يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

حقن حمض الأولييك في الخنازير كنموذج لمتلازمة الضائقة التنفسية الحادة

9.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/57783

⸱

أكتوبر 26, 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, University Medical Center of the Johannes Gutenberg-University

في هذه المقالة

ملخص

في هذه المقالة، نقدم بروتوكولا للحث على إصابة الرئة الحاد في الخنازير عن طريق الحقن الوريدي المركزي من حمض الأولييك. هذا نموذج حيوان المنشأة لدراسة متلازمة الضائقة التنفسية الحادة (اردز).

الملخص

متلازمة الضائقة التنفسية الحادة مرض العناية المركزة ذات صلة معدلات تتراوح بين 2.2 في المائة و 19 في المائة من المرضى في وحدة العناية المركزة. معاملة السلف العقود الماضية، وعلى الرغم من الضائقة المرضى لا تزال تعاني معدلات الوفيات بين 35 و 40 في المائة. لا تزال هناك حاجة لإجراء مزيد من البحوث لتحسين نتائج المرضى الذين يعانون من الضائقة. مشكلة واحدة هي أنه لا يوجد نموذج واحد الحيوان يمكن أن تحاكي باثوميتشانيسم معقدة من متلازمة الضائقة التنفسية الحادة، ولكن توجد عدة نماذج لدراسة مختلف أجزاء منه. الحقن بحمض الأولييك (OAI)-إصابة الرئة المستحث نموذج راسخة لدراسة استراتيجيات التهوية، توزيع الرئة والميكانيكا والتهوية/التروية في الحيوانات. OAI يؤدي إلى تبادل الغازات ضعف شديد، تدهور ميكانيكا الرئة واضطراب الحاجز الفيولو الشعرية. عيب هذا النموذج هو أهمية الميكانيكية مثيرة للجدل من هذا الطراز، وضرورة الوصول الوريدي المركزي، الذي يمثل تحديا لا سيما في نماذج حيوانية أصغر. في الرئة الموجزة، التي يسببها OAI الإصابة يؤدي إلى النتائج استنساخه في الحيوانات الصغيرة والكبيرة، ومن ثم يمثل نموذجا مناسباً تماما لدراسة الضائقة. ومع ذلك، إجراء مزيد من البحوث من الضروري إيجاد نموذج يحاكي جميع أجزاء من الضائقة، ويفتقر إلى المشاكل المرتبطة بالنماذج المختلفة القائمة اليوم.

المقدمة

متلازمة الضائقة التنفسية الحادة (اردز) هو تناذر العناية المركزة التي درست على نطاق واسع منذ الوصف الأولى قبل حوالي 50 سنة1. هذه الهيئة للبحوث أدت إلى فهم أفضل الفسيولوجيا المرضية ويؤدي تطوير الضائقة مما أدى إلى تحسين رعاية المرضى ونتائج2،3. ومع ذلك فالوفيات في المرضى الذين يعانون من الضائقة لا يزال مرتفعا جداً مع حوالي 35-40%4،،من56. ويؤكد حقيقة أن حوالي 10% قبول في وحدة العناية المركزة، و 23 في المائة من وحدة العناية المركزة للمرضى الذين يحتاجون التهوية الميكانيكية بسبب الضائقة أهمية إجراء مزيد من البحوث في هذا الميدان.

نماذج حيوانية تستخدم على نطاق واسع في مجال البحوث لدراسة التغيرات باثوفيسيولوجيك وطرائق العلاج المحتملة لأنواع مختلفة من الأمراض. نظراً لتعقيد الضائقة، هناك لا نموذج الحيوان وحيد لتقليد هذا المرض، ولكن النماذج المختلفة التي تمثل جوانب مختلفة7. نموذج راسخة واحد حقن حمض الأولييك (OAI)-الناجم عن إصابة الرئة. وقد استخدمت هذا النموذج في مجموعة واسعة من الحيوانات، بما في ذلك الفئران8والفئران9والخنازير10،11من الكلاب والأغنام12. حمض الأولييك هو الأحماض الدهنية غير المشبعة والأحماض الدهنية الأكثر شيوعاً في الجسم من صحة البشر13. موجودة في البلازما وأغشية الخلايا والأنسجة الدهنية البشرية13. الفيزيولوجية، بد أن الزلال بينما يتم من خلال مجرى الدم13. زيادة مستويات الأحماض الدهنية في مجرى الدم المرتبطة بالأمراض المختلفة ومدى خطورة بعض الأمراض يرتبط مع مستويات الأحماض الدهنية المصل13. حمض الأولييك الضائقة طراز وضعت في محاولة لإعادة إنتاج الضائقة الناجمة عن الانسداد الدهن كما رأينا في الصدمات النفسية المرضى14. حمض الأولييك آثار مباشرة على المستقبلات المناعية الفطرية في الرئتين13 ومشغلات تراكم العَدلات15ووسيط التهابات الإنتاج16، و موت الخلية13. فسيولوجيا، يستحث حمض الأولييك تتقدم سريعاً نقص تاكسج الدم، زيادة في الضغط الشرياني الرئوي وتراكم المياه الرئة اكسترافاسكولار. وعلاوة على ذلك، فإنه يدفع انخفاض ضغط الدم الشرياني والاكتئاب احتشاء عضلة القلب7. أن مساوئ هذا النموذج هي ضرورة الوصول الوريدية المركزية وأهمية الميكانيكية مشكوك فيها والتقدم المميتة المحتملة الناجمة عن نقص تاكسج الدم السريع والاكتئاب القلب. وميزة هذا النموذج مقارنة بنماذج أخرى من قابليتها للاستخدام في الحيوانات الصغيرة والكبيرة، وإمكانية تكرار نتائج صالحة للآليات الفيزيولوجية المرضية في الضائقة، بداية الضائقة الحادة بعد الحقن بحمض الأولييك وإمكانية دراسة معزولة الضائقة دون مثل التهاب النظامية في نماذج عديدة أخرى الانتان7. في المقالة التالية، تعطي وصفاً تفصيليا لإصابة الرئة المستحثة بحمض الأولييك في الخنازير، وتوفير بيانات تمثيلية لتوصيف استقرار الحلول التوفيقية في وظائف الرئة. وهناك بروتوكولات مختلفة عن الأضرار التي يسببها OAI الرئة. البروتوكول المقدمة هنا هي قادرة على حمل موثوق إصابة الرئة الحادة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

جميع التجارب على الحيوانات الموصوفة هنا أن تقرها اللجنة المؤسسية ودولة الرعاية الحيوانية (لانديسونتيرسوتشونجسامت راينلاند-فالز، كوبلنز، ألمانيا؛ الموافقة على عدد G14-1-077) وأجريت وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها المجتمع الأوروبي والألماني من مختبر علوم الحيوان. أجريت التجارب في تخديره من الذكور الخنازير (sus البري مستأنسة) من سن 2-3 أشهر، وزنها 27-29 كجم.

1-التخدير وتنبيب والتهوية الميكانيكية

  1. الامتناع عن الأغذية من أجل ح 6 قبل التخدير الحد من مخاطر الاستنشاق ولكن السماح بحرية الوصول إلى المياه للحد من التوتر.
  2. للتخدير، حقن مزيج من الكيتامين (مغ 4 كجم-1) وأزابيروني (ملغ 8 كجم-1) في الرقبة أو في عضلة الاليوي الخنازير بإبرة للحقن العضلي (20 غ) بينما الحيوان في المربع الحيوان.
    تحذير: استخدام القفازات عند العمل مع الحيوانات.
  3. إدراج قسطرة الوريد المحيطي (20 غ) في الوريد إذن بعد تطهير المحلية مع الكحول.
  4. حقن شيفتشنكو (كجم ميكروغرام 4-1) وبروبوفول (مغ 3 كجم-1) اتراكوريوم (0.5 ملغ كجم-1) عن طريق الوريد لتنظيم دورات تعريفية للتخدير.
  5. عند الخنزير توقف التنفس، وضعه في موقف ضعيف على نقالة وشل أنه مع الضمادات.
  6. بدء رصد تشبع الأكسجين الطرفية (SpO2) بقطع أجهزة الاستشعار إلى إحدى الأذنين أو ذيل الحيوان.
  7. تهوية الخنزير مع قناع للتهوية الكلاب، حجم 2، مع ضغط ذروة الشهيقيه أقل من 20 سم ح2س، وإيجابية في نهاية الزفير الضغط (زقزقة) 5 سم ح2س، وسعر الجهاز تنفسي دور 14-16/دقيقة وجزء أكسجين الشهيقيه (2من قوة المراقبة الدولية) من 1.0.
  8. ابدأ تسريب مستمر مع الحل المتوازن اﻻلكتروﻻيت (ملكج 5-1 ح-1)، بروبوفول (ملغ 8-12 كجم-1 ح-1) وشيفتشنكو (0.1-0.2 مغ كغ-1 h-1) للمحافظة على التخدير.
  9. التنبيب، إعداد أنبوب داخل رغامى مشتركة مناسبة للحيوان (مثلاً.، الوزن من 25-30 كجم، وقطرها الداخلي أنبوب داخل الرغامى (ID) 6-7 ملم) المسلحة مع أنبوب داخل الرغامى المقدم ومن المنظار مشتركة مع 4 بليد ماكنتوش.
    ملاحظة: اثنين من الناس ضرورية التنبيب.
  10. الشخص 1: سحب اللسان مع يد واحدة واضغط على الآنف دورسالي مع الآخر.
  11. الشخص 2: إدراج المنظار والمضي قدما كالمعتاد حتى يأتي ابيجلوتيس في طريقة العرض.
  12. سحب المنظار بطنيا تصور الاحبال الصوتية.
    ملاحظة: في بعض الأحيان epiglottis "العصي" إلى بلاطي الناعمة. وفي هذه الحالة، تعبئة عليه مع طرف الأنبوبة.
  13. إدراج أنبوب عن طريق الاحبال الصوتية وسحب المقدم.
  14. كتلة الكفة للأنبوب بحقنه مع 10 مل هواء.
  15. قم بتوصيل الأنبوب التنفس الصناعي.
  16. دقق في الموضع الصحيح من الأنبوب زفير منتظمة من ثاني أكسيد الكربون (CO2) مع كابنوجرافي والتهوية متساوية لكلا الرئتين مع التسمع.
  17. بدء التهوية الميكانيكية (حجم المد 6-8 مل/كغ، إيجابية زقزقة 5 سم ح20، قوة المراقبة الدولية2 للحفاظ على تشبع الأكسجين الطرفية (SpO2) بين 94 – 98%17، معدل التنفس للحفاظ على ضغط نهاية المد والجزر من ثاني أكسيد الكربون (اتكو 2) بين 35-45 ملم زئبق).

2-الأجهزة

  1. سحب hindlegs مع ضمادات على امتداد الجلد فوق منطقة الفخذ كاثيتيريزينج السفن اللازمة.
  2. إعداد حقنه 5 مللي، وحقنه 10 مل، الإبرة سيلدينجير، 3 المقدم مانعات (5 الأب، 6 الأب، 8 الأب) مع جويديويريس، قسطرة وريدية مركزية مع 3 منافذ (7 الأب، 30 سم) مع جويديويري وقسطرة شريان الرئوي (7,5 الأب، 110 سم).
  3. سخاء تطهير منطقة الفخذ بمطهر الجلد تطبيق مسح أسفل تقنية.
  4. تملأ بالكامل القسطرة مع المالحة.
  5. ضع الموجات فوق الصوتية-التحقيق في الرباط الآربي الحق والمسح الضوئي لسفن فخذي.
  6. تشغيل المسبار 90° تماما تصور شريان فخذي في المحور الطويل.
  7. كانولاتي حق فخذي الشريان تحت التصور في خط بالموجات فوق الصوتية مع سيلدينجير الإبرة.
    ملاحظة: هناك طرق مختلفة للحصول على الأوعية الدموية مع أو بدون بالموجات فوق الصوتية. كانوليشن الأوعية الدموية الموجهة بالموجات فوق الصوتية ليس من الضروري لهذا النموذج.
  8. عندما تدفق الدم مشرق بالنبض، إدخال سلك التوجيه وسحب الإبرة.
  9. تصور الوريد الفخذي وكانولاتي على المنوال تحت التصور في خط بالموجات فوق الصوتية والطموح المستمر مع الإبرة.
  10. عندما أسبيرابل الدم الوريدي، قطع المحاقن وإدراج سلك التوجيه.
  11. سحب الإبرة.
  12. التحقق من وضع الأسلاك بالموجات فوق الصوتية.
  13. إدراج غمد المقدم الشرياني (5 Fr) والقسطرة الوريدية المركزية باستخدام تقنية Seldinger's (للاطلاع على تفاصيل تقنية Seldinger's، وتشير إلى أسلوب نشر18).
  14. كرر الثقب الشرياني والوريدي في الجانب الآخر، وإدراج مانعات المقدم باستخدام تقنية Seldinger´s كما هو موضح أعلاه (الشريان 6 الأب، الوريد 8 الأب).
  15. قم بتوصيل غمد المقدم الشرايين والقسطرة الوريدية المركزية إلى نظام محول طاقة مناسبة لمعدات الرصد.
  16. معايرة رصد الغازية ضد الجو (صفر) بفتح الطريق ستوبكوكس الثلاثة في الغلاف الجوي واضغط صفر الجميع على جهاز العرض.
  17. تشغيل الثلاثة-الطريق--ستوبكوكس مرة أخرى لقياس الهليوكبتر.
  18. بدء تشغيل مراقبة الهليوكبتر.
  19. ضع كافة محولات الضغط في ذروة الاذين الأيمن.
  20. التبديل ضخ بروبوفول (ملغ 8-12 كجم-1 ح-1) وشيفتشنكو (0.1-0.2 مغ كغ-1 ح-1) إلى أحد المنافذ للخط الوريدي المركزي للمحافظة على التخدير.

3-فائق السرعة قياس ضغط الأكسجين الجزئي (ص2)

ملاحظة: قياس بو2 مع المسبار بو فائق السرعة2-القياس ليس إلزامياً ولكنه يساعد على تصور التغييرات في الوقت الحقيقي في pO2.

  1. فتح برنامج عارض نوفو ، وانقر فوق خيارات.
  2. اختر علامة التبويب المعايرة ، وانقر فوق الزر فتح المعايرة .
  3. اختر ملف المعايرة، وانقر فوق فتح و تحميل.
  4. تأكيد الإطار المنبثق عن طريق النقر فوق نعم.
  5. فتح الحوار خيارات .
  6. اختر علامة التبويب المعايرة وانقر فوق معايرة نقطة واحدة.
  7. أدخل 21% في ميدان الأوكسجين ودرجة الحرارة في حقل درجة الحرارة.
  8. انقر فوق استخدام الحالي تاو و تحميل. وبعد ذلك، تأكيد الإطار المنبثق عن طريق النقر فوق نعم.
  9. إدراج التحقيق للقياسات فائق السرعة من ص2 إلى غمده المقدم الشرياني الأيسر.

4-إدخال قسطرة الشريان الرئوي

  1. تحقق في بالون قسطرة الشريان الرئوي للضرر.
  2. قم بتوصيل محول طاقة نظام مناسب لمعدات الرصد.
  3. معايرة الضغط الشرياني الرئوي رصد ضد الجو (صفر) بفتح الثلاثة-الطريقة-محبس الحنفية إلى الغلاف الجوي واضغط صفر على جهاز العرض.
  4. تشغيل الثلاثة-الطريقة-محبس الحنفية مرة أخرى لقياس الضغط الشرياني الرئوي.
  5. بدء تشغيل مراقبة الضغط الشرياني الرئوي.
  6. إدخال قسطرة الشريان الرئوي عن طريق غمد المقدم وريدي الأيسر (بالون قلصت).
  7. عندما مرت قسطرة الشريان الرئوي إلى غمده المقدم، تضخيم البالون مع 1 مل هواء.
  8. النهوض قسطرة الشريان الرئوي ورصد الموجات النموذجية (سفن وريدي والاذين الأيمن والبطين الأيمن، arteria الرئوي والضغط الاسفيني الشعري الرئوي). انتفاخ البالون والاختيار، إذا كان من الممكن لنضح الدم من خلال جميع المنافذ لقسطرة الشريان الرئوي.
    ملاحظة: للحصول على تعليمات مفصلة حول كيفية إدخال قسطرة الشريان الرئوي، الرجوع إلى المنشور السابق19.

5-تنظيم دورات تعريفية لإصابة الرئة

  1. إعداد حل حمض الاوليك: 0.1 mL كجم-1 حمض الأولييك في 20 مل المحاقن وتوصيله إلى 3-طريقة-محبس الحنفية.
  2. أخذ 2 مل دم في آخر 20 مل المحاقن وإضافة المحلول الملحي إلى إجمالي حجم 20 مل في كلا المحاقن.
  3. الاتصال المحاقن الثانية أيضا 3-الطريقة-محبس الحنفية.
    تحذير: استخدام قفازات وحماية العين عند العمل مع حمض الأولييك.
  4. إعداد إفراز (0.1 مغ/مل) للتسريب المستمر وحقن بلعه (10 ميكروغرام/مل).
  5. قم بتوصيل مضخة الحقن إفراز إلى أحد موانئ القسطرة الوريدية المركزية دون البدء بتشغيله.
  6. بدء بو فائق السرعة2-القياس.
  7. قبل إدخال إصابة الرئة، تسجيل القيم (الأساس) من كافة المعلمات ذات الصلة.
  8. تعيين وأناس2 إلى 1.0 وإجراء مناورة توظيف الرئة (هضبة ضغط 40 سم ح2س 10 ق).
  9. قم بتوصيل 3-الطريقة-محبس الحنفية الدانية ميناء قسطرة الشريان الرئوي.
  10. مزيج حمض الأولييك وخليط الدم/المالحة جيدا عن طريق حقن متكررة من حقنه واحدة إلى أخرى عن طريق 3-الطريقة-محبس الحنفية والحفاظ على خلط كل الوقت.
  11. عندما يكون شكل مستحلب متجانس، حقن 2 مل المستحلب ويستمر الخلط.
    ملاحظة: إذا خلط توقفت، فقد فصل شكل مستحلب إلى محبتين وجزء ماء.
  12. عن كثب رصد الهليوكبتر بعد حقن حمض الأولييك والحفاظ على إفراز في متناول اليد. إذا لزم الأمر، إعطاء إفراز كحقن بلعه (10 – 100 ميكروغرام) أو التسريب المستمر للحفاظ على متوسط الضغط الشرياني فوق 60 ملم زئبق.
  13. تكرار الحقن من 2 مل حل كل دقيقة 3 حتى الضغط الشرياني الجزئي من الأوكسجين (باو2)/قوة المراقبة الدولية2-نسبة أقل 200 ملم زئبق.
  14. إذا كان المحاقن الفارغة قبل أن باو2/FiO2-نسبة ما بين 100 و 200 ملم زئبق، يعد الحقن أكثر 2 كما هو موضح في الخطوة 5، 1.
  15. انتظر 30 دقيقة وإعادة تقييم باو2/FiO2-نسبة. إذا كان لا يزال أكثر من 200 ملم زئبق، كرر الخطوتين 5.5-5.8 حتى باو2/FiO2-نسبة تقع بين 100 و 200 ملم زئبق.
  16. إذا كان باو2/FiO2-نسبة ما بين 100 و 200 ملم زئبق، انتظر لمدة 30 دقيقة والتحقق مرة أخرى.
  17. إذا كان استمرار أدناه 200 ملم زئبق بدء التجربة/العلاج وخلاف ذلك يعد الحقن أكثر 2 كما هو موضح في الخطوة 5، 1 وكرر الخطوات 5، 5-5.9.
  18. تعيين التهوية وفقا للمقترحات المقدمة من شبكة الضائقة20.

6-الغرض من التجربة والقتل الرحيم

  1. إدخال 0.5 ملغ شيفتشنكو بالإضافة إلى ذلك إلى التخدير المستمر وانتظر دقيقة 5 حقن 200 مغ من بروبوفول و 40 ميللي مول من كلوريد البوتاسيوم euthanize الحيوان في التخدير العميق.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

باو2/FiO2-نسبة النقصان بعد تطبيق هورمونات من حمض الأولييك (الشكل 1). في الدراسة المقدمة، 0.185 ± 0.01 مل كجم-1 حمض الأولييك ضروري لتنظيم دورات تعريفية لإصابة الرئة. وأظهرت جميع الحيوانات الأوكسجين البصر بعد تنصيب إصابة الرئة، مع أصناف في مزيد من الوقت بالطبع. في الحيوان 1 و 3، ما زال في مستوى واحد مع تقلبات ضئيلة؛ وفي الحيوان 2، نلاحظ زيادة أولية، تليها انخفاضا في النهاية، بينما يظهر الحيوان 4 ارتفاعا مستمرا. ومع ذلك، نجد من ض...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

توضح هذه المقالة أسلوب واحد لإصابة الرئة المستحثة بحمض الأولييك كنموذج لدراسة مختلف جوانب الضائقة الشديدة. وهناك أيضا بروتوكولات أخرى مع مستحلبات مختلفة ومواقع حقن مختلفة ودرجات حرارة مختلفة من مستحلب23،24،25،،من2627،28 ،29. لدينا أسلوب يوفر تدهور وظائف الرئة استنساخه ومستقرة. كما أثر حمض ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

جميع المؤلفين بالكشف عن لا تضارب المصالح المالية أو غيرها.

شكر وتقدير

الكتاب أريد أن أشكر داغمار ديرفونسكيس للدعم الفني الممتاز.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
3-way-stopcock أزرقBecton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg ، السويد394602
3-way-way-stopcock redBecton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg ، السويد394605
AtracuriumHikma Pharma GmbH ، Martinsried4262659
Canula 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga ، إسبانيا301300
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy ، هلسنكي ، فنلندا
DesinfectionSchü. lke & Mayr GmbH ، ألمانيا104802
أنبوب القصبة الهوائيةTeleflex Medical Sdn. دينار بحريني ، ماليزيا112482
أنبوب القصبة الهوائيةR & uuml ؛ sch5033062
Engströ م كير ستيشنجي إي هيث كير ، ماديسون يو إس إيه
فنتانيليانسن سيلاج جي إم بي إتش ،
بول هارتمان ، ألمانيا9422131
خط إنسيتومات 150 سمفريسينيوس ، كابي ألمانيا GmbH9004112
كيتامينهاميلن للأدوية GmbH
منظار الحنجرةتيليفلكس ميديكال Sdn. دينار بحريني، ماليزيا671067-000020
نظام مراقبة الضغط المنطقيسميث - الطبية ألمانيا GmbHMX9606
Logicath 7 Fr 3 لومن 30 سمسميث - الطبية ألمانيا GmbHMXA233x30x70-E
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine ، Ca 92618 الولايات المتحدة الأمريكية
قناع لتهويةهنري شاين ، ألمانيا730-246
Neofox Kitoptics Largo ، فلوريدا الولايات المتحدة الأمريكيةNeofox-Kit-Probe
NorepinephrineSanofi- Aventis ، Seutschland GmbH73016
Oleic acidApplichem GmbH Darmstadt ، ألمانيا1،426،591،611
حقنة Perfusor الأصلية 50 مل Luer LockB.Braun Melsungen AG ، ألمانيا8728810F
PA-Katheter Swan Ganz 7،5 Fr 110 سمEdwards Lifesciences LLC ، إيرفين كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية744F75
مجموعة مقدمة غمد عن طريق الجلد 8,5 و 9 فرن ، 10 سم مع صمام إرقاء متكامل / ميناءجانبي Arrow international inc. ريدينغ ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةAK-07903
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG ، ألمانيا8713820
كلوريد البوتاسيومFresenius ، Kabi Germany GmbH6178549
Propofol 2٪فريسينيوس ، كابي ألمانيا GmbH
سالينبي براون ميلسونجن إيه جي ، ألمانيا
سونوسيت ميكروماكس الموجات فوق الصوتيةسونوسيت بوثيل ، واشنطن ، الولايات المتحدة الأمريكية
الفولاذ المقاوم للصدأ ماكنتوش مقاس 4Teleflex Medical Sdn. دينار بحريني ، ماليزيا670000
SterofundinB.Braun Melsungen AG ، ألمانيا
Stresnil 40 مجم / ملLilly Germany GmbH ، Abteilung Elanco حقنة صحة
10 ملBecton Dickinson SA Carretera Mequinenza Fraga ، إسبانيا309110
حقنة 2 ملBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga ، إسبانيا300928
حقنة 20 ملBecton Dickinson SA Carretera Mequinenza Fraga ، إسبانيا300296
حقنة 5 ملBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga ، إسبانيا309050
قسطرة وريدية 22GB.Braun Melsungen AG ، ألمانيا4269110S-01
مقدمة قفازات نيوس Ocean

المراجع

  1. Ashbaugh, D. G., Bigelow, D. B., Petty, T. L., Levine, B. E. Acute respiratory distress in adults. The Lancet. 2 (7511), 319-323 (1967).
  2. Brower, R. G., et al. Ventilation with lower tidal volumes as compared with traditional tidal volumes for acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. The New England Journal of Medicine. 342 (18), 1301-1308 (2000).
  3. Briel, M., et al. Higher vs lower positive end-expiratory pressure in patients with acute lung injury and acute respiratory distress syndrome: systematic review and meta-analysis. JAMA. 303 (9), 865-873 (2010).
  4. Bellani, G., et al. Epidemiology, Patterns of Care, and Mortality for Patients With Acute Respiratory Distress Syndrome in Intensive Care Units in 50 Countries. JAMA. 315 (8), 788-800 (2016).
  5. Chiumello, D., et al. Respiratory support in patients with acute respiratory distress syndrome: an expert opinion. Critical Care. 21 (1), 240(2017).
  6. Barnes, T., Zochios, V., Parhar, K. Re-examining Permissive Hypercapnia in ARDS: A Narrative Review. Chest. , (2017).
  7. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  8. Kobayashi, K., et al. Thromboxane A2 exacerbates acute lung injury via promoting edema formation. Scientific Reports. 6, 32109(2016).
  9. Tian, X., Liu, Z., Yu, T., Yang, H., Feng, L. Ghrelin ameliorates acute lung injury induced by oleic acid via inhibition of endoplasmic reticulum stress. Life Sciences. , (2017).
  10. Kamuf, J., et al. Endexpiratory lung volume measurement correlates with the ventilation/perfusion mismatch in lung injured pigs. Respiratory Research. 18 (1), 101(2017).
  11. Du, G., Wang, S., Li, Z., Liu, J. Sevoflurane Posttreatment Attenuates Lung Injury Induced by Oleic Acid in Dogs. Anesthesia & Analgesia. 124 (5), 1555-1563 (2017).
  12. Prat, N. J., et al. Low-Dose Heparin Anticoagulation During Extracorporeal Life Support for Acute Respiratory Distress Syndrome in Conscious Sheep. Shock. 44 (6), 560-568 (2015).
  13. Goncalves-de-Albuquerque, C. F., Silva, A. R., Burth, P., Castro-Faria, M. V., Castro-Faria-Neto, H. C. Acute Respiratory Distress Syndrome: Role of Oleic Acid-Triggered Lung Injury and Inflammation. Mediators of Inflammation. 2015, (2015).
  14. Schuster, D. P. ARDS: clinical lessons from the oleic acid model of acute lung injury. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 149 (1), 245-260 (1994).
  15. Goncalves-de-Albuquerque, C. F., et al. Oleic acid induces lung injury in mice through activation of the ERK pathway. Mediators of Inflammation. 2012, 956509(2012).
  16. Ballard-Croft, C., Wang, D., Sumpter, L. R., Zhou, X., Zwischenberger, J. B. Large-animal models of acute respiratory distress syndrome. The Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1331-1339 (2012).
  17. O'Driscoll, B. R., et al. BTS guideline for oxygen use in adults in healthcare and emergency settings. Thorax. 72, Suppl 1 90(2017).
  18. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), 2652(2011).
  19. Russ, M., et al. Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs As a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (115), 53610(2016).
  20. Brower, R. G., et al. Higher versus lower positive end-expiratory pressures in patients with the acute respiratory distress syndrome. The New England Journal of Medicine. 351 (4), 327-336 (2004).
  21. Hartmann, E. K., et al. Influence of respiratory rate and end-expiratory pressure variation on cyclic alveolar recruitment in an experimental lung injury model. Critical Care. 16 (1), (2012).
  22. Hartmann, E. K., et al. Inhalation therapy with the synthetic TIP-like peptide AP318 attenuates pulmonary inflammation in a porcine sepsis model. BMC Pulmonary Medicine. 15, 7(2015).
  23. Julien, M., Hoeffel, J. M., Flick, M. R. Oleic acid lung injury in sheep. Journal of Applied Physiology. 60 (2), 433-440 (1986).
  24. Wiener-Kronish, J. P., et al. Relationship of pleural effusions to increased permeability pulmonary edema in anesthetized sheep. Journal of Clinical Investigation. 82 (4), 1422-1429 (1988).
  25. Yahagi, N., et al. Low molecular weight dextran attenuates increase in extravascular lung water caused by ARDS. American Journal of Emergency Medicine. 18 (2), 180-183 (2000).
  26. Eiermann, G. J., Dickey, B. F., Thrall, R. S. Polymorphonuclear leukocyte participation in acute oleic-acid-induced lung injury. The American Review of Respiratory Disease. 128 (5), 845-850 (1983).
  27. Townsley, M. I., Lim, E. H., Sahawneh, T. M., Song, W. Interaction of chemical and high vascular pressure injury in isolated canine lung. Journal of Applied Physiology. 69 (5), 1657-1664 (1990).
  28. Young, J. S., et al. Sodium nitroprusside mitigates oleic acid-induced acute lung injury. The Annals of Thoracic Surgery. 69 (1), 224-227 (2000).
  29. Katz, S. A., et al. Catalase pretreatment attenuates oleic acid-induced edema in isolated rabbit lung. Journal of Applied Physiology. 65 (3), 1301-1306 (1988).
  30. El-Haddad, H., Jang, H., Chen, W., Soubani, A. O. Effect of ARDS Severity and Etiology on Short-Term Outcomes. Respiratory Care. 62 (9), 1178-1185 (2017).
  31. Wang, H. M., Bodenstein, M., Markstaller, K. Overview of the pathology of three widely used animal models of acute lung injury. European Surgical Research. 40 (4), 305-316 (2008).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

قسطرة الشريان الرئويقسطرة الوريد المركزيالقسطرة الموجهة بالموجات فوق الصوتيةمناورة تجنيد الرئةالضغط الجزئي للأكسجينالمراقبة الديناميكية الدمويةالوذمة السنخيةالتحليل النسيجي
حقن حمض الأولييك في الخنازير كنموذج لمتلازمة الضائقة التنفسية الحادة
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.