التعاقد تلقائياً سينسيتيا كارديوميوسيتيس المستمدة من فعل الإنسان pluripotent الخلايا الجذعية نماذج مفيدة لفسيولوجيا القلب البشري والصيدلة. وهنا يقدم نظام فرز الفائق التحديد الكمي لآثار المركبات الخارجية على ضرب التردد، باستخدام صبغة فلورسنت مراعية لكاليفورنيا وقارئ لوحة متعددة جيدا تصوير التحكم في درجة الحرارة.
مقالة منهجية
تقلصات سينسيتيا كارديوميوسيتي المستمدة من اللجنة التوجيهية الإنسان يقاس بصبغة فلورسنت المراعية لكاليفورنيا في 384-جيدا لوحات التحكم في درجة الحرارة
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
المتعاقدة عفويا سينسيتيا كارديوميوسيتيس المستمدة من فعل الإنسان pluripotent الخلايا الجذعية (هيبسك سم) نموذج مفيد لفسيولوجيا القلب البشري والصيدلة. قد اقترحت أساليب مختلفة لتسجيل هذا النشاط العفوي وتقييم آثار المخدرات، ولكن العديد من هذه الطرق تعاني من الإنتاجية المحدودة و/أو أهميتها الفسيولوجية. قمنا بتطوير نظام فرز الفائق التحديد الكمي لآثار المركبات الخارجية على ضرب التردد هيبسك-سم، باستخدام صبغة فلورسنت مراعية لكاليفورنيا وقارئ لوحة متعددة جيدا تصوير التحكم في درجة الحرارة. ونحن تصف كيفية إعداد لوحات الخلية ولوحات المركبة وكيفية تشغيل الفحص الآلي لتحقيق حساسية عالية وإمكانية تكرار نتائج. ونحن أيضا وصف كيفية تحويل وتحليل البيانات الأسفار لتوفير تدابير موثوق بها من آثار المخدرات على إيقاع عفوية. يمكن استخدام هذا التحليل في برامج اكتشاف المخدرات للدليل الكيميائي الأمثل بعيداً عن، أو باتجاه، المركبات التي تؤثر على وظيفة القلب البشري.
المقدمة
ويصور هذا البروتوكول وسيلة لقياس آثار المخدرات على تواتر ضرب عفوية سينسيتيا هيبسك-سم في إيقاعات فسيولوجيا ذات الصلة. يمكن التفريق بين الخلايا الجذعية pluripotent بشرية في cardiomyocytes الوظيفية التي تنشئ تلقائياً من الضرب سينسيتيا في المختبر1،من2،،من34. ويمكن الحصول على هذه هيبسك-سم بإعداد كبيرة عن طريق مقدمي الخدمات التجارية أو من خلال الإنتاج في المختبر، ومصدر مفيد للخلايا لتوليد نماذج لفسيولوجيا القلب البشري والصيدلة. على وجه الخصوص، يمكن استخدامها للتنبؤ أو لوصف آثار القلب التي قد تحدث عند إدارة مخدرات بالبشر5.
يمكن قياس تواتر الضرب سينسيتيا سم هيبسك تحت الظروف الفسيولوجية استخدام صفائف ميكروليكترودي أو مقاومة الاستشعار1: هذه التقنيات موسع معلومات مفصلة جداً عن آثار المخدرات، ولكنها بدلاً من ذلك الإنتاجية منخفضة، وأنها لا تقم بتمكين اختبار مكتبات مجمع كبير داخل الزمن الواقعي والقيود المتعلقة بالميزانية. يمكن وضع نظام أكثر فعالية لاستخدام fluorescence 384-جيدا التصوير قارئ لوحة وصبغ Ca تراعي6، ولكن القراء لوحة كلاسيكية يعوقها التردد السيطرة واكتساب درجة الحرارة دون الحد الأمثل. يتم توضيح هذه القيود بمعدلات الضرب أونفيسيولوجيكال (~ 15 نبضة في الدقيقة، بالمقارنة مع نبضة في الدقيقة 35 – 55 في البيئات التي تسيطر عليها1)، وضعف القرار إشارة Ca (تردد اقتناء 8 هرتز في الحد الأدنى لمعدلات قياسية يمكن أن تصل إلى 120 نبضة في الدقيقة تحت ظروف حفز، وأنه لا يمكن استخراج المعلومات مثل المنحدر أو المدة). الأسلوب الموصوفة هنا يجمع بين تسجيل ضرب أنماط في إيقاعات الفسيولوجية ودقة كافية للحيلولة دون هذه الشواغل.
على الجانب الإيجابي، هذا الأسلوب هو بسيطة وموثوق بها وعالية الإنتاجية، مما يسمح للاختبار السريع لعدد كبير من المركبات بتكاليف معقولة. على الجانب السلبي، وهذا الأسلوب يتطلب قارئ لوحة سريع مع التحكم في درجة الحرارة الفعالة، واستثمار مكلف، وأنه يوفر آليا إلى القليل من المعلومات عن آثار المخدرات الملاحظة، مما قد يحتم إجراء المزيد من التجارب مع أكثر تفصيلاً أساليب.
هناك حاجة هيبسك6 أبروكسيماتيفيلي 6 × 10 سم لقياس واحد في لوحة الخلية 384-بئر واحدة. يتم عادة توفير سم هيبسك تجارياً كمختبرين المجمدة ~ 4 × 106 خلايا في 1 مل. ولذلك، أنها ملائمة لإعداد لوحات الخلية اثنين مع ثلاث مختبرين المجمدة. وفي معظم الحالات، بسبب تباين منخفض من هذا التحليل، أنها كافية لإجراء قياسات مكررة من المركبات الاختبار، وفي كل لوحة الخلية، كوادروبليكاتي قياسات عناصر إيجابية (فورسكولين و N6-سيكلوبينتيل-الادينوسين و E-4031)، و 20-بليكاتي قياسات مراقبة سلبية ([دمس] وحدها). ولذلك، يمكن تقييمه كحد أقصى من 352 مجمع/تركيز أزواج مع اثنين من لوحات خلية 384-جيدا. البروتوكول التالية تعتبر هذه تجربة إجراء مع 352 اختبار المركبات وهما الخلية ألواح الخلايا 12 مليون الموردة كمختبرين المجمدة الثلاثة؛ ويمكن بسهولة زيادة إذا كانت هناك حاجة إلى نقاط بيانات إضافية.
البروتوكول
1-إعداد لوحات الخلية
ملاحظة: إعداد لوحات الخلية 3–4 أسابيع قبل قياس آثار المخدرات.
- اليوم 0 من التجربة
ملاحظة: لأغراض التخطيط، يمكن إجراء اختبار التطبيق المركب في أي يوم بين يوم 22–28 التجربة.- تشغيل حمام المياه عند 37 درجة مئوية والحارة 40 مل من الطلاء المتوسطة (حسب الموفر من قبل الشركة المصنعة).
ملاحظة: استخدام الخلايا مع وسائل الإعلام الثقافة وصيانة المطابقة المقدمة من الموردين. - ذوبان الجليد هيبسك-سم بوضع كريوتوبيس التي تحتوي على الخلايا المجمدة في حمام الماء لمدة 2 دقيقة.
- نقل تعليق خلية 1 مل بعناية إلى أنبوب مخروطي 50 مل.
- تغسل كل كريوتوبي مع 1 مل متوسطة الطلاء الدافئة استرداد بقايا الخلايا وإضافة وسائل الإعلام أغسل الأنبوبة المخروطية نفس من الخلايا التي تحتوي على خطوة 1-1-3.
- مزيج مل 8 آخر بدقة متوسطة الطلاء الدافئة في تعليق خلية.
- عد الخلايا الحية باستخدام أسلوب الاستبعاد تريبان الأزرق وهيماتوسيتوميتير8.
ملاحظة: شرط 6 × 106 خلايا للوحة الخلية 384-بئر واحدة تنظر في إمكانية يصل إلى 20% الخلايا الميتة بين الخلايا المجمدة، كحد أقصى في تجربتنا. - ضبط تعليق خلية إلى 5 × 105 يعيش خلايا/مل مع المتوسط الدافئة والطلاء.
- توزيع تعليق خلية في اثنين من لوحات خلية 384-جيدا بإضافة 25 ميليلتر لكل بئر (الخلايا 12,500 حوالي الواحدة وكذلك).
ملاحظة: لوحات الخلية لا تحتاج إلى أن تكون بريكواتيد مع أي مصفوفة (انظر المناقشة). - الحفاظ على لوحات الخلية عند 37 درجة مئوية في جو هوميديفيد التي تحتوي على 5% CO2.
- تشغيل حمام المياه عند 37 درجة مئوية والحارة 40 مل من الطلاء المتوسطة (حسب الموفر من قبل الشركة المصنعة).
- 1 يوم من التجربة
- قم بتشغيل حوض ماء في 37 درجة مئوية ودافئ 50 مل من الصيانة المتوسطة وتستكمل مع محلول البنسلين والستربتوميسين v/v 1%.
- استبدال المتوسطة الطلاء مع 50 ميليلتر لصيانة الحارة المتوسطة في كل بئر من ألواح الخلايا.
- أيام 2–21 (حتى يوم 27) للتجربة
ملاحظة: هيبسك-نظام الإدارة الوظيفية لا تحتاج أي باساجينج خلال هذه الفترة، كما أنهم غير تقسيم الخلايا.- تجديد نصف المتوسط صيانة كل 2–3 أيام وتجديدها كلياً على أيام 7 و 14 و 21.
ملاحظة: يمكن إجراء قياس الأسفار بين يومي 22 و 28 التجربة. مدد أطول لم يحاكموا ولكن قد لا يزال يكون على ما يرام.
- تجديد نصف المتوسط صيانة كل 2–3 أيام وتجديدها كلياً على أيام 7 و 14 و 21.
2-إعداد الصك، ولوحات المركبة ولوحات الفحص
ملاحظة: إعداد الصك، لوحات المركبة، والاعتداء لوحات اليوم لقياس آثار المخدرات، بين يومي 22 و 28 التجربة. استخدام قارئ لوحة نيون مجهزة بالتحكم في درجة الحرارة وعلى الأسفار مناسبة تصفية كيت والإثارة ضوء المصدر. على سبيل المثال، استخدام أدوات تصفية fluorescence فلوو-3/فلوو-4/فلوو-8 (الإثارة: 472 نانومتر؛ والانبعاثات: 520–560 نانومتر) ووحدة ث إثارة 150 مصدر ضوء.
- قم بتشغيل القارئ على الأقل 2 ح قبل لوحة الخلية الأولى أن توضع داخل القارئ لوحة للقياس، وتعيين نظام التدفئة في 37 درجة مئوية.
ملاحظة: يمكن أيضا أن يتم ذلك قبل المساء. - إعداد عناصر إيجابية، فورسكولين، N6-سيكلوبينتيل-الأدينوزين، و E-4031 كحلول الأسهم 0.33 مم في [دمس]، 10 في [دمس]، و 3.33 ملم في H2O، على التوالي.
ملاحظة: سوف تضعف حلول الأسهم 333-fold بحلول الوقت الذي يتم إضافتها إلى الخلايا، ويهدف إلى تحقيق تركيزات الاختبار النهائي من 1 ميكرومتر فورسكولين، 30 ميكرون N6-سيكلوبينتيل-أدينوسين، و 10 ميكرون E-4031، التي تنتج آثاراً موثوقة واستنساخه. - إعداد المركبات الاختبار 352 كحلول الأسهم [دمس] في تركيزات اختبار المخطط 333-fold (مثلاً، 10 مم لاختبار في 30 ميكرومتر).
ملاحظة: الهدف تحقيق تركيز 0.3% (v/v) [دمس] في لوحة الخلية نهائية بعد تطبيق المجمع؛ وهذا هو أعلى تركيز [دمس] يؤثر على النشاط الإيقاعي كارديوميوسيتيس. يمكن أيضا إعداد الحلول الأسهم في اليوم السابق. الحد أدنى من 5 ميليلتر من الأسهم الحل مطلوب لكل قياس مكررة. - إعداد لوحات المركبة.
- الحارة 40 مل من الصيانة المتوسطة وتستكمل مع 1% v/v البنسلين والستربتوميسين حل لدرجة حرارة الغرفة.
- توزيع في اثنين من لوحات مجمع 384-جيدا بإضافة 1.5 ميليلتر من حل الأسهم كل بئر: ط) اختبار المركبات (بئرين كل) والثاني) عناصر إيجابية (فورسكولين و N6-سيكلوبينتيل-أدينوسين E-4031، أربعة آبار للوحة المركبة الواحدة)، والثالث) بالنفي مراقبة ([دمس]، 20 بئرا للوحة المركبة الواحدة).
- الطرد المركزي لوحات المركب في 100 x ز لمدة 1 دقيقة.
- إضافة 37 ميليلتر للصيانة المتوسطة في درجة حرارة الغرفة لكل بئر (3.9 في المائة [دمس] في ميليلتر 38.5 في تلك المرحلة).
- الطرد المركزي لوحات المركب في 100 x ز لمدة 1 دقيقة.
- تحميل لوحات المركبة إلى قارئ لوحة.
ملاحظة: الخطوات القادمة التي ينبغي إجراء أسرع للتقليل من التبخر في لوحات المركبة.
- تحضير صبغة الفلورسنت.
- قم بتشغيل حوض ماء في 37 درجة مئوية والحارة 100 مل من الصيانة المتوسطة وتستكمل مع محلول البنسلين والستربتوميسين v/v 1%.
- إعادة تشكيل صبغة الفلورسنت المراعية لكاليفورنيا وتقضي مع 10 مل متوسطة صيانة الدافئة مع المضادات الحيوية.
ملاحظة: هذه الأسفار الأسهم المتوسطة يحتوي على صبغة الفلورسنت المراعية للمرجع المصدق، فلوو-4 عادة، ويحتوي، ويمكن تخزين أي بقايا عند 4 درجة مئوية لمدة 5 أيام على الأقل.
3. الحصول على البيانات
ملاحظة: إجراء الحصول على البيانات في اليوم لقياس آثار المخدرات. قم بإجراء الخطوات 3.1–.10 تماما للوحة الخلية الأولى، ثم تكرارها للوحة الخلية الثانية.
- بدء تشغيل برنامج قارئ لوحة (إذا لزم الأمر)، وتحميل نصائح بيبيت.
- ضبط إعدادات البرنامج لتسجيل قطعة 2 دقيقة من موجات الكالسيوم لها ذبذبة اقتناء 10 هرتز على الأقل لتحديد معدل ضرب خط الأساس لكل بئر.
- للوحة خلية واحدة، وتمييع 3 مل من الأسفار الأسهم المتوسطة إلى 12 مل متوسطة صيانة الدافئة مع المضادات الحيوية لجعل المتوسط الأسفار.
- استبدال 20 ميليلتر من المتوسط في كل من لوحة الخلية جيدا مع 30 ميليلتر من الأسفار المتوسطة.
- "الماصة؛" صعودا وهبوطاً 1 x للمزيج.
- ضع لوحة الخلية إلى قارئ لوحة، في أسرع وقت ممكن للسماح هيبسك-سم التأقلم لدرجة الحرارة.
- الانتظار لمدة 60 دقيقة قبل البدء في الحصول على البيانات.
- ابدأ الحصول على البيانات في برنامج قارئ لوحة تسجيل مقطع 2 دقيقة من موجات Ca بتواتر اقتناء على الأقل 10 هرتز، لتحديد خط الأساس ضرب معدل لكل بئر.
ملاحظة: لكل تسلسل التسجيل، تأكد من لوحة الخلية لا يتم نقل تلقائياً من الجهاز بعد الحصول على البيانات. وهذا يمنع لوحة خلية يبرد في درجة حرارة الغرفة. مع بعض الإصدارات من برنامج قارئ لوحة، قد يكون ضروريا لإيقاف كل تسجيل قبل أن ينتهي تماما تحقيق هذا الهدف. - إضافة مرجع واختبار المركبات مع الروبوت قارئ لوحة من بيبيتينج إلى-بئر 5 ميليلتر من لوحة المركبة في لوحة الخلية (بعد إضافة، التركيز [دمس] هو 0.3% [ت/ت]).
- ابدأ الحصول على البيانات في برنامج قارئ لوحة لقطاعات السجل 2 دقيقة من موجات Ca ابتداء حول 5، 15، 30 و 45 و 60 دقيقة بعد إضافة مجمع (تأكد من كل الوقت الذي يبقى لوحة الخلية في الجهاز).
4. تحليل البيانات
ملاحظة: يمكن إجراء تحليل البيانات أي وقت بعد القياس.
- تصدير البيانات الأولية لكل فترة تسجيل من برنامج قارئ لوحة كملفات نص ASCII.
- استيراد البيانات الخام إلى برامج تحليل البيانات.
- لكل بئر وجميع النقاط الزمنية، استخراج تواتر الضرب الابتدائي.
ملاحظة: مع برنامج تحليل البيانات المذكورة في الجدول للمواد، ضرب الترددات يمكن حسابها مع روتين تحليل مخصصة باستخدام الدالة لومببيريودوجرام، استناداً إلى طريقة المربعات الصغرى التحليل الطيفي7 لومب-سكارجلي . وينبغي حساب في بيريودوجرام لمجموعة من الترددات بين 0.01 و 5 هرتز. التردد الأساسي يمكن أن تستخلص من بيريودوجرام استخدام إجراءات بيكوتوفيند. يوفر هذا الأسلوب تحليل قياسات أكثر دقة لضرب الترددات من الطريقة التي قدمت كخيار مع برنامج قارئ لوحة. إلا أن هذا الأخير لا يزال يمكن إذا كانت برامج التخصيص ليس خياراً. - تصدير الترددات الضرب الابتدائي لكل فترة تسجيل من برنامج تحليل بيانات الحافظة نسخ أو كملفات نص ASCII.
- استيراد الترددات الضرب الابتدائي إلى برنامج جدول بيانات عن طريق لصق الحافظة أو استيراد ملف نص.
ملاحظة: يمكن إجراء الخطوات 4.5–4.9 في أي برنامج جداول البيانات الحديثة. - لكل بئر، تطبيع خط الأساس لتكرار الضرب عند كل نقطة مرة بعد تطبيق المخدرات (5، 15، 30 و 45 و 60 دقيقة) بتقسيم التردد الضرب الابتدائي في ذلك الوقت أشر بتواتر الضرب الابتدائي في الأساس.
- حساب التأثير [دمس] يعني عند كل نقطة مرة بعد تطبيق المخدرات (5، 15، 30 و 45 و 60 دقيقة) بحساب متوسط القيم الموحدة للآبار 20 حيث تم تطبيق [دمس].
- لكل بئر وكل مرة نقطة بعد تطبيق المخدرات (5، 15، 30 و 45 و 60 دقيقة)، طرح الأثر [دمس] يعني (وقت المطابقة) للوحة نفسها.
- متوسط القياسات المكررة.
ملاحظة: إذا كان مركب يتغير التردد أو البرنامج لا يمكن العثور تردد أساسي بعد إضافة المركب، فحص البصري لنمط الضرب يمكن تقييم ما إذا كان إنتاج المجمع عدم انتظام ضربات القلب.
النتائج
ويبين الشكل 1 تسجيل ممثل لموجات Ca في الأساس عبر لوح 384-بئر واحد. في معظم الحالات، تكشف جميع الآبار بمعدل ضرب منتظم مع تقلب قليلاً عبر اللوحة (يعني ± SD = bpm 40.1 ± 3.5؛ والنطاق = نبضة في الدقيقة 34 – 54). أحياناً جداً (أقل من 1 من أصل 10 تجارب)، آبار قليلة (أقل من 5) بعدم انتظام ضربات القلب أو غياب الإيقاع. في ثلاث لوحات 384، حسنا، لقد حاولنا أيضا كارديوميوسيتيس من مورد آخر (انظر الجدول للمواد)، والحصول على قيم الأساس مشابهة جداً لضرب عفوية.
محصرات قنوات أيون القلب تؤثر على إيقاع كارديوميوسيتيس في استنساخه بنحو5. املوديبين، مانع من بطء قنوات Ca9، تسارع إيقاع أكثر من 100% بطريقة تعتمد على تركيز ما يصل إلى 1 ميكرومتر (الشكل 2A). الأثر راسخ ضمن 5 دقائق الأولى، ولكنه لا يزال يزيد أبروكسيماتيفيلي 50% في غضون 30 دقيقة المقبلة قبل أن يستقر. أعلاه 1 ميكرومتر، املوديبين الاعتقالات الضرب (خطوط متقطعة)، كما يمكن أن يتوقع من الحقيقة أن كاليفورنيا ركوب الدراجات الهوائية أمر بالغ الأهمية لتقلصات عفوية. محصرات قنوات Ca ديهيدروبيريديني انتقائية أخرى تنتج آثاراً مشابهة جداً.
ديسيليراتيس E-4031، مانع ل قنوات مقوم تأخر السريع ك10، على إيقاع حوالي 65–70% بطريقة تعتمد على تركيز ما يصل إلى 10 ميكرون (الشكل 2). الأثر تطور داخل 5 دقيقة الأولى، وأنها لا تختلف في 60 دقيقة القادمة. أخرى لسد IKr انتقائية آثاراً مماثلة، على الرغم من أن الحد الأقصى في معدل يمكن أن تختلف (مثلاً35–وسيسابرايد 40%، 70% ل E-4031 و 90%-95% دوفيتيليدي). ولا يعرف أساسا لهذا التفاوت.
تيدرودوتاكسين، مانع ل سرعة قنوات Na11، ديسيليراتيس إيقاع حوالي 15% بطريقة تعتمد على التركيز، ما يصل إلى 1 ميكرومتر 30–(الشكل 2). الأثر راسخ ضمن 5 دقائق الأولى وأنها لا تختلف كثيرا في 60 دقيقة القادمة. ومع ذلك، فوق 30 ميكرون، الاعتقالات تيدرودوتاكسين الضرب ضمن أول 5 دقائق، بينما بعد 30 دقيقة، القبض عليه أعلاه 1 ميكرومتر. أخرى محصرات قنوات Na، مثل ليدوكائين أو ميكسيليتيني، آثاراً استسلمنا مماثلة.
كما تنتج بيبريديل، عائقا مختلطة من القلب نا، كاليفورنيا، وك قنوات9، تأثير استسلمنا (الشكل 2D). وهذا يشير إلى أن في هذا الإعداد، كتلة من قنوات Na الأولية عمل بيبريديل. لا ينظر تسارع في كاليفورنيا قناة كتلة، ويظهر تدريجيا أكثر تباطؤا بسبب كتلة IKr ملثمين بتأثير قناة نا.
رقم 1: الأساس ممثلة كاليفورنيا موجات عبر صفيحة 384-جيدا- (أ) جميع الآبار عبر اللوحة تبين معدل ضرب منتظم مع تقلب قليلاً. يتم التقاط هذه الصورة مباشرة من برامج قارئ لوحة. يتم تتبع كل 10 ثانية في المدة. كثافة الأسفار هو تعسفي (النسبية الخفيفة الوحدات المستمدة من اللون الرمادي كاميرا فيديو). (ب) هذا ضربة متابعة واحد 10 s تتبع يظهر منخفضة الضوضاء إشارة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 2: آثار الممثل لايون القلب قناة محصرات. هذه اللوحات تظهر منحنيات الاستجابة لتركيز مع (أ) انتقائية Ca قناة مانع املوديبين، (ب) IKr انتقائية مانع E-4031، (ج) انتقائية نا قناة مانع ت، و (د) القناة غير انتقائية بيبريديل مانع. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
المناقشة
الجانبين الأكثر أهمية لتسجيل ناجحة لضرب الترددات. الأول توخي الحذر مع الخلية والطلاء والثقافة. من المهم على وجه الخصوص، في محاولة لتجنب خدش طبقة الخلية في الجزء السفلي من الآبار عند تبادل المتوسطة. أنه مقبول للجزء السفلي من الآبار مع الممصات تعمل باللمس، ولكن ينبغي أن تستخدم نفس الزاوية في كل مرة، وبالتالي تنتج فقط خدش صغير في طبقة الخلية ولا تؤثر على أداء الفحص. الجانب الحاسم الثاني من الحصول على إيقاعات متجانسة استنساخه توفير مراقبة درجة حرارة جيدة عند 37 درجة مئوية عبر لوحة الخلية طوال فترة القياس. ونحن لا يمكن الحصول على هذا التجانس باستخدام الأجهزة عدا قارئ اللوحة المستخدمة هنا، ولكن قد يكون ممكناً مع تعديلات خاصة لتنظيم درجة الحرارة: من شأنه أن يجعل البروتوكول المقدمة هنا يمكن استخدامها على نطاق أوسع خارج العلامة تجارية وحيدة للوحة القارئ. لتحقيق استقرار درجة الحرارة طوال فترة التجربة مع الجهاز المستخدم هنا، من الضروري التوقف عن كل تسجيل قبل أن انتهى؛ وبخلاف ذلك، أن إخراج الروبوت لوحة الخلية المقاسة. قد تختفي هذه المشكلة التقنية مع الإصدار التالي من برنامج قارئ لوحة، لكنها لا تزال حرجة الآن. إذا كان يتم نقل لوحة الخلية عن طريق الخطأ خارج لوحة القارئ، يجب تحميل إلى الداخل أسرع وقت ممكن. ومع ذلك فسوف تتدهور نوعية التجربة، نظراً للتغيرات في درجة الحرارة تؤثر على معدل الضرب سرعة فائقة.
قد تكون بعض الجوانب الأخرى، التي لم يتم اختبارها جيدا، أقل أهمية. على سبيل المثال، يوصي المصنعون هيبسك-سم طلاء الخلية-ثقافة لوحات قبل البذر في الخلايا، ولكن في هذا التحليل محددة، طلاء لم يستخدم، لأن الخلايا التقيد تماما بسهولة على الأسطح المختلفة، ومن الصعب جداً صحيح معطف 384-جيدا لوحات. طلاء لوحة الخلية قد تكون لا تزال المسموح بها، أو بعد، حتى أنه يمكن تحسين نوعية المقايسة. نحن أيضا لم اختبار سواء المذيبات خلاف [دمس] يكون مقبولاً، ولكن المتوقع من التجربة مع تقنيات أخرى لتسجيل كما أن تركيزات مماثلة EtOH أو ميوه مقبولة. ونحن عموما استخدام سم هيبسك من نفس الشركة المصنعة، وتم اختبار خلايا من المورد إضافية واحدة فقط، التي يبدو أن تعمل بطريقة مشابهة. وبالمثل، فقد استخدمنا سوى عدد قليل من مجموعات مختلفة من هيبسك-المهاجرة التي تم تحديدها قبل بريتشيكينج عليها للتحقق من أنها تصرفت على نحو مماثل إلى الدفعة الأولى. واعتبرت دفعات واحد أو اثنين غير مناسب لأنه كان على سينسيتيا الاستقرار الفقراء أو إمكانية تكرار نتائج تحت ظروف الثقافة المستخدمة هنا. خلاف ذلك، الصيدلة تبدو مشابهة جداً عبر دفعات عند اختبار فريق محدود من مركبات "نموذجية" (فورسكولين، N6-سيكلوبينتيل-الأدينوزين، و E-4031، فضلا عن endothelin، إيسوبروتيرينول، املوديبين، وبونيسيمود). فقط استخدمنا سم هيبسك المستمدة من المانحين صحي. قد يكون من المفيد تقييم ما إذا كان هيبسك-سم المستمدة من المرضى الذين يعانون من أمراض القلب ستوفر نتائج مختلفة، على الرغم من أن لا فرق بين المانحين صحي والمرضى لوحظ عند تقييم كارديوتوكسيسيتي لمثبطات تيروزين كيناز 12-وأخيراً، علينا أن ننتظر 22-28 يوما في الثقافة قبل قياس آثار المخدرات عادة: تجربتنا مع تسجيلات مقاومة لنفس الخلايا، حالة من الثبات لبطء معاوقة (مؤشر لاستقرار طبقة الخلية) ومقاومة سريعة (مؤشر ل ضرب التردد) هو الذي تم التوصل إليه بعد 12–15 يوما في الثقافة. ومع ذلك، قررنا الانتظار 22–28 يوما، لأن هذا هو الوقت عندما استقر الشخصية التعبير من علامات النضج وقنوات القلب13. أنها لم تدرس ما إذا كانت سوف يمكن الحصول على نتائج قابلة للمقارنة إذا تم استخدام الخلايا في وقت سابق أو في وقت لاحق.
هنا يستخدم بروتوكول وصف واضحة جداً قياس معدل الضرب عفوية سم هيبسك لتقييم آثار المخدرات على البشرية القلب الكهربية. مميزاتها الرئيسية على منهجيات أخرى هي أن ط) أنها قابلة لبيئة فرز الفائق والثاني) فإنه يسجل نشاط cardiomyocytes وآثار المخدرات في درجات حرارة الفسيولوجية، والثالث) أنه لا يتطلب الخبرة الكهربية للتنفيذ أو لإجراء تقييم للنتائج.
في التحقق من صحة دراسة أجريت مع العديد من الأدوية المعتمدة للاستخدام البشري، واظهرنا أن الإنزيم يتفاعل مع الأدوية المستخدمة في الطب البشري كما هو متوقع ب البيانات السريرية الحالية5. لأن هذا الأسلوب يعتبر جميع الآثار المحتملة على إيقاع القلب، وهو يكمل شاملة في المختبر بروارهيثميك المقايسة (CiPA) مبادرة14 أن يقيم إمكانات برو-اضطرابات على وجه التحديد.
في المستقبل، يمكن أن يوفر هذا الأسلوب المزيد من فهم طريقة عمل المخدرات أظهرت أن تؤثر على معدل الضرب عفوية. ومن المرجح أن معلومات ميكانيكية إضافية موجودة في التسجيلات fluorescence العابرين Ca (مثلاً، في السعة أو الشكل). إذا كان يتم إجراء التسجيلات fluorescence معدلات اقتناء أعلى (مثلاً، 30 هرتز)، يتم استخراج هذه المعلمات بسهولة بالإضافة إلى ضرب معدل، وقد يكون من المهم ربط التغيرات في هذه المعلمات بالآثار المعروفة من وتستخدم سريرياً المخدرات.
الإفصاحات
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
شكر وتقدير
المؤلفين قد لا إعلامات.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| FDSS7000 قارئ لوحة الفلورسنت | Hamamatsu Photonics (ماسي ، فرنسا) | ليس عنصرا | |
| FDSS7000 طقم مرشح مضان Fluo-3 / Fluo-4 / Fluo-8 | Hamamatsu Photonics (ماسي ، فرنسا) | مثبتة في البداية في الجهاز | |
| FDSS7000 التحكم في درجة الحرارة | Hamamatsu Photonics (ماسي ، فرنسا) | A10118-09 | |
| FDSS7000 وحدة مصدر ضوء الإثارة 150 واط | Hamamatsu Photonics (Massy ، فرنسا) | C11653-11 | |
| FDSS7000 أطراف الماصة لألواح 384 بئرا | Hamamatsu Photonics (Massy ، فرنسا) | A8687-62 | |
| برنامج تحليل الشكل الموجي لخلايا عضلة القلب | Hamamatsu Photonics (ماسي ، فرنسا) | U8524-12 | بديل اختياري لبرنامج |
| Igor Proبرنامج تحليل البيانات Igor Pro | Wavemetrics (بورتلاند ، أوريغون ، الولايات المتحدة الأمريكية) | أحدث إصدار من | |
| iCell-Cardiomyocytes Kit | Cellular Dynamics International (ماديسون ، ويسكونسن) | يتضمن R1106 | الخلايا والطلاء ووسائط |
| Cor.4U Cardiomyocyte Kit | Ncardia ألمانيا (كولونيا ، ألمانيا) | Ax-B-HC02-4M | يتضمن الخلايا ووسائط الطلاء والصيانة بديلا لألواح زراعة الخلايا iCell-Cardiomyocytes |
| 384 جيدا | Greiner-Bio-One (Frickenhausen ، ألمانيا) | 781091 | |
| 384 بئر ألواح مركبة | Greiner-Bio-One (Frickenhausen ، ألمانيا) | 781280 | |
| FLIPR Calcium 4 Assay Kit | الأجهزة الجزيئية (Sunnyvale ، كاليفورنيا) | R8142 | |
| Forskolin | سيجما - Aldrich (Buchs ، سويسرا) | F6886 | |
| N6-cyclopentyl-adenosine | Sigma-Aldrich (Buchs ، سويسرا) | C8031 | |
| E-4031 | Enzo Life Sciences (Lausen ، سويسرا) | BML-KC158 | |
| محلول البنسلين الستربتومايسين | Gibco / ThermoFisher (Reinach ، سويسرا) | 15140-122 | |
| تريبان الأزرق ، 0.4٪ | جيبكو / ثيرموفيشر (ريناخ ، سويسرا) | 15250061 |
المراجع
- Guo, L. Estimating the risk of drug-induced proarrhythmia using human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Toxicological Sciences. 123, 281-289 (2011).
- Jonsson, M. K., Wang, Q. D., Becker, B. Impedance-based detection of beating rhythm and proarrhythmic effects of compounds on stem cell-derived cardiomyocytes. Assay and Drug Development Technologies. 9, 589-599 (2011).
- Kattman, S. J., Koonce, C. H., Swanson, B. J., Anson, B. D. Stem cells and their derivatives: a renaissance in cardiovascular translational research. Journal of Cardiovascular Translational Research. 4 (1), 66-72 (2011).
- Ma, J. High purity human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: electrophysiological properties of action potentials and ionic currents. American Journal of Physiology Heart and Circulatory Physiology. 301 (5), H2006-H2017 (2011).
- Sube, R., Ertel, E. A. Cardiomyocytes Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells: An In-Vitro Model to Predict Cardiac Effects of Drugs. Journal of Biomedical Science and Engineering. 10 (11), 23(2017).
- Sirenko, O. Multiparameter in vitro assessment of compound effects on cardiomyocyte physiology using iPSC cells. Journal of Biomolecular Screening. 18, 39-53 (2013).
- VanderPlas, J. T. Understanding the Lomb-Scargle Periodogram. Cornell Univeristy Library. , arXiv:1703.09824 (2017).
- Strober, W. Trypan Blue Exclusion Test of Cell Viability. Current Protocols in Immunology. 111, A3 B 1-3 (2015).
- Ertel, E. A., Godfraind, T. Calcium channel blockers and calcium channels. Calcium Channel Blockers. Godfraind, T. , Springer. Basel, Switzerland. 11-80 (2004).
- Sanguinetti, M. C. Modulation of potassium channels by antiarrhythmic and antihypertensive drugs. Hypertension. 19, 228-236 (1992).
- Duran-Riveroll, L. M., Cembella, A. D. Guanidinium Toxins and Their Interactions with Voltage-Gated Sodium Ion Channels. Marine Drugs. 15 (10), (2017).
- Sharma, A. High-throughput screening of tyrosine kinase inhibitor cardiotoxicity with human induced pluripotent stem cells. Science Translational Medicine. 9 (377), (2017).
- Puppala, D. Comparative gene expression profiling in human-induced pluripotent stem cell--derived cardiocytes and human and cynomolgus heart tissue. Toxicological Sciences. 131 (1), 292-301 (2013).
- CIPA. , Available from: http://cipaproject.org (2016).
إعادة الطباعة والأذونات
