$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. توليف من البوليمر BNHEMA (PBNHEMA)
- حل 1.87 غرام من N، N-مكررا(2-هيدروكسي إيثيل) ميثاكريلاميد (BNHEMA) في 1 مل من الماء المقطر في زجاجة البلمرة.
ملاحظة: زجاجة البلمرة هي قارورة مستديرة القاع مع سدادة مطاطية وتحريك المغناطيسي.
- حل 0.03 غرام من 4-سيانوبينتانويك حمض ثنائي ثيوبنزوات (CTP) و 0.02 غرام من 4,4'-أزوبيس (4-سيانوفافاليسيد) (ACVA) في 0.5 مل من 1,4-ديوكسان في كوب 5 مل. ثم قم بإضافة حل CTP و ACVA إلى زجاجة البلمرة من الخطوة 1.1.
- تهوية نظام التفاعل في زجاجة البلمرة مع النيتروجين عن طريق ثلاث دورات تجميد مضخة ذوبان.
- بالتفصيل، تجميد الحل في زجاجة البلمرة باستخدام فخ المكثفات، وإصلاح زجاجة البلمرة لدعم الحديد، وفراغ وحقن النيتروجين في خليط التفاعل عبر قناة يميل مع إبرة (إبرة #9، القطر الداخلي 0.65 ملم، القطر الخارجي 0.9 مم). ختم زجاجة البلمرة وذوبان الحل في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة.
- كرر دورات تجميد مضخة ذوبان ثلاث مرات.
- وضع زجاجة البلمرة في حمام النفط 70 درجة مئوية والسماح للحل تتفاعل لمدة 24 ساعة تحت الغلاف الجوي النيتروجين.
- قم بتبريد زجاجة البلمرة عند درجة حرارة 0 درجة مئوية وفتح سدادة المطاط لإنهاء عملية البلمرة.
- الأسيتون قبل الباردة في -20 درجة مئوية لمدة 2 ساعة ثم مزجها مع حل رد الفعل من الخطوة 1.5 في 50:1 (v/v). بعد ذلك، الطرد المركزي في 8200 × ز لمدة 10 دقائق لإزالة الأسيتون وجمع الترسيب.
- لتنقية PBNHEMA توليفها، حل الترسيب التي تم جمعها في 2 مل من الماء النقي ومن ثم مزجها مع 100 مل من الأسيتون المبردة مسبقا، في نسبة 1:50 (V / V). الطرد المركزي الحل في 8200 × ز لمدة 10 دقائق وجمع التعجيل. كرر هذه العملية ثلاث مرات.
- تجفيف PBNHEMA المنتجة باستخدام 50 درجة مئوية فراغ أكثر جفافا. مرة واحدة المجففة، وتزن المسحوق مع التوازن. حساب معدل العائد وفقا للمعادلة 1.
(1)
ملاحظة: في هذه التجربة، كان العائد الذي تم الحصول عليه 77.2%.
2. توليف من BNHEMA-ب-APMA البوليمر (BA)
- حل 0.96 غرام من N-(3-أمينوبروبيل) ميثاكريلاميد هيدروكلوريد (APMA) و 0.93 غرام PBNHEMA في 5 مل من الماء المقطر في كوب 10 مل.
- حل 0.01 غرام من 4،4'-azobis (4-حمض السيانوفالريك) (ACVA) في 0.5 مل من 1،4-ديوكسان ومزيج مع الحل APMA-PBNHEMA من الجزء 2.1.
- نقل الخليط في زجاجة البلمرة والتهوية مع النيتروجين الجاف لمدة 1 ساعة.
- وضع زجاجة البلمرة في حمام النفط 70 درجة مئوية والسماح لها تتفاعل لمدة 24 ساعة تحت الغلاف الجوي النيتروجين.
- قم بتبريد زجاجة البلمرة عند درجة حرارة 0 درجة مئوية وفتح سدادة المطاط لإنهاء عملية البلمرة.
- نقل الحل إلى الأسيتون المبردة من الخطوة 1.6، ومن ثم الطرد المركزي الحل في 8200 × ز لمدة 10 دقيقة لتسريع مكتبة الإسكندرية.
- إذابة مكتبة الإسكندرية في 2 مل من الماء المقطر ويعجل البوليمر في الأسيتون المبردة. كرر ثلاث مرات.
- تجفيف BA المنتجة في 50 درجة مئوية فراغ أكثر جفافا وتزن مسحوق تم الحصول عليها. حساب معدل العائد وفقا للمعادلة 2.

ملاحظة: في هذه التجربة، تم حساب معدل العائد على 82.0%.
3. تحديد نسبة الخلد من APMA في بوليمر با عن طريق طريقة النينهيدين
ملاحظة: يتم استخدام قياس الطيف لتحديد محتويات الأحماض الأمينية متعددة المكونات. المبدأ هو رد فعل لون النينهيدين والأحماض الأمينية حيث يرتبط الامتصاص مع محتوى الأحماض الأمينية إلى حد ما13،14.
- حل 5 غرام من النينهيرين في 125 مل من الماء المقطر المغلي. أيضا، حل 5 غرام من فيتامين C في 250 مل من الماء المقطر الدافئ. إضافة 250 مل من محلول فيتامين C قطرة إلى محلول النينهيرين تحت التحريك المغناطيسي. استمر في التحريك لمدة 15 دقيقة ثم قم بتبريد محلول التفاعل في ثلاجة 4 درجة مئوية.
- خذ الحل من الثلاجة وتصفية عن طريق شفط باستخدام قمع Buchner للحصول على انخفاض النينهيرين. جمع عجل والحفاظ عليه في المجفف بينكسيد أكسيد الفوسفور.
- حل 85 ملغ من النينهيرين و 15 ملغ من انخفاض النينهيرين في 10 مل من الإيثيلين غليكول أحادي ميثيل الأثير لإعداد محلول النينهيرين التلوين.
ملاحظة: Ninhydrin-التلوين الحل يمكن أن تتفاعل مع α-الأمينية في APMA وتشكل مركب البنفسجي مع هيكل كما هو موضح في دراسة سابقة15.
- تخفيف 1 مل من 0، 1، 10، 100، 1000 ملغ / مل APMA حلول مونومر مع 1 مل من خلات العازلة (2 M، درجة الحموضة 5.4)، ثم إضافة 1 مل من محلول النينهيرين التلوين، على التوالي.
- تُسخّن المخاليط لمدّة 15 دقيقة في حمام ماء مغلي ثم ّ تُبرّد باستخدام الماء الجاري. دع الحلول تُحدّد لمدة 5-10 دقائق وتُخفّفها بـ 3 مل من الكحول الإيثيلي بنسبة 60% وتُمزج هاً جيداً. قياس الامتصاص في 570 نانومتر باستخدام مقياس الطيف ورسم المنحنى القياسي(المعادلة3).

ملاحظة: استمدت المعادلة 3 من التركيب الخطي للامتصاص عند 570 نانومتر مقابل تركيز APMA.
- حل 0.01 غرام من مكتبة الإسكندرية في 1 مل من الماء المقطر. إضافة 1 مل من خلات العازلة (2 M، درجة الحموضة 5.4) و 1 مل من محلول التلوين النينهيرين. حساب المحتوى المولي من APMA وفقا للامتصاص في 570 نانومتر.

(5)

ملاحظة: صيغ الحساب كما يلي(المعادلات 3-6).
4. توليف ميثيونين المطعمة با البوليمر (mBA)
- حل 8.9 ملغ من Fomc-ميثيونين في 5 مل من DMSO في قارورة الانتعاش.
- إضافة 6.92 ملغ من 1-إيثيل-3-(3-ثنائي ميثيل أمينوبروبيل) هيدروكلوريد كاربوديميد (EDCl) و 4.86 ملغ من 1-هيدروكسي بنزوترازول (HOBT) إلى قارورة الانتعاش وتتفاعل عند 0 درجة مئوية لمدة 0.5 ساعة.
- حل 2.59 غرام من مكتبة الإسكندرية في 5 مل من محلول DMSO ثم إضافة 50 ميكرولتر من ثلاثي ميثيل أمين. إضافة هذا الحل قطرة إلى قارورة الانتعاش (الخطوة 4.2) والسماح للحل تتفاعل لمدة 0.5 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
- Dialyze لإزالة DMSO وtrimethylamine من حل مكتبة الإسكندرية في الخطوة 4.3 باستخدام كيس غسيل الكلى (MWCO 10 kDa) في كوب 2 L لمدة 24 ساعة؛ استبدال المياه منزوعة الأيونات كل 6 ح.
- تجميد الجافة mBA التي تم الحصول عليها وتزن لحساب معدل العائد وفقا للمعادلة 7.

ملاحظة: في هذه الحالة، تم تحديد معدل العائد على 71%.
- قياس NH2 التي تحتوي على mBA عن طريق قياس امتصاص في 570 نانومتر لحساب كمية الميثيونين المطعمة. حساب المحتوى المولي من الميثيونين وفقا للمعادلة 8.
5. توليف من البوليمر guanidinated والميثيونين المترافقة BNHEMA-ب-APMA البوليمر (mBG)
ملاحظة: تم تصنيع ثلاثة mBA1 مختلفة، mBA2 وmBA3 كوبوليمر. يتم استخدام البوليمر المشترك mBA3 كمثال في الخطوات التالية.
- حل mBA3 التي تحتوي على 60 ميكرومول من مجموعة أمينية في 5 مل من الماء النقي.
ملاحظة: تم تحديد محتوى المجموعة الأمينية كمياً باستخدام أسلوب النينهيدين كما هو موضح في الخطوة 3.5.
- حل 40.6 ملغ (300 ميكرومول) من الكاشف غوانيدينيليل 1-أميديينوبرازول هيدروكلوريد في حلول mBA.
- ضبط درجة الحموضة إلى 9.0 مع الحل المشبعة من كربونات الصوديوم والسماح لها الاستقرار لمدة 24 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
- دياليزي المنتج mBG مع الماء منزوع الأيونات باستخدام كيس غسيل الكلى في كوب (MWCO 10 kDa، 2 L) والحفاظ عليه في شكل مسحوق تجميد المجففة.
تم حساب نسبة العائد لتكون 85٪ عن طريق المعادلة 8.
(8)
- حل مسحوق mBG في D2O في أنابيب NMR وتميزه باستخدام 1H مطيافيال الرنين المغناطيسي النووي (1 H NMR)16.
6. إعداد وتوصيف mBG / pDNA polyplexes
- حل 50 ميكروغرام من pDNA في 50 درجة مئوية من المياه الخالية من RNase/DNase.
- حل 1 ملغ من البوليمرات coBG في 1 مل من المياه الخالية من RNase / DNase.
- إضافة حل البوليمرات coBG مباشرة في محلول pDNA وفقا لنسب التغذية المختلفة، وهذا هو، نسب N / P مختلفة (1:1، 4: 1، 8: 1، 16:1، و 32:1).
ملاحظة: تُعرَّف نسبة N/P بأنها نسبة الأضراس لمجموعة غوانيدين في البوليمر ومجموعة الفوسفات في pDNA، وهي نسبة الأضراس في سلسلة GPMA في البوليمر وmononucleotide في pDNA. يتم حساب نسبة N /P وفقا للأوزان الجزيئية للنيتروجين الأميني (N) في مجموعة mBG والفوسفات (P) في pDNA .
- خلط الحلول مع خلاط دوامة والسماح لهم بالوقوف لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. بعد ذلك، تفريق الخليط في محلول المخزن المؤقت الفوسفات (PBS، درجة الحموضة 7.4) والحفاظ على mBG / pDNA polyplexes التي تم الحصول عليها في 4 درجة مئوية لتجارب المتابعة.
ملاحظة: تم الكشف عن متوسط حجم الجسيمات وإمكانات زيتا من mBG والمجمعات باستخدام تشتت الضوء الديناميكي (DLS)17.
- تمييع 10 ميكرولتر من الحلول متعددة البليكس mBG/pDNA مع 1 مل من PBS (درجة الحموضة 7.4) في خلايا العينة المحتملة DLS وZeta.
ملاحظة: تم إجراء حجم الجسيمات والكشف المحتمل زيتا ثلاث مرات وتم أخذ متوسط القيم الثلاث.
7. تجربة التخلف الكهربائي من بوليبليكسm /pDNA
ملاحظة: أجريت تجربة تخلف كهربائي لتحديد الحد الأدنى لنسبة الشحن.
- خذ خمس مجموعات من الـ mBG/pDNA polyplexes مع نسب N/P مختلفة (1:1، 4:1، 8:1، 16:1، و32:1) تحتوي على 50 ميكروغرام من pDNA .
- إضافة المخزن المؤقت التحميل 6X إلى عينات بوليبليكس mBG/pDNA إلى تركيز نهائي 1x.
- إضافة الحلول إلى 1.5٪ هلام أغاروز وتشغيل هلام في 90 mV لمدة 15 دقيقة، وذلك باستخدام pDNA كتحكم.
- التقاط صور من المواد الهلامية باستخدام صورة هلام.
8. السمية الخلوية من بوليبليكسm/pDNA
- بذور الخلايا MCF-7 في لوحات 96 جيدا في كثافة 104 خلايا في البئر. ثم، زراعة الخلايا لمدة 12 ساعة باستخدام DMEM المتوسطة (10٪ FBS و 1٪ المضادات الحيوية) في حاضنة 37 درجة مئوية رطبة الموردة مع 5٪ CO2.
- استبدال وسط الثقافة مع وسائل الإعلام ثقافة DMEM خالية من المضادات الحيوية التي تحتوي على 10٪ مصل البقر الجنيني (FBS) وmBG / pDNA polyplexes من نسب تهمة مختلفة (N / P 4، 8، 16، و 32، ن = 6) لمدة 6 ح، مع الخلايا المضافة مع كميات متساوية من محلول PBS كعنصر تحكم. بعد ذلك, يستبدل الثقافة وسط مع 150 [فل] من طازجة 1640 وسط وثقافة بعيدة الخلايا ل 24 [ه].
- يضاف 5 ملغم/مل 3-(4,5-ثنائي ميثيل ثيازول-2-yl)-2,5-ثنائي الفينيل بروميد تيترايزوليوم (MTT) الحل (20 ميكرولتر/بئر) إلى لوحات 96 بئراً والمزيد من زراعة الخلايا لمدة 4 ساعة.
- إزالة الحل وإضافة 150 درجة مئوية من DMSO إلى كل بئر ويهز لوحات 96 جيدا 30 ثانية.
- قياس الكثافة البصرية (OD) في 490 نانومتر مع قارئ لوحة صغيرة لإظهار صلاحية الخلية. حساب النسبة المئوية لصلاحية الخلية وفقًا للمعادلة 9.
نسبة صلاحية الخلية =
(9)
9. كفاءة التغوط من mBG / GFP-pDNA polyplexes
- حل 50 ميكروغرام من pDNA التي تحتوي على الجين مراسل البروتين الفلورسنت الأخضر (GFP) pDNA (GFP-pDNA) في 50 ميكرولتر من المياه الخالية من RNase/DNase. ثم حل 1 ملغ من البوليمرات coBG في 1 مل من RNase / DNase خالية من المياه. مزيج pDNA وmBG الحل في نسبة تهمة (N / P) من 1:1، 4:1، 8:1، 16:1، و 32:1 وحضانة لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. تفريق mBG / GFP-pDNA حل polyplexes باستخدام الموجات فوق الصوتية (30 ثانية) وتخزينها في 4 درجة مئوية لتجارب المتابعة.
ملاحظة: يتم حساب نسبة N /P وفقا للأوزان الجزيئية للنيتروجين الأميني (N) في مجموعة mBG والفوسفات (P) في pDNA .
- بذور MCF-7 الخلايا في كثافة 2 × 105 خلايا لكل بئر في لوحة 6 جيدا والثقافة لهم في 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 في حاضنة رطبة لمدة 12 ساعة.
- استبدل وسط الثقافة بوسط الثقافة الطازجة الذي يحتوي على بوليبليكس mBG/GFP-pDNA من نسب N/P مختلفة (4 و8 و16 و32) لمدة 6 ساعة.
- استبدل المتوسط بـ 2 مل من الـ RPMI1640 المتوسطة والثقافة الطازجة لمدة 48 ساعة.
- جمع الخلايا والكشف عن الفلورة الخضراء مع مقياس التدفق.