مقالة منهجية

التحديد الكمي "النمو داخل الخلايا داخل الضامة" هو سريع وطريقة يمكن الاعتماد عليها لتقييم الفوعة طفيليات الليشمانيا

DOI:

10.3791/57486

⸱

مارس 16, 2018

 ,  ,  ,  , 
1Department of Cell Biology and Molecular Genetics, University of Maryland

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يقيم جميع الأنواع الليشمانيا المسببة للأمراض وتكرارها داخل الضامة مضيفيهم الفقاريات. نقدم هنا، بروتوكولا لتصيب موريني الضامة المشتقة من نخاع العظام في الثقافة مع ليشمانيا، متبوعاً بالقياس الكمي الدقيق لحركية النمو داخل الخلايا. يعد هذا الأسلوب مفيداً لدراسة العوامل الفردية التأثير على التفاعل المضيف الممرض وضراوة الليشمانيا .

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

دورة حياة الليشمانيا، المسبّب لداء الليشمانيات، التبديل بين المراحل بروماستيجوتي وأماستيجوتي داخل الحشرة والمضيفين الفقارية، على التوالي. بينما يمكن أن تختلف الأعراض المسببة لداء الليشمانيات على نطاق واسع، من آفات جلدية حميدة لأشكال المرض الحشوي فادح جداً تبعاً للأنواع المعدية، جميع أنواع الليشمانيا يقيمون داخل الضامة المضيف أثناء مرحلة الفقاريات حياتها. ليشمانيا العدوى ولذلك ارتباطاً مباشرا بقدرته على غزو، والبقاء على قيد الحياة وتكرارها داخل فاكوليس باراسيتوفوروس (PVs) داخل الضامة. وهكذا، تقييم قدرة الطفيليات تكرار إينتراسيلولارلي يخدم كوسيلة يمكن الاعتماد عليها لتحديد ضراوة. دراسة تطوير داء الليشمانيات باستخدام نماذج حيوانية مضيعة للوقت وشاقة وغالباً ما تكون صعبة، لا سيما مع أشكال الحشوي باثوجينيكالي الهامة. يصف لنا هنا منهجية لمتابعة تطور ليشمانيا داخل الخلايا في نخاع العظام المستمدة الضامة (بنغلادش). أرقام الطفيليات داخل الخلايا مصممون على فترات ح 24 عن ح 72-96 بعد الإصابة. يسمح هذا الأسلوب لتحديد آثار مختلف العوامل الوراثية في الفوعة ليشمانيا موثوق بها. على سبيل مثال، نعرض كيفية حذف اليل واحد من الجينات ليشمانيا Mitochondrial الحديد الناقل (LMIT1) يضعف قدرة سلالة متحولة ليشمانيا أمازونينسيس LMIT1/ΔLmit1 تنمو داخل بنغلادش، مما يعكس انخفاض حاد في الفوعة بالمقارنة إلى البرية من نوع. كما يسمح هذا الفحص مراقبة دقيقة للظروف التجريبية، التي يمكن التلاعب بها على حدة لتحليل تأثير العوامل المختلفة (المواد الغذائية، والأنواع الأكسجين التفاعلية، إلخ.) على التفاعل الممرض المضيف. ولذلك، التنفيذ المناسب والتحديد الكمي للدراسات الإصابة بم توفير بديل غير الغازية، والسريع، واقتصادا، ومأمونة وموثوقة للدراسات النموذجية الحيوانية التقليدية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

داء الليشمانيات يشير إلى طائفة واسعة من الأمراض البشرية التي تسببها الأنواع الطفيليات الأوالي من جنس الليشمانيا. ما يقرب من 12 مليون شخص مصابون حاليا الليشمانيا في جميع أنحاء العالم، وأكثر من 350 مليون معرضة للخطر. باثولوجيا المرض يعتمد على الأنواع الليشمانيا وعوامل المضيف، وأعراض تختلف من آفات الجلد الشفاء الذاتي حميدة إلى أشكال فيسسيراليزينج الفتاكة. إذا كان داء الليشمانيات الحشوي غير المعالجة، وفادح، الترتيب إلا بعد الملاريا كأشد الأمراض فتكاً البشرية الناجمة عن العدوى مع بروتوزوا1. وعلى الرغم من الاختلافات الواسعة النطاق في علم الأمراض الأمراض والأعراض، يكون جميع الأنواع الليشمانيا دورة حياة ديجينيك بالتناوب بين مراحل بروماستيجوتي وأماستيجوتي داخل الحشرات والفقاريات المضيفين، على التوالي. داخل الفقاريات، ليشمانيا استهداف الضامة المضيف للغزو والحث على تشكيل باراسيتوفوروس فاكوليس (PVs)، المقصورات الحمضية مع خصائص فاجوليسوسوميس فيها تكرار النماذج أماستيجوتي ضراوة شديدة. Amastigotes تستمر في أنسجة المضيف أثناء الالتهابات المزمنة ويمكن تمرير ويلكم إلى الأمام لمصابه، استكمال دورة انتقال. ولذلك، في سياق التنمية البشرية من المرض، amastigotes هي دورة حياة الليشمانيا أهم نموذج2. التحقيق في كيفية تكرار amastigotes داخل بلعم PVs أمر بالغ الأهمية لفهم ليشمانيا الفوعة3،،من45،،من67 تطوير العلاجات الناجعة الرواية.

يصف لنا هنا أسلوب يستخدم بانتظام لدينا مختبر لدراسة ليشمانيا العدوى وتكرارها في المشتقة من نخاع العظم الضامة (بنغلادش)، الذي ينطوي على تقييم كمي لعدد داخل الخلايا ليشمانيا على مر الزمن. وتنطوي العملية على حصاد وحيدات من نخاع العظام الماوس والتمايز الضامة في الثقافة، والعدوى في المختبر مع أشكال المعدية (بروماستيجوتيس ميتاسيكليك أو amastigotes) الليشمانيا والتحديد الكمي عدد الطفيليات داخل الخلايا في كل فاصل زمني 24 ساعة لمدة 72-96 ساعة بعد الإصابة. وقد استخدمت هذا التحليل في المختبر لتحديد تأثير عدد من العوامل البيئية والجينات الطفيلي، بما في ذلك تحديد الدور الحاسم للحديد في النهوض بضراوة أمازونينسيس L. كذلك التحقق من صحتها قبل قاطع الدراسات الإنمائية الآفة في الفئران6،،من89،10،11،،من1213،14،15 . منذ إنشاء جميع أنواع الليشمانيا المسببة للأمراض مكانها replicative داخل الضامة المضيف، يمكن استخدام هذا التحليل عالمياً لقرارات الفوعة في جميع الأنواع الليشمانيا .

أداء التهابات بم يسمح تحليل تفاعلات الطفيلي المضيف على مستوى الخلية الواحدة، وبالتالي فهم أكثر شمولاً لكيفية تفاعل طفيليات الليشمانيا مع بهم المكروية المضيف المفضل، PVs الضامة. استخدمت بلعم فحوصات الإصابة بنجاح قبل عدة مجموعات16،17،18،19،20،،من2122 لاستكشاف وظائف بلعم المضيف و ليشمانيا جينات محددة، ومشاركتها المحتملة في التفاعل المعقد الذي يميز العدوى داخل الخلايا. التهابات بم تسمح للتقدير الكمي لنمو الطفيلي كقراءة تأثير العوامل المضيفة التي تؤثر على البقاء داخل الخلايا، مثل إنتاج أكسيد النيتريك المبيدة وتوليد الأنواع الأكسجين التفاعلية وغيرها من الظروف المعاكسة واجه داخل PVs يحلول تشبه23. كما استخدمت بلعم فحوصات الإصابة لتحديد إمكانية اللايشماني مكافحة المخدرات يؤدي للتنمية العلاجية13،24.

طبيعة الإصابات بم في المختبر يوفر العديد من المزايا عبر طرق أخرى لتقييم ليشمانيا ضراوة. ومع ذلك، العديد من الدراسات السابقة دراسة آليات لبقاء الطفيليات داخل الخلايا مع مرور الوقت لا كمياً الإصابة بمعدل20،،من2124. وعلاوة على ذلك، العديد من الدراسات التي تركز على أثر الإصابات في فيفو على مر الزمن فعلت ذلك بقياس حجم الآفة الجلدية والأعراض الفسيولوجية الأخرى التي تتصل بشكل غير مباشر فقط الطفيلي النسخ المتماثل25،26 , 27-العدوى في فيفو نهجاً صارمة لتقييم الفوعة الطفيلي، ولكن قياسات حجم الآفة استناداً إلى قاطع تورم وحدها غالباً ما تكون غير كافية، كما أنها تعكس استجابة التهاب في الأنسجة المصابة ولا العدد المطلق للطفيليات. ولهذا السبب، قاطع الآفة التنمية فحوصات يجب أن يكون متبوعاً التحديد الكمي للتحميل الطفيلي في الأنسجة المصابة، وهو إجراء يتطلب إضعاف الحد مطولة فحوصات28. بالإضافة إلى ذلك، دراسات في فيفو غالباً ما تنطوي على التضحية بالحيوانات متعددة في نقاط مختلفة في الوقت المناسب لانتزاع الأنسجة لفائدة6،،من89،10، 11 , 13-على النقيض من ذلك، يمكن الحصول على إعداد كبيرة من بنغلادش من الحيوان واحدة فقط، ويمكن أن يكون مطلي بهذه الخلايا في ظل الظروف التي تسمح بتقييم الإصابة في نقاط مختلفة في الوقت المناسب. وعلاوة على ذلك، بالمقارنة مع دراسات في فيفو ، أداء في المختبر العدوى بم يسمح سيطرة أكبر على الظروف التجريبية. التحديد الكمي الضامة تصاب جنبا إلى جنب مع الطفيليات نفسها يتيح مراقبة دقيقة لتعدد العدوى (وزارة الداخلية) وشروط الثقافة. يمكن التحكم الجيد في هذه العوامل الرئيسية في تحديد الخصائص للمسارات الخلوية المنفصلة وفهم تأثيرها على مسار العدوى.

ونظرا لهذه المزايا، فمن الدهشة أن مجموعات قليلة جداً دراسة الفوعة ليشمانيا اتخذت حتى الآن الاستفادة الكاملة من التقييم الكمي للنسخ المتماثل داخل الخلايا في الضامة. في هذه المقالة، نحن نناقش المزالق الشائعة التي قد تعوق استخدام أوسع نطاقا لهذا الفحص، ويوفر بروتوكول خطوة بخطوة لتسهيل التنفيذ السليم. النظر دقة وبراعة، المقايسة الإصابة بم يصف لنا هنا يمكن ليس فقط استخدامها لاستكشاف التفاعلات المضيف الممرض التأثير ليشمانيا الفوعة، ولكن أيضا لدراسة الكائنات المجهرية الأخرى التي النسخ المتماثل داخل الضامة29. الأهم من ذلك، يمكن أيضا تطوير هذا الفحص كأسلوب فحص السريري قبل سريعة واقتصادية للتنمية اللايشماني مكافحة المخدرات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

أقرت إياكوك من جامعة ميريلاند في جميع الإجراءات التجريبية وأجريت وفقا للتوصيات الواردة في الدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية "المعاهد الوطنية للصحة". كافة الخطوات الموضحة في الأقسام من 1 إلى 4 وينبغي أسيبتيكالي داخل خزانات الاندفاق الصفحي البيولوجية. ينبغي أن تستخدم الحماية الشخصية، وينبغي توخي الحذر أثناء التعامل مع طفيليات الليشمانيا يعيش جميع مراحل التجريب.

1-العزلة والتمايز المشتقة من نخاع العظم الضامة (بنغلادش)8،،من3031

  1. اليوم 0: التضحية 4-أنثى عمرها 6 الأسبوع C57BL/6 أو الماوس بالب/ج في دائرة2 CO وتأكيد الوفاة عن طريق خلع عنق الرحم. ضمان التعقيم من المقص والملقط بإبقائها غارقة في الإيثانول 70%. رذاذ قفازات مع الإيثانول 70% السماح العقيمة مناولة طوال عملية عزل خلايا نخاع العظام.
  2. تأمين الماوس يضحي بتشريح المجلس بتعلق به الأمامية وتعقيمها بالرش قطته مع الإيثانول 70%.
  3. إجراء شق صغير (حوالي 1 سم) مع مقص القريبة الورك. عناية إدراج المقص تحت الجلد لفصل العضلات الأساسية وقطع الجلد على طول الطريق حول الورك.
    ملاحظة: قد تكون استدارة المجلس تشريح للسماح بالوصول المحسنة إلى الورك.
  4. ديجلوفي الجلد من الساق عن طريق سحب نحو الكاحل وإزالة بعناية. قطع القدم في الكاحل، يجري حذراً جداً قطع في أو أسفل الكاحل مشتركة ترك الساق سليمة تماما.
    ملاحظة: الشظية في هذه المرحلة هو تعلق فضفاضة ويمكن فصلها بسهولة مع الملقط.
  5. يدوياً تحديد موقع الورك عن طريق التلاعب في عظم الفخذ تحديد نقطة التعاقب. بعناية استخدام مقص لقطع ساقه فوق الورك إلى ترك رأس عظم الفخذ الدانية سليمة.
  6. إزالة العضلات والنسيج الضام أكبر قدر ممكن من الساق مع المقص. إزالة أي الجلد المتبقية من الكاحل وأي مواد العظام الزائدة فوق الورك.
  7. ضع عظام الساق تنظيفها في ربمي العقيمة وتستكمل مع البنسلين/ستربتوميسين (1% تركيز نهائي) في صحن بتري على الجليد.
  8. كرر الخطوات من 1.4 عن طريق 1.6 لعزل الساق والفخذ من الساق هند الأخرى.
  9. إزالة أي العضلات والنسيج الضام المتبقية من عظام مغطس في ربمي استخدام الملقط المعقم والعقيمة #10 بليد.
  10. مكان العظام على غطاء طبق بيتري. قطع الساق بعناية مع شفرة مباشرة فوق الكاحل للوصول النخاع. إزالة الساق من بقية الساق بقطع أسفل الركبة مباشرة.
  11. رسم 10 مل ربمي العقيمة وتستكمل مع البنسلين/ستربتوميسين (1% تركيز النهائي) إلى حقنه 10 مل وإرفاق إبرة 25 جرام.
  12. عقد الساق بقوة مع الملقط، عمودياً عبر أنبوب مخروطي 50 مل على الجليد. استخدام المحاقن بلطف ضخ حوالي 5 مل ربمي في نهاية العظام لمسح نخاع العظام من الطرف الآخر في أنبوب مخروطي. مسح نخاع العظام مع ما مجموعة 10 مل ربمي حتى العظم يتحول أبيض.
    ملاحظة: بعد مسح شامل، ينبغي تحويل العظم الأبيض. إذا لم يكن الأمر كذلك، متابعة التنظيف لإزالة نخاع. نهاية الساق البعيدة قد تحتاج إلى يتم اقتطاعها مرة أخرى مع بليد إذا كان ضيق جداً لإدخال الإبرة.
  13. قطع عظم الفخذ مباشرة فوق الركبة وفورا تحت الورك لفضح كل من طرفي للوصول النخاع العظام. مسح نخاع العظم من عظم الفخذ مع ما مجموعة 10 مل ربمي بنفس الطريقة كما الساق.
  14. كرر التنظيف ومسح الخطوات 1.6 من خلال 1.13 مع العظام المتبقية وجمع خلايا نخاع العظام مسح في أنبوب مخروطي واحدة 50 مل
    ملاحظة: إذا كان يكسر العظام عند أي نقطة أثناء التشريح قبل التنظيف العظام، لا تستخدم النخاع من عظم هذا.
  15. مسح الطرد المركزي الأنبوبة المخروطية تستخدم لجمع نخاع العظام من كل العظام الأربعة لمدة 10 دقيقة في 4 درجات مئوية في 300 x ز.
  16. ضع 60 مل من العقيمة بم المتوسطة (ربمي بتركيز نهائي من 20% FBS، 1% البنسلين/ستربتوميسين، 1.2 مم نا-بيروفات، 25 ميكروغرام/مل م البشرية-CSF) إلى 175 سم2 قارورة ثقافة الخليوي مع كاب تصفية.
  17. تجاهل الطرد المركزي التالي طافية وريسوسبيند بيليه الخلية بلطيف صعودا وهبوطاً بيبيتينج استخدام 5 مل متوسطة بم من قارورة.
  18. نقل تعليق خلية إلى قارورة الثقافة وشطف الأنبوبة المخروطية مرتين مع المتوسطة بم من قارورة الثقافة لضمان استرداد خلية القصوى. ضمان دقة يخلط تعليق خلية في المتوسط وتوزيع 30 مل من قارورة ثقافة الخليوي2 سم 175 الأولى إلى ثانية 175 سم2 خلية ثقافة قارورة مع كاب عامل التصفية.
  19. احتضان كل قوارير تحتوي على تعليق خلية 30 مل كل ليلة وضحاها في 37 درجة مئوية، 5% CO2 للسماح بفصل أي تلويث الليفية والضامة المقيم، والخلايا الأخرى ملتصقة.
  20. يوم 1: نقل المادة طافية تحتوي على خلايا غير متمايزة نخاع العظام من قوارير إلى 100 ملم × 15 ملم-التعامل مع TC البوليستيرين بيتري الأطباق في حوالي 10 مل/طبق واحتضان في 37 درجة مئوية، 5% CO2. تجاهل في قوارير.
  21. يوم 3 أو 4: إضافة وسيلة بم إضافية 5 مل (استعد مسبقاً إلى 37 درجة مئوية) لكل طبق بيتري وتستمر الحضانة عند 37 درجة مئوية، 5% CO2.

2-طلاء بنغلادش في كوفيرسليبس للعدوى (يوم 7 أو 8)

  1. إعداد لوحات زراعة الأنسجة 6-جيدا بوضع 4 أربعة العقيمة 12 ملم الزجاج كوفيرسليبس (يعقم والمخزنة في حاوية مغلقة من زجاج) في الجزء السفلي من كل فارغة أيضا.
    ملاحظة: التقاط كل ساترة العقيمة 12 ملم مع تلميح يسفط مزودة بخط فراغ. ضع كوفيرسليبس في الآبار دون التداخل، الإفراج عن عند الموضع المطلوب معسر أنبوب للمقاطعة الفراغ.
  2. أسبيراتي وسائل الإعلام (وأي الخلايا غير ملتصقة) من أطباق بيتري مغلفة بنخاع العظام ملتصقة المستمدة الضامة بلطف الخلايا ملتصقة شطف x 2 مع العقيمة دولبيكو الفوسفات مخزنة المالحة دون كلوريد الكالسيوم والمغنيسيوم (برنامج تلفزيوني--/--) استعد مسبقاً إلى 37 درجة مئوية.
  3. إضافة 5 مل معقمة 1 × برنامج تلفزيوني-/-بتركيز نهائي من 1 مم أدتا إلى كل طبق بيتري دروبويسي، واحتضان لمدة 5 دقائق في 37 درجة مئوية لفصل ملتصقة بنغلادش. تحقق من أن الخلايا هي منفصلة باستخدام مجهر.
  4. جمع كل فصل خلايا معلقة في PBS 1 x-/-تستكمل مع 1 مم يدتا في أنبوب 50 مل مخروطية الشكل. شطف كل طبق x 2 مع 5 مل برنامج تلفزيوني-/-وإضافة إلى تجمع تعليق خلية.
    ملاحظة: قد تضعف تعليق خلية مع برنامج تلفزيوني إضافي-/-لحماية الضامة من سمية يدتا أثناء عملية تجميع.
  5. أجهزة الطرد المركزي في 300 x ز لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية وريسوسبيند الضامة في المتوسط بم 5-10 مل من بيبيتينج. مكان حراكه الخلايا على الجليد لمنع المرفقات إلى أنابيب والتثاقل.
  6. عد الخلايا قابلة للتطبيق باستخدام الاستبعاد تريبان الأزرق في هيموسيتوميتير.
    ملاحظة: لعد الخلايا بم حراكه في المتوسط 5 مل، تمييع مزيجاً من 25 تعليق خلية ميليلتر في برنامج تلفزيوني ميليلتر 445-/-والحل تريبان الأزرق 0.4% 30 ميليلتر عادة يسمح سهلة القياس الكمي في هيموسيتوميتير (مع مراعاة عامل إضعاف 20 x للحساب النهائي ). عد الخلايا فقط لا تحصل الملون مع تريبان الأزرق (خلايا قابلة للتطبيق). قد يكون تغيير حجم الخلية تعليق إذا كان هذا الخليط جداً مركزة أو مخففة. بشكل عام، وعائد بم كل إعداد تتراوح بين 2 × 107 و 5 × 107 خلايا من ماوس واحدة.
  7. إعداد تعليق خلية في المتوسط بم الطلاء المطلوب تركيز (5 × 105/mL) وتفريق تعليق على 6 لوحات جيدا في المتوسط 2 مل كل بئر حتى أن بعضهم يتلقى أيضا الضامة 1 × 106 .
    ملاحظة: هذا هو خطوة حاسمة تكفل كل يحصل جيدا عدد كاف من الضامة لتغطية كوفيرسليبس شكل موحد. تحقق من أن كوفيرسليبس في الآبار غير متداخلة أو العائمة في الأجل المتوسط. إذا كان الأمر كذلك، ضبط بلطف مع تلميح ماصة معقمة.
  8. تبني بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية، وأول أكسيد الكربون 5%2.

3-تنقية المعدية أشكال أمازونينسيس ل.

ملاحظة: تعد ليشمانيا للالتهابات-تنقية بروماستيجوتيس ميتاسيكليك من بروماستيجوتي ثابتة الثقافات8،13، أو تفرق بروماستيجوتيس في الثقافة في نموذج أماستيجوتي باستخدام معيار أمازونينسيس ل. التمايز أكسينيك البروتوكول6،8.

  1. استخدام تنقية ليشمانيا ميتاسيكليك بروماستيجوتيس media(Materials) الكثافة المتدرجة 33
    1. إعداد حل الأسهم 40% من كثافة وسائل الإعلام التدرج في مياه معقمة وخالية من الذيفان.
    2. تمييع الحل كثافة التدرج في 10 x M199 المتوسطة (دون المصل) لإعداد تركيز 10% في المتوسط M199.
    3. تصفية جميع الحلول من خلال 0.22 ميكرومتر التصفية.
      ملاحظة: يمكن تخزين الحلول الأسهم في 4 سج في الظلام للم يعد من شهر 1.
    4. إضافة 2 مل من 40% كثافة وسائل الإعلام التدرج الحل في الجزء السفلي من أنبوب 15 مل المخروطية أجهزة الطرد المركزي.
    5. الطبقة 2 مل من محلول وسائط التدرج 10% كثافة في M199 فوق طبقة وسائط التدرج كثافة 40% بعناية، باستخدام ماصة باستور تجنب أي خلط بين الطبقتين.
    6. جمع 1 × 109 الطفيليات من ثقافة ثابتة-المرحلة بالطرد المركزي في 1,900 س ز لمدة 10 دقائق.
    7. ريسوسبيند الخلايا في تعديل الأساسية المتوسطة (دميم 6 مل دولبيكو).
    8. الطبقة 2 مل تعليق خلية مباشرة أعلى 10% كثافة طبقة التدرج في وسائل الإعلام، بلطف، استخدام ماصة باستور تجنب الخلط بين الطبقات.
    9. الطرد المركزي التدرج لمدة 10 دقيقة في 1,300 س ز في درجة حرارة الغرفة.
      ملاحظة: بسبب الاختلافات في الخواص الفيزيائية بين الأنواع الليشمانيا ، شروط الطرد المركزي لكل قد تعدل قليلاً لضمان أقصى غلة.
    10. جمع الطفيليات (التخصيب في شكل metacyclic promastigote) من الفرقة تشكلت في حدود التدرج الإعلامي الأعلى 10% كثافة (واجهة بين 0% و 10% كثافة وسائل الإعلام متدرجة الطبقات).
    11. تمييع الطفيليات مع حجم واحد من دميم وجمع بالطرد المركزي (ز س 1,900 لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة).
    12. ريسوسبيند في 500 ميليلتر دميم المتوسطة والاعتماد في هيموسيتوميتير لقياس العائد.
  2. جيل amastigotes أمازونينسيس L. تحت الظروف الثقافة أكسينيك (pH منخفضة/مرتفعة الحرارة)6،،من813
    1. استخدام 25 سم2 قوارير (متوسط إجمالي 10 مل) مل 5 ميكس المرحلة سجل promastigote الثقافة (درجة الحموضة 7.4 في 26 سج) مع حجم متساوية من أماستيجوتي المتوسطة (pH 4.5)، واحتضان عند 26 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
    2. التحول قارورة من 26 درجة مئوية إلى 32 درجة مئوية.
    3. بعد 3 أو 4 أيام، تقسيم الثقافة 1:5 في وسائل الإعلام أماستيجوتي في 32 درجة مئوية.
    4. فحص الطفيليات في 3-4 خلال الأيام القادمة (7 أيام كحد أقصى) لمعرفة ما إذا كانت جاهزة للاستخدام في حالات العدوى.
      ملاحظة: يجب أن يكون amastigotes أكسينيك صحية على شكل بيضاوي، دون سياط مرئية. وقد amastigotes متمايزة جزئيا شكل بيضاوي كبير بسياط قصيرة. الثقافة لا ينبغي أن يكون الكثير من كتل-العديد من كتل مؤشرا على عدم النمو، موت الطفيليات. يمكن تقسيم 1:5 ثقافة أماستيجوتي وصيانتها لمدة أقصاها 3 أسابيع.

4-العدوى مع أمازونينسيس ل.

  1. تمييع المعلقات الطفيلي ووفقا لوزارة الداخلية المطلوب (عادة 3-5 ميتاسيكليك بروماستيجوتيس الواحد بلعم [موي من 1:3 أو 1:5]) وأماستيجوتي 1 كل بلعم [موي 1:1]. إضافة الليشمانيا في برنامج تلفزيوني-/-في مجلد من 50-100 ميليلتر لكل بئر الفعل الذي يتضمن متوسطة 2 مل.
  2. احتضان بنغلادش ح 1 مع amastigotes وح 3 مع بروماستيجوتيس ميتاسيكليك في 34 سج للعدوى.
    ملاحظة: قد تختلف درجات الحرارة المثلى الإصابة بالأنواع.
  3. بعد الحضانة، دقة يغسل الطفيليات الحرة في كل س 3 جيدا مع 2 مل برنامج تلفزيوني-/-المعالجون مسبقاً إلى 37 درجة مئوية.
    ملاحظة: تفريق برنامج تلفزيوني برفق التأكد من أن كوفيرسليبس لا تطفو فوق بعضها البعض. بلطف دوامة اللوحة وثم نضح بها السائل. استخدام تلميح يسفط منفصلة إذا كان استخدام سلالات متعددة من الطفيليات لتجنب التلوث المتبادل.
  4. إصلاح ح 1 أو 3 ح عينات النقطة الزمنية التي تفرخ كل جيدا مع مل 1.5-2% 2 يغسل منهاج العمل في برنامج تلفزيوني-/-لأدنى 10 x 3 مع برنامج تلفزيوني-/-. لا نضح يغسل الماضي ولوحات تحتوي على كوفيرسليبس في برنامج تلفزيوني حتى تلطيخ في الثلاجة.
  5. إضافة 2 مل الطازجة بم المتوسطة لكل بئر على لوحات للمزيد من النقاط الزمنية واحتضان في 34 درجة مئوية.
  6. إصلاح النقاط الزمنية المتبقية المطلوبة كما هو موضح في الخطوة 4، 3، ولوحات في الثلاجة حتى تلطيخ.

5-DAPI تلطيخ وتصاعد ساترة

  1. نضح برنامج تلفزيوني من الآبار التي تحتوي على كوفيرسليبس وإضافة 1.5 مل برنامج تلفزيوني-/-مع المنظفات غير الأيونية 0.1%. احتضان لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة، تليها غسل 3 x مع 2 مل برنامج تلفزيوني-/-.
  2. أضف 1 مل برنامج تلفزيوني-/-مع 2 ميكروغرام/مل DAPI (المخفف من حل الأسهم 5 ملغ/مل في الماء) للآبار التي تحتوي على كوفيرسليبس واحتضانها لآخر ح 1 في درجة حرارة الغرفة.
    ملاحظة: فترة الحضانة مع DAPI أمر حاسم للتصور السليم لطفيليات الليشمانيا داخل الخلايا. بلعم نويات وصمة عار سريعاً، نظراً لحجم أكبر والحمض النووي المحتوى ولكن تلطيخ نويات الطفيليات داخل الخلايا أبطأ. وبالتالي، تمديد الوقت حضانة يتجاوز ما هو مطلوب لتصور الأنوية بم ضروري للسماح DAPI أن تتخلل من خلال غشاء البلازما الطفيلي، والغشاء النووي الطفيلي. بمناسبة DAPI وصمة، كينيتوبلاست الميتوكوندريا الحمض النووي قرب جيب فلاجلر الطفيليات يمكن أيضا تصور، بالإضافة إلى الحمض النووي.
  3. أغسل كل جيدا يحتوي على كوفيرسليبس 3 x 2 مل برنامج تلفزيوني-/-ورفع آنذاك وكوفيرسليبس الوجه بالملقط وضع الجانب خلية لأسفل وجبل على الزجاج المجهر الشرائح مع كاشف تصاعد أنتيفادي متاحة تجارياً.
    ملاحظة: كوفيرسليبس هشة للغاية، وتحتاج إلى التعامل مع الحذر. تجنب الضغط عليها، لا سيما ضد جدار الآبار عند رفع. إضافة بضع قطرات من برنامج تلفزيوني-/-يقلل من التوتر السطحي بين ساترة وجيدا ويسهل عملية الرفع. يمكن استخدام إبرة مقياس جيد للمساعدة في التحديق في كوفيرسليبس من أسفل البئر. بعد وضع ساترة على الشريحة، اضغط برفق إلى أسفل مع الملقط على طرد أي فقاعات الهواء في وسائل الإعلام المتزايدة. إذا كانت ساترة مكسورة أو ربما قد انقلبت أثناء عملية الرفع، لا قم بإعادة تحميل؛ ببساطة استخدام ساترة الرابعة قطع الغيار.
  4. بردت الشرائح حتى القياس الكمي.

6-الإصابة بالتحديد الكمي

  1. دراسة DAPI الملون الشرائح تحت مجهر الأسفار بالتركيز على استخدام عدسة الهدف X 100 مع زيت الغمر الضامة (الإثارة في 358 نانومتر؛ والانبعاثات الأمثل في 461 nm).
    ضمان أن يتم التركيز على طبقة الضامة بين الشرائح الزجاجية وساترة.
  2. التحديد الكمي لعدد الضامة (نواة كبيرة ملطخة DAPI) وعدد الأنوية أماستيجوتي أصغر تتجمع حول كل نواة بلعم (انظر الشكل 2 أ، DAPI) لكل مجال الرؤية، باستخدام عداد يدوي.
    ملاحظة: نوى أماستيجوتي قد لا تكون كلها مرئية في طائرة واحدة من التركيز بسبب صغر حجمها. عد تلك التي تظهر عندما ركزت على نويات بلعم، وثم استخدم تركيز جيد للتحقق من وجود نويات الطفيلي في الطائرات المذكورة أعلاه وأدناه الأنوية بلعم.
  3. الانتقال إلى آخر مجال الرؤية لتكرار القياس الكمي. استخدام مفتاح عداد منفصل لتعقب عدد الحقول التي تم عدها. التنقل خلال الحقول البصرية في صفوف موازية عبر كل ساترة، للحيلولة دون العد التداخل.
  4. تحديد الحد أدنى من 200 الضامة كل ساترة. تحديد حجم كل الوقت نقطة الإصابة في ثلاث نسخ (كوفيرسليبس 3). عد ساترة الرابعة إذا لم يكن أحد من السابق مناسبة لعد بسبب تداخل ساترة، تصاعد الفقراء، وكسر الزجاج، إلخ
    ملاحظة: إذا كان لا يمكن عدها الضامة 200 في أي واحدة ساترة، عد قطع الغيار الرابع.
  5. حساب معدلات الإصابة الضامة بلعم amastigotes/أو amastigotes/100 وتحديد نسبة الضامة المصابة من البيانات الخام القياس الكمي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليشمانيا بشكلين المعدية-بروماستيجوتيس ميتاسيكليك التي تميز من بروماستيجوتيس بروسيكليك في المرحلة ثابتة للثقافة، و amastigotes، وهي مراحل داخل الخلايا (الشكل 1). في بعض الأنواع الليشمانيا مثل ل. أمازونينسيس، amastigotes يمكن أيضا أن تكون متباينة في الثقافة أكسينيك بتحويل الخلايا بروماستيجوتي إلى انخفاض الأس الهيدروجيني (4.5) ودرجة حرارة مرتفعة (32 درجة مئوية) وظروف مماثلة لتلك التي عثر عليها داخل PVs بم 8

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

البيانات الكمية المنتجة بفحص الإصابة بم الموصوفة أعلاه، يسمح للمحققين الحصول على معدلات الإصابة وتحديد التغيرات في خصائص الفوعة موثوق بها في فترة زمنية قصيرة نسبيا (الحد الأقصى 2 أسابيع، مقارنة إلى 2 أشهر المطلوبة لإجراء تجارب عليها في فيفو ). ويعتمد هذا الأسلوب على صبغ الحمض النووي محددة DAPI، على وجه التحديد البقع نويات بلعم والطفيلي، ويتيح التعرف السريع والتقدير الكمي للخلايا المصابة. وبالمقارنة، ربط البقع الأخرى مثل جيمسا لعدد كبير من المكونات الخلوية المختلفة بدرجات متفاوتة، إلى تعقيد التحليل المرئي

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب يعلن لديهم لا تضارب المصالح المالية،

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأيد هذا العمل المعاهد الوطنية للصحة منحة RO1 AI067979 نوا.
يك هو المتلقي للزمالات الجامعية من هوارد هيوز الطبي معهد/جامعة "ماريلاند كوليدج بارك".

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
6 لوحة ثقافة خلايا البئرCellstar657160
AdenineAcros OrganicsAC147440250
Aerosol Barrier Pipet Tips (100-1000 & mu ؛ L)Fisherbrand02-707-404
نصائح ماصة حاجز الهباء الجوي (20-200 & mu; L)Fisherbrand02-707-430
نصائح ماصة حاجز الهباء الجوي (2-20 & mu; L)Fisherbrand02-707-432
شفرة جراحية من الصلب الكربوني Bard-Parker Rib-Back # 10Aspen Surgical371110
BD Luer-Lok Tip 10 مل حقنةBecton Dickinson (BD)309604
BD Precisionglide Needle ، 25G & nbsp ؛Becton Dickinson (BD)305124
طبق زراعة الخلايا 35 مم × 10 ممCellstar627 160
قارورة ثقافة الخليةCellstar660175
غطاء النظارات: دوائر 12 ممFisherbrand12-545-80
DAPI (4 '، 6-Diamidino-2-Phenylindole ، ثنائي هيدروكلوريد)InvitrogenD1306
D-BiotinJT. بيكرC272-00
EDTAسيجما ألدريتشEDS
كحول إيثيلي 200 برهانفارمكو AAPER111000200
فالكون 100 مم × 15 مم طبق بتري البوليسترين غير المعالج ب TCكورنينج351029
مصل الأبقار الجنينيSeradigm1500-500
Ficoll400Sigma AldrichF8016
مجهر مضاننيكونE200
الماعز المضاد للفأر IgG تكساس الأحمرInvitrogenT-862
الماعز المضاد للأرانب IgG AlexaFluor488InvitrogenA-11034
HeminTokyo Chemical Industry Co. LtdH0008
HEPES (1M)Gibco15630-080
Isoton II المخففبيكمان كولتر8546719
L-GlutamineGemini400-106
متوسط 199 (10X)Gibco11825-015
Na pyruvate (100 mM)Gibco11360-070
ParaformaldehydeAlfa Aesar43368
Penicillin / StreptomycinGemini400-109
ملحي مخزن بالفوسفات (-/-)من مادة البولي بروبيلين ThermoFisher
15 ملCellstar188 271
أنابيب الطرد المركزي المخروطية من مادة البولي بروبيلين 50 ملCellstar227 261
كاشف ProLong Gold المضاد للبهتانThermoFisherP36930
مصباح الفئران المضاد للفأر -1دراسات النمو بنك الورم الهجين1D4B
المؤتلف البشري M-CSFPeproTech300-25
Reichert Bright-Line  مقياس الدم  Hausser Scientific1492
RPMI Medium 1640 (1X)Gibco11875-093
Triton X-100 SurtuantMillipore SigmaTX1568-1
Trypan BlueSigma AldrichT8154
مقص رقيق ، 4 1/2 "VWR82027-582
ملقط تشريح ، طرف ناعمVWR82027-386
شرائح المجهرVWR16004-368
Z1 عداد الجسيمات كولتر ، عتبة مزدوجةبيكمانكولتر 6605699
محلول أنابيب الطرد المركزي المخروطية 14200166

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. WHO. Control of the leishmaniases. World Health Organ Tech Rep Ser. (949), (2010).
  2. Naderer, T., McConville, M. J. Intracellular growth and pathogenesis of Leishmania parasites. Essays Biochem. 51, 81-95 (2011).
  3. Rosenzweig, D., et al. Retooling Leishmania metabolism: from sand fly gut to human macrophage. FASEB J. 22 (2), 590-602 (2008).
  4. Lahav, T., et al. Multiple levels of gene regulation mediate differentiation of the intracellular pathogen Leishmania. The FASEB Journal. 25 (2), 515-525 (2011).
  5. Saunders, E. C., et al. Induction of a stringent metabolic response in intracellular stages of Leishmania mexicana leads to increased dependence on mitochondrial metabolism. PLoS Pathog. 10 (1), e1003888(2014).
  6. Mittra, B., et al. Iron uptake controls the generation of Leishmania infective forms through regulation of ROS levels. J Exp Med. 210 (2), 401-416 (2013).
  7. Kloehn, J., et al. Using metabolomics to dissect host-parasite interactions. Curr Opin Microbiol. 32, 59-65 (2016).
  8. Huynh, C., Sacks, D. L., Andrews, N. W. A Leishmania amazonensis ZIP family iron transporter is essential for parasite replication within macrophage phagolysosomes. J Exp Med. 203 (10), 2363-2375 (2006).
  9. Flannery, A. R., Huynh, C., Mittra, B., Mortara, R. A., Andrews, N. W. LFR1 Ferric Iron Reductase of Leishmania amazonensis Is Essential for the Generation of Infective Parasite Forms. J Biol Chem. 286 (26), 23266-23279 (2011).
  10. Miguel, D. C., Flannery, A. R., Mittra, B., Andrews, N. W. Heme uptake mediated by LHR1 is essential for Leishmania amazonensis virulence. Infect Immun. 81 (10), 3620-3626 (2013).
  11. Cortez, M., et al. Leishmania Promotes Its Own Virulence by Inducing Expression of the Host Immune Inhibitory Ligand CD200. Cell Host Microbe. 9 (6), 463-471 (2011).
  12. Mittra, B., Andrews, N. W. IRONy OF FATE: role of iron-mediated ROS in Leishmania differentiation. Trends Parasitol. 29 (10), 489-496 (2013).
  13. Mittra, B., et al. A Trypanosomatid Iron Transporter that Regulates Mitochondrial Function Is Required for Leishmania amazonensis Virulence. PLoS Pathog. 12 (1), e1005340(2016).
  14. Ben-Othman, R., et al. Leishmania-mediated inhibition of iron export promotes parasite replication in macrophages. PLoS Pathog. 10 (1), e1003901(2014).
  15. Renberg, R. L., et al. The Heme Transport Capacity of LHR1 Determines the Extent of Virulence in Leishmania amazonensis. PLoS Negl Trop Dis. 9 (5), e0003804(2015).
  16. McConville, M. J. Metabolic Crosstalk between Leishmania and the Macrophage Host. Trends Parasitol. 32 (9), 666-668 (2016).
  17. Carrera, L., et al. Leishmania promastigotes selectively inhibit interleukin 12 induction in bone marrow-derived macrophages from susceptible and resistant mice. J Exp Med. 183 (2), 515-526 (1996).
  18. Hsiao, C. H., et al. The effects of macrophage source on the mechanism of phagocytosis and intracellular survival of Leishmania. Microbes Infect. 13 (12-13), 1033-1044 (2011).
  19. Murray, A. S., Lynn, M. A., McMaster, W. R. The Leishmania mexicana A600 genes are functionally required for amastigote replication. Mol Biochem Parasitol. 172 (2), 80-89 (2010).
  20. Farias Luz, N., et al. RIPK1 and PGAM5 Control Leishmania Replication through Distinct Mechanisms. J Immunol. 196 (12), 5056-5063 (2016).
  21. Franco, L. H., et al. Autophagy downstream of endosomal Toll-like receptor signaling in macrophages is a key mechanism for resistance to Leishmania major infection. J Biol Chem. 292 (32), 13087-13096 (2017).
  22. da Silva, M. F., Zampieri, R. A., Muxel, S. M., Beverley, S. M., Floeter-Winter, L. M. Leishmania amazonensis arginase compartmentalization in the glycosome is important for parasite infectivity. PLoS One. 7 (3), e34022(2012).
  23. Carneiro, P. P., et al. The Role of Nitric Oxide and Reactive Oxygen Species in the Killing of Leishmania braziliensis by Monocytes from Patients with Cutaneous Leishmaniasis. PLoS One. 11 (2), e0148084(2016).
  24. Siqueira-Neto, J. L., et al. An image-based high-content screening assay for compounds targeting intracellular Leishmania donovani amastigotes in human macrophages. PLoS Negl Trop Dis. 6 (6), e1671(2012).
  25. Pastor, J., et al. Combinations of ascaridole, carvacrol, and caryophyllene oxide against Leishmania. Acta Trop. 145, 31-38 (2015).
  26. Giarola, N. L., et al. Leishmania amazonensis: Increase in ecto-ATPase activity and parasite burden of vinblastine-resistant protozoa. Exp Parasitol. 146, 25-33 (2014).
  27. Sacks, D. L., Melby, P. C. Animal models for the analysis of immune responses to leishmaniasis. Curr Protoc Immunol. , Chapter 19 Unit 19 12(2001).
  28. Tabbara, K. S., et al. Conditions influencing the efficacy of vaccination with live organisms against Leishmania major infection. Infect Immun. 73 (8), 4714-4722 (2005).
  29. Price, J. V., Vance, R. E. The macrophage paradox. Immunity. 41 (5), 685-693 (2014).
  30. Huynh, C., Andrews, N. W. Iron acquisition within host cells and the pathogenicity of Leishmania. Cell Microbiol. 10 (2), 293-300 (2008).
  31. Blackwell, J. M., et al. SLC11A1 (formerly NRAMP1) and disease resistance. Cell Microbiol. 3 (12), 773-784 (2001).
  32. Pinto-da-Silva, L. H., et al. The 3A1-La monoclonal antibody reveals key features of Leishmania (L) amazonensis metacyclic promastigotes and inhibits procyclics attachment to the sand fly midgut. Int J Parasitol. 35 (7), 757-764 (2005).
  33. Spath, G. F., Beverley, S. M. A lipophosphoglycan-independent method for isolation of infective Leishmania metacyclic promastigotes by density gradient centrifugation. Exp Parasitol. 99 (2), 97-103 (2001).
  34. Zilberstein, D., Shapira, M. The role of pH and temperature in the development of Leishmania parasites. Annu Rev Microbiol. 48, 449-470 (1994).
  35. Bates, P. A. Transmission of Leishmania metacyclic promastigotes by phlebotomine sand flies. Int J Parasitol. 37 (10), 1097-1106 (2007).
  36. Bates, P. A., Robertson, C. D., Tetley, L., Coombs, G. H. Axenic cultivation and characterization of Leishmania mexicana amastigote-like forms. Parasitology. 105 (Pt 2), 193-202 (1992).
  37. Frickmann, H., et al. Rapid identification of Leishmania spp. in formalin-fixed, paraffin-embedded tissue samples by fluorescence in situ hybridization. Trop Med Int Health. 17 (9), 1117-1126 (2012).
  38. Seguin, O., Descoteaux, A. Leishmania, the phagosome, and host responses: The journey of a parasite. Cell Immunol. 309, 1-6 (2016).
  39. Wanderley, J. L., Thorpe, P. E., Barcinski, M. A., Soong, L. Phosphatidylserine exposure on the surface of Leishmania amazonensis amastigotes modulates in vivo infection and dendritic cell function. Parasite Immunol. 35 (3-4), 109-119 (2013).
  40. Crauwels, P., et al. Apoptotic-like Leishmania exploit the host's autophagy machinery to reduce T-cell-mediated parasite elimination. Autophagy. 11 (2), 285-297 (2015).
  41. Bringmann, G., et al. A novel Leishmania major amastigote assay in 96-well format for rapid drug screening and its use for discovery and evaluation of a new class of leishmanicidal quinolinium salts. Antimicrob Agents Chemother. 57 (7), 3003-3011 (2013).
  42. Sacks, D. L., Brodin, T. N., Turco, S. J. Developmental modification of the lipophosphoglycan from Leishmania major promastigotes during metacyclogenesis. Mol Biochem Parasitol. 42 (2), 225-233 (1990).
  43. Sacks, D. L. Leishmania-sand fly interactions controlling species-specific vector competence. Cell Microbiol. 3 (4), 189-196 (2001).
  44. McConville, M. J., Turco, S. J., Ferguson, M. A., Sacks, D. L. Developmental modification of lipophosphoglycan during the differentiation of Leishmania major promastigotes to an infectious stage. EMBO J. 11 (10), 3593-3600 (1992).
  45. Sacks, D. L., Hieny, S., Sher, A. Identification of cell surface carbohydrate and antigenic changes between noninfective and infective developmental stages of Leishmania major promastigotes. J Immunol. 135 (1), 564-569 (1985).
  46. Yao, C., Chen, Y., Sudan, B., Donelson, J. E., Wilson, M. E. Leishmania chagasi: homogenous metacyclic promastigotes isolated by buoyant density are highly virulent in a mouse model. Exp Parasitol. 118 (1), 129-133 (2008).
  47. Almeida Marques-da-Silva, E., et al. Extracellular nucleotide metabolism in Leishmania: influence of adenosine in the establishment of infection. Microbes Infect. 10 (8), 850-857 (2008).
  48. Moreira, D., et al. Impact of continuous axenic cultivation in Leishmania infantum virulence. PLoS Negl Trop Dis. 6 (1), e1469(2012).
  49. Svensjo, E., et al. Interplay between parasite cysteine proteases and the host kinin system modulates microvascular leakage and macrophage infection by promastigotes of the Leishmania donovani complex. Microbes Infect. 8 (1), 206-220 (2006).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

DAPI

مقالات ذات صلة