مقالة منهجية

الخنزير كنموذج تدريبي للتعمير ميكروفاسكولار الرأس والعنق

DOI:

10.3791/58104

⸱

سبتمبر 29, 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Otolaryngology, Head and Neck Surgery, King Abdullah Medical City, 2Department of Otorhinolaryngology, Yonsei University, College of Medicine, 3Severance Biomedical Science Institute, Yonsei University, College of Medicine, 4The George W.Woodruff School of Mechanical Engineering, Georgia Institute of Technology, 5Department of Otorhinolaryngology-Head and Neck Surgery, Seoul National University College of Medicine

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وهنا يقدم بروتوكول لاستخدام رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة خنزير كوحدة نمطية تعلم للتعمير ميكروفاسكولار الرأس والرقبة.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

النماذج الحية التي تشبه الحالات الجراحية من البشر هناك حاجة للتدريب مجاناً رفرف الحصاد وملامسة. لم تتوافر نماذج حيوانية لأغراض التدريب لمدة سنوات في العديد من المجالات الجراحية. كنا الأنثى (لأنها سهلة للتعامل مع الإجراء) يوركشاير الخنازير لتعمير الرأس والرقبة بحصاد مخرز شريان شرسوفي العميق أقل شأنا أو رفرف مخرز شريان شرسوفي متفوقة. تم إعداد الموقع ملامسة (عيب الجلد العنق أو عيب الجدار الرغامى) عبر تشريح الشريان السباتي المشترك وحبل الوريد الداخلي، في × 3.5 التي استخدمت التكبير العدسة اللاصقة لملامسة كما أننا نستخدم في الحالات البشرية في الحياة الحقيقية. هذا الإجراء يوضح طريقة تدريب جديدة باستخدام نموذج تعلم يمكن الاعتماد عليها، ويوفر تشريح مفصل في سيناريو حية. ركزنا على الوقت الاسكيمية، الحصاد، ملامسة السفينة، وتصميم رفرف لتناسب الموقع عيب. هذا النموذج ويحسن التعامل مع الأنسجة ومع استخدام الأدوات المناسبة يمكن أن تتكرر مرات عديدة حيث أن الجراح واثقة تماما قبل البدء عملية جراحية على البشر.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

إعادة البناء في أعقاب عملية جراحية للرأس والرقبة الأمراض الخبيثة إجراء صعبة المرتبطة باعتلال كبير. Microvascular رفرف مجاناً التعمير قد أنشئت أيضا كمنهج موحد لإعادة الإعمار لما يزيد على 20 سنة1،،من23. نقل رفرف مجاناً تلعب دوراً هاما في تحسين إدارة الرأس والعنق في مرضى السرطان وإصابات ما بعد الصدمة مما دفع حدود الاستئصال الجراحي للمرض خارج التقنيات السابقة، أدى إلى زيادة المريض نوعية الحياة، والبقاء على قيد الحياة أطول معدل1،،من23. اللوحات المختلفة لإعادة الإعمار تشمل التناوب، graft، والحرة اللوحات.

ووسعت دور اللوحات مجاناً في تعمير الرأس والرقبة. وهو رفرف الأكثر صعوبة للعمل مع، التي تتطلب المعالجة الدقيقة وغير المهرة. فشل رفرف حدث كارثية، مع اعتلال كبير4،5. وهكذا، مطلوب الوقت قدر كبير من التدريب لتطوير الدقة اللازمة لنتائج العمليات الجراحية الناجحة3،4،5،6،،من78، 9. يمكن التأثير على نتيجة للمرضى حاد منحنى التعلم المرتبطة بمثل هذه جراحة وتؤثر على معاملة إدارة3،4،5،،من67، 8،9. لتقليل وقت التدريب ومنحني التعلم لجراحي جديد، ونموذج تدريب المسبق الذي يحاكي البيولوجيا البشرية وتوفر شروط مشابهة الحقل الجراحي8.

والهدف من هذه الدراسة إظهار رؤية لحم الخنزير كوحدة تدريبية جيدة لإعادة ميكروفاسكولار الرأس والرقبة تشبه حالة الإنسان مع تحسين المهارات بطريقة نشطة.

حققت هذه الدراسة استخدام نموذج الخنزير لتكملة تدريب الزملاء الجدد في الرأس والرقبة ميكروفاسكولار إعادة إعمار لنقل رفرف مجاناً لتقديم فعالية من حيث التكلفة وأقل إرهاقاً للتدريب الميداني السريري مع موثوق بها مماثلة ميزات لإجراءات رفرف مجاناً. وقد استخدمت الخنازير للعديد من الدراسات والتدريس نماذج لإعادة البناء الجراحية المختلفة، مثل إعادة بناء الثدي؛ 5 ومع ذلك، لم يتم استخدام الخنازير لتعمير الرأس والرقبة ما عدا في دراستنا للتعمير الرغامى سبب تضيق الرغامى10.

بدأت الفكرة بعد بودين فريدريك7، الذي وصف رفرف مماثلة لإعادة بناء الثدي. والميزة الرئيسية لهذه الدراسة على وحدة أخرى من التدريب microvascular هو الوحدة النمطية ليفينينج النشطة مع نتيجة فورية حقيقية للإجراء.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذه الدراسة واسترشد والمعتمد من قبل الإدارة مختبر الحيوان الموارد، يونسي الطبية معهد أبحاث "يونسي كلية الطب في جامعة"، معتمدة من قبل جمعية التقييم والاعتماد لرعاية الحيوانات المختبرية الدولية. المبادئ التوجيهية هذه الدراسة لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية من معهد مختبر الحيوان لجنة الموارد في "مجلس البحوث الوطني في علوم الحياة". وقد تأقلم كل الخنازير لمدة أسبوع قبل العملية.

1-إعداد

  1. تبقى الخنازير دون طعام لأكثر من 12 ح قبل التخدير العام مع حرية الوصول إلى المياه.
    ملاحظة: استخدمت ستة خنازير يوركشاير الإناث وزنها 25-30 كجم كل.
  2. استخدام إبرة قياس 16 من طول 1 سم لحقن العضل الفاكسان (1 مغ/كغ) وإكسيلازيني (2 مغ/كغ) وأزابيروني (2 مغ/كغ) خلف وأسفل الإذن لبدء التخدير.
  3. يحلق خط الوسط الأمامي من الرقبة وجدار البطن الخنازير باستخدام ماكينة إزالة شعر جراحية.
  4. تأمين عن طريق الحقن في الوريد (رابعا) عن طريق الوريد الإذن الوسطى أو هامشية على الجانب الخلفي من عقوبة قطع صوان بإبرة 22-ز. حقن كيتورولاك (1 مغ/كغ) عن طريق خط الرابع.
  5. ثم حقن الأتروبين (0.04 مغ/كغ) عضليا كما هو موضح في 1-2. حقن سيفازولين (30 ملغ/كغ) عضليا كما هو موضح في 1-2.
  6. وضع الخنزير الاستلقاء في موقف ضعيف إزاء الجدول غرفة العمليات.
  7. تسمح الخنزير إلى التنفس 2 ل الأكسجين بنسبة 5% إيسوفلوراني عن طريق تخدير الخنازير قناع عفويا.
  8. تعريض الاحبال الصوتية عن طريق الفم باستخدام المنظار ورذاذ لهم مع نفث اثنين من 2% ليدوكائين حل موضعي لمنع لارينجوسباسم التي يسببها تنبيب.
  9. التنبيب مع أنبوب 6.5 ملم، وتضخيم الكفة أنبوب مع 3-5 مل هواء استخدام حقنه بدون إبرة مرفقة به.
    ملاحظة: إجراء كابنوميتري لضمان أن الأنبوب الرغامى، الذي جزء من آلة التخدير، في موقف سليم وهناك CO2 مرة أخرى إلى الجهاز كمؤشر للأوكسجين السليم.
  10. الاحتفاظ التخدير بعد التنبيب مع إيسوفلوراني 2%.
  11. استخدم مرهم البيطرية في عيون خنزير وإغلاقه مع تصحيح غطاء عين.

2-الإجراء: موقع الاستقبال

  1. تطهير في الرقبة وجدار البطن مع % 1 حل فرك المستندة إلى اليود.
  2. بدء شق خط الوسط عمودي في الرقبة الأمامية باستخدام شفرة رقم 23 حتى القص.
  3. تشريح عضلات حزام وأتراجع أفقياً باستخدام مقص الأنسجة كيلي وضام أهي.
  4. كشف القصبة الهوائية من الحلقة الأولى إلى مدخل الصدر.
  5. بعد ذلك، تعرض الشريان السباتي المشترك وحبل الوريد الداخلي لملامسة.
  6. إنشاء نافذة في غضروف الرغامى الثانية أو الثالثة، ~ 1 سم في العرض باستخدام شفرة رقم 11.
  7. ابحث عن أنبوب داخل الرغامى عن طريق العيب القصبة الهوائية التي تم إنشاؤها، وتأكد من تهوية عن طريق الأنبوب واستمر استخدام التنفس الصناعي دون تسرب.

3-الإجراء: رفرف الموقع

ملاحظة: الحصاد رفرف مخرز (السكرتارية) شريان شرسوفي متفوقة يمكن أن يؤديها، وفقا لطريقة وصف بودين فريدريك7.

  1. تصميم رفرف في الجزء العلوي من البطن بقلم ماركر جراحية (الشكل 1A).
  2. إنشاء شق جلد بيضاوي الشكل 4 × 3 سم باستخدام مشرط رقم 23 للغلاف الأمامي من جدار البطن في الجانب الآنسي من رفرف عليه (الشكل 1B).
  3. رفع غمد (قشر) رفرف من العضلات البطنية المستقيمة تبحث عن ثاقبات الذهاب إلى رفرف الجلد بينما يمسك اللفافة قبل أليس.
  4. إجراء التشريح العضلي واتبع ثاقبات للسفن شرسوفي متفوقة (الشكل 1B)
  5. الآن تنفيذ شق الجلد الوحشي على رفرف المصممة (الشكل 1A) باستخدام مشرط رقم 23 (الشكل 1)
  6. المشبك بسفن شرسوفي متفوقة و وريدان كوميتانتيس مع هيموستات ﻷسلحته واستخدام مقص الأنسجة كيلي لقص أدناه هيموستات واضطر السفينة أعلاه هيموستات بخياطة 3-0. ثم تقلع في هيموستات.

4-ملامسة والإغلاق

  1. وضعت العدسة اللاصقة جراحية.
  2. المشبك الشريان السباتي باستخدام هيموستاتس اثنين بمسافة 1-2 سم فيما بينها.
  3. ضمان الاستخدام الجزئي-مقص قطع بين الشريان السباتي وربط الجزء متفوقة بخياطة مزدوجة لا ناز.
  4. استخدام المشبك مزدوجة دون الإطار بين الشريان السباتي والشريان رفرف.
  5. بدء ملامسة باستخدام سمك 10-0 كاملة بسيطة خياطة تفسيرها.
  6. خياطة الجروح مكان الأول اثنين البقاء بعيداً في محيط السفينة ثم بين مكان 2-3 غرز حوالي 120 درجة.
  7. الإصدار المشبك. إذا لم يكن هناك دم ناز القيام بخياطة مماثلة في موقع ناز.
  8. ابحث عن تدفق العودة الوريدية من وريدان كوميتانتيس.
  9. إجراء مفاغره كما هو موضح في الخطوة 4، 1 إلى 4.7 الداخلية حبل الوريد و وريدان كوميتانتيس (الشكل 1).
  10. استخدام حجم إبرة حقنه 18 وخز الجلد لضمان بقاء رفرف برؤية قطره دم.
  11. قم بإغلاق نافذة الرغامى وخياطة رباط العضلات السكرتارية رفرف استخدام خياطة 3-0.
  12. اكستريورز وخياطة مضرب جلد من رفرف السكرتارية لشق الجلد خط الوسط عنق الرحم (الشكل 2A).
  13. إغلاق شق الجلد البطن (الشكل 2).

5-بعد العمليات الجراحية الرعاية

  1. نعود الخنزير في موقف المعرضة.
  2. وقف إيسوفلوراني وفطم الخنزير من التنفس الصناعي.
  3. تسمح الخنزير استرداد في قفص الحيوان ورصده عن كثب لضمان انتعاشها سلسة من الإجراءات.
  4. ابحث عن رفرف في موقع إعادة الإعمار بعد الشفاء (الشكل 2).
  5. البحث في موقع الجهات المانحة في الحيوان بعد الشفاء (الشكل 2D).
  6. بدء اللاكتات في المسابقة بمعدل 150 مل/ساعة حتى الشفاء التام وإدارة البوبرينورفين 0.3 ملغم للتسكين.
  7. وبعد نزع الأنبوب، رصد الخنزير عن كثب حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الموقف والتنفس وهي قادرة على شرب عفويا.
  8. تبقى الخنازير ما بعد الجراحة في مكان المنفصلين عن ذويهم من الحيوانات لا تعمل.
  9. بدء أموكسيسيلين العضلي – كلافولاناتي (14 مغ/كغ) لمدة أسبوع واحد.
  10. بدء العضلي ميلوكسيكام (0.2 مغ/كغ) لمدة أسبوع واحد.

6-القتل الرحيم

  1. بدء التخدير للخنازير عن طريق حقن بروبوفول عن طريق رابعا (5-10 مل) والحفاظ عليه مع إيسوفلوراني 5%.
  2. التنبيب الخنزير كما هو موضح في الخطوة (1.1, 1.2, 1، 6-1، 10).
  3. الحث سكتة قلبية عن طريق الحقن الوريدي من 40 مليمول بوكل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يمكننا تنفيذ الإجراء على الخنازير ستة: التعمير عيب الجلد سرطان عنق الرحم في اثنين من الخنازير، والإعمار الرغامى الخنازير اثنين، ورفرف مجاناً لاختبار جهاز الأوعية الدموية ملامسة الخنازير اثنين. وتم رصد الخنازير لمدة 3 أشهر وكان هناك أي علامة سريرية للعجز العصبي.

وكان وقت يعني الاسكيمية 50 دقيقة (النطاق، 35-80 دقيقة)؛ وانخفض الوقت كما تم تكرار الإجراء. وكان وقت الحصاد يعني الخنازير ستة 55 دقيقة. ليس هناك أي اعتلال يحدث في الموقع ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الاعتلال كبيرة وعيوب يمكن أن تحدث في الرأس والرقبة مرضى الورم الخبيث أثناء إدارة العمليات الجراحية. وأصبح نقل الأنسجة الحرة microvascular الأساسية لإعادة الإعمار في معظم الحالات. استمرارية رفرف قضية حساسة، تتطلب الثبات، دقة التعامل مع بيديكلي والإحساس باللمس، وقدرة فيسوسباتيال، وتدفق المنطوق ممتازة من الجراح8. لتطوير هذه المهارات، ويحتاج المرء ممارسة واسعة النطاق مع تدريب نموذجي3،4،5،

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمويل هذا العمل ويدعمه "برنامج بحوث العلوم الأساسية" عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (2015R1C1A1A01051907). وأيد هذا العمل أيضا "برنامج بحوث العلوم الأساسية" عبر الوطنية بحوث مؤسسة من كوريا (جبهة الخلاص الوطني) تموله وزارة العلوم وتكنولوجيا المعلومات والاتصالات وتخطيط المستقبل (جبهة الخلاص الوطني-2016M3A9E9941746).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
Pigs XP Bio ، سيول ، كوريا
ماكينة حلاقة جراحية لإزالة الشعر3M
22 قسطرةB.BRAUN
حقنة مع إبرة مقاس 18Jung Rim الطبية
العضلي alfaxanCareside10ml / VAL
IntramuscularxylazineBayer
أزابرونسيجما ألدريتش34223
الأتروبين العضليدايون0.5 مجم / أ
سيفازولين عضلييوهان1 جرام
كيتورولاكهانا فارم30 ملغ
قناع الخنازيرDRE1392
أنبوب الكفة الرغامية 6.5 ممسميث طبي100/150/065
آلة ansthesiaDr & auml ؛ gerPRIMUS IE
2٪ محلول موضعي ليدوكائينمرهم بيطري Taejoon
Pfizerterramycin figure-materials-1
غطاء العين تصحيحInnomedS-universal010S
محلول البيتادين 1٪.كوريا فارما
4 * 4فيرست ميديك22 * 30 سم 320 ثانية
شفرة رقم 23باراجون23
ضام لاهيV.MuellerSU3960
مقص مناديل كيليSOLCO05-1990
شفرة رقم 11باراجون11
قلم وسم جراحيأسبن جراحيعادي # 2750
allisV.MuellerSU4055
خياطة ربطة عنقCovideinبدون إبرة
3.5 & مرات العدسة الجراحيةzeisseyemag المشبك المزدوج الذكي
بدون إطارV.MuellerCH7155
مقص دقيقAESCULAPFD038R
لاكتات Ringerدايهان500 مل / 1 كيس
أموكسيسيلين &- - - كلافولاناتإلسونغ0.6 جم / فولت
ميلوكسيكامساميل7.5 مجم
بروبوفولدونغ كوك120 مجم / V
محلول KCl في الوريددايهان20 مل / 50 بكسل
البعوض المنحنيSOLCO013-0111
البعوض المستقيمSOLCO05-1050
خياطة إيثيلون 10-0ethicone10 / 0W1756
Vicryl 3-0.ethicone3 / 0W9890
بوبرينورفينهانليم0.3 مجم
الجنوبية العضلي شاش

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة