مقالة منهجية

الغربية النشاف بروتوكول لإعداد صغيرة من الخلايا الجذعية المكونة للدم

DOI:

10.3791/56855

⸱

أغسطس 22, 2018

 ,  , 
1Division of Experimental Hematology, Cincinnati Children's Hospital Medical Center, 2Department of Cell and Developmental Biology, Abramson Family Cancer Research Institute, Perelman School of Medicine, University of Pennsylvania, 3Department of Obstetrics and Gynecology, Southwest Hospital, Third Military Medical University

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الغربية قياسية النشاف البروتوكول الأمثل لتحليل عدد قليل من 500 الجذعية المكونة للدم أو الخلايا السلف. التحسين يشمل حذراً في التعامل مع العينة الخلية والحد من عمليات نقل بين أنابيب مباشرة ليسينج الخلايا الموجودة في المخزن المؤقت لنموذج لايمملي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الخلايا الجذعية المكونة للدم (HSCs) خلايا نادرة، مع الماوس نخاع العظام التي تحتوي على فقط 25,000 ~ المظهرية طويلة الأجل إعادة إسكانها يكونوا هسكس. وكان بروتوكول blotting غربية الأمثل ومناسبة لتحليل إعداد صغيرة من هسكس (500-15,000 الخلايا). هسكس المظهرية تنقيته، وحسابها بدقة، وتفكيك مباشرة في لايملي عينة المخزن المؤقت. ليساتيس التي تحتوي على إعداد متساوية من خلايا تم تحليلها بواسطة الصوديوم دوديسيل كبريتات polyacrylamide هلام استشراد (الحزب الديمقراطي الصربي صفحة)، ووصمة عار وأعد وتجهيزها بعد الغربية القياسية النشاف البروتوكولات. باستخدام هذا البروتوكول، 2,000-5,000 هسكس يمكن تحليلها بصورة روتينية، وفي بعض الحالات يمكن الحصول على بيانات من عدد قليل من الخلايا 500، مقارنة بخلايا 20,000 إلى 40,000 عنها في معظم المنشورات. هذا البروتوكول ينبغي أن ينطبق عموما على الخلايا الأخرى المكونة للدم، ويتيح التحليل الروتيني لإعداد صغيرة من الخلايا باستخدام الإجراءات المختبرية القياسية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الخلايا الجذعية المكونة للدم (HSCs) هي الذاتي تجديد الخلايا التي يمكن أن تؤدي إلى جميع الدم الأنساب. فهي نادرة نسبيا من الخلايا في نخاع العظام، يجعل من الصعب التحليلات الكيميائية الحيوية. النهج المناسبة لتحليل خلايا نادرة، مثل التدفق الخلوي، كانت مفيدة للغاية لقياس الكميات النسبية من علامات سطح الخلية والبروتينات داخل الخلايا. ومع ذلك، يتطلب تحليل البروتينات داخل الخلايا باستخدام الخلية بيرميبيليزيشن إجراءات لتمكين الوصول إلى جسم، وليس كل الخلايا السطحية [ابيتوبس] البقاء على قيد الحياة هذه الإجراءات1،2. وباﻹضافة إلى ذلك، الأجسام المضادة التي تميز بين منتجات بروتين مختلف isoforms أو الانقسام ولا تتوفر غالباً للتدفق الخلوي، وذلك المحققين لا تزال تعتمد على البقع الغربية لبعض أنواع التحليل.

تحليل لطخة غربية للخلية ليساتيس إجراء روتيني في معظم المختبرات. يمكن تنقية الخلايا تحت ظروف الأم التي تحافظ على [ابيتوبس] جزيئات سطح الخلية، ويمكن بعد ذلك أعد ليساتيس الخلية وتحليلها. ومع ذلك، يمكن أن يتطلب تحليل البروتينات في الخلية الأولية نادرة السكان بالغربية لطخة يوثانيزينج إعداد كبيرة من الحيوانات للحصول على ما يكفي من خلايا. بإجراء تعديلات صغيرة على عدة خطوات، كان بروتوكول blotting غربية تقليدية قادرة على الكشف عن البروتينات في عدد قليل نسبيا من هسكس (500-15,000، اعتماداً على بروتين الفائدة). وتشمل التعديلات بدقة عد الخلايا، بدقة التعامل مع الخلية بيليه، الحد من عمليات نقل الخلايا بين أنابيب تقليل الخسائر في الخلية، وليسينج عدد محدد من الخلايا مع تحميل تتركز العازلة التي تحتوي على بروتوزوم و مثبطات الفوسفاتيز. وتشمل العديد من التقارير المنشورة البقع الغربية التي تم الحصول عليها مع 20,000 أو أكثر هسكس3،،من45،،من67؛ سوف يقلل هذا الإجراء البسيط عدد الخلايا والحيوانات التجريبية اللازمة لإنتاج بيانات مكافئة من بين 4 و 40 ضعفا. البروتوكول يهدف إلى تطبيع النتائج على أساس كل خلية، بدلاً من رقابة داخلية. وهذا يتيح الكشف عن التخفيضات الإجمالية في مستويات البروتين التي يمكن التغاضي عنها إذا هي تطبيع البيانات إلى رقابة داخلية. ووصفت أهمية تطبيع على أساس كل خلية لتحليل البيانات التعبير الجيني8، وينطبق نفس المبدأ على تحديد كمية البروتينات بوصمة عار الغربية. هذا البروتوكول الأمثل ينبغي أن يكون مفيداً لأي شخص بحاجة إلى تحليل عدد صغير من الخلايا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يجب أن تتم جميع الإجراءات وفقا لاستخدام الحيوان المؤسسية والمبادئ التوجيهية للرعاية. الإجراءات التي وضعت من أجل تحليل مورين الخلايا الجذعية والسلف المكونة للدم (هسكس و HPs)، ولكن يمكن تكييفها لتحليل السكان خلية أخرى.

1-التدفق الخلوي عزلة هسكس مورين و HPs

  1. حصاد خلايا نخاع العظام مورين كما هو موضح في الأدب6.
    ملاحظة: في البيانات المعروضة في الشكل 1 و الشكل 2، وكان حصاد نخاع العظام من الفئران C57BL/6J.
  2. أداء نسب استنفاد الخلايا نخاع العظام باستخدام مجموعة أدوات استنفاد نسب ماوس، اتباع إرشادات الشركة المصنعة.
  3. احتضان الخلايا مع الأجسام المضادة ضد علامات الخلية السطحية للفائدة ك وصف7. في هذه التجارب هو مبين في الشكل 1 و الشكل 2، تستخدم الأجسام المضادة للهيئة-1 كيت، Flt3 وعلامات النسب (لين) Mac1، Gr1، CD3e، B220، و Ter119.
  4. فرز 2,000 20,000 لين– Sca1++ Flt3 عدة خلايا– (HSCs) أو لين–Sca1–الخلايا كيت+ (هبس) في أنابيب ايبندورف 1.5 مل يحتوي على 0.1 مل فوسفات مخزنة المالحة (PBS) مع الأبقار الجنين 2% مصل الدم (FBS).
    ملاحظة: للبيانات المبينة في الشكل 1 و الشكل 2، تم فرز الخلايا استخدام Cytometer التدفق مع فوهة 70 ميكرومتر. حجم جمع الحد الأقصى 1.4 مل.

2. إعداد نموذج

ملاحظة: هذه الخطوة الحاسمة. عملية العينة بعناية فائقة. عند إزالة المادة طافية، يكون حريصا جداً على عدم تعكير بيليه الخلية.

  1. أجهزة الطرد المركزي 1.5 مل الأنابيب التي تحتوي على خلايا تم فرزها في دوار دلو يتأرجح عند 4 درجة مئوية، 500 غرام x، لأدنى 5 إزالة كافة ولكن ما يقرب من 100 ميليلتر من المادة طافية من الخلية بيليه جداً برفق باستخدام ماصة وتلميح بيبيت ميليلتر 20. عدم الإزعاج بيليه.
    1. إذا كانت العينة تحتوي على خلايا أقل من 5,000، وأقل من 0.2 مل من الحجم الإجمالي للعينة تم فرزها، نقل الخلايا أولاً إلى ربط انخفاض 0.2 مل أنابيب PCR قبل الطرد المركزي.
    2. إذا كان النموذج يحتوي على خلايا أقل من 5,000 وحجم أكثر من 0.2 مل، تدور الخلايا إلى الأسفل مع أجهزة الطرد مركزي في 4 درجات مئوية، 500 x ز، لمدة 5 دقائق، وإزالة كافة ولكن 200 ميليلتر من المادة طافية. تعليق إعادة الخلايا الأعلاف في ميليلتر 200 المتبقية من المادة طافية، ثم نقل الخلايا إلى أنابيب PCR 0.2 مل وتدور إلى أسفل مرة أخرى. إزالة كافة ولكن 20-30 ميليلتر من بيليه بعد الدوران الثاني وتعليق إعادة الخلايا.
  2. ريسوسبيند الخلايا الموجودة في اليسار طافية في الأنبوب. إذا لزم الأمر، إضافة برنامج تلفزيوني إضافي بنسبة 2% FBS/برنامج تلفزيوني (يمكنك أيضا استخدام 2% ألبومين المصل البقري (BSA)/برنامج تلفزيوني، أو برنامج تلفزيوني وحدها) للحصول على تركيز 5 x104 إلى 5 × 105 خلايا/مل.
    ملاحظة: استخدام حساب الخلية التي تجمعها الخلوي لتقدير حجم تستخدم لتعليق الخلايا.
  3. استخدام ميليلتر 2-5 تعليق إعادة الخلايا لتحديد تركيز خلية دقيقة استخدام عداد الآلي خلية (اتباع إرشادات الشركة المصنعة) أو هيموسيتوميتير9.
  4. نقل كمية من تعليق إعادة الخلايا التي تحتوي على العدد المطلوب من الخلايا إلى 1.5 مل أنابيب جديدة. للتجربة في الشكل 1، نقلوا هسكس أو هبس 2,000، 1000 أو 500. العدد المطلوب من الخلايا تعتمد على قوة الإشارة التي حصل عليها لطخة غربية، ويتحدد تجريبيا. إجراء النقل باستخدام ميليلتر 20 أو 100 ميليلتر ايبندورف ماصة تلميح.
  5. الطرد المركزي الخلايا في دوار دلو يتأرجح في 4 درجات مئوية، 500 x ز، لمدة 5 دقائق.
  6. لإنشاء 100 × حلول الأسهم، حل مثبطات بروتوزوم والفوسفاتيز في [دمس] وفقا لإرشادات الشركة المصنعة.
  7. تحضير x Laemmli 2 عينة المخزن المؤقت بتمييع العازلة عينة x Laemmli 4 المقدمة من الشركة المصنعة مع مبلغ مساو من الماء المقطر. إضافة مبلغ مناسب للمخزون 100 x من مثبطات بروتوزوم والفوسفاتيز للحصول على تركيز نهائي لمثبطات x 2 في المخزن المؤقت لنموذج x Laemmli 2.
    ملاحظة: يمكن إجراء المخزن المؤقت نموذج x Laemmli 2 مسبقاً، ولكن ينبغي إضافة مثبطات بروتوزوم والفوسفاتيز فورا قبل إضافة 2 x Laemmli عينة المخزن المؤقت (بالإضافة إلى مثبطات) لبيليه الخلية الخلايا، وكما هو موضح في الخطوة التالية.
  8. إزالة جزء من المادة طافية من بيليه الخلية، وإلى المادة طافية المتبقية في الأنبوب مع بيليه الخلية بعناية، وإضافة وحدة تخزين تساوي 2 x Laemmli عينة المخزن المؤقت بالإضافة إلى مثبطات بروتوزوم والفوسفاتيز لتحقيق تركيز نهائي 500 خلايا/ميليلتر في x Laemmli 1 عينة المخزن المؤقت.
    ملاحظة: على سبيل المثال، إذا قمت بنقل الخلايا 2,000 في إجمالي حجم 20 ميليلتر لأنبوب في "الخطوة 2، 5"، بعد سينتريفوجينج الخلايا (الخطوة 2.6) يجب عليك إزالة ميليلتر 18 من المادة طافية من بيليه، وميليلتر 2 من المادة طافية المتبقية إضافة وحدة تخزين متساوية (2 ميليلتر) من 2 × لايملي عينة العازلة لتحقيق تركيز نهائي من الخلايا 500/ميليلتر في x Laemmli 1 عينة المخزن المؤقت.
  9. ريسوسبيند بيليه لتوليد في أقرب وقت ممكن. عند هذه النقطة، يمكن أن تكون العينات اليكتروفوريسيد فورا من خلال المواد الهلامية صحيفة بيانات السلامة-الصفحة، أو يمكن انطباق المجمدة في سائل ن2 وتخزينها في-80 درجة مئوية لاستخدامها في المستقبل.

3-التفريد

  1. الحرارة ليساتيس في كتلة حرارة عند 95 درجة مئوية أو في الماء المغلي لمدة 5 دقائق.
  2. اليكتروفوريسي 1-40 ميليلتر من ليساتيس (التي تحتوي على من 500 حتى 20,000 خلية مكافئات) من خلال الحزب الديمقراطي الصربي صفحة المواد الهلامية في 100 فولت باستخدام البروتوكولات القياسية10.
    ملاحظة: وحدة التخزين المحملة في الهلام ليستي يتحدد بعدد الخلايا اللازمة لتوليد إشارة المرغوب فيه، وسوف يعتمد على وفرة البروتين من الفائدة، ونوعية الأجسام المضادة. تم الحصول على البيانات في الشكل 1 مع 2,000، 000 1 و 500 خلية مكافئات من ليساتي. عرض البئر ينبغي في المجموعة من 3 مم إلى 1.5 مم-1.5 ملم يمكن أن تكون الأسنان قص من مشط متاحة تجارياً مع أوسع الأسنان باستخدام مقص.

4-نقل وكتلة

ملاحظة: إجراء وصمة عار غربية عقب البروتوكولات القياسية11. ويرد موجز الخطوات هنا:

  1. بريتريت غشاء ثنائي الفلوريد (PVDF) الفينيليدن مع الميثانول ل 10 s، ثم أغسل الغشاء بإيجاز مع الماء المقطر.
  2. نقل البروتين من جل الحزب الديمقراطي الصربي صفحة للغشاء اتباع الإرشادات الموجودة في دليل المستخدم توفيرها من قبل الشركة المصنعة للجهاز على نقل.
  3. بعد نقل، كتلة الغشاء مع 2 مل من 5% البقري ألبومين المصل (BSA) في ببست (برنامج تلفزيوني مع 0.1% توين) بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية عقب البروتوكولات القياسية11.

5-جسم وسم

  1. احتضان الغشاء مع الأجسام المضادة على شاكر بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية استخدام تخفيف الجسم المضاد الذي أوصت به البائع.
    ملاحظة: في "الجدول للمواد"، يتم إظهار الأجسام المضادة، الذي كنا قد صدق هسكس و HPs وتخفيف جسم المقابلة،. أداء جسم العلامات باستخدام إجراءات معيارية8.

6-كشف

  1. يغسل الغشاء 3 مرات، 5 دقائق لكل غسل في ببست في درجة حرارة الغرفة.
  2. احتضان الغشاء مع 2 مل من المخزن المؤقت تشيميلومينيسسينسي المعززة لمدة 1 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. كشف الإشارات استخدام نظام تصوير عقب تعليمات، الشركة المصنعة أو الفيلم autoradiography وتحميض أفلام.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وتظهر نتائج تمثيلية من 500-000 2 المنقي هسكس و HPs في الشكل 1 و الشكل 2. ويمكن الكشف عن إشارة β-أكتين في الشكل 1 من عدد قليل من 500 هسكس وهبس تنقيته من نخاع العظام واحدة بالماوس. ملاحظة أن تحميل ليساتيس في الآبار 1.5 مم تنتج إشارة أقوى بكثير من 500 HPs من التحميل إلى الآبار 3.0 ملم. الرقم 2 هو وصمة عار غربية من EIF4G والفسفره Rps6 (ف-Rps6)، اللذين يشاركون في تنظيم بروتين...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

النشاف الغربية تقنية شائعة لكشف البروتينات المحددة وتفعيل مسارات الإشارات في الأنسجة أو الخلايا. عن طريق إدخال تعديلات بسيطة على إجراء استخداماً، كنا قادرين على اكتشاف البروتينات المختلفة 15 (جدول المواد) بشكل روتيني في هسكس 15,000، وفي بعض الحالات في عدد قليل من هسكس 500. The most الخطوات الحاسمة في هذا البروتوكول: 1) دقة عد الخلايا 2) التقليل إلى أدنى حد من عدد عمليات نقل بين أنابيب و 3) ليسينج الخلايا مباشرة مع لايملي عينة المخزن المؤقت. عندما ليسينج بيليه الخلية مع لايملي عينة المخزن المؤقت، وجدنا أن...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب قد لا يوجد تعارض في المصالح تعلن.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المعاهد الوطنية "للصحة" منح R01 CA149976 (N.A.S) تدعم هذا العمل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
كبريتات دوديسيل الصوديوم (SDS)فيشر ScientificBP166-500SDS-PAGE
TEMEDفيشر ScientificBP150-20SDS-PAGE
30٪ محلول أكريلاميديل بيسBio-Rad1610158SDS-PAGE
1.5M Tris-HCl pH8.8TEKNOVAT1588SDS-PAGE
1.0M Tris-HCl pH6.8TEKNOVAT1068SDS-PAGE
الأمونيوم بيرسولفاتفيشر ScientificBP179-25SDS-PAGE
مصغرة البروتين 3 مشطBio-Rad1653360SDS-PAGE
Mini-PROTEAN Tetra CellBio-Rad1658005EDUSDS-PAGE
TRANSFERSYSTEM Bio-Rad1704155EDUنقل
PowerPac HC مزود الطاقةBio-Rad1645052EDUالرحلان الكهربائي
نظام التصويرBio-Rad1708195 الكشف عن إشارة
4x Laemmli عينة عازلةBio-Rad1610747EDUتحضير عينة
10x Tris / Glycine / SDS Electrophoreses BufferBio-Rad1610732EDUelectrophoreses
2-MercaptoethanolBio-Rad1610710EDUلإعداد عينة
RTA Mini PVDF Transfer Kit ، ل 40 BlotsBio-Rad1704272نقل
كوكتيل مثبط البروتيازسيجما11697498001تحضير
العينة كوكتيلات مثبطات الفوسفاتيزالذهب التكنولوجيا الحيويةGB-450-1إعداد عينة
EIF4Gإشارة خلية2469جسم مضاد WB ، تم التحقق من صحته في 1000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): الشكل 2
p-Rps6إشارة الخلية4858جسم مضاد WB ، تم التحقق من صحته في 1000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): الشكل 2
أكتين (HRP مترافق) abcamab49900الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 500 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 5000
مرجع (الشكل): الشكل 1 ، الشكل 2
LC-3Abcamab48394الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 5)
S6Cell Signaling2317WB الجسم المضاد ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 4)
4EBP1الخلية9644الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 4)
p-4EBP1إشارة الخلية2855الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 4)
TSC2الخلية4308الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 4)
الخليةHSP904877الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 5)
خليةPTEN9188الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 1)
خليةmTOR2983الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 1)
p-mTORإشارة الخلية5536الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 1)
إشارة الخلية PP2AB4953الجسم المضاد WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
مرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 1)
p-AMPKaCell Signaling2535WB الجسم المضاد ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 1000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 1) الجسم
الأكتينسانتا كروزsc-47778WB ، تم التحقق من صحته في 15000 خلية
تركيز الجسم المضاد: 1: 3000
المرجع (الشكل): المرجع 5 (الشكل 4)
طقم استنفاد النسب (الماوس)Miltenyi Biotec130-090-858تنقية الخلايا الجذعية والسلفية المكونة للدم
أعمدة LSMiltenyi Biotec130-041-305تنقية الخلايا الجذعية والسلفية المكونة للدم
SCFPeproTech250-03تحفيز الفسفرة
APC-Cy7 c-kit الجسم المضادThermoFisherA15423فرز الخلايا
المضادة ل B220ThermoFisher48-0452-82فرز الخلايا
المضادة ل CD3eThermoFisher48-0031-82فرز الخلايا
المضادة لنظام التشغيل Mac1ThermoFisher48-0112-82فرز الخلايا
المضادة ل Gr1ThermoFisher48-5931-82فرز الخلايا
المضادة ل Ter119ThermoFisher48-5921-82فرز الخلايا
لوحات فاصل مع 1.0 مم متكاملة الفواصلBio-Rad1653311SDS-PAGE
BSAResearch Products InternationalA30075غشاء حجب
المصلAtlanta BiologicalsA12450عداد خلية مكمل متوسط
InvitrogenAMQAF1000
الدمالخلايا ThermoFisher  S17040عد الخلايا
flimDenville ScientificE3012الإشارة
معالج الأفلام الطبيةKonicaSRC-101Aالكشف
الإشارة الفائقة West Femto أقصى حساسية الركيزةTherom Scientific34096كشف الإشارة
Allegra X-15R (الدوار SX4750A)عينة بيكمان كولترX-15R تحضير
BLUEstain سلم البروتينGold BiotechnologyP007-500الرحلان الكهربائي
BDFACSAria IIإعداد العينة
IncublockDenville ScientificI0510الرحلان الكهربائي
إشارة إشارة إشارات إشارة إشارات المضاد مقياس عد كشف عن فارز خلايا

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Krutzik, P. O., Clutter, M. R., Nolan, G. P. Coordinate analysis of murine immune cell surface markers and intracellular phosphoproteins by flow cytometry. J Immunol. 175 (4), 2357-2365 (2005).
  2. Du, J., et al. Signaling profiling at the single-cell level identifies a distinct signaling signature in murine hematopoietic stem cells. Stem Cells. 30 (7), 1447-1454 (2012).
  3. Signer, R. A., Magee, J. A., Salic, A., Morrison, S. J. Haematopoietic stem cells require a highly regulated protein synthesis rate. Nature. 509 (7498), 49-54 (2014).
  4. Wang, J., et al. A differentiation checkpoint limits hematopoietic stem cell self-renewal in response to DNA damage. Cell. 148 (5), 1001-1014 (2012).
  5. Hoshii, T., et al. mTORC1 is essential for leukemia propagation but not stem cell self-renewal. J Clin Invest. 122 (6), 2114-2129 (2012).
  6. Signer, R. A., et al. The rate of protein synthesis in hematopoietic stem cells is limited partly by 4E-BPs. Genes Dev. 30 (15), 1698-1703 (2016).
  7. Cai, X., et al. Runx1 deficiency decreases ribosome biogenesis and confers stress resistance to hematopoietic stem and progenitor cells. Cell Stem Cell. , (2015).
  8. Loven, J., et al. Revisiting global gene expression analysis. Cell. 151 (3), 476-482 (2012).
  9. JoVE Science Education Database. Using a Hemoacytometer to Count Cells. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. , (2017).
  10. JoVE Science Education Database. Separating Protein with SDS-PAGE. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. , (2017).
  11. JoVE Science Education Database. The Western Blot. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. , (2017).
  12. Jackson, R. J., Hellen, C. U., Pestova, T. V. The mechanism of eukaryotic translation initiation and principles of its regulation. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (2), 113-127 (2010).
  13. Eaton, S. L., et al. A guide to modern quantitative fluorescent western blotting with troubleshooting strategies. J Vis Exp. (93), e52099(2014).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

SDS PAGE

مقالات ذات صلة