مقالة منهجية

انسداد الابهري كاملة وجزئية لعلاج الصدمة النزفية في الخنازير

10K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/58284

⸱

أغسطس 24, 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, University of Michigan, 2Hays Innovations

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

نقدم هنا، بروتوكول إظهار نموذج صدمة نزفية في الخنازير يستخدم انسداد الابهري كجسر للرعاية نهائي في الصدمات النفسية. هذا النموذج قد طلب في اختبار مجموعة واسعة من الاستراتيجيات العلاجية الجراحية والدوائية.

الملخص

نزيف يبقى السبب الرئيسي للوفيات التي يمكن الوقاية منها في مجال الصدمات النفسية. وكانت إدارة اللمفاوية نزيف الجذع غير قابل في طليعة رعاية الصدمات النفسية في السنوات الأخيرة. نظراً لانسداد الابهري كاملة يعرض شواغل خطيرة، اكتسب مفهوم انسداد الابهري الجزئي اهتمام متزايد. وهنا نقدم نموذج حيوان كبير من الصدمة النزفية التحقيق في آثار الرواية بالون الابهر جزئية انسداد القسطرة ومقارنتها مع قسطرة التي تعمل على مبادئ انسداد الابهري كاملة. الخنازير هي تخديره وتجهيزها من أجل إجراء التحكم وحدة التخزين الثابتة نزيف، ويتم رصد المعلمات الفسيولوجية والنفسية. أثر نزيف إدراجه بالون الابهر انسداد القسطرة وتضخم في الشريان الاورطي سوبراسيلياك لمدة 60 دقيقة، خلالها تلقي الحيوانات الإنعاش الدم كله كنسبة 20% من حجم الدم الإجمالي (الدم). عقب الانكماش البالون، وتراقب الحيوانات في أجواء رعاية حرجة ح 4، التي يتلقونها إنعاش السوائل وفاسوبريسورس حسب الحاجة. انسداد جزئي بالون الابهر أظهرت تحسن القاصي الضغط الشرياني يعني (خرائط) خلال التضخم بالون وانخفضت علامات الاسكيمية، وانخفضت إنعاش السوائل واستخدام فاسوبريسور. فسيولوجيا الخنازير وردود التماثل الساكن أثر نزيف كانت موثقة توثيقاً جيدا وهي الخنازير نزفية مثل تلك الموجودة في البشر، يمكن استخدام نموذج صدمة لاختبار استراتيجيات العلاج المختلفة. بالإضافة إلى علاج نزيف، أصبحت بالون الابهر انسداد القسطرة شعبية لدورهم في توقف القلب، وجراحة القلب والأوعية الدموية، والأخرى المعرضة للخطر العمليات الجراحية الاختيارية.

المقدمة

ويواصل نزيف القضية المهيمنة للوفيات التي يمكن الوقاية منها في المرضى الذين يخضعون للأحداث المؤلمة، تمثل 90 في المائة وفيات الناجمة عن الصدمات النفسية في الإعداد العسكري و 40% من الوفيات ما بعد الصدمة في السكان المدنيين1، 2-على الرغم من الضغط المباشر ويمكن علاج نزيف قابل للضغط، نزيف غير قابل الجذع ما زال من الصعب علاج ويمكن أن تكون قاتلة دون مراقبة مرقئ الفوري. أثبت النهج التاريخي thoracotomy انعاشية أو فتح البطن مع الصليب-لقط الابهر الغازية الغاية3،4. ويتطلب هذا التدخل أيضا خوارزمية تحديد معقدة لتحديد الترشيح المرضى الذين خضعوا للإهانات المؤلمة5.

وفي السنوات الأخيرة، كان هناك تجدد الاهتمام باتباع نهج تم وصفه مسبقاً — اللمفاوية انعاشية بالون انسداد الشريان الاورطي (ربا)6،،من78. على الرغم من أن ريبوا قد أضفى مزايا البقاء على قيد الحياة قصيرة الأجل في نزيفا، يطرح انسداد الشريان الاورطي كاملة مطولة خلال التضخم بالون الشواغل الخطيرة التي تشمل الجهاز نهاية لا رجعة فيها الاسكيمية9،10. في محاولة للتغلب على هذا المرض المحتملة، ويجري استنباط استراتيجيات اللمفاوية بديلة لإدارة نزف. واحد مثل هذه الاستراتيجية التي شهدت اهتمام متزايد انسداد جزئي الشريان الاورطي11،12. ويتيح فكرة الانسداد الجزئي بالون الابهر التروية القاصي إلى موقع الانسداد وتحسين الخرائط الابهري الدانية الفسيولوجية وتخفيض تدريجي afterload عقب الانكماش البالون الأوعية الدموية سريراً. هذه التغييرات في المعلمات هي التعديلات المطلوبة للخصائص الفسيولوجية حيوان النزيف. قبل ترجمة هذا الأسلوب على البشر، إكمال وبالون الابهر جزئية انسداد القسطرة قد تم اختبارها بشدة في نماذج الخنازير من الصدمة النزفية11،،من1213.

وقد استخدمت الخنازير في الدراسات التي تستتبع الصدمة النزفية لسنوات عديدة. معظم الفهم الحالي الفسيولوجيا المرضية لصدمة نزفية يستمد من الدراسات التي استخدمت نماذج حيوانية، بما في ذلك الخنازير. علم وظائف الأعضاء والردود التماثل الساكن في الإعداد لاستنفاد باثولوجي حجم النزف، خاصة تلك التي تتعلق باستجابات القلب والأوعية الدموية وتخثر الدم، وكانت موثقة توثيقاً جيدا وتشبه تلك الموجودة في البشر14التالية. نماذج الخنازير من الصدمة النزفية أيضا فرصاً للتحقيق في استراتيجيات علاج الصدمة النزفية وغيرها من الإصابات الرضية.

في هذه الدراسة، ونظهر نموذج واقعي سريرياً من الصدمة النزفية في الخنازير لتقييم استراتيجيات العلاج اللمفاوية، بما في ذلك انسداد بالون الابهر كاملة وجزئية. نحن افترض أن يؤدي انسداد جزئي للشريان الاورطي الفسيولوجية شكل أفضل ومختبر الشخصية مقارنة انسداد الشريان الاورطي في الخنازير يمر بنزيف وحدة التخزين الثابتة التي تسيطر عليها كاملة.

أننا هدف لمقارنة الآثار الفسيولوجية لانسداد الابهري الجزئية والكاملة لعلاج الصدمة النزفية في نموذج الخنازير. وقد تحقق انسداد الابهري جزئية استخدام انسداد بالون الابهر انتقائية في القسطرة الصدمة النفسية (قبقاب) (الشكل 1). قسطرة SABOT هو نظام اثنين-بالون يسمح تدفق الدم داخل لومينال، مما يوفر تدفقا الابهري جزئي للأسرة بالأوعية الدموية البعيدة إلى الانسداد. انسداد الابهري كاملة تم تحقيقه باستخدام قسطرة انسداد الابهري بالون واحد (مثلاً،CODA) (الشكل 1). كانت التجارب المعشاه ذات مجموعات العلاج الخضوع لانسداد الابهري انعاشية مع كاملة أو القسطرة الانسداد الجزئي بالون الابهر (n = 2/المجموعة).

وتشمل الخطوات الرئيسية للنموذج التعريفي للتخدير والتنبيب، والمحافظة على التخدير، والأجهزة، ونزيف الدم 35% (إجمالي 20 دقيقة؛ والنصف على مدى 7 دقيقة الأولى والنصف على مدى 13 دقيقة المتبقية)، انسداد بالون الابهر و الدم كله الإنعاش (60 دقيقة من انسداد؛ وإنعاش الدم كله 20% خلال آخر 20 دقيقة للانسداد)، الرعاية الحرجة الرصد (240 دقيقة) مع المراقبة الفسيولوجية، والقتل الرحيم مع حصاد الأنسجة. الشكل 2 يوضح النموذج الذي استخدم في هذه التجربة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

عند إجراء البحث باستخدام الحيوانات، المحققين التقيد "لوائح قانون رعاية الحيوان" وسائر القوانين الاتحادية المتعلقة بالحيوانات والتجارب التي تنطوي على الحيوانات والمبادئ المنصوص عليها في الإصدار الحالي من الدليل لرعاية واستخدام من الحيوانات المختبرية لمجلس البحوث الوطني. وأقر هذا البروتوكول دراسة جامعة "ميشيغان رعاية الحيوان المؤسسية" واستخدام اللجنة (إياكوك). أجريت التجارب امتثالا لجميع اللوائح والمبادئ التوجيهية بشأن الرفق بالحيوان في البحث.

1. الحيوان التحديد والتأقلم

  1. استخدام الإناث يوركشاير-Landrace نيوزيلند الخنازير (n = 2/الفريق، تتراوح أعمارهم: الوزن 5-6 أشهر، النطاق: 40-60 كجم) للتجربة.
  2. بعد وصولهم إلى المرفق، بيت الحيوانات في أقفاص منفردة ولكن ضمان أن هناك تفاعل كاف بين الحيوانات في أقفاص المجاورة.
  3. بيت الحيوانات على الأقل 5 د حتى أن كانوا هم تأقلم تماما قبل إجراء التجربة. وخلال هذه الفترة، تغذية الحيوانات مع اتباع نظام غذائي قياسي ومراقبة لهم للتأكد من أنهم في حالة صحية جيدة.
  4. الحفاظ على الحيوانات من الأكل والشرب بعد منتصف الليل قبل الجراحة لمنع خطر تطلع خلال التنبيب.

2-التخدير وتنبيب

  1. رصانة الحيوان مع 5 ملغ/كغ تيليتاميني/زولازيبام تعطي عضليا (IM) في عضلة عضلة بينما الحيوان في مجال الإسكان. وفي الوقت نفسه، إعطاء الأتروبين 0.05 مغ/كغ إيم كوكيل لتقليل إفرازات خلال التنبيب حالات.
  2. نقل الحيوانات من منطقة السكن إلى غرفة العمليات ووضعه في موقف ضعيف على جدول تشغيل.
  3. استخدام isoflurane المستنشقة (2%-5%) للحث على التخدير. استخدام الأكسجين 21% (0.4 لتر في الدقيقة) مختلطة مع الهواء (4 لتر في الدقيقة) كالغازات الناقل لتوصيل الغاز المستنشق مخدر.
  4. بينما يجري تحقيق العمق المطلوب للتخدير، وضع قسطرة (رابعا) عن طريق الحقن الوريدي المحيطي ز 20 في هذا السياق الإذن لإدارة الرابع من السوائل أو عقاقير التخدير، حسب الحاجة.
  5. كما يكتسب الحيوان العمق المطلوب للتخدير، برفق يغسل أي النفايات والأنقاض من مواقع المنطوق، بما في ذلك في مناطق اليسار واليمين الاربية، الجانبين الأيمن والأيسر من الرقبة والبطن. استخدام ماكينة قص شعر كهربائية لإزالة الشعر كل من هذه المواقع من المنطوق. تقييم عمق التخدير معسر أطرافهم هند الحيوان ومراقبة رده (قلة).
  6. تأمين هذا الحيوان على طاولة العمليات باستخدام الحبال القطن الجراحي حول كل الأطراف، قبل التنبيب.
  7. استخدام قطعة قصيرة من حبل القطن الجراحي لرفع الفك جنبا إلى جنب مع اللسان لفتح الفوهة الفموية. استخدام قطعة أخرى من القطن حبل لسحب الفك الأسفل. في حالة استرخاء الفك غير كافية أو مطوية طيات صوتي، زيادة مستوى إيسوفلوراني بإيجاز وكرر هذه الخطوة.
  8. استخدام اليد غير المهيمنة لعقد مقبض المنظار التقليدية مزودة 12 في المضاء ميلر بليد. تمرير غيض شفرة ميلر عن طريق البلعوم. ممارسة الحذر للحفاظ على الأسنان والغشاء المخاطي للفم أثناء المناورة بليد في تجويف الفم. ببطء النهوض بنصيحة بليد حتى يمكن تصور epiglottis وضوح ومسبقة في الماضي مدخل الحنجرة. استخدام المعصم، رفع النصل، رفع epiglottis، مثل أن يتم الحصول على رؤية واضحة للحنجرة.
  9. مكان 6.5 الأب أو 7 الأب داخل الرغامى أنبوب (ETT) مع ستيليت بين طيات صوتي إلى القصبة الهوائية. في حالة لارينجوسباسم بسبب تهيج الأغشية المخاطية، تطبيق ليدوكائين 2% في طيات صوتي وميدان جلوسو ابيجلوتيك متوسط وإعادة تقييم.
  10. إزالة ستيليت قبل النهوض الكامل الأنبوب أسفل القصبة الهوائية مع الاحتفاظ أحكام قبضتهم على الأنبوب. تضخيم الكفة بالون مع 10-15 سم3 من الهواء لمنع أي تسرب الهواء حول الرباط والتطلع لمحتويات المعدة.
  11. الاتصال ETT في التهوية الميكانيكية من خلال عامل تصفية التنفس (مبادل الحرارة والرطوبة). تأمين ETT بربط الشريط القطن حول الآنف (الفك).
  12. في حالة تنبيب فاشلة، اسمحوا أوكسيجيناتي الحيوانية وتهوية بإيجاز قبل أية محاولات إضافية.
  13. ضمان الإعدادات المناسبة التهوية الميكانيكية: خليط من الأكسجين 21% والهواء؛ وحدة تخزين المد 7-10 مل/كغ من وزن الجسم؛ بمعدل 10-15 في الدقيقة الأنفاس للحفاظ على pCO نهاية المد2 من 40 مم زئبق ± 2 مم زئبق الجهاز تنفسي.
  14. مكان نبضي على الإذن، واللسان، أو ذيل لقياس الأوكسجين في الدم ومعدل ضربات القلب. تقدم تحقيق المستقيم من خلال الفوهة الشرجية لرصد درجة الحرارة المستمرة.
    ملاحظة: درجة حرارة الحيوان الإبقاء على بين 38 درجة مئوية إلى 40 درجة مئوية باستخدام جدول التشغيل ساخن ينظم درجة الحرارة، وحصيرة الحرارة أو بطانية تدفئة.
  15. استخدام إيسوفلوراني (1%-3%) للمحافظة على التخدير طوال فترة الإجراءات. وخلال هذا الوقت، تقييم عمق التخدير عن طريق اختبار لردود الفعل ألم استخدام قرصه أطرافهم هند. وبالإضافة إلى ذلك، رصد معدل التنفس الصناعي لمعرفة إذا كان يتطابق مع معدل التنفس الصناعي المبرمجة على الجهاز التنفسي.
    ملاحظة: يشير الإفراط في التنفس عمق غير كاف للتخدير.

3-موقع الجراحية التعقيم (إعداد واللف)

  1. إعداد مواقع شق، فضلا عن منطقة واسعة تحيط بها إجراءات تجريبية. وتشمل المواقع شق للتجربة الثنائية المناطق الاربية والرقبة الثنائية، وأسفل البطن. تطهير المواقع من المنطوق بتنقية لهم مع كمية وفيرة من بوفيدون لمدة 5 دقائق.
  2. استخدم شاش جافة ومعقمة لإزالة الصابون بوفيدون من الجلد.
  3. وضع المناشف الجراحية العقيمة حول المواقع المنطوق للحفاظ على ميادين العمليات الجراحية المعقمة. استخدام الملقط منشفة لتأمين المناشف في المكان. تغطية الحيوان مع ثني عقيمة لمنع أي تلوث من مواقع العمليات الجراحية.

4-كانوليشن

  1. فخذي الشريان والوريد كانوليشن
    ملاحظة: يتم تنفيذ كانولاتيون حق فخذي الشريان والشريان الفخذ الأيسر، والمنطلق الفخذ الأيسر. هو مقني شريان فخذي حق استخدام غمد إدراج Fr 14 للإدراج القسطرة بالون الابهر الانسداد. هو مقني شريان فخذي الأيسر باستخدام قسطرة الأب 5 لرصد خريطة القاصي. ويوضع قسطرة الأب 8 في السياق الفخذ الأيسر لانسحاب الإدارة والدم السائل. وتستخدم تقنية Seldinger مفتوحة على الوصول إلى الأوعية الدموية لكل كانوليشنز15.
    1. قبل إجراء الشق، تقييم عمق التخدير عن طريق معسر أطرافهم هند من الحيوان.
    2. استخدام مشرط مزودة بشفرة جراحية معقمة رقم 10، وجعل شق 8-سم رأسي في الحق الفخذ 4 سم فوق و 4 سم بدون تجعد الاربية الحق.
    3. تشريح عبر النسيج تحت الجلد والعضلات واستخدام اثنين ويتلانير الكامشات للحصول على التعرض المناسب. استخدام ضام بحرية جيش لسحب إضافية إذا لزم الأمر.
    4. استخدام "الملقط أنجل ميكستير" واليكتروكوتيري لتشريح من خلال الأنسجة الضامة وحتى الباقة neurovascular هو كشفت بوضوح.
    5. حذر تشريح الشريان. المحافظة على العصب، وهو هيكل الجانبي الأكثر.
    6. تشريح بعناية في السياق، الذي يقع معظم ميديالى، بعيداً عن الشريان.
    7. الحصول على التحكم الدانية والبعيدة الشريان باستخدام العلاقات الحرير 2-0.
    8. استخدام إبرة مقدم زاوية ز 20 إلى ثقب الشريان. تضمن موقفا مناسباً في التجويف السفينة بالتقيد نابض تدفق الدم من خلال الطرف الآخر للابرة.
    9. المضي قدما 0.35 المستديرة ذات الرؤوس في جويديويري عن طريق التجويف الإبرة الزاوية.
    10. سحب الإبرة خلال جويديويري. ضمان لا هجرة جويديويري بعقد في المكان.
    11. تمرير ديلاتور الأب 10 أكثر من جويديويري تمدد فتح في الشريان. إزالة ديلاتور الأب 10. إدراج غمد إدراج Fr 14 على جويديويري.
    12. بعناية إزالة ديلاتور من غمد الإدراج جنبا إلى جنب مع جويديويري، إبقاء القنية داخل الشريان.
    13. مسح غمد الإدراج لضمان موقفها داخل التجويف السفينة.
    14. تأمين نهاية القسطرة في المكان مع خياطة بوليجلاكتين 3-0.
    15. استخدام خياطة نايلون 3-0 القيام إغلاق تشغيل مؤقت للجلد السطحية.
    16. كرر الخطوات المذكورة أعلاه ل cannulation شريان فخذي الأيسر باستخدام قسطرة الأب 5 (لا تمدد الأولية). عزل على المنوال الفخذ الأيسر بطريقة مماثلة وكانولاتي باستخدام قسطرة الأب 8. استخدام خياطة نايلون 3-0 القيام إغلاق تشغيل مؤقت للجلد السطحية.
  2. الشريان السباتي والخارجية حبل الوريد كانولاتيون
    ملاحظة: يتم تنفيذ كانولاتيون الأوردة حبل الخارجية الثنائية والشريان السباتي المشترك الأيسر. يتم وضع قسطرة الأب 5 في الشريان السباتي المشترك الأيسر لرصد خريطة الدانية، وقسطرة الأب 8 في الوريد الخارجية اليسرى لوصول وريدي مركزي إضافية لإدارة السوائل وضخ فاسوبريسور. يتم وضع قسطرة Fr 9 في الوريد الخارجي حق لقسطرة الشريان الرئوي مع شريان الرئوي (مثلاً، سوان-غانز) القسطرة، بينما يتم وضع مجس تدفق السباتي حول الشريان السباتي المشترك الحق لمعدل التدفق السباتي الرصد. يتم استخدام نهج سيلدينجير على الوصول إلى الأوعية الدموية لجميع كانوليشنز.
    1. استخدام مشرط 10-بليد، جعل شق عمودي 6 سم 2 سم تقريبا الأفقي لخط الوسط في الجانب الأيسر من الرقبة.
    2. استخدم اليكتروكوتيري لتشريح عبر النسيج تحت الجلد حتى يتم كشف العضلات الترقوية (SCM).
    3. ضع الكامشات ويتلانير في الجوانب القريبة والبعيدة للشق لتراجع كامل.
    4. تشريح على طول الحدود الجانبية عضلة SCM لفضح حبل الوريد الخارجية اليسرى.
    5. ويمكن تحقيق cannulation السفينة قبل اتباع الخطوات 4.1.8-4.1.14. إدراج ومسح وتأمين قسطرة الأب 8 في هذا السياق.
    6. لليسار التعرض الشريان السباتي المشترك، تشريح الحافة الآنسي عضلة SCM. مكان ضام ويتلانير لتعزيز التعرض.
    7. تشريح من خلال النسيج الضام طوليا على الحدود الجانبية للقصبة الهوائية. الحفاظ على الغدة الصعترية الغدد إذا أنها تصادف.
    8. يعرض مثلث السباتي، الذي يحتوي على الشريان السباتي وحبل الوريد الداخلي والعصب المبهم. جس الشريان السباتي المشترك لتحديد مساره.
    9. تشريح الشريان السباتي المشترك بعيداً عن هذا السياق والعصب بعناية.
    10. تنفيذ cannulation السباتي باتباع الخطوات 4.1.8-4.1.14. إدراج ومسح وتأمين قسطرة الأب 5 في الشريان كما هو موضح سابقا.
    11. كرر الخطوات من 4، 1. للتشريح والعزلة الخارجية حق حبل الوريد والشريان السباتي المشترك الحق.
    12. مكان تحقيق تدفق شريان السباتي 4 مم حول الشريان السباتي المشترك الحق. تطبيق هلام محول الطاقة بين المسبار تدفق والسفينة للتدفق الأمثل الإشارات والتقاط.
    13. وعقب 4.1.8-4.1.14 الخطوات، كانولاتي حبل الوريد الخارجي حق استخدام غمد مقدم Fr 9. مسح وتأمين القسطرة في المكان. استخدام خياطة نايلون 3-0 القيام إغلاق تشغيل مؤقت للجلد السطحية.

5-السلطة الفلسطينية القسطرة الإدراج

  1. مسح المنفذ الحقن، المنفذ الدانية، وميناء القاصي القسطرة مع المحلول الملحي العادي (NS) وقم بتوصيلها بأنابيب محول طاقة. يعين المنفذ القاصي الميناء الشريان الرئوي (السلطة الفلسطينية)، بينما عينت المنفذ الدانية المنفذ الضغط الوريدي المركزي (CVP).
  2. الاختيار لتعقب القطع الأثرية على الشاشة عن طريق تحريك القسطرة. يتم ذلك للتأكد من أن تعمل القسطرة.
  3. قسطرة تقدم السلطة الفلسطينية من خلال كم العقيمة.
  4. استخدام المحاقن3 سم 3، تضخيم البالون للقسطرة السلطة الفلسطينية مع لا أكثر من 1.5 سم3 من الهواء لاختبار للتضخم. انتفاخ البالون لإدخال القسطرة في غمد الإدراج.
  5. أدخل القسطرة السلطة الفلسطينية عن طريق غمد الإدراج Fr 9. حالما يتم إدخال القسطرة السلطة الفلسطينية لمالا يقل عن 18 سم، تضخيم البالون مع لا أكثر من 1.5 سم3 من الهواء.
  6. ببطء تقدم القسطرة السلطة الفلسطينية والتحقق من جهاز العرض لعدم انتظام ضربات القلب أثناء الإدراج. في حالة البطين أكتوبي، تضخم وانتفاخ البالون للحيلولة دون تطور. إذا الإدراج يصبح من الصعب في أي حال من الأحوال، ينبغي أن تكون قلصت البالون وينبغي سحب القسطرة وإعادة إدراجها.
  7. مراقبة رصد لتقييم الانتقال من الاذين الأيمن (RA) إلى البطين الأيمن (RV) إلى السلطة الفلسطينية لضغط الشريان الرئوي آسفين (PWP).
  8. انتفاخ البالون، وتأكيد أن تتبع السلطة الفلسطينية ترجع إلى جهاز العرض.
    ملاحظة: الطول المناسب للقسطرة من موقع الإدراج في الوريد الخارجي حق حوالي 45-55 سم.
  9. قم بتوصيل الطرف الأكمام معقمة غمد الإدراج بغية تأمين موضع القسطرة داخل السلطة الفلسطينية.
  10. قم بتوصيل موانئ الإدراج القسطرة السلطة الفلسطينية إلى وحدة الالتقاط للحصول على ناتج القلب (CO) وتشبع الأكسجين وريدي (سفو2).
  11. معايرة القسطرة السلطة الفلسطينية نظام الرصد. استخدام الجسم طول ووزن الحيوان، إجراء معايرة في فيفو من القسطرة السلطة الفلسطينية رصد النظام للحيوان. استخدام غاز دم وريدي لمعايرة مواصلة استخدام مستويات الهيموغلوبين وتشبع الأكسجين.

6-سيستوستومي الأنبوبة موضع

  1. جعل شق البطن السفلي 5 سم في خط الوسط باستخدام مشرط 10-بليد.
  2. استخدام اليكتروكوتيري، تشريح عبر النسيج تحت الجلد وفي لينيا ألبا. تصور كل طبقة خلال التشريح.
  3. اكستراكوربوريليزي المثانة البولية.
  4. مع اثنين دبغي الملقط، فهم المثانة البولية على السطح البطني بعيداً عن فتحات الحالب.
  5. باستخدام اليكتروكوتيري، جعل فتحه صغيرة في المثانة، وفضح التجويف الداخلي.
  6. استخدام شفط لإزالة أي البول من داخل تجويف المثانة. يمكن استخدام الأسفنج الجراحية لأي تسرب غير مقصود للبول خارج المثانة.
  7. استخدام خياطة البوليبروبيلين 4-0 لتنفيذ إغلاق سلسلة محفظة مؤقتة من المثانة.
  8. مكان قسطرة فولي Fr 18 داخل التجويف المثانة واستخدام حقنه 10 سم3 لتضخيم البالون. توصيل كيس تصريف البولي بالقسطرة فولي وضمان الحصول عليها إلى جانب طاولة العمليات.
  9. التعادل خياطة البوليبروبيلين 4-0 لتأمين قسطرة فولي في تجويف المثانة.
  10. استخدام خياطة نايلون 3-0 القيام إغلاق تشغيل مؤقت للجلد المغطى لجدار البطن.

7-إدخال قسطرة البالون الابهري الكامل والجزئي

  1. الحيوانات لتلقي أما القسطرة انسداد بالون الابهر كاملة أو جزئية بطريقة عشوائية.
  2. إدراج من 0.035 في 260 سم نظام جويديويري قاسية من خلال إدراج Fr 14 غمد في شريان فخذي الأيمن، وتسترشد بها في الشريان الاورطي سوبراسيلياك (منطقة 1) باستخدام الموجات فوق الصوتية للشريان الاورطي البطني والصدري.
  3. إدراج انسداد القسطرة بالون على جويديويري في 1 منطقة الابهر لأداء الانسداد بعد النزف.
  4. تأكيد النهائية موضع القسطرة بالون الابهر انسداد في المنطقة 1 الابهر بالموجات فوق الصوتية.

8-المضاعفات الفسيولوجية ومراقبة المختبرات

  1. ضمان اتصال القسطرة الغازية إلى نظام الرصد باستخدام أنابيب، محولات الطاقة، وأنابيب لمراقبي الفسيولوجية. الغازية نظم الرصد ينبغي أن تكون 'صفرية' على مستوى القلب للحيوان لضمان مراقبة دقيقة.
  2. سجل البيانات الفسيولوجية طوال هذه التجربة، بما في ذلك الدانية والخريطة القاصي معدل ضربات القلب (HR)، في CVP، في الشركة، ضغط السلطة الفلسطينية، سفو2، نهاية المد CO2ودرجة حرارة الجسم الأساسية.
  3. تسجيل هذه المتغيرات كل 5 دقائق خلال مرحلة التضخم بالون، كذلك والنزف كل 15 دقيقة خلال الفترة المتبقية من هذه التجربة.
  4. جمع عينات الدم في النقاط الزمنية 4: خط الأساس (BL)، ما بعد الصدمة (PS)، مرحلة ما بعد الإنعاش (العلاقات العامة)، وفي نهاية التجربة (ه). يتم جمع 10 مل دم لتحليل كل من البلازما والمصل في كل نقطة في الوقت.
  5. إجراء أخذ عينات من الغاز (مجموعة البركة المصرفية) الدم الشرياني بجمع يصل إلى 1 مل دم في المحاقن مجموعة البركة المصرفية. إجراء أخذ العينات مجموعة البركة المصرفية في كل نقطة من النقاط الزمنية المشار إليها أعلاه، وأيضا عند الحاجة أثناء التجربة. استخدام محلل غاز دم للتحليل.
    ملاحظة: يجب أن يتم تحليل كل عينة داخل 10 دقيقة لرسم الدم سبب التأخير أطول من 10 دقيقة يمكن أن تقلل من كفاءة النتائج16.

9-نزيف

  1. حساب الدم.
    الدم في مل = الوزن في ز × 0.06 + 0.77
  2. النزف 35% الدم استخدام مضخة الآلي على مدى فترة 20 دقيقة إزالة النصف على مدى 7 دقيقة الأولى، والنصف الآخر على مدى 13 دقيقة القادمة.
  3. جمع الدم في أكياس جمع الدم القياسية. تخزينها في 4 درجات مئوية تحسبا لعملية نقل مستقبلا.
  4. إذا انخفضت الخريطة أدناه 30 ملم زئبق، وقف نزيف إيقاف في isoflurane وإدارة بلعات 50-100 مل من NS.
  5. قم بإعادة تشغيل في نزيفا عند إرجاع الخريطة إلى 30 ملم زئبق.

10-الابهري بالون انسداد القسطرة التضخم وإنعاش الدم كله

  1. تضخم البالون الابهري انسداد القسطرة مع 9-12 سم3 من الهواء أو حتى لا مزيد من الانخفاض في ما يلي خريطة القاصي ويلاحظ تضخم بالون إضافية.
  2. إزالة الأسلاك من القسطرة انسداد بالون الابهر جزئية لتسهيل تدفق الابهر القاصي، تاركاً لانسداد القسطرة بالون الابهر كاملة. التأكد من وضع القسطرة بالون الابهر انسداد في المنطقة 1 باستخدام الموجات فوق الصوتية لاستبعاد الهجرة القسطرة.
  3. تأمين القسطرة للجلد باستخدام خياطة نايلون توقف 3-0.
  4. وبعد 40 دقيقة من انسداد الابهري، أحياء الحيوان بالدم كله متساوية في الحجم بنسبة 20% للدم عن طريق قسطرة الوريد الفخذ الأيسر على مدى فترة 20 دقيقة باستخدام مضخة الآلي. استخدام دم الحار للدم، استهداف درجة حرارة 40 درجة مئوية.
  5. بعد الإنعاش، تنكمش البالون تدريجيا أكثر من 5 دقائق.
  6. إزالة انسداد القسطرة بالون الابهر من غمد الإدراج Fr 14.
  7. رصد في الهليوكبتر عن كثب خلال هذا الوقت، نظراً لخطر الإصابة ضخه الاسكيمية--مع انخفاض ضغط الدم المرتبط المعروف.

11-العناية والمراقبة، والانتعاش

  1. مراقبة الحيوانات ح 4 مع الرصد المستمر للمعلمات الفسيولوجية والمختبرات الخاصة بهم.
  2. توفير الصيانة السوائل الوريدية (NS التسريب في 50 مل/ساعة).
  3. الهدف CVP من 6 مم زئبق بإدارة بلعات 30 مل/كغ من NS تليها بلعات 20 مل/كغ عند CVP يقع أسفل الهدف. تقييم مدى استجابة السوائل كل ساعة.
  4. استهداف خريطة 60 مم زئبق باستخدام جرعة إفراز (0.024 ميلغرام/ml).
  5. الحفاظ على درجة حرارة 38-40 درجة مئوية باستخدام غطاء تدفئة الفسيولوجية.
  6. في نهاية فترة ح 4، euthanize الحيوانات مع حقنه بينتوباربيتال (100 مغ/كغ) صوديوم.

12-نيكروبسي

  1. قم بإزالة كافة الأسطر الأساسية وأنابيب من الحيوان.
  2. إعداد حاوية مع الجليد العادية ووضعه بجانب طاولة العمليات لتجميد الأنسجة الجهاز فورا بعد الإزالة من الجسم.
  3. استخدام مشرط لشق طويل عمودي 6 سم على طول الحدود القصية اليسرى، تشريح من خلال الجلد والأنسجة تحت الجلد، والعضلات صدرية، والغضاريف الساحلي. أدخل تجويف الصدر للكشف عن القلب والرئة.
  4. إزالة الغشاء التامور من القلب بإجراء شق بدون مشرط والاستيلاء على قمة القلب باستخدام الملقط. استخدام مشرط لقطع مقطع 5 × 5 سم من القلب على القمة.
  5. استخدام مقص لقص مقطع 5 × 5 سم في الرئة من الحدود الأمامية لقاعدة الرئة.
  6. تمديد شق ثوراكوتومي في خط الوسط الأمامي من البطن، تعريض الأحشاء في البطن.
  7. استخدام الملقط لعقد الفص الأيسر من الكبد وقص مقطع 5 × 5 سم.
  8. كرر نفس العملية للحصول على عينات من الطحال.
  9. استخدام اليد اليمنى لإنشاء نافذة لإدخال ريتروبيريتونيوم اليسرى للاستيلاء على الكلي. بعد أن يتم تعبئة حمة الكلوي، قطاع الشريان الكلوي والوريد، والحالب. إزالة الكبسولة الكلوي.
  10. بلطف ضغط البراز بعيداً عن مقطع طويل 5 سم من الأمعاء واستخدام مقص لقص مقطع طويل 5 سم من الأمعاء من مساريق.
  11. تستخدم دون مشرط لقطع مقطع طويل 5 × 2 سم من الفخذ العضلات من الفخذ.
  12. عملية هذه العينات كذلك بتقطيعها إلى أجزاء صغيرة لتوضع في أنابيب ميكروسينتريفوجي. فلاش-تجميد هذه عينات الأنسجة بوضع الأنابيب في الثلج الجاف أو النتروجين السائل.
  13. استخدام أنابيب مخروطية 50 مل تحتوي على فورمالين حل لإصلاح 3 سم طويلة، ناعما قطع أجزاء من الأنسجة لتقييم النسيجي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

المعلمات الفسيولوجية والنفسية:

وانخفض الخريطة فورا بعد النزيف (3A الأرقام - 3D). أثناء مرحلة التضخم بالون، شهدت الحيوانات في مجموعة كاملة من انسداد خارطة الدانية أعلى مقارنة بالحيوانات في المجموعة الانسداد الجزئي (الأرقام 3A و 3 باء). خريطة القاصي متوسط خلال التضخم بالون كان أعلى في المجموعة انسداد جزئي مقارنة بمجموعة كاملة من انسداد (خريطة القاصي متوسط، مرحلة التض...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

في هذا البروتوكول، ابرزنا نموذجا صدمة نزفية في الخنازير. هذا النموذج قد ثبت أن تكون موثوقة واستنساخه سواء16،17،،من1819. وقد استخدمت نماذج مشابهة لهذه في العديد من الدراسات العلمية التي تحقق في آثار صدمة نزفية على فسيولوجيا الحيوان16،20. وعلاوة على ذلك، كما يستخدم هذا النموذج لاختبار كل التدخلات معالجة دوائية وجراحية في صدمة نزفية بنجاح ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يتم دعم هذا العمل "لنا البحوث الطبية الجيش" و "العتاد الأمر" تحت "رقم العقد" W81XWH-16-ج-0102. وجهات نظر وآراء و/أو النتائج الواردة في هذا التقرير هي تلك التي المؤلف ولا يمكن تفسيره إدارة رسمية لموقف الجيش، السياسة، أو قرار ما لم يعين حتى في وثائق أخرى.

شكر وتقدير

نود أن نعترف راشيل أوكونيل، وجيسيكا لي لمساعدتها مع الدراسات الحيوانية. ونود أيضا أن نعترف بالجيش الميجور جنرال هارولد تيمبو، دكتوراه في الطب، MPH، الولايات المتحدة (متقاعد)، الذي كان مستشار ومرشد لهذا المشروع.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
يوركشاير-لاندراس الخنازيرولاية ميشيغان التخدير البيطري للمزرعة
: تيلازولفايزرالجرعة: 2-8 مجم / كجم ؛ IM
مضاد للكولين: الأتروبينفايزرالجرعة: 1 مجم ، التدخير
العضلي: إيزوفلورانباكسترالجرعة: 1-5٪ ، INH
بيتادينالهامكو
الكحول 70٪HumcoNDC 0395-4202-28
Datex-Aespire آلة التخديرGE Healthcare7900
أنبوب القصبة الهوائيةDEE 20170518 البيطريةالحجم المناسب للحيوان (6.5 أو 7.0 فهرنهايت)
منظار الحنجرةميلر85-0045
ستايليتهدسون RCI5-151--1
جيلكو 20G IV قسطرةسميث الطبية4054
مراقب غرفة العمليات (مراقب العلامات الحيوية)SurgiVet AdvisorV9201لا يقل عن 2
عباءات جراحيةكيمبرلي كلارك90142استخدم الحجم المناسب للجراح.
قفازات جراحية معقمةالكاردينال (الولاء)22537-570استخدم الحجم المناسب للجراح.
قلم رصاص كوتيريMedlineESPB 2000
أنبوب شفطMedlineDYND50251
نصيحة Sunction: YankauerMedlineDYND50130
Bovie Aaron 1250 وحدة الكي الكهربائيBovie Medical Co. FLBOV-A1250U
شفرة Salpel - مقاس # 10صحة الكاردينال (الولاء)32295-010
مشرط مقبضمارتن10-295-11
ملقط DebakeyRobozRS-7562
Weitlander RetractorRobozRS-8612
Mayo ScissorsRobozRS-76870SC
الجيش والبحرية ضامTeleflex164715
خلاط ملقط الزاوية اليمنىTeleflex175073
5F (1.7 مم) 11 سم غمد إدخال مع 0.35 "GuidewireBoston Scientific16035-05B
8F (2.7 مم) 11 سم غمد إدخال مع 0.35 '' GuidewireBoston Scientific16035-08B
20G بزاوية مقدمة سهم إبرةAK-09903-S
14F (4.78 مم) 13 سم غمد الإدراج مع موسع 10Fكوك ميديكالG08024
2-0 حرير 18 '' 45 سمEthiconA185H
3-0 Vicryl 36 '' 90 سمEthiconJ344H
3-0 نايلون 18 '' 45 سمEthicon663G
4-0 Prolene 30'' 75 سمEthicon8831H
20 مل حقنةMetronic / Covidien8881512878
3 مل حقنةMetronic / حقنة Covidien1180300555
6 ملMetronic / Covidien1180600777
1000 مل 0.9٪ سالينباكستر2B1324X
قسطرة فولي (18F 30 سم مكعب)Bard0166V18S
كيس تصريفبولي Bard154002
9F 10 سم غمدالإدخال سهمAK-09903-S
قسطرة الشريان الرئوي Swan-Ganz (8F)شركة Edwards Lifesciences co. CA746F8
نظام مسبار التدفق السباتيعبر الصوت ، إيثاكا ، نيويورك3 ، 4 ، أو 6 مم مجسات
قسطرة SABOTHayes Inc.
قسطرة بالون CODAكوك 8379144
بالموجات فوق الصوتية ، M-TurboSonoSite
Amplatz Stiff Guidewire (0.035 بوصة ، 260 سم)كوك ميديكالG03460
محاقن غاز الدم الشريانيسميثس ميديكال4041-2
محلل غازات الدم الشريانينوفا الكيمياء الحيويةABL800
مضخة ماسترفلكسكول بالمرHV-77921-75
أكياس جمع الدمTerumo1BBD606A
مجموعة التنقيط الماكرو IVHospira12672-28
PentobarbitalPfizerالجرعة: 100 مجم / كجم ؛ IV
أنابيب Eppendorfسورنسون11590
50 سم مكعب أنابيب مخروطيةFalcon352097
FormalinFisherbrand431121
Bair Hugger Normothermia SystemArizant Healthcare، Inc.
جامعة قد يتطلب ما صحة الطبية

المراجع

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of hemorrhage on trauma outcome: an overview of epidemiology, clinical presentations, and therapeutic considerations. The Journal of Trauma: Injury, Infection and Critical. 60, S3-S11 (2006).
  2. Kauvar, D. S., Wade, C. E. The epidemiology and modern management of traumatic hemorrhage: US and international perspectives. Critical Care. 9, S1-S9 (2005).
  3. Mattox, K. L., Allen, M. K., Feliciano, D. V. Laparotomy in the emergency department. Journal of the American College of Emergency Physicians. 8 (5), 180-183 (1979).
  4. Pust, G. D., Namias, N. Resuscitative thoracotomy. International Journal of Surgery. 33 (Pt B), 202-208 (2016).
  5. Burlew, C. C., et al. Trauma Association critical decisions in trauma: resuscitative thoracotomy. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 73 (6), 1359-1363 (2012).
  6. DuBose, J. J., et al. The AAST prospective Aortic Occlusion for Resuscitation in Trauma and Acute Care Surgery (AORTA) registry: Data on contemporary utilization and outcomes of aortic occlusion and resuscitative balloon occlusion of the aorta (REBOA). Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (3), 409-419 (2016).
  7. Biffl, W. L., Fox, C. J., Moore, E. E. The role of REBOA in the control of exsanguinating torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 78 (5), 1054-1058 (2015).
  8. Manzano Nunez, R., et al. A meta-analysis of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA) or open aortic cross-clamping by resuscitative thoracotomy in non-compressible torso hemorrhage patients. World Journal of Emergency Surgery. 12, 30(2017).
  9. Gupta, B. K., et al. The role of intra-aortic balloon occlusion in penetrating abdominal trauma. Journal of Trauma. 29 (6), 861-865 (1989).
  10. Inoue, J., et al. Resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta might be dangerous in patients with severe torso trauma: A propensity score analysis. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (4), discussion 378-380 559-566 (2016).
  11. Russo, R. M., et al. Extending the golden hour: Partial resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta in a highly lethal swine liver injury model. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (3), 378-380 (2016).
  12. Russo, R. M., et al. Partial Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta in Swine Model of Hemorrhagic Shock. Journal of the American College of Surgeons. 223 (2), 359-368 (2016).
  13. Williams, T. K., et al. Extending resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta: Endovascular variable aortic control in a lethal model of hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (2), 294-301 (2016).
  14. Hannon, J. P. Hemorrhage and hemorrhagic-shock in swine: A review. Swine as Models in Biomedical Research. Swindle, M. M. , Iowa State University Press. Ames, IA. 197-245 (1992).
  15. Garry, B. P., Bivens, H. E. The Seldinger technique. Journal of Cardiothorac Anesthesia. 2 (3), 403(1988).
  16. Halaweish, I., et al. Addition of low-dose valproic acid to saline resuscitation provides neuroprotection and improves long-term outcomes in a large animal model of combined traumatic brain injury and hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 79 (6), 911-919 (2015).
  17. Alam, H. B., et al. Surviving blood loss without blood transfusion in a swine poly-trauma model. Surgery. 146 (2), 325-333 (2009).
  18. Jin, G., et al. Traumatic brain injury and hemorrhagic shock: evaluation of different resuscitation strategies in a large animal model of combined insults. Shock. 38 (1), Augusta, GA. 49-56 (2012).
  19. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  20. Langeland, H., Lyng, O., Aadahl, P., Skjaervold, N. K. The coherence of macrocirculation, microcirculation, and tissue metabolic response during nontraumatic hemorrhagic shock in swine. Physiological Reports. 5 (7), (2017).
  21. Johnson, M. A., et al. The effect of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta, partial aortic occlusion and aggressive blood transfusion on traumatic brain injury in a swine multiple injuries model. Journal of Trauma Acute Care Surgery. 83 (1), 61-70 (2017).
  22. Theisen, M. M., et al. Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine. Laboratory Animals. 43 (1), 96-101 (2009).
  23. Li, Y., Alam, H. B. Modulation of acetylation: creating a pro-survival and anti-inflammatory phenotype in lethal hemorrhagic and septic shock. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 523481(2011).
  24. Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
  25. Dekker, S. E., et al. Normal saline influences coagulation and endothelial function after traumatic brain injury and hemorrhagic shock in pigs. Surgery. 156 (3), 556-563 (2014).
  26. Causey, M. W., McVay, D. P., Miller, S., Beekley, A., Martin, M. The efficacy of Combat Gauze in extreme physiologic conditions. The Journal of Surgical Research. 177 (2), 301-305 (2012).
  27. Frankel, D. A., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. The Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).
  28. Morrison, J. J., et al. The inflammatory sequelae of aortic balloon occlusion in hemorrhagic shock. The Journal of Surgical Research. 191 (2), 423-431 (2014).
  29. White, J. M., et al. A porcine model for evaluating the management of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma. 71, S131-S138 (2011).
  30. Alam, H. B., et al. Putting life on hold-for how long? Profound hypothermic cardiopulmonary bypass in a Swine model of complex vascular injuries. Journal of Trauma. 64 (4), 912-922 (2008).
  31. Bebarta, V. S., Daheshia, M., Ross, J. D. The significance of splenectomy in experimental swine models of controlled hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 75 (5), 920(2013).
  32. Georgoff, P. E., et al. Alterations in the human proteome following administration of valproic acid. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (6), 1020-1027 (2016).
  33. Dekker, S. E., et al. Different resuscitation strategies and novel pharmacologic treatment with valproic acid in traumatic brain injury. Journal of Neuroscience Research. 96 (4), 711-719 (2017).
  34. Georgoff, P. E., et al. Safety and Tolerability of Intravenous Valproic Acid in Healthy Subjects: A Phase I Dose-Escalation Trial. Clinical Pharmacokinetics. 57 (2), 209-219 (2017).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة