نقدم هنا بروتوكولا تجريبيا تقييم تخثر البلازما في أنسجة الكبد في الجسم الحي. في نموذج الخنزير، يتم فحص دوران الأوعية الدقيقة بواسطة الليزر دوبلر، ويقاس عمق التخثر الأشيع، درجة الحرارة في موقع تخثر الدم بحرارة الأشعة تحت الحمراء وكاميرا حرارية، ولاصق ختم أثر الموثق بضغط الانفجار التجارب.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
تقييم تخثر البلازما في أنسجة الكبد في نموذج حيوانات كبيرة في فيفو
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
تخثر البلازما كشكل من أشكال اليكتروكاوتيري يستخدم في جراحة الكبد على مدى عقود لختم سطح قطع الكبد كبيرة بعد ظهرت الرئيسية لمنع نزيف في مرحلة لاحقة. وتبحث فقط سيئة الآثار الدقيقة تخثر البلازما في أنسجة الكبد. في نموذجنا الخنزير، ويمكن النظر في آثار التخثر قريبة من التطبيق السريري. التغيرات ليزر مجتمعة دوبلر مقياس التدفق وجهاز المطياف الضوئي وثائق دوران الأوعية الدقيقة خلال التخثر في عمق النسيج 8 مم نونينفاسيفيلي، توفير المعلومات القابلة للقياس عن الأرقاء يتجاوز الانطباع السريري ذاتية. هو تقييم درجة حرارة الموقع التخثر مع تخثر قبل وبعد حرارة الأشعة تحت حمراء وكاميرا حرارية أثناء تخثر الدم، وقياس درجة حرارة الغاز شعاع ليس ممكناً بفضل العتبة العليا للأجهزة. يقاس مجهريا على الهيماتوكسيلين/ويوزين ملطخة كائن ميكرومتر المقاطع بعد معايرة عمق تخثر الدم ويعطي معلومات دقيقة عن قوة الإعداد-التخثر العمق-العلاقة. يتم فحص أثر الختم على الصفراوية حيث أنه من غير الممكن بالنسبة كواجولاتور بلازما لختم الأوعية الدموية الكبيرة. إجراء تجارب الضغط انفجر خارجاً على أجهزة اكسبلانتيد لاستبعاد ضغط الدم المتعلقة بالآثار.
المقدمة
تخثر بلازما الأرغون (APC) أداة تستخدم على نطاق واسع في عملية جراحية في البطن لأكثر من ثلاثة عقود1،2. وأسلوب قياسي لتحقيق الأرقاء الثانوي بعد أن ظهرت الرئيسية بختم الكبد قطع السطح لمنع نزيف بعد3. تخثر البلازما شكل متخصصة من اليكتروكوتيري الترددات الراديوية، التي توفر الطاقة الكهربائية عن طريق قوس الغاز المتأين. توفير الأرقاء اليكتروثيرمال أحادي القطب، هذا الأسلوب noncontact له ميزة منع مسرى إلى التمسك الأنسجة4. شعاع الغاز المتأين تتجه تلقائياً إلى منطقة أدنى المقاومة الكهربائية وتشغيل بعيداً عندما ترتفع المقاومة بسبب الجفاف إلى مناطق أخرى لم مبشور. وهذا ينتج عمق محدودة موحدة تجلط الدم5،6. العوامل المؤثرة على أثر تخثر يتم التفعيل الوقت، إعداد الطاقة جهاز التخثر والمسافة من التحقيق إلى الأنسجة. الهيليوم هو آخر الغاز الناقل، التي يمكن أن تستخدم ل تخثر البلازما7. الدراسات السريرية الأخيرة مركزة على النتائج السريرية بدلاً من غذائها والفنية نتائج3،8،9، بينما الدراسات التجريبية التي تركز على التحقيقات في المختبر 10 أو تجارب على الأجهزة المعزولة perfused11.
يسمح البروتوكول الأساسية دراسة آثار تخثر البلازما في نموذج حيوان كبير قريب من التطبيق السريري باستخدام المعدات البشرية الموحدة على الخنازير: يتم تقييم دوران الأوعية الدقيقة نونينفاسيفيلي بمقياس دوبلر التدفق على ليزر و جهاز المطياف الضوئي، التي أداة قياسية سريرية لهذا دلالة12،13. يتم رصد التغيرات في درجة الحرارة أثناء التخثر مع حرارة الأشعة تحت حمراء وكاميرا حرارية. يقاس عمق التخثر في غذائها الهيماتوكسيلين/ويوزين الملون المقاطع بعد الحصاد لعينات الأنسجة. للمقارنة مع الوسائل الأخرى للارقاء الثانوي، تجري تجارب ضغط الانفجار. على النقيض من التقنيات الموصوفة سابقا14، هذه تجري على أجهزة اكسبلانتيد لاستبعاد ضغط الدم المتعلقة بالآثار. بالإضافة إلى التحقيقات وصف الآثار المحلية تخثر البلازما، يمكن أيضا القيام باختبارات الدم القياسية في الطراز الخنزير.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
تم اتباع القواعد التي تحكمها التشريعات الألمانية لدراسات أجريت على الحيوانات، فضلا عن "مبادئ لمختبر الحيوان الرعاية" (المعاهد الوطنية للصحة المنشور الطبعة 8، 2011). يتم منح إذن رسمي من مكتب رعاية الحيوان الحكومية (لانديسامت für Natur، أومويلت und فيربراوتشيرشوتز نوردراين-فيستفالن، ركلينغهاوزن، ألمانيا).
1-الحيوانات
- استخدام الخنازير landrace الألمانية الإناث (وزنها 25-30 كجم) يسكنون في أقفاص مفتوحة.
- استخدام الحيوانات 5 كل مجموعة (الأرجون والهيليوم).
- السماح للحيوانات على التأقلم للمناطق المحيطة بها لمدة أسبوع واحد على الأقل قبل التجارب. الحيوانات بسرعة من أجل 24 ساعة قبل الجراحة مع حرية الوصول إلى المياه.
2-التخدير
- بريميديكاتي الحيوانات مع حقنه عضليا الكيتامين (15 مغ/كغ من وزن الجسم [و])، إكسيلازيني (10 مغ/كغ وزن الجسم) والاتروبين (0.1 مغ/كغ وزن الجسم) 10 دقيقة قبل تنظيم دورات تعريفية للتخدير.
- وصول الوريدية المحيطية تنشأ بموجب تنسيب قنية 22-قياس الوريد إذن.
- حمل التخدير العام بالحقن رابعا بروبوفول 2 مغ/كغ من وزن الجسم.
- وضع الحيوان في موقف ضعيف وأداء شق جلد طولية في أخدود جوجولار على طول من تحديد موقع الوريد 2 سم. من خلال إعداد حادة في النسيج تحت الجلد. إدراج قنية، ثم Seldinger الأسلاك.
- التراجع عن القنية وإدراج 14 fr. القسطرة عبر الأسلاك دليل. سحب سلك الدليل. توصيل قسطرة للتمديد وثبت القسطرة بحزام أو خياطة الجروح.
- سحب اللسان وإدخال المنظار على التوالي. استخدام تلميح المنظار لهدم في ابيجلوتيس. إدراج أنبوب عن طريق الاحبال الصوتية. ضع الكفة تحت المزمار وتضخيم.
- يحققوا مع الأكسجين 40% في الدقيقة 20-26 الأنفاس وحجم المد 10 مل/كغ إبقاء التوتر ثاني أكسيد الكربون الجزئي نهاية-المد والجزر بين 36 و 42 ملم زئبق.
- المحافظة على التخدير مع إيسوفلوراني بتركيز 1-1.5% وشيفتشنكو بتركيز 3-4 ميكروغرام/كغ/ساعة.
- توفير حل لاكتات في المسابقة أولى بمعدل 4 مل/كغ/h، وزيادة بعد فتح البطن لتسريب مستمر بمعدل 8 مل/كغ/ساعة.
3-الجراحة وتخثر البلازما
- وضع الحيوان في موقف ضعيف على طاولة العمليات جراحية قياسية.
- تطهير الجلد بتطبيق مطهر جراحي قياسية (2-بروبانول ز 45/100 غرام، 1-بروبانول ز 10/100 غرام، ثنائي الفينيل-2-الرتب الأخرى 0.2 غ/100 غ) مع مسحه جراحية 3 مرات.
- القيام فتح البطن خط الوسط واسعة من عملية الرهابه إلى العانة مع مشرط وتثبيت الكامشات الجراحية.
- التبديل على جهاز تخثر البلازما، وفتح زجاجة غاز الأرجون أو الهليوم، اعتماداً على الغاز الناقل المستخدمة. ضبط تدفق الغاز إلى طاقة 3 لتر/دقيقة التخثر حدد جهاز الإخراج كما هو مطلوب.
ملاحظة: يمكن استخدام كلا من الغازات الخاملة، الأرجون أو الهليوم، تخثر البلازما. آثار التخثر قابلة للمقارنة. راجع مرجع7 لمزيد من التفاصيل. - أداء تخثر البلازما في فص الكبد الأيسر كما هو موضح سابقا7. استخدام قالب تيتانيوم (فتحه مربعة 1 × 1 سم2) إلى توحيد منطقة التخثر. يتجمد 5 s مع مسبار لمسافة 1 سم. يمكن أن يؤديها تخثر مع إعدادات طاقة مختلفة جنبا إلى جنب مع مسافة قصيرة بين تخثر 5 مم (الشكل 1).
- لحصاد الكبد، تقسيم كل وجود اتصالات للكبد. عزل وتقسيم بيديكلي كبدي أعلاه flexure الإثناعشرية متفوقة ترك أجزاء طويلة من الوريد البابي والقناة الصفراوية المشتركة. تقسيم على المنوال كابل أعلى وأسفل الكبد واسترداد الجهاز.
- بعد الحصاد في الكبد، كان euthanized الخنازير بالإدارة رابعا من 0.16 غرام/كغ وزن الجسم بينتوباربيتال.
- لإجراء تجارب الضغط الاندفاع، يرسخ نصف الفص الكبد الآنسي الأيسر مع مقص حاد. بلازما-يتجمد القطع السطح (100W إنتاج الطاقة) أو ختم على سطح قطع مع تسرب فيبرينوجين (الشكل 2).
4. قياس دوران الأوعية الدقيقة
ملاحظة: يمكن تحديد مطيافية الليزر دوبلر تدفق الدم في الأنسجة من خلال قياس التحول دوبلر الناجم عن حركة الكريات الحمراء. وترتبط إشارة الليزر بعدد الكريات الحمراء تتحرك. مطيافية دوبلر الليزر في الاستخدام السريري (مثل زرع الطب)، وقد تم التحقق من صحة عدة مرات15.
- التبديل على مقياس التدفق دوبلر الليزر وجهاز المطياف الضوئي. استخدام مجس مسطحة.
- أخذ قياسات أساسية للتدفق والسرعة. حفظ أو ملاحظة القيم.
- تنفيذ تخثر الدم كما هو موضح تحت 3.5.
- مكان المسبار شقة في مواقع التخثر وقياس التدفق والسرعة. ومرة أخرى، حفظ أو ملاحظة القيم.
- كرر كافة إعدادات الطاقة لجهاز كواجولاتور.
5. قياس درجة الحرارة
- تبديل النظام (كاميرا حرارية ودفتر الملاحظات والحرارة الأشعة تحت الحمراء) والسماح لها بخوض ح 1 على الأقل قبل إجراء القياسات.
- ضبط التركيز وعرض إطار كاميرا حرارية على موقع تخثر الدم. ويمكن الكشف عن تسلسل الأشعة تحت الحمراء مع القرار المكانية من 1024 × 768 بكسل بدقة درجة حرارة أكبر من 20 عضو الكنيست. تأخذ في الاعتبار، أن المنطقة من تجلط الدم والأنسجة المحيطة – المتأثرين بنقل الحرارة – يقع في وسط الرأي.
ملاحظة: ينبغي أن يشمل العديد من بكسل للإطار ممكن للتوصل إلى حل أمثل مكانية. - تسجيل عملية التخثر مع كواجولاتور بلازما على سطح الكبد مع كاميرا حرارية على مدى فترة 2 دقيقة.
- تحليل تسلسل الصور مع برامج التحليل الحراري: تحديد المناطق ذات الاهتمام.
ملاحظة: يحسب البرمجيات مجرى المقابلة متوسط درجة الحرارة مع مرور الوقت.
6-تخثر قياس العمق
- حصاد الفص الكبد الآنسي الأيسر مع مقص حاد.
- المكوس المواقع التخثر بسمك 1 سم. مقطعة شرائح طولية سميكة 3 مم لمزيد من المعالجة.
- معزولة فيكس عينات الأنسجة في 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها مع المحايد 10% فورمالين. الحرارة 2 درجة مئوية فوق نقطة انصهار البارافين وتضمين الشرائح. العملية بين عشية وضحاها.
- القيام بتلوين الهيماتوكسيلين/ويوزين.
- ديبارافينيزي وهيدرات الأنسجة بالغمس في وقت لاحق في 2 × زيلين نفط، 100 ٪ الإيثانول (EtOH)، 95% EtOH، 70% EtOH، منزوع ح2س لكل 2 دقيقة.
- وصمة عار عينة الأنسجة مع توضع حل ماير لمدة 3 دقائق.
- الآن الشطف بماء الصنبور لمدة 5 دقائق.
- وصمة عار في الأنسجة مع الحل ثم لمدة 3 دقائق.
- شطف في x EtOH 2 95% ومن ثم زيلين نفط لمدة 3 دقائق. جبل مع المتوسطة تصاعد القياسية.
- تبديل النظام (مجهر توصيل الكاميرا، برامج التصوير). عرض جميع الأقسام مع 40 X التكبير.
- التقاط صورة ميكرومتر الكائن في بير 40 س. اضغط على زر تعديل في إطار الأهداف. حدد المعايرة اليدوية. رسم خط على صورة ميكرومتر 100 ميكرومتر. أدخل 0، 1 مم في مربع الحوار ثم اضغط موافق.
- حدد طول في العرض > "ضوابط تحليل" > نافذة الشروح والقياسات. قياس من سطح الكبد إلى الهامش التخثر باستخدام الماوس. تصدير أو ملاحظة النتيجة. كرر القياس على موقع آخر على نفس الشريحة.
ملاحظة: يمكن أن تكون متباينة العمق تخثر الدم بسهولة من نسيج الكبد الطبيعي بفارق حاد بين الحبال تتمثل العادي ومنطقة نخر السيتوبلازم منكمش ونوى متنكرزه ومناطق نزيف. - حساب يعني الخروج من القياسات اثنين.
7-انفجار قياس الضغط
- تبديل النظام في (المضخات التلقائية، ومقياس الضغط). إعداد عينات الكبد وفقا للخطوة 3.7.
ملاحظة: استخدام مضختين متوازية متصلة عبر 3-طريقة-محبس الحنفية. لا يمكن الحصول على أقصى ضغط 1,500 ملم زئبق مع مضخة واحدة. - عزل الوريد البابي والشريان الكبدي شيوعاً والقناة الصفراوية بالمقص في بيديكلي haptic. المشبك الوريد البابي مع ملقط أوفيرهولت واضطر مع خياطة مونوفيل 4-0. المشبك الشريان الكبدي الشائعة ملقط أوفيرهولت واضطر مع خياطة مونوفيل 4-0.
- إدخال قسطرة Ch-16 في القناة الصفراوية المشتركة، واضطر مع خياطة حرير 2-0. الاتصال القسطرة بالمضخات التلقائية، وتركيب محبس الحنفية 3-الطريقة مع الضغط متر (الشكل 3).
- ملء المحاقن التروية مع المالحة.
- بدء تشغيل المضخات التلقائية مع معدل إنجاز لمل 99/ح.
- مراقبة الكبد متر قطع السطح والضغط للتسرب وسجل ضغط الانفجار.
ملاحظة: لتسهيل الاعتراف بالتسرب، الأزرق البراءات يمكن إضافة إلى المحلول الملحي (2 مل البراءات الأزرق + المالحة مل 18). أنه من الأسهل لمراقبة ضغط الانفجار التي يلاحظ وقت فقدان الضغط على مؤشر الضغط.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
دوران الأوعية الدقيقة: استخدام جهاز التشخيص للارقاء بعد تخثر البلازما ويمكن البرهنة بالتغيرات في دوران الأوعية الدقيقة. الدم الشعرية تدفق (عرض كوحدات التعسفي (الاتحاد الأفريقي)) يقلل من قيمة خط أساس من 142.7 ± 76.08 الاتحاد الأفريقي إلى 57.78 ± 49.57 الاتحاد الأفريقي في 25 ث جهاز إنتاج الطاقة، إلى 48.5 ± 7.26 الاتحاد الأفريقي في 50 ث وإلى 5.04 ± 1.31 الاتحاد الأفريقي في 100 W (الشكل 4).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
أن يتم إنشاء نماذج القوارض لجراحة الكبد ل وقت طويل16. ومع ذلك، نماذج حيوانية كبيرة تقدم مزايا معينة: هناك حاجة إلى أي معدات microsurgical معدات المنطوق القياسي للبشر يمكن أن تطبق، والتقنيات الجراحية قابلة للاستخدام السريري ويمكن أن تكون أساليب التقييم السريري القياسي نقل للتجارب. على سبيل المثال، يمكن أن تنفذ اختبارات الدم السريرية القياسية دون الحاجة إلى طرق الاختبار في المختبرات الخاصة (الشكل 10).
الخنازير هي الحيوانات المختبرية المناسبة ...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
شكر وتقدير
المؤلفين قد لا شكر وتقدير.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| زيلازين 20 مجم / مل | فيتوكينول GmbH | زيلابان | |
| كيتامين 100 مجم / مل | Ceva GmbH | حقن | |
| سيفا الأتروبين 100 مجم / 10 مل | دكتور فرانز ك & أومل ؛ hler Chemie GmbH | Atropinsulfat K & ouml; هلر 100 ملغ أمبير. | |
| بروبوفول | فريسينيوس كابي GmbH | بروبوفول 1٪ MCT فريسينيوس | |
| فنتانيل | كيلو روتكسميديكا جي إم بي إتش | فنتانيل 0,5 مجم روتكسميديكا | |
| إيزوفلوران | أبوت جي إم بي إتش | فورين 100٪ (V / V) 250 مل | |
| محلول لاكتات رينجر | باكستر دويتشلاند جي إم بي إتش | صوديوم 131 مليمول / لتر ، بوتاسيوم 5 مليمول / لتر ، كالسيوم 2 مليمول / لتر ، كلوريد 111 مليمول / لتر ، لاكتات 29 مليمول / لتر | |
| الجراحة المضادة | للفعل Schü lke & Mayr GmbH | Kodan Tinktur forte gefä rbt 1 لتر 104804 | |
| المجهر الآلي | نيكون إنسترومنتس أوروبا | Eclipse TE2000-E | |
| كاميرا مجهر | نيكون إنسترومنتس أوروبا | Digitalsight DS-Qi1Mc | |
| برنامج التصوير | Nikon Instruments Europe | NIS عناصر Vers. 4.40 | |
| تخثر البلازما | S & ouml; ring GmbH | CPC-1000 | |
| غاز الأرجون | Linde AG | Argon 4.8 ؛ | |
| غاز الهيليوم | Linde AG | Helium 4.8 | |
| O2C | LEA Medizintechnik GmbH | O2C الإصدار 1212 | مع مسبار LF-2 أو LF-3 |
| ميزان حرارة بالأشعة تحت الحمراء | فولتكرافت | فولتكرافت IR 260-8S | |
| كاميرا حرارية | InfraTec GmbH | VarioCAM HD head 820 | |
| برنامج التحليل الحراري | InfraTec GmbH | IRBIS 3 | |
| الهيماتوكسيلين من ماير | ميرك 1.09249 | ||
| حل Eosin | VWR International GmbH | Merck 1.09844 | |
| Rollerpump Masterflex L / S سهل التحميل | Cole-Parmer Instrument نموذج الشركة | 7518-10 | |
| Perfusorpump | B. Braun Melsungen AG | Perfusor secura FT | |
| مقياس الضغط الرقمي | Greisinger إلكتروني | GMH 3161 | |
| Perfusorsyringe ، 50 مل | B. Braun Melsungen AG | REF 8728810 F | |
| خط Perfusor ، معيار النوع الرابع ، قفل PVC Luer | B. Braun Melsungen AG | REF 8722960 | |
| 3-Way stopcock ، Dicofix C35C | B. Braun Melsungen AG | REF 16494 C | |
| Silk 2-0. 3 متري | Resorba | REF H5F | |
| Vicryl 4-0 Sutupak | Ethicon | V1224H | |
| كلوريد الصوديوم 0.9٪ | B. براون ميلسونجن إيه جي |
المراجع
- Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels. ArchSurg. 111, 392-397 (1976).
- Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury. EurJSurg. 167, 316-318 (2001).
- Frilling, A., et al. Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial. Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).
- Raiser, J., Zenker, M. Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art. J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).
- Farin, G., Grund, K. E. Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications. EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).
- Grund, K. E. Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough? Endoscopy. 29, 196-198 (1997).
- Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue. J Int Med Res. , (2017).
- Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury. JTrauma. 31, 717-720 (1991).
- Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs. JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).
- Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. Application of argon plasma coagulation in skin surgery. Dermatology. 197, 152-157 (1998).
- Carus, T., Rackebrandt, K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. ISRNSurg. , 518924(2011).
- Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer. DisEsophagus. , (2008).
- Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers. Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).
- Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).
- Knobloch, K., et al. Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery. ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).
- Kanzler, S., et al. Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I. Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).
- Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research. Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).
- Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver. Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).
- Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study. Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).
- Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size. AnnSurg. 227, 559-565 (1998).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
الوسوم
