-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
نهج في المختبر للعلاج الضوئي

Research Article

نهج في المختبر للعلاج الضوئي

DOI: 10.3791/58190

August 17, 2018

Evan Austin1,2, Jared Jagdeo1,2,3

1Department of Dermatology,University of California, Davis, 2Dermatology Service,Sacramento VA Medical Center, 3Department of Dermatology,State University of New York, Downstate Medical Center

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

العلاج الضوئي (التوقيت الصيفي الباسفيكي) هو إجراء طبي ينطوي على الحضانة لمناشئ التطبيقية محسس ضيائي (PS) تليها فوتواكتيفيشن الضوء المرئي للحث على المبرمج. نقدم بروتوكولا في المختبر التوقيت الصيفي الباسفيكي مصممة لمحاكاة التوقيت الصيفي الباسفيكي التي يمكن استخدامها لدراسة الاختلافات في حضانة PS والمعلمات ضوء العلاج.

Abstract

العلاج الضوئي (التوقيت الصيفي الباسفيكي) هو إجراء طبي ينطوي على الحضانة محسس ضيائي مناشئ التطبيقية (PS) تليها فوتواكتيفيشن الضوء مرئياً للحث استموات الخلايا. وقد وافقت "الإدارة الاتحادية للمخدرات" التوقيت الصيفي الباسفيكي لعلاج تقران سافع، وتوصي المبادئ التوجيهية السريرية التوقيت الصيفي الباسفيكي لعلاج بعض سرطانات الجلد غير الميلانوما وحب الشباب. التوقيت الصيفي الباسفيكي طريقة علاجية مفيدة كما أنها منخفضة التكلفة، وغير الغازية، والمرتبطة بالحد الأدنى من الآثار الضائرة وتخويف. في الخطوة الأولى من التوقيت الصيفي الباسفيكي، يطبق PS ويسمح لهم بتجميع إينتراسيلولارلي. تشعيع الضوء اللاحقة الحث على تكوين الأنواع الأكسجين التفاعلية، والتي قد تؤدي في نهاية المطاف إلى الخلية المبرمج واضطراب الغشاء وتلف الميتوكوندريا، والتحوير المناعي، انتشار keratinocyte ودوران الكولاجين. وهنا، نقدم أسلوباً في المختبر لدراسة التوقيت الصيفي الباسفيكي في خط خلية ملتصقة. هذا العلاج يهدف إلى محاكاة التوقيت الصيفي الباسفيكي، ويمكن تعديل لدراسة استخدام التوقيت الصيفي الباسفيكي مع مختلف خطوط الخلايا أو الضيائية، ودرجات حرارة الحضانة أو الأطوال الموجية فوتواكتيفيشن. الخلايا الحرشفية الخلية كانت المحتضنة مع حمض 5-aminolevulinic 0، 0.5، 1.0، و 2 مم (5-علاء) 30 دقيقة وفوتواكتيفاتيد مع الضوء الأزرق نانومتر 417 1000 s. وكان قياس النتيجة الأولية المبرمج ونخر، مقاسا أنيكسين-V و 7-أمينواكتينوميسين د التدفق الخلوي. وكانت هناك زيادة الجرعة في الخلية المبرمج بعد الثلاثين دقيقة الحضانة من 5-ألاباما تحقيق عالية بين اختبار الصلاحية، من المهم الحفاظ على احتضان متسقة ومعلمات الخفيفة عند إجراء التجارب في المختبر التوقيت الصيفي الباسفيكي. التوقيت الصيفي الباسفيكي بحث الداخلي و في المختبر السريري مفيدة يمكن أن تتيح تطوير رواية PSs، الاستغلال الأمثل للبروتوكولات، ومؤشرات جديدة للتوقيت الصيفي الباسفيكي.

Introduction

العلاج الضوئي (التوقيت الصيفي الباسفيكي) هو إجراء طبي ينطوي على الحضانة محسس ضيائي مناشئ التطبيقية (PS) تليها فوتواكتيفيشن الضوء مرئياً للحث استموات الخلايا. الدواء الاتحادية (FDA) قد وافقت التوقيت الصيفي الباسفيكي لعلاج تقران سافع (حزب العدالة والتنمية)، وتوصي المبادئ التوجيهية السريرية التوقيت الصيفي الباسفيكي لعلاج بعض سرطانات الجلد غير الميلانوما وحب الشباب الشائع:1،2. وتشمل الاستخدامات غير الجلدية الناشئة للتوقيت الصيفي الباسفيكي علاج سرطان الجهاز الهضمي والبروستاتا، وأمراض النساء3. التوقيت الصيفي الباسفيكي طريقة علاجية مفيدة كما أنها منخفضة التكلفة وغير الغازية، ومرتبطة بالحد الأدنى من الآثار الضائرة و تندب2.

في الخطوة الأولى من التوقيت الصيفي الباسفيكي، يطبق PS ويسمح لهم بتجميع إينتراسيلولارلي2. في الولايات المتحدة، حمض الموضعية 5-aminolevulinic (5-علاء) يستخدم عادة لعلاج إس. أثناء الاحتضان يتم تحويل المرحلة، 5-علاء إلى بروتوبورفيرين التاسع (PP-تاسعا) عبر الممر الحيوي الهيم في الخلايا المدمجة3. وانخفضت خلايا السرطان وسرطان ما قبل النشاط فيروتشيلاتاسي، والذي يحول بروتوبورفيرين التاسع (PP-التاسع)، إلى المنتج النهائي، الهيم. نتيجة لذلك تتراكم خلايا السرطان PP-تاسعا، مقارنة بالخلايا العادية4،5. يسمح هذا التراكم من PP-تاسعا في السرطان وخلايا ما قبل السرطان بالنسبة للأنسجة المحيطة للتوقيت الصيفي الباسفيكي يكون نهجاً مستهدفة مع الحد الأدنى من الأحداث الضائرة. تشعيع الضوء يؤدي إلى توليد الأنواع (روس) الأكسجين التفاعلية عندما يقبل الأكسجين الإلكترونات متحمس من PP إلى التاسع. وقد PP-تاسعا امتصاص ذروة في طيف الأشعة فوق البنفسجية مع قمم أصغر في جميع أنحاء طيف الضوء المرئي، بما في ذلك الضوء الأزرق والأحمر2. تشكيل روس قد تؤدي في نهاية المطاف إلى الخلية المبرمج واضطراب الغشاء والضرر المتقدرية، التحوير المناعي، وانتشار keratinocyte والكولاجين دوران6،7،،من89 , 10.

التوقيت الصيفي الباسفيكي في السبعينات وهو طريقة علاجية متطورة3. البروتوكول وافقت إدارة الأغذية والعقاقير لعلاج المحور وتوصي الجلد 5-علاء الحضانة ح 14 – 18، ولكن يشيع استخدامها في الممارسة السريرية2إينكوبيشنز ح 1 إلى 2. في المختبر، وقد أظهرنا أن أقصر مدة 15 دقيقة 5-علاء إينكوبيشنز قد يزيد تنتجها الخلايا الليفية الخلية المبرمج مقارنة بالخلايا الليفية غير المعالجة11،12. بالإضافة إلى ذلك، تجري دراسة رواية تشلورين و phthalocyanine PSs نانوحبيبات المستندة إلى تحسين فعالية التوقيت الصيفي الباسفيكي3. وهنا، نقدم أسلوباً في المختبر لدراسة التوقيت الصيفي الباسفيكي في الخلايا الحرشفية ملتصقة الخلايا. في هذا البروتوكول، وهي المحتضنة الخلايا SCC-13 مع 0، 0.5، 1.0، 2 مم 5-علاء 30 دقيقة وفوتواكتيفاتيد مع الضوء الأزرق نانومتر 417 1000 s. قياس النتيجة الأولية هو المبرمج ونخر، مقيسة أنيكسين-V و 7-أمينواكتينوميسين د (7-عاد) التدفق الخلوي. هذا العلاج يهدف إلى محاكاة التوقيت الصيفي الباسفيكي، ويمكن تعديل لدراسة استخدام التوقيت الصيفي الباسفيكي مع أخرى خطوط الخلايا أو الضيائية، ودرجات حرارة الحضانة أو الأطوال الموجية فوتواكتيفيشن. إعداد مجموعات مراقبة إضافية قد تكون ضرورية، بما في ذلك فلوروفوري أونستاينيد، واحد ملون، عناصر سلبية وإيجابية للتدفق الخلوي. استعراض شامل لنظرية، والبروتوكولات، والتصميم التجريبي، والنابضة للمبرمج/نخر التدفق الخلوي يمكن الاطلاع على أماكن أخرى13.

Protocol

1-إعداد الخلايا

  1. لوحة 20,000 الخلايا في 2 مل من الثقافة المتوسطة في كل من لوحة 6-جيدا باستخدام تقنية تعقيم في السلامة الأحيائية مجلس الوزراء جيدا.
  2. وضع لوحات 6-جيدا في حاضنة هوميديفيد (37 درجة مئوية، 5% CO2) عن 24 ساعة للسماح للخلايا على التمسك بلوحات.

2-إعداد محسس ضيائي لعلاج خلايا

  1. إعداد الحلول 5-علاء 0.5 و 1 و 2 مم في المتوسط الثقافة. إذا كان الجنين المصل البقري (FBS) عنصر من عناصر الثقافة المتوسطة، إعداد وعلاج الخلايا مع 5-علاء في حل الثقافة المتوسطة مع 0.1% FBS إينكوبيشنز. 11 , 12 وفي هذه الحالة، الخلايا SCC-13 لا تتطلب FBS، حيث تمت إضافة 5-علاء مباشرة لتستكمل مع البقري النخامية وعامل نمو البشرة keratinocyte المتوسط خالية من المصل.
  2. نضح المتوسطة الثقافة وغسل الخلايا مع 2 مل على الأقل من الفوسفات مخزنة المالحة (PBS).
  3. نضح برنامج تلفزيوني وإضافة 2 مل حلول 5-علاء 0 أو 0.5 أو 1 أو 2 ملم في لوحات منفصلة أو الآبار.
  4. احتضان الخلايا مع 0، 0.5، 1، أو 2 مم 5-علاء على 36 إلى 37 درجة مئوية تدفئة كتلة للحد الأدنى 30 حماية الخلايا من التعرض للضوء أثناء الحضانة باستخدام رقائق الألومنيوم.
  5. نضح حلول 5-علاء 0، 0.5، 1، 2 مم وغسل الخلايا مع 2 مل من برنامج تلفزيوني.
  6. نضح برنامج تلفزيوني وإضافة 2 مل من الثقافة المتوسطة تشعيع الضوء الأزرق.

3-الأزرق المعالجة الضوئية الخفيفة

  1. قبل المعالجة الخلايا، قم بتشغيل الجهاز الضوء الأزرق (مثلاً، أدى، فلوري، أو ضوء الهالوجين) وتشغيل لدورة واحدة (1,000 s) لالاحماء الجهاز. يجب أن يكون الجهاز الضوء الأزرق الطول موجي ناتج من 417 +/-5 نانومتر. السماح للجهاز بتشغيل لدورة واحدة قبل العلاج يضمن أن الطول الموجي الضوء الأزرق والإشعاع تكون متسقة طوال مرحلة فوتواكتيفيشن.
  2. استخدام فوتومتريه لقياس الإشعاع على سطح الخلية. ينبغي أن يكون الإشعاع الضوء الأزرق على سطح الخلية 10 ميغاواط/سم2. المسافة بين الضوء والخلايا قد تحتاج إلى تعديل لتحقيق الإشعاع 10 ميغاواط/سم2 تبعاً لكثافة مصدر الضوء.
  3. ضع مجموعات معاملة علاء 0، 0.5، 1، 2 مم على سطح أسود تحت مصدر الضوء الأزرق. تشعيع الخلايا مع الضوء الأزرق ل 1000 s (16 دقيقة و 40 ثانية) فلوينس إجمالي 10 J/سم2. وعقب فوتواكتيفيشن الضوء الأزرق، الخلايا جاهزة للتحليل.

4-جمع وتلطيخ

  1. إعداد المخزن المؤقت التدفق طبقاً لإرشادات الشركة المصنعة (انظر الجدول للمواد).
  2. نضح المتوسطة الثقافة وغسل الخلايا مع 2 مل من برنامج تلفزيوني.
  3. أضف 1 مل من 0.25% التربسين-يدتا وتسمح للخلايا لفصل لحوالي 3 إلى 5 دقائق. وقد درست الخلايا تحت المجهر للتأكد من خلايا مفرزة.
  4. أضف 1 مل من الثقافة المتوسطة (أو برنامج تلفزيوني) مع 10% مصل البقر الجنين لإلغاء تنشيط التربسين.
  5. جمع تعليق خلية في أنابيب تدفق المسمى 5 مل.
  6. تدور أنبوب تدفق 5 مل في أجهزة الطرد مركزي في 201 x ز لأدنى 5 حل Aspirate دون إزالة خلية بيليه.
  7. إضافة 200 ميليلتر من تدفق المخزن المؤقت مع جسم أنيكسين-V مترافق (1 ميليلتر الخامس annexin كل ميليلتر 39 من تدفق المخزن المؤقت) لكل عينة.
  8. ريسوسبيند الخلايا، ووضع في الحاضنة (37 درجة مئوية، 5% CO2) لمدة 20 دقيقة للسماح للربط أننيكسين-V.
  9. إضافة 3 ميليلتر من 7-عاد لكل عينة. احتضان لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.

5-تدفق سيتوميتريك التحليل

  1. اتبع إرشادات الشركة المصنعة سيتوميتير تدفق للإعداد (انظر الجدول للمواد).
  2. جمع وتحليل عينات مع التدفق الخلوي. 13
  3. تنفيذ مقارنة إحصائية للعلاج ومجموعات المراقبة باستخدام تحليل التباين (ANOVA)14. مقارنة الوسائل المجموعات المعاملة إلى الوسط لعنصر التحكم مع اختبار دونيت لتحليل الوظائف المخصصة .

Representative Results

بعد SCC-13 الخلايا المحتضنة لمدة 30 دقيقة مع 0، 0.5، 1، 2 مم 5-علاء والمشع مع 1000 s زرقاء خفيفة، كانت هناك زيادة الجرعة في الخلية المبرمج. كان إجمالي المبرمج (يعني ± الخطأ المعياري للوسط) ± 3.94 0.34، ± 7.90 0.52، 23.86 ± 0.52 و ± 38.33 1.81 بعد 30 دقيقة من الحضانة مع 0، 0.5، 1، 2 مم 5-علاء، على التوالي، و 1000 ثانية من الأزرق الضوء (الشكل 1). أننا بالمقارنة مع متوسط النسبة المئوية للخلية apoptotic بين 0، 0.5، 1، 2 مم 5-علاء المحتضنة المجموعات استخدام ANOVA. وكان الخلايا تعامل مع 1 و 2 مم 5-علاء زيادة كبيرة في الخلية المبرمج مقارنة بالخلايا المعالجة 5-علاء 0 ملم. ويبين الشكل 2 ألف تدفق الممثل سيتوميتريك النابضة للأمام مبعثر (FSC) مقابل الجانب مبعثر (SSC) للخلايا SCC-13 المحتضنة مع 0، 0.5، 1، 5 ملم 2-ألاباما ويرفق النابضة دائرة السكان خلية SCC-13. لهذه التجربة، وجمعت الأحداث 7500 وبوابة السكان خلية SCC-13 القبض على 90 في المائة على الأقل من الأحداث. ويبين الشكل 2B قطعة 7-عاد ممثل على المحور السيني والخامس أنيكسين على المحور ص. سكان الخلية هي بوابة إلى أربعة أجزاء (Q1 إلى Q4) تمييز الخلايا أبوبتوتيك. Q1 (ارتفاع أننيكسين-v، وانخفاض 7-عاد) تمثل الخلايا تمر بالمبرمج مبكرا. Q2 (ارتفاع أننيكسين-v، وارتفاع 7-عاد) تمثل الخلايا تمر أواخر المبرمج أو نخر. Q3 (منخفض أننيكسين-v، وارتفاع 7-عاد) تمثل الخلايا تمر نخر. Q4 (منخفض أننيكسين-v، وانخفاض 7-عاد) تمثل الخلايا لا يخضع المبرمج أو نخر. وأضاف نحن في حساب النسبة المئوية للخلايا تمر بالمبرمج، النسبة المئوية للخلايا في Q1 و Q2. عدم تناسق في طول فترة حضانة المرض 5-علاء أو درجة حرارة الحضانة جرعة الإشعاع فوتواكتيفيشن قد يغير فعالية التوقيت الصيفي الباسفيكي. يوضح الشكل 3 مؤامرة سيتوميتريك تدفق أننيكسين-V و 7-عاد ممثل عندما تختلف درجة حرارة الحضانة (أي 27 أو 36 أو 42 درجة مئوية). كانت هناك زيادة درجة حرارة تعتمد في المبرمج.

Figure 1
رقم 1: زيادة الجرعة تعتمد على المبرمج بعد الثلاثين دقيقة الحضانة من 5-ألاباما 5-علاء المحتضنة في 36 درجة مئوية لمدة ثلاثين دقيقة تليها 1,000 s الضوء الأزرق في الخلايا SCC-13. أشرطة تمثل متوسط النسبة المئوية أنيكسين-V الخلايا إيجابية في كل مجموعة عنصر التحكم والعلاج. وأجريت تجارب في ثلاث نسخ التقنية. دلالة إحصائية يحدده ANOVA، مع ف < 0.05 النطاق المرمز إليه بواسطة علامة نجمة (*). تمثل أشرطة الخطأ ± يعني الخطأ المعياري للوسط. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2: مؤامرات الممثل التدفق الخلوي- (أ) ممثل الأمام التبعثر مقابل الجانب مبعثر الخلوي مؤامرات في وحدات التعسفي (الاتحاد الأفريقي) للعاشر-وص المحور المحور للخلايا المحتضنة 5-علاء 0، 0.5، 1، 2 مم. لهذه التجربة، وجمعت الأحداث 7500 وبوابة السكان خلية SCC-13 القبض على 90% أحداث. (ب) أنيكسين-V الممثل مقابل 7-عاد التدفق الخلوي المؤامرات في الاتحاد الأفريقي للعاشر-وص المحور المحور للخلايا المحتضنة 5-علاء 0، 0.5، 1، 2 مم. Q1: المبكر apoptotic الخلايا، Q2: الراحل apoptotic/نخرية الخلايا، Q3: نخرية الخلايا، و Q4: خلايا قابلة للحياة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3: حضانة 5-علاء في درجات حرارة مختلفة قد يغير فعالية التوقيت الصيفي الباسفيكي. Annexin V الممثل مقابل 7-عاد التدفق الخلوي المؤامرات في الاتحاد الأفريقي للعاشر-وص المحور المحور للخلايا SCC-13 المحتضنة مع 0.5 مم 5-علاء في 27 و 36 و 42 درجة مئوية. Q1: المبكر apoptotic الخلايا، Q2: الراحل apoptotic/نخرية الخلايا، Q3: نخرية الخلايا، و Q4: خلايا قابلة للحياة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Discussion

وقدمت "الصيدلة" DUSA/الشمس 5-علاء والجهاز الخفيفة بلو-U. هذه المخطوطة وأيده المتبقية الدكتور جاجديو التمويل. المحتويات لا تمثل وجهات نظر حكومة الولايات المتحدة أو إدارة شؤون قدامى المحاربين في الولايات المتحدة.

Disclosures

العلاج الضوئي (التوقيت الصيفي الباسفيكي) هو إجراء طبي ينطوي على الحضانة لمناشئ التطبيقية محسس ضيائي (PS) تليها فوتواكتيفيشن الضوء المرئي للحث على المبرمج. نقدم بروتوكولا في المختبر التوقيت الصيفي الباسفيكي مصممة لمحاكاة التوقيت الصيفي الباسفيكي التي يمكن استخدامها لدراسة الاختلافات في حضانة PS والمعلمات ضوء العلاج.

Acknowledgements

المؤلفين قد لا شكر وتقدير.

Materials

وسط
مصل كيراتينوسايتي الحر متوسطة ثقافة 17005042 Thermofisherلخلايا SSC-13
DMEM منخفض الجلوكوز جلوتاماكس10567022الرثروفريروسط زراعة ممكن لأنواع الخلايا الأخرى
ألواح استزراع 6 آبارThermofisher720083
PBSThermofisher14190250
0.25٪ Trypsin-EDTAThermofisher25200056
Trypan الحل الأزرق ، 0.4٪ 15250061 Thermofisherلعد الخلايا والطلاء   ؛
ضوء BLU-U DUSAطلب من الشركة المصنعةيمكن استخدام مصابيح LED زرقاء أخرى أو فلورسنت أو هالوجين
5-ALADUSAطلب من الشركة المصنعة
FBSAtlanta BiologicalsC17032
FlowCellect Annexin Red KitMillipore Sigma FCCH100108 قد يحل يوديد البروبيديوم محل 7-AAD. يأتي مع ملحق-V و 7-AAD ومخزن مؤقت للتدفق
FACSCanto IIBDطلب من الشركة المصنعةيمكن استخدام أي مقياس خلوي للتدفق 
غرفة العدHausser3120لعد الخلايا والطلاء  
FlowJoFlowJoطلب من الشركة المصنعةبرنامج تحليل قياس التدفق الخلوي

References

  1. Morton, C., et al. European Dermatology Forum guidelines on topical photodynamic therapy. European Journal of Dermatology. 25 (4), 296-311 (2015).
  2. Ozog, D. M., et al. Photodynamic therapy: A clinical consensus guide. Dermatologic Surgery: Official Publication for American Society for Dermatologic Surgery. 42 (7), 804-827 (2016).
  3. Abrahamse, H., Hamblin, M. R. New photosensitizers for photodynamic therapy. Biochemical Journal. 473 (4), 347-364 (2016).
  4. Josefsen, L. B., Boyle, R. W. Photodynamic therapy and the development of metal-based photosensitisers. Metal-Based Drugs. 2008, 276109 (2008).
  5. Ohgari, Y., et al. Mechanisms involved in δ-aminolevulinic acid (ALA)-induced photosensitivity of tumor cells: Relation of ferrochelatase and uptake of ALA to the accumulation of protoporphyrin. Biochemical pharmacology. 71 (1-2), 42-49 (2005).
  6. Kessel, D., Luo, Y. Mitochondrial photodamage and PDT-induced apoptosis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 42 (2), 89-95 (1998).
  7. Goldberg, D. J. Photodynamic therapy in skin rejuvenation. Clinics in Dermatology. 26 (6), 608-613 (2008).
  8. Sakamoto, F. H., Lopes, J. D., Anderson, R. R. Photodynamic therapy for acne vulgaris: A critical review from basics to clinical practice: Part I. Acne vulgaris: When and why consider photodynamic therapy. Journal of the American Academy of Dermatology. 63 (2), 183-193 (2010).
  9. Boen, M., Brownell, J., Patel, P., Tsoukas, M. M. The role of photodynamic therapy in acne: An evidence-based review. American Journal of Clinical Dermatology. 18 (3), 311-321 (2017).
  10. Allison, R. R., Moghissi, K. Oncologic photodynamic therapy: Clinical strategies that modulate mechanisms of action. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 10 (4), 331-341 (2013).
  11. Koo, E., Austin, E., Mamalis, A., Jagdeo, J., et al. Thermal ultra short photodynamic therapy: heating fibroblasts during sub-30-minute incubation of 5-aminolevulinic acid increases photodynamic therapy-induced cell death. Dermatologic Surgery: Official Publication for American Society for Dermatologic Surgery. , (2017).
  12. Koo, E., Austin, E., Mamalis, A., Jagdeo, J. Efficacy of ultra short sub-30 minute incubation of 5-aminolevulinic acid photodynamic therapy in vitro. Lasers in Surgery and Medicine. 49 (6), 592-598 (2017).
  13. JoVE Science Education Database. Cell Biology. Annexin V and Propidium Iodide Labeling. JoVE. , (2018).
  14. Mamalis, A., Koo, E., Sckisel, G., Siegel, D., Jagdeo, J. Temperature-dependent impact of thermal aminolaevulinic acid photodynamic therapy on apoptosis and reactive oxygen species generation in human dermal fibroblasts. British Journal of Dermatology. 175 (3), 512-519 (2016).
  15. Gilaberte, Y., et al. Cellular intrinsic factors involved in the resistance of squamous cell carcinoma to photodynamic therapy. Journal of Investigative Dermatology. 134 (9), 2428-2437 (2014).
  16. Yoon, H. K., et al. Nanophotosensitizers engineered to generate a tunable mix of reactive oxygen species, for optimizing photodynamic therapy, using a microfluidic device. Chemistry of Materials. 26 (4), 1592-1600 (2014).
  17. Chen, Y. -. C., Lou, X., Zhang, Z., Ingram, P., Yoon, E. High-throughput cancer cell sphere formation for characterizing the efficacy of photo dynamic therapy in 3D cell cultures. Scientific Reports. 5, 12175 (2015).
  18. Campos, C., Inada, N., Kurachi, C. Low-dose PDT on breast cancer spheroids. Optical Methods for Tumor Treatment and Detection: Mechanisms and Techniques in Photodynamic Therapy XXVII. , (2018).
  19. Yang, J., et al. The influence of temperature on 5-aminolevulinic acid-based photodynamic reaction in keratinocytes in vitro. Photodermatology, Photoimmunology & Photomedicine. 26 (2), 83-88 (2010).
  20. Juzeniene, A., Juzenas, P., Kaalhus, O., Iani, V., Moan, J. Temperature effect on Accumulation of protoporphyrin IX after topical application of 5-aminolevulinic acid and its methylester and hexylester derivatives in normal mouse skin. Photochemistry and Photobiology. 76 (4), 452-456 (2002).
  21. Novak, B., Heesen, L., Schary, N., Lubbert, H. The influence of different illumination parameters on protoporphyrin IX induced cell death in squamous cell carcinoma cells. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 21, 385-392 (2018).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

نهج <em>في المختبر</em> للعلاج الضوئي
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code