Method Article

استكشاف ميكروبيومي الجذر: استخراج البيانات المجتمع البكتيرية من التربة، ورهيزوسفيري، واندوسفيري الجذر

DOI:

10.3791/57561

May 2nd, 2018

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا، يمكننا وصف بروتوكول للحصول على بيانات تسلسل amplicon التربة ورهيزوسفيري وميكروبيوميس اندوسفيري الجذر. هذه المعلومات يمكن استخدامها للتحقيق في تركيبة وتنوع المجتمعات الميكروبية النباتية المرتبطة، وهي مناسبة للاستخدام مع مجموعة واسعة من الأنواع النباتية.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

التفاعل الحميم بين المضيف النبات والكائنات الحية الدقيقة المرتبطة بها أمر بالغ الأهمية في تحديد النبات اللياقة البدنية، ويمكن أن تعزز التسامح محسنة للضغوط غير الحيوية والأمراض. ميكروبيومي النباتية يمكن أن تكون معقدة للغاية، ومنخفضة التكلفة، غالباً ما أساليب الفائق مثل amplicon-على أساس تسلسل الجين الرنا الريباسي 16S المفضل لوصف تشكيلة الميكروبية والتنوع. اختيار المنهجية المناسبة عند إجراء مثل هذه التجارب غير ذات أهمية حاسمة للحد من التحيزات التي يمكن إجراء التحليل والمقارنة بين العينات والدراسات صعبة. ويصف هذا البروتوكول بالتفصيل منهجية موحدة لجمع واستخراج الحمض النووي من التربة ورهيزوسفيري، وعينات الجذر. بالإضافة إلى ذلك، تسلط الضوء على خط أنابيب تسلسل amplicon الرنا الريباسي 16S راسخة التي تسمح لاستكشاف تركيبة المجتمعات البكتيرية في هذه العينات، ويمكن تكييفها بسهولة لجينات علامة أخرى. هذا الخط قد تم التحقق من صحة لمجموعة متنوعة من أنواع النباتات، بما في ذلك الذرة، والذرة والقمح، والفراولة، والاغاف، ويمكن أن تساعد في التغلب على القضايا المرتبطة بالتلوث من العضيات النباتية.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ميكروبيوميس المرتبطة بالنباتات تتكون من المجتمعات الميكروبية دينامية ومعقدة تتألف من البكتيريا، العتيقات، والفيروسات والفطريات وغيرها من الكائنات الدقيقة حقيقية النواة. بالإضافة إلى دورها مدروسة في التسبب في أمراض النباتات، الميكروبات المرتبطة بالنبات يمكن أيضا التأثير إيجابيا الصحة النباتية بتحسين التسامح الإجهادات الحيوية واللاحيويه وتعزيز توافر المغذيات، وتعزيز نمو النبات من خلال إنتاج فيتوهورمونيس. ولهذا السبب، يوجد اهتمام خاص في وصف الأصناف التي تربط بجذر نبات اندوسفيريس، ورهيزوسفيريس، والتربة المحيطة بها. بينما يمكن أن تكون بعض الميكروبات المستزرعة في عزلة في مختبر الوسائط التي تم إنشاؤها، كثير لا يمكن، جزئيا لأنها قد تعتمد على علاقات تكافلية مع غيرها الميكروبات، تنمو ببطء شديد، أو تتطلب الظروف التي لا يمكن تكرارها في بيئة معمل. لأنها تلتف الحاجة إلى زراعة وغير مكلفة نسبيا وعالية الإنتاجية، على أساس تسلسل النشوء والتطور التنميط العينات البيئية وما يرتبط بها المضيف الميكروبية أصبحت طريقة مفضلة للمعايرة المجتمع الميكروبي تكوين.

اختيار التكنولوجيات التسلسل الملائم توفيرها من قبل مختلف الجيل التالي التسلسل (خ ع) منصات1 يتوقف على احتياجات المستخدمين، مع العوامل الهامة بما في ذلك: التغطية المطلوبة، وطول أمبليكون، يتوقع المجتمع التنوع، فضلا عن تسلسل نسبة الخطأ، وطول القراءة، وفي التكلفة--كل--التشغيل/مجباس. هو متغير آخر يحتاج إلى النظر في التجارب المستندة إلى amplicon التسلسل سوف تفصيل ما هي الجينات، وسوف تستخدم كبسولة تفجير ما. عند تصميم أو اختيار الإشعال، كثيرا ما يجبر الباحثين جعل المفاضلات بين الطابع العالمي للتضخيم وقرار التقسيم يمكن تحقيقه من أمبليكونس الناتجة عن ذلك. ولهذا السبب، اختيار هذه الأنواع من الدراسات غالباً ما الإشعال وعلامات التي تستهدف مجموعات فرعية محددة ميكروبيومي بصورة انتقائية. تقييم تكوين المجتمعات البكتيرية شيوعاً أنجزه تسلسل واحد أو أكثر من مناطق هايبرفاريابل 16S البكتيرية الرنا الريباسي الجين2،3. في هذه الدراسة، يصف لنا أمبليكون أساس تسلسل البروتوكول وضع لمنصة خ ع تلك الأهداف 500 bp V3-V4 المنطقة الجينات الرنا الريباسي 16S البكتيرية، التي تسمح للتضخيم واسعة من الأنواع البكتيرية مع تقلب كافية لتوفير التمييز بين الأنواع المختلفة. بالإضافة إلى ذلك، يمكن بسهولة أن هذا البروتوكول تطويعها للاستخدام مع مجموعات التمهيدي الأخرى، مثل تلك التي تستهدف علامة ITS2 للفطريات أو وحدة فرعية الرنا الريباسي 18S حقيقيات النوى.

بينما الآخر النهج مثل metagenomics بندقية، وميتاترانسكريبتوميكس، وتسلسل خلية واحدة، توفر مزايا أخرى بما في ذلك حل الجينومات الميكروبية والقياس المباشر أكثر من وظيفة المجتمع، هذه التقنيات عادة أكثر ووصف مكلفة ومكثفة حسابياً من التنميط النشوء والتطور هنا4. بالإضافة إلى ذلك، أداء metagenomics بندقية وميتاترانسكريبتوميكس على عينات الجذر غلة نسبة مئوية كبيرة من القراء الذين ينتمون إلى جينوم النبات المضيف، وأساليب للتغلب على هذا القيد لا يزال حاليا نمواً5،6.

كما هو الحال مع أي برنامج تجريبي، على أساس amplicon التنميط يمكن إدخال عدد من التحيزات المحتملة التي ينبغي أن ينظر فيها أثناء تحليل التصميم والبيانات التجريبية. وتشمل هذه الأساليب لجمع العينات، والحمض النووي استخراج وانتقاء من [بكر] كبسولة تفجير، وكيف يتم إعداد مكتبة. يمكن أن يؤثر تأثيراً كبيرا على كمية البيانات للاستخدام التي تم إنشاؤها بأساليب مختلفة، ويمكن أن يعوق الجهود المبذولة لمقارنة النتائج بين الدراسات. على سبيل المثال، الأسلوب لإزالة البكتيريا رهيزوسفيري7 واستخدام تقنيات الاستخراج مختلفة أو الاختيار من الحمض النووي استخراج مجموعات8،9 قد ثبت أن تأثير كبير تحليل المتلقين للمعلومات، الأمر الذي يؤدي إلى استنتاجات مختلفة فيما يتعلق بأي من الميكروبات الحاضر وعلى وفرة نسبية. حيث يمكن تخصيصها على أساس amplicon التنميط، أن إجراء مقارنات عبر الدراسات يمكن أن يكون تحديا. وقد اقترح المشروع ميكروبيومي الأرض استفادة الباحثين دراسة النظم المعقدة مثل ميكروبيومي المرتبطة بالنبات من تطوير بروتوكولات موحدة كوسيلة لتقليل التقلبات الناجمة عن تطبيق أساليب مختلفة بين الدراسات10،11. هنا، نحن مناقشة العديد من المواضيع المذكورة أعلاه وتقديم اقتراحات بشأن أفضل الممارسات بحيث المناسبة.

البروتوكول يوضح عملية جمع التربة، رهيزوسفيري، وعينات الجذر من السرغوم ذو لونين واستخراج الحمض النووي باستخدام الحمض النووي عزلة طقم راسخة11. بالإضافة إلى ذلك، لدينا بروتوكول يتضمن سير عمل تسلسل amplicon مفصلة، باستخدام منصة خ ع تستخدم عادة، لتحديد هيكل المجتمعات البكتيرية12،،من1314. وقد تم التحقق من هذا البروتوكول لاستخدامها في طائفة واسعة من مضيفي النباتات في دراسة نشرت مؤخرا من الجذور، رهيزوسفيري، والتربة المرتبطة 18 monocot الأنواع بما في ذلك السرغوم ذو لونين، ميس زيا، و قمح أيستيفوم15. هذا الأسلوب كما تم التحقق من للاستخدام مع جينات علامة أخرى، كما تجلى في التطبيق الناجح لدراسة الجينات علامة ITS2 الفطرية في دراسات الأغاف ميكروبيومي16،17 والفراولة ميكروبيومي 18.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1-جمع وفصل من الجذر اندوسفيري، رهيزوسفيري، وعينات من التربة

  1. قبل الدخول إلى الميدان، اﻷوتوكﻻف الماء عالي النقاوة (على الأقل 90 مل مياه كل عينة) لتعقيم. إعداد الهوائي إزالة المخزن المؤقت (على الأقل 25 مل كل عينة) عن طريق إضافة 6.75 ز خ2ص4و 8.75 ز ك2هبو41 مل من X-100 تريتون، إلى 1 لتر الماء المعقم. تعقيم المخزن المؤقت باستخدام عامل تصفية فراغ مع 0.2 حجم المسام ميكرومتر.
    1. للحصول على خطوات 1.2 إلى 1.5 ارتداء قفازات نظيفة معقمة مع الإيثانول في جميع الأوقات واستبدال القفازات بين كل عينة لمنع التلوث. تعقيم جميع المعدات مع الإيثانول 70% ومسح تنظيف جميع المعدات بين العينات. قبل أخذ العينات، تحديد عمق العينة المثلى للتجربة، وتكون متسقة مع جميع مجموعات التربة والجذر.
  2. لجمع عينات التربة السائبة، استخدم جامع أساسية الإيثانول تعقيم تربة للحصول على التربة التي خالية من جذور النباتات بتجميع نواة تقريبا من 23 إلى 30 سم من قاعدة النبات.
  3. نقل التربة بكيس من بلاستيك وتجانسه التربة التي تهز لطيف ونقل قاسمة عينة التربة (حوالي 600 مغ) لملء أنبوب 2 مل واحد. فورا وضع أنبوب 2 مل على الثلج الجاف أو فلاش تجميد الأنبوب في سائل ن2 حتى على استعداد للمضي قدما في استخراج الحمض النووي (الخطوة 2).
    1. في بعض البيئات، التربة المحيطة بها يمكن أن تحتوي على المواد النباتية. في هذه الحالة، استخدم غربال معقمة 2 مم لفصل الحطام النبات من التربة قبل وضعها في الكيس من البلاستيك.
  4. جمع الجذر ورهيزوسفيري، استخدم مجرفة تعقيم الإيثانول لحفر المصنع، مع الحرص على الحصول على قدر من الجذر ممكن. العمق مرهون بالمصنّع. في حين يمكن إزالة النباتات الصغيرة مثل القمح بحفر عدة سنتيمترات، قد تتطلب أكبر من النباتات مثل الذرة 30 سم أو أكثر. بلطف التخلص من التربة الزائدة من الجذور حتى يكون هناك حوالي 2 ملم تربة الانضمام إلى سطح الجذر.
    ملاحظة: العناية عند العمل مع محطات صغيرة، ذات الجذور الهشة، أو في التربة الجافة، والطين عالية المحتوى. ومن الناحية المثالية، ينبغي أن يكون هناك فقط طبقة رقيقة من التربة المتبقية على الجذور بعد الهز. إذا بقيت مجاميع كبيرة من التربة، يمكن استخدام مطرقة مطاطية لإزاحة التربة بلطف ضرب القاعدة لتبادل لإطلاق النار. إذا تجاوزت كمية التربة المتبقية بعد هذه العملية أو يقصر عن 2 مم، الجدير بسماكة تقريبية.
  5. للمنشآت الكبيرة، استخدام مقص معقم و/أو مقص لقص فقرة تمثيلية من جذورها ووضع حد أدنى من 500 ملغ أنسجة الجذر في قنينة مخروطية 50 مل. للأعشاب أصغر، وضع النظام بأكمله الجذر إلى القنينة. إضافة المخزن المؤقت لإزالة الهوائي ما يكفي تغطية الجذور، ثم وضع العينة فورا على الثلج الجاف أو فلاش تجميد العينة في سائل ن2.
    ملاحظة: الحرص على عدم أوفيرفيل القنينة المخروطية 50 مل، أنها سوف تجعل الغسيل خطوة صعبة. ينبغي أن تكون هناك مساحة فارغة كافية يكون المخزن المؤقت الهوائي قادرة على التدفق إلى الأسفل وتحيط الجذور في جميع أنحاء القنينة، وتغطية الأعلى. نظراً لأن بعض الأعشاب قد الكتلة الأحيائية الجذرية أكثر مما تحتويه في قنينة مخروطية 50 مل، ينبغي أن تجمع فرعي من الجذور. ومع ذلك، تجدر الإشارة إلى أن قطع الجذور يمكن أن تؤدي إلى بكتيريا اندوفيتيك التي يجري غسلها في الكسر رهيزوسفيري، وينبغي التقليل من ذلك كسر الجذور. إذا لم تتم معالجة العينات مباشرة بعد عودته إلى مختبر، يمكن تخزينها في-80 درجة مئوية.
  6. فصل في رهيزوسفيري من الجذور، إذابة العينة الجذر على الجليد، ثم sonicate في نماذج الجذر عند 4 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة مع البقول من 160 ث ل 30 s، فصلها بنقل س. 30 الجذور في برود (4 درجة مئوية)، وتنظيف 50 مل الأنبوبة باستخدام الملقط العقيمة. عدم التصرف في الأنبوب الأصلي مع المخزن المؤقت، والتربة، وهو الكسر رهيزوسفيري (الشكل 1).
  7. الطرد المركزي الأنبوب الذي يحتوي على المخزن المؤقت ورهيزوسفيري لفلاش 10 دقيقة عند 4 درجة مئوية، 4,000 س زاي صب المادة طافية، تجميد الأنبوب الذي يحتوي على الكسر رهيزوسفيري في السائل ن2، وتخزين الكسر رهيزوسفيري في-80 درجة مئوية حتى على استعداد للمضي قدما مع الحمض النووي استخراج (الخطوة 2).
  8. لتغسل الجذور، إضافة حوالي 20 مل الماء المعقم المثلجة (4 درجة مئوية) إلى الكسر الجذري. تغسل الجذرية التي تهز بقوة (باليد أو خلاط، ل s 15-30)، ومن ثم استنزاف المياه.
  9. كرر هذه الخطوة مرتين على الأقل، حتى لا يزال أي التربة على سطح الجذر. إذا كان لا يتم استخراج الحمض النووي (الخطوة 2) فورا، التفاف الجذور في رقائق الألومنيوم العقيمة، فلاش تجميد الجذور في سائل ن2، وتخزين العينات في-80 درجة مئوية حتى على استعداد للمضي قدما في استخراج الحمض النووي.

2. استخراج الحمض النووي

ملاحظة: في جميع أنحاء الخطوات 2 و 3، قفازات نظيفة معقمة مع الإيثانول يجب أن تلبس في جميع الأوقات وجميع الأعمال ينبغي أن يقوم على سطح تعقيمها مع الإيثانول.

  1. استخراج الحمض النووي من عينات التربة ورهيزوسفيري.
    1. استخدام ملعقة معقمة بسرعة نقل 250 ملغ من التربة ورهيزوسفيري من الخطوات 1.3 و 1.7 إلى أنابيب مجموعة منفصلة قدمت في مجموعة عزل الحمض النووي تجاري المصممة للاستخراج من التربة، ثم المضي في عزل الحمض النووي باستخدام مجموعة المورد البروتوكول.
    2. بعد التينج تخزين الحمض النووي في المخزن المؤقت المقدمة من عدة عزل الحمض النووي، شطف الحمض النووي في-20 درجة مئوية حتى على استعداد للمضي قدما في الخطوة 3.
  2. استخراج الحمض النووي من عينات الجذر.
    1. البرد تعقيم قذائف الهاون والمدقة باستخدام سائل ن2. قياس بملغ 600 إلى 700 من أنسجة الجذر ووضع الأنسجة في الهاون. بعناية، إضافة كافية السائل ن2 لتغطية الجذور.
    2. طحن الجذور إلى قطع صغيرة. تستمر عملية إضافة السائل ن2 وطحن (مرتين على الأقل، تكون متسقة بين العينات)، حتى تكون الجذور مسحوق ناعم. ضمان أن الأنسجة الجذرية لا ذوبان الجليد أثناء هذه الخطوة.
      تحذير: استخدام معدات الوقاية الشخصية المناسبة (معطف مختبر والنظارات الواقية والقفازات المبردة) عندما تعمل مع سائل ن2.
      ملاحظة: لاستخراج الحمض النووي منخفضة جودة، يمكن أن تكون مفيدة طحن الجذور الزائدة إلى مسحوق وتخزين المسحوق في-80 درجة مئوية.
    3. بسرعة، يبدأ مسحوق قبل الجذر لذوبان الجليد، واستخدام ملعقة عقيمة لنقل مسحوق الجذر إلى أنابيب قبل وزنه 1.5 مل على الجليد. سجل وزن الأنبوبة ومسحوق. عادة، يتم نقل 300-400 ملغ مسحوق.
    4. استخدام ملعقة معقمة بسرعة نقل 150 ملغ مسحوق الجذر إلى أنبوب جمع المنصوص عليها في مجموعة عزل الحمض النووي تجاري المصممة للاستخراج من التربة، ثم المضي في عزل الحمض النووي باستخدام بروتوكول مجموعة المورد.
      ملاحظة: بعض العينات الجذر، يمكن أن يكون تركيز عال من المواد العضوية المتبقية في بيليه الحمض النووي، مما يحول دون تضخيم الحمض النووي خلال PCR، خصوصا عندما بروتوكول استخراج الحمض النووي مختلفة (على سبيل المثال-، استخراج كتاب) يستخدم. إذا لزم الأمر، بتنظيف الحمض النووي باتباع الإرشادات المتوفرة في مجموعة أدوات تنظيف الحمض النووي البيئية.
  3. قياس تركيز جميع عينات من الحمض النووي من فلوروميتير benchtop حساسية عالية باستخدام.
    1. إضافة 1-20 ميليلتر من كل عينة الحمض النووي التيد داخل أنابيب المقدمة في أدوات تحليل حساسية عالية دسدنا. إضافة حل عملي فلوروميتير (1: 200 صبغ: المخزن المؤقت) ما يصل إلى 200 ميليلتر.
    2. إعداد اثنان أنابيب إضافية تحتوي على 10 ميليلتر من الحمض النووي 1 القياسية (0 نانوغرام/ميليلتر الحمض النووي) أو 10 ميليلتر من 2 القياسية (100 نانوغرام/ميليلتر)، وإضافة ميليلتر 190 fluorometer العامل الحل لكل معيار.
    3. قياس تركيز المعايير وكل عينة. إذا لم يتم ذلك تلقائياً، احسب تركيز الحمض النووي من إخراج امتصاص بانحدار خطي اثنين من المعايير.

3-أمبليكون المكتبة إعداد وتقديم

  1. قم بإعداد مواد لرد فعل التضخيم.
    1. ذوبان الجليد عينات من الحمض النووي في 4 درجات مئوية وإبقائهم على الجليد في الخطوة 3. بطريقة عشوائية على نظام عينات الحمض النووي للتقليل من التحيز بسبب الموقع على لوحة بكر (الجدول 2).
    2. في صفيحة بكر 96، حسنا، تمييع الحمض النووي من كل عينة في الماء الجزيئية الصف إلى 5 نانوغرام/ميليلتر في إجمالي حجم 20 ميليلتر. إضافة 20 ميليلتر الجزيئية الصف المياه إلى الآبار الزوايا الأربع كعناصر سلبية للتضخيم (فراغات) (الجدول 2).
    3. ترتيب الإشعال المراقب (10 ميكرومتر) في أنابيب قطاع بكر أو لوحة 96-جيدا أن يمكن إضافتها مع ماصة متعدد القنوات (الشكل 2).
    4. إعداد كاف بكر مزيج الرئيسي تضخيم كل عينة الحمض النووي في ثلاث نسخ. إعداد 1.5 ميليلتر لجيش صرب البوسنة (20 ملغ/مل)، ميليلتر 37.5 مسبقة الصنع 2 x ميكس الرئيسية (تتألف من المخزن المؤقت بكر مجكل2، دنتبس و بوليميراز الدنا بوليميراز)، 0.57 ميليلتر من بلاستيدات الخضراء السلطة الوطنية الفلسطينية (100 ميكرومتر)، 0.57 ميليلتر من السلطة الوطنية الفلسطينية المتقدرية (100 ميكرومتر)، و 25.86 ميليلتر من الماء الصف الجزيئية.
    5. صب المزيج الرئيسي إلى 25 مل عقيمة من خزان ماصة متعددة القنوات وتوزيع ميليلتر 66 من مزيج الرئيسي في كل بئر من صفيحة بكر 96-بئر جديدة استخدام ماصة متعددة القنوات.
      ملاحظة: عند حساب حجم الكاشف لمزيج الرئيسي، تأكد من أيضا تشمل 4 آبار فارغة للوحة الواحدة.
    6. استخدام ماصة متعددة القنوات، إضافة 6 ميليلتر من 5 نانوغرام/ميليلتر الحمض النووي (من لوحة الحمض النووي تم تسويتها) على اللوحة الرئيسية ميكس. ثم إضافة إلى ميليلتر اللوحة الرئيسية 1.5 من 10 ميكرون التمهيدي إلى الأمام كل عمود رمز شريطي مختلفة إلى الأمام، وميليلتر 1.5 من 10 ميكرون عكس التمهيدي كل صف له رمز شريطي عكس مختلفة (الشكل 2) له.
      ملاحظة: قبل إضافة كبسولة تفجير، لوحات تجارب معشاة ومزيج الرئيسي يمكن لتضخيم الجينات الفطرية للبحث عن أو ITS2 إذا أضيفت الإشعال المختلفة. إذا كان هذا هو الحال، يمكن استخدام تصميم التمهيدي مماثلة.
    7. تدور أسفل اللوحة بإيجاز في غ. س 3,000 استخدام ماصة متعدد القنوات المزيج بلطف، ثم تقسم إلى ثلاث لوحات مع 25 ميليلتر من خليط رد فعل.
      ملاحظة: على الرغم من أن replicates الثلاثة ليست ضرورية تماما، فإنه يقلل تأثير التغير التقني.
  2. تضخيم الحمض النووي في كل لوح باستخدام ثيرموسيكلير للشروط التالية: 180 s عند 98 درجة مئوية، 30 دورات من: 98 درجة مئوية ل 45 s (يشوه)، 78 درجة مئوية لمدة 10 ق (السلطة الوطنية الفلسطينية الصلب)، 55 درجة مئوية مقابل 60 s (التمهيدي الصلب)، و 72 درجة مئوية ل 90 s (ملحق) ، 600 ثم اضغط s عند 72 درجة مئوية، يليه 4 درجات مئوية بخطوة. بعد التضخيم، تجمع ثلاث لوحات نسخ متماثل إلى لوحة 96-بئر واحدة واحدة.
  3. تحديد كمية الحمض النووي باستخدام الكواشف fluorometer حساسية عالية في قارئ لوحة 96-جيدا.
    1. إضافة 2 ميليلتر لكل منتج PCR ميكروسكوبية 96، حسنا، جنبا إلى جنب مع ميليلتر 98 fluorometer العامل الحل (1: 200 صبغ: المخزن المؤقت). وتشمل 4 آبار كمعايير: 5 ميليلتر من الحمض النووي 1 القياسية (من 0 نانوغرام/ميليلتر الحمض النووي)، ميليلتر 1 2 القياسية (10 نانوغرام/ميليلتر) و 2 ميليلتر من 2 قياسية (20 نانوغرام/ميليلتر) 5 ميليلتر من 2 القياسية (50 نانوغرام/ميليلتر). قم بإضافة فلوروميتير حل عملي لوحدة تخزين نهائي من 100 ميليلتر.
      ملاحظة: كل عينة يمكن أن تقاس باستخدام فلوروميتير benchtop كما هو موضح في الخطوة 2، 3 إذا لم يتوفر قارئ لوحة.
    2. احسب تركيز الحمض النووي من إخراج امتصاص بانحدار خطي للمعايير الأربعة.
    3. للمراقب بنجاح تضخيم تجمع المنتجات (تلك التي تحتوي تركيز أكبر من 15 نانوغرام/ميليلتر)، 100 نانوغرام لكل عينة في أنبوب واحد 1.5 مل (الجدول 2).
    4. حساب متوسط حجم العينات إضافة إلى التجمع باستخدام الدالة =AVERAGE() في برنامج جدول بيانات. إضافة حجم منتجات PCR "فارغة" للعينات المجمعة.
      ملاحظة: نظراً لمنتجات PCR "فارغة" تركيبات الباركود الفريدة الخاصة بهم، يمكن متسلسلة للتحقق من وجود أي ملوثات المختبر.
  4. قياس تركيز المنتج المجمعة باستخدام فلوروميتير benchtop كما هو موضح في الخطوة 2، 3، وتأخذ 600 نانوغرام من الحمض النووي وتمييع في الماء الجزيئية الصف إلى وحدة تخزين نهائي من 100 ميليلتر في أنبوب 1.5 مل. تخزين المنتج المجمعة المتبقية في-20 درجة مئوية.
  5. يغسل الحمض النووي نغ 600 الكوة باتباع عملية تنقية PCR المقررة مع التنقية باراماجنيتيك الخرز في شكل 96-جيدا مع بعض الاستثناءات القليلة.
    1. جعل ميليلتر 600 جديدة الكوة من الإيثانول 70%. يهز زجاجة الخرز المغناطيسي إعادة تعليق الخرز التي تترسب في القاع.
    2. إضافة 1 x حجم (100 ميليلتر) الحل حبة إلى قاسمة نغ 600 من الحمض النووي. مزيج دقيق من بيبيتينج 10 مرات. احتضان لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    3. ضع الأنبوب على موقف المغناطيسي ل 2 دقيقة (أو حتى الحل الواضح) لفصل حبات من الحل. بينما لا يزال الأنبوب الوقوف المغناطيسي ونضح المادة طافية واضحة بعناية دون لمس الخرز المغناطيسية، وتجاهل المادة طافية واضحة.
      ملاحظة: عند هذه النقطة، المنتجات أمبليكون بد أن الخرز المغناطيسية. أي الخرز التي مطمح الانزعاج أو فقدت خلال سيؤدي إلى فقدان الحمض النووي.
    4. ترك الأنبوب في موقف المغناطيسية وإضافة 300 ميليلتر من الإيثانول 70% إلى الأنبوب؛ احتضان في درجة حرارة الغرفة ل Aspirate س. 30 الإيثانول وتجاهل. كرر هذه العملية، وإزالة جميع الإيثانول بعد الغسيل الثاني. إزالة الأنبوب من موقف المغناطيسية، والهواء الجاف لمدة 5 دقائق.
    5. إضافة 30 ميليلتر من الماء الجزيئية الصف الخرز المجففة ومزيج من بيبيتينج 10 مرات. احتضان في درجة حرارة الغرفة للحد الأدنى 2 عودة الأنبوب بالحامل المغناطيسي لمدة 1 دقيقة لفصل الخرز من الحل. نقل النذرة بأنبوب جديد.
      ملاحظة: المغناطيسي الخرز لن يؤثر على ردود فعل المتلقين للمعلومات.
  6. قياس تركيز النهائي لتنظيفها، والحمض النووي المجمعة باستخدام فلوروميتير benchtop كما هو موضح في الخطوة 2، 3. يضعف قاسمة إلى 10 نانومتر في حجم نهائي 30 ميليلتر، أو لتركيز وحجم المفضل من قبل مرفق التسلسل.
  7. الاستعانة بخدمات مرفق التسلسل لتسلسل الحمض النووي على منصة خ ع، 2 × 300 bp إقران نهاية التسلسل.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ينبغي أن يؤدي تنفيذ البروتوكول الموصى بها في مجموعة بيانات المفهرسة يقرأ نهاية الاقتران يمكن مطابقة مرة أخرى لكل عينة وتم تعيينها إلى أما البكتيريا الوحدات التصنيفية التشغيلية (أسامة) أو متغير التسلسل الدقيق (ESV، كما يشار إلى أمبليكون تسلسل البديل (ASV) ووحدة تصنيفية سوبوبيراشونال (سوتو))، اعتماداً على تحليل المتلقين للمعلومات. من أجل الحصول على بيانات عالية الجودة التسلسل، يجب الحرص في كل خطوة الحفاظ على الاتساق بين العينات والتقليل من إدخال أي تحيز محتمل أثناء تجهيز العينة أو إعداد الم...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا البروتوكول يوضح خط أنابيب ثابتة لاستكشاف اندوسفيري الجذر، رهيزوسفيري، وتركيبة المجتمع الميكروبي التربة، من المعاينة الميدانية لتجهيز العينات وتسلسل المتلقين للمعلومات. دراسة ميكروبيوميس المرتبطة بجذور تحديات فريدة من نوعها، يرجع جزئيا إلى الصعوبات الكامنة في أخذ العينات من التربة. التربة الغاية متغير من حيث الخصائص الفيزيائية والكيميائية، وظروف التربة المختلفة يمكن أن تكون مفصولة أقل قدر بضعة مليمترات28،29. وهذا يمكن أن يؤدي إلى العينات التي جمعت من مواقع أخذ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تمويل هذا العمل من قبل وزارة الزراعة-جمعية الإغاثة اﻷرمنية (كريس 2030-21430-008-00D). الملخص معتمد من قبل "برنامج زمالة بحوث الدراسات العليا جبهة الخلاص الوطني".

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0.1-10 / 20 & مايكرو ؛ L ماصة دقيقة مصفاةالولايات المتحدة الأمريكية العلمية1120-3810يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
1.5 مل أنابيب الطرد المركزيالولايات المتحدة الأمريكية العلمية1615-5510يمكن استبدالها بما يعادل من الموردين الآخرين.
10 وميكرو ؛ L ماصةEppendorf3122000027 متعددةالقنوات يمكن استبدالها بمعادلة من موردين آخرين.
10 وميكرو ؛ لتر ، 100 وميكرو ؛ L ، و 1000 & L الماصات الدقيقةEppendorf3120000909يمكن استبدالها بما يعادلها من موردين آخرين.
100 وميكرو ؛ L ماصةEppendorf3122000043 متعددةالقنوات يمكن استبدالها بمعادلة من موردين آخرين.
1000 & ميكرو; L ماصة دقيقة مصفاة نصائحالولايات المتحدة الأمريكية العلمية1122-1830يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
2 مل أنابيب الطرد المركزيالولايات المتحدة الأمريكية العلمية1620-2700يمكن استبدالها بما يعادل من الموردين الآخرين.
مم غربال التربةالموردينالغابات 60141009يمكن استبدالها بما يعادل من الموردين الآخرين.
200 وميكرو ؛ L متصفى أطراف الماصة الدقيقةالولايات المتحدة الأمريكية العلمية1120-8810يمكن استبدالها بما يعادلها من موردين آخرين.
25 مل خزاناتVWR International LLC89094-664يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
50 مل قوارير مخروطيةالشكل يمكن استبدال Thermo Fisher Scientific352098بما يعادل من موردين آخرين.
500 مل فلاتر فراغ (0.2 & micro; حجم المسام)VWR International LLC156-4020
96 بئر لوحاتالولايات المتحدة الأمريكية العلمية655900
لوحات PCR 96 جيداBioRadHSP9631
Agencourt AMPure XPالخرز Thermo Fisher ScientificNC9933872تعليمات الاستخدام:
https://www.beckmancoulter.com/wsrportal/ajax/downloadDocument/B37419AA.pdf?autonomyId=TP_DOC_150180
& documentName=B37419AA.pdf
رقائق الألومنيومBoardwalk7124يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
مقياس تحليلي بدقة 0.001 جميمكن استبدال Ohaus PioneerPA323بما يعادل من موردين آخرين.
Bioruptor Plus بالموجات فوق الصوتيةDiagenodeB01020001
ألبومين مصل الأبقار (BSA) 20 مجم / ملنيو إنجلاند BiolabsB9000S
جهاز طرد مركزيEppendorf5811000908بما في ذلك محولات دلو لوحة 50 مل و 96 بئر
قفازات مبردةيمكن استبدال Millipore SigmaZ183490بما يعادل من موردين آخرين.
مجموعة DNeasy PowerClean (اختيارية)Qiagen Inc.12877-50سابقا MoBio
DNeasy PowerSoil kitQiagen Inc.12888-100سابقا MoBio
Dry iceأي
DynaMag-2Thermo Fisher Scientific12321Dلا تستبدل
الإيثانولVWR International LLC89125-188يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
أكياس الفريزر بحجم جالونيمكن استبدال ZiplocNAبما يعادلها من موردين آخرين.
جزيئية قارئ الصفيحة الدقيقة Gemini EMاستخدام مقياس فلوري آخر يقرأ لوحا بسعة 96 بئرا من الأعلى.
K2HPO4Sigma-AldrichP3786
KH2PO4Sigma-AldrichP5655
Lab coatWorkriteJ1367يمكن استبداله بما يعادل من موردين آخرين.
سائل N2< / sub>استبدال أيNAبما يعادل من موردين آخرين.
سائل N2< / sub> dewarThermo Fisher Scientific4150-9000يمكن استبداله بما يعادل من الموردين الآخرين.
نظام تنقية المياه فائق النقاء Milli-QMillipore SigmaSYNS0R0WW
أجهزة الطرد المركزي الصغيرةEppendorf5404000014
المياه من الدرجة الجزيئيةتحل محل 4387937Thermo Fisher Scientificبما يعادل من موردين آخرين.
يمكن استبدال MortarsVWR International LLC89038-150بما يعادل من موردين آخرين.
قفازات النتريلThermo Fisher Scientific19167032Bيمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
المناشف الورقية VWRInternational LLCBWK6212يمكن استبدالها بما يعادل من الموردين الآخرين.
فيلم ختم لوحة PCRThermo Fisher ScientificNC9684493
أنابيب شريط PCR الولاياتالمتحدة الأمريكية Scientific1402-2700
PestlesVWR International LLC89038-166يمكن استبداله بما يعادل من موردين آخرين.
ملاعق بلاستيكيةLevGo، Inc.17211
بلاتينيوم هوت ستارت بي سي آر ماستر ميكس (2x)ثيرمو فيشر 13000014
ال PNAs - البلاستيدات الخضراء والميتوكوندرياPNA BioNAتأكد من التحقق من تسلسل المعلوماتية الحيوية
نظارات واقيةMillipore SigmaZ759015يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
كيوبيت 3.0 مقياس الفلورالحراري فيشر العلميQ33216
كيوبيت dsDNA HS طقم الفحصThermo Fisher ScientificQ32854
مطرقة مطاطية (اختياري)يمكن استبدالأجهزة Ace 2258622بما يعادل من موردين آخرين.
المقصات أو المقصاتVWR International LLC89259-936يمكن استبدالها بما يعادل من موردين آخرين.
يمكن استبدال ShovelHome Depot2597400بما يعادل من موردين آخرين.
مجمع قلب التربة (قطر صغير: < 1 بوصة)يمكن استبدال Ben Meadows221700بما يعادل من موردين آخرين.
يمكن استبدال زجاجات الرشSanta Cruz Biotechnologysc-395278بما يعادل من موردين آخرين.
بادئات قياسية مشفرة محلاة (10 وميكرو ؛ م) (الجدول 1)IDTNA4 nmole Ultramer DNA Oligo مع تحلية قياسية. تم تصميم محول NGS وبرايمر التسلسل (الجدول 1) للاستخدام مع Illumina MiSeq باستخدام كيمياء v3.
ThermocyclerThermo Fisher ScientificE950040015محل ما يعادله من موردين آخرين.
استبدال Triton X-100Sigma-AldrichX100بما يعادل من موردين آخرين.
استبدال قوارب الوزنSpectrum ChemicalsB6001Wبما يعادل من موردين آخرين.
نصائح الدقيقة الدقيقة 2 صغيرة مغناطيس NA يمكن لأجهزة يمكن يمكن أن يمكن أن يحل يمكن يمكن

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Goodwin, S., McPherson, J. D., McCombie, W. R. Coming of age: ten years of next-generation sequencing technologies. Nat Rev Genet. 17 (6), 333-351 (2016).
  2. Soergel, D. A. W., Dey, N., Knight, R., Brenner, S. E. Selection of primers for optimal taxonomic classification of environmental 16S rRNA gene sequences. ISME J. 6 (7), 1440-1444 (2012).
  3. Takahashi, S., Tomita, J., Nishioka, K., Hisada, T., Nishijima, M. Development of a Prokaryotic Universal Primer for Simultaneous Analysis of Bacteria and Archaea Using Next-Generation Sequencing. PLoS One. 9 (8), e105592(2014).
  4. Poretsky, R., Rodriguez-R, L. M., Luo, C., Tsementzi, D., Konstantinidis, K. T. Strengths and Limitations of 16S rRNA Gene Amplicon Sequencing in Revealing Temporal Microbial Community Dynamics. PLoS One. 9 (4), e93827(2014).
  5. Sharpton, T. J. An introduction to the analysis of shotgun metagenomic data. Front Plant Sci. 5, 209(2014).
  6. Jiao, J. -Y., Wang, H. -X., Zeng, Y., Shen, Y. -M. Enrichment for microbes living in association with plant tissues. J Appl Microbiol. 100 (4), 830-837 (2006).
  7. Richter-Heitmann, T., Eickhorst, T., Knauth, S., Friedrich, M. W., Schmidt, H. Evaluation of Strategies to Separate Root-Associated Microbial Communities: A Crucial Choice in Rhizobiome Research. Front Microbiol. 7, 773(2016).
  8. Mahmoudi, N., Slater, G. F., Fulthorpe, R. R., Mahmoudi, N., Slater, G. F., Fulthorpe, R. R. Comparison of commercial DNA extraction kits for isolation and purification of bacterial and eukaryotic DNA from PAH-contaminated soils. Can J Microbiol. 5709, 623-628 (2011).
  9. Vishnivetskaya, T. A., et al. Commercial DNA extraction kits impact observed microbial community composition in permafrost samples. FEMS Microbiol Ecol. 87 (1), 217-230 (2014).
  10. Busby, P. E., et al. Research priorities for harnessing plant microbiomes in sustainable agriculture. PLoS Biol. 15 (3), e2001793(2017).
  11. Thompson, L. R., et al. A communal catalogue reveals Earth's multiscale microbial diversity. Nature. , (2017).
  12. Caporaso, J. G., et al. Ultra-high-throughput microbial community analysis on the Illumina HiSeq and MiSeq platforms. ISME J. 6 (8), 1621-1624 (2012).
  13. Kozich, J. J., Westcott, S. L., Baxter, N. T., Highlander, S. K., Schloss, P. D. Development of a Dual-Index Sequencing Strategy and Curation Pipeline for Analyzing Amplicon Sequence Data on the MiSeq Illumina Sequencing Platform. Appl Environ Microb. 79 (17), 5112-5120 (2013).
  14. Degnan, P. H., Ochman, H. Illumina-based analysis of microbial community diversity. ISME J. 6 (1), 183-194 (2012).
  15. Naylor, D., DeGraaf, S., Purdom, E., Coleman-Derr, D. Drought and host selection influence bacterial community dynamics in the grass root microbiome. ISME J. , (2017).
  16. Desgarennes, D., Garrido, E., Torres-Gomez, M. J., Peña-Cabriales, J. J., Partida-Martinez, L. P. Diazotrophic potential among bacterial communities associated with wild and cultivated Agave species. FEMS Microbiol Ecol. 90 (3), 844-857 (2014).
  17. Coleman-Derr, D., et al. Plant compartment and biogeography affect microbiome composition in cultivated and native Agave species. New Phytol. 209 (2), 798-811 (2016).
  18. De Tender, C., et al. Dynamics in the Strawberry Rhizosphere Microbiome in Response to Biochar and Botrytis cinerea Leaf Infection. Front Microbiol. 7, 2062(2016).
  19. Kapp, J. R., et al. Variation in pre-PCR processing of FFPE samples leads to discrepancies in BRAF and EGFR mutation detection: a diagnostic RING trial. J Clin Pathol. 68 (2), 111-118 (2015).
  20. Simbolo, M., et al. DNA qualification workflow for next generation sequencing of histopathological samples. PLoS One. 8 (6), e62692(2013).
  21. O'Neill, M., McPartlin, J., Arthure, K., Riedel, S., McMillan, N. Comparison of the TLDA with the Nanodrop and the reference Qubit system. J Phys Conf Ser. 307 (1), 012047(2011).
  22. Callahan, B. J., McMurdie, P. J., Rosen, M. J., Han, A. W., Johnson, A. J. A., Holmes, S. P. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 13 (7), 581-583 (2016).
  23. Amir, A., et al. Deblur Rapidly Resolves Single-Nucleotide Community Sequence Patterns. mSystems. 2 (2), e00191-e00116 (2017).
  24. Edgar, R. C. UNOISE2: improved error-correction for Illumina 16S and ITS amplicon sequencing. bioRxiv. , 081257(2016).
  25. Nguyen, N. -P., Warnow, T., Pop, M., White, B. A perspective on 16S rRNA operational taxonomic unit clustering using sequence similarity. NPJ Biofilms Microbiomes. 2, 16004(2016).
  26. Callahan, B. J., McMurdie, P. J., Holmes, S. P. Exact sequence variants should replace operational taxonomic units in marker-gene data analysis. ISME J. , (2017).
  27. Lundberg, D. S., Yourstone, S., Mieczkowski, P., Jones, C. D., Dangl, J. L. Practical innovations for high-throughput amplicon sequencing. Nat Methods. 10 (10), 999-1002 (2013).
  28. O'Brien, S. L., et al. Spatial scale drives patterns in soil bacterial diversity. Environ Microbiol. 18 (6), 2039-2051 (2016).
  29. Fierer, N., Lennon, J. T. The generation and maintenance of diversity in microbial communities. Am J Bot. 98 (3), 439-448 (2011).
  30. Fierer, N. Embracing the unknown: disentangling the complexities of the soil microbiome. Nat Rev Microbiol. 15 (10), 579-590 (2017).
  31. Buckley, D. H., Schmidt, T. M. Diversity and dynamics of microbial communities in soils from agro-ecosystems. Environ Microbiol. 5 (6), 441-452 (2003).
  32. Salter, S. J., et al. Reagent and laboratory contamination can critically impact sequence-based microbiome analyses. BMC Biol. 12, 87(2014).
  33. Weiss, S., Amir, A., Hyde, E. R., Metcalf, J. L., Song, S. J., Knight, R. Tracking down the sources of experimental contamination in microbiome studies. Genome Biol. 15 (12), 564(2014).
  34. Sutlović, D., Definis Gojanović, M., Andelinović, S., Gugić, D., Primorac, D. Taq polymerase reverses inhibition of quantitative real time polymerase chain reaction by humic acid. Croat Med J. 46 (4), 556-562 (2005).
  35. Sutlovic, D., Gamulin, S., Definis-Gojanovic, M., Gugic, D., Andjelinovic, S. Interaction of humic acids with human DNA: proposed mechanisms and kinetics. Electrophoresis. 29 (7), 1467-1472 (2008).
  36. Aleklett, K., Leff, J. W., Fierer, N., Hart, M. Wild plant species growing closely connected in a subalpine meadow host distinct root-associated bacterial communities. PeerJ. 3, e804(2015).
  37. Bogas, A. C., et al. Endophytic bacterial diversity in the phyllosphere of Amazon Paullinia cupana associated with asymptomatic and symptomatic anthracnose. Springerplus. 4, 258(2015).
  38. Hiscox, J., Savoury, M., Müller, C. T., Lindahl, B. D., Rogers, H. J., Boddy, L. Priority effects during fungal community establishment in beech wood. ISME J. 9 (10), 2246-2260 (2015).
  39. Zhang, T., Yao, Y. -F. Endophytic Fungal Communities Associated with Vascular Plants in the High Arctic Zone Are Highly Diverse and Host-Plant Specific. PLoS One. 10 (6), e0130051(2015).
  40. Ghyselinck, J., Pfeiffer, S., Heylen, K., Sessitsch, A., De Vos, P. The effect of primer choice and short read sequences on the outcome of 16S rRNA gene based diversity studies. PLoS One. 8 (8), e71360(2013).
  41. Wintzingerode, F., Landt, O., Ehrlich, A., Göbel, U. B. Peptide nucleic acid-mediated PCR clamping as a useful supplement in the determination of microbial diversity. Appl Environ Microb. 66 (2), 549-557 (2000).
  42. Cruaud, P., Vigneron, A., Lucchetti-Miganeh, C., Ciron, P. E., Godfroy, A., Cambon-Bonavita, M. -A. Influence of DNA extraction method, 16S rRNA targeted hypervariable regions, and sample origin on microbial diversity detected by 454 pyrosequencing in marine chemosynthetic ecosystems. Appl Environ Microb. 80 (15), 4626-4639 (2014).
  43. Yang, B., Wang, Y., Qian, P. -Y. Sensitivity and correlation of hypervariable regions in 16S rRNA genes in phylogenetic analysis. BMC Bioinformatics. 17, 135(2016).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Root Microbiome16S rRNA SequencingSoil DNA ExtractionRhizosphere IsolationRoot EndosphereAmplicon Library PreparationPCR PurificationBacterial Community AnalysisPlant Microbiome ProfilingDNA Isolation Kit

Related Articles