تركيزات مرتفعة من Ca و/أو Pi الجهازية تكلس VICs في المختبر. لتقدير إمكانات تكلس الفئران المعزولة VICs، تعرض الخلايا لمستويات مرتفعة من Ca و Pi، التي تحاكي ظروف hypercalcemia وهايبرفوسفاتيميا المرضية في المرضى المسببات. علاج VICs مع 2.7 مم Ca/2.5 Pi الناجم عن تكلس، كما يحددها الأليزارين الأحمر S تلطيخ لترسيب Ca (الشكل 2A) وتحديد مستويات Ca عقب HCl النض (81 حظيرة؛ قياس الألوان ف < 0.05 استخدام الطالب t-اختبار؛ الشكل 2).
التغيرات تعبير الجينات المرتبطة تكلس مركز فيينا الدولي:
تكلس في خلايا الأوعية الدموية في المختبر المقترن مع ملف تعريف جزيئية متميزة. في هذه الدراسة، معاملة VICs مع 2.7 مم Ca/2.5 Pi الناجم عن زيادة كبيرة في التعبير مرناً من علامات أوستيوجينيك: مش هوميوبوكس 2، Msx2 (تجليد 2.04 التغيير؛ ف < 0.01؛ الشكل 3 ألف)، الفوسفاتيز القلوية، البل (1.49 إضعاف التغيير؛ ف < 0.001؛ الشكل 3)، وفوسفوثانولاميني/phosphocholine الفوسفاتيز، Phospho1 (4.7 إضعاف التغيير؛ ف < 0.01 استخدام ANOVA في اتجاه واحد؛ الشكل 3). بيد أن التعبير عن علامة أوستيوجينيك، Runx2، وتكلس مثبط اكتونوكليوتيدي بيروفاسفاتاسي، Enpp1، ظلت دون تغيير (3D الرقم–ه).

رقم 1. التعبير عن علامات فيك. (أ) الفلورة لائحة تلطيخ مزدوجة وكولوكاليزيشن من أكتين العضلات الملساء ألفا (α-SMA؛ الأخضر) وفيمنتين في صمام الخلايا الخلالي (VICs). (ب) صورة تمثيلية من عناصر سلبية باستخدام الماوس والارنب مفتش. أنوية ملطخة باللون الأزرق باستخدام 4 ', 6-دياميدينو-2-فينيليندولي (DAPI). شريط المقياس = 50 ميكرومتر. (ج) وجود تحويل عامل النمو بيتا 1 (TGFβ-1) و TGFβ 2 في VICs (الممرات 1-3) كما هو موضح بتحليل PCR. 4 لين هو التحكم بالمياه. وكان مرجع الجينات المستخدمة جابده. (د) تحليل لطخة غربية عرض التعبير وفيرة من CD31 في خلايا بطانية الكلاب الصمام التاجي (تقدم) بالمقارنة بأي تعبير في VICs. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

الرقم 2. تكلس في المختبر من الفئران VICs. ترسيب Ca في VICs تعامل مع 2.7 مم Ca/2.5 Pi حسبما يقرره: (ألف) صورة فوتوغرافية تبين صبغة الأليزارين الأحمر S من خلية كاملة مونولاييرس في البئر، وتحديد مستويات كاليفورنيا بعد النض HCl اللونية (ب). الطالب t-وأجرى اختبار لتحليل أهمية بين المجموعات اثنين من البيانات. وترد نتائج يعني ± S.E.M. *p < 0.5 بالمقارنة مع التحكم؛ (n = 4).

الشكل 3. التغييرات تعبير الجينات المرتبطة تكلس فيك. حظيرة تغيير في التعبير مرناً من علامات أوستيوجينيك (A) Msx2، (ج) Phospho1(د) Runx2، (ب) البلو (E) Enpp1 في VICs تعامل مع 2.7 مم Pi Ca/2.5 مم حاء – 48 مرناً التعبير يظهر كتغيير إضعاف مقارنة بالجينات المرجعية الذاتية جادف- وأجرى ANOVA أحادي الاتجاه باستخدام النموذج الخطي العام تتضمن مقارنات لبير لتحليل الأهمية بين مجموعات متعددة. وترد نتائج يعني ± S.E.M. * *ف < 0.01؛ ف < 0.001 مقارنة للرقابة؛ (n = 6). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
| عدد من منشورات صمام | الثقافة لوحة/قارورة |
| 9 إلى 15 | 1 جيدا في لوحة 12-جيدا |
| 15 إلى 30 | 1 جيدا في لوحة 6-جيدا |
| 30 + | T25 |
الجدول 1- مبادئ توجيهية عامة لعدد المنشورات اللازمة للبذر الأولية.