مقالة منهجية

عالي الاستبانة "منقوشة استخدام الترسيب بيوفيلم" بدون-Ag43

DOI:

10.3791/58625

أكتوبر 23, 2018

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

علينا أن نظهر أسلوباً لإيداع الإشريكيّة القولونية الجرثومي الأغشية الحيوية في الأنماط المكانية التعسفي بدقة عالية باستخدام التحفيز البصري لبناء السطح-التصاق وراثيا المرمزة.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الهيكل المكاني والزخرفة تلعب دوراً هاما في الأغشية الحيوية البكتيرية. هنا علينا أن نظهر أسلوب موجوداً لاستزراع الأغشية الحيوية كولاي إلى الأنماط المكانية التعسفي في عالية الدقة المكانية. يستخدم الأسلوب بناء أوبتوجينيتيك مشفرة جينياً-بدون-Ag43 — أن الأزواج تشكيل بيوفيلم في كولاي إلى تحفيز الضوئية بالضوء الأزرق. ونحن بالتفصيل عملية تحويل كولاي مع بدون-Ag43، إعداد البنية البصرية المطلوبة، والبروتوكول لاستزراع الأغشية الحيوية منقوشة باستخدام البكتيريا بدون-Ag43. باستخدام هذا البروتوكول، يمكن منقوشة الأغشية الحيوية مع قرار مكانية أدناه 25 ميكرومترات على مختلف الأسطح والبيئات، بما في ذلك الدوائر المغلقة، دون الحاجة إلى ميكروفابريكيشن، ومرافق غرفة نظيفة، أو المعالجة السطحية. التقنية ملائمة ومناسبة للاستخدام في التطبيقات التي التحقيق أثر هيكل بيوفيلم، وتوفير رقابة الانضباطي على الزخرفة بيوفيلم. على نطاق أوسع، كما أن التطبيقات المحتملة في الحيوية والتعليم والفن الحيوي.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الأغشية الحيوية المرفقة بسطح المجتمعات للميكروبات، وهي معروفة جيدا لاقتران وظيفة بنية قوية على. الهندسة المكانية والزخرفة للأغشية الحيوية تقوم دور هام في وظيفة المجتمع الشامل (والعكس بالعكس)1. طول الصغيرة جداول المشاركة في هيكل بيوفيلم – بناء على أمر من عشرات ميكرون2– جعل التحكم الانضباطي ومريحة من بيوفيلم الزخرفة مشكلة صعبة. هنا ندلل على بروتوكول يسمح للأغشية الحيوية أن يكون التحديد منقوشة في هندستها التعسفي، استناداً إلى الإضاءة الضوئية.

يستخدم البروتوكول المعروضة هنا بدون-Ag433، بناء أوبتوجينيتيك أن الأزواج تشكيل بيوفيلم في بكتيريا كولاي الإضاءة الضوئية بقيادة التعبير عن Ag43 (أدهيسين جينات مسؤولة عن التصاق السطحية وبيوفيلم تشكيل) تحت السيطرة لبدون4 (منظم النسخي يسيطر عليها الإضاءة الضوئية). الطريقة ملائمة للاستخدام ويمكن السطحي نمط الأغشية الحيوية على مختلف البيئات، بما في ذلك الدوائر المغلقة الثقافة (شفاف). مقارنة مع طرق الترسيب الخلية الموجودة، مثل ترسب المستندة إلى الحبرية5 أو سطح بريباتيرنينج/العلاج6، لا تتطلب مرافق غرفة نظيفة أو ميكروفابريكيشن بدأون-Ag43 ولا تتطلب مواد تتجاوز تلك المتاحة لمختبر الميكروبيولوجيا نموذجية. وقادر على نمط مع قرار مكانية أدناه 25 ميكرومتر، تقترب بالأبعاد المكانية ميكروكولونيس في القائمة بطبيعة الحال الأغشية الحيوية2. وعموما، هذا الأسلوب يوفر القدرة على التعامل مع هيكل بيوفيلم، ثم يفتح طرقاً عديدة لدراسة ميكروكولوجي في المجتمعات البكتيرية7. بالإضافة إلى ذلك، قد توفر الأغشية الحيوية منقوشة منصة ملائمة لمهندس الحيوية مفيدة8،9. في هذه الورقة، ونحن مناقشة البروتوكول الأساسية المطلوبة للزخرفة الأغشية الحيوية باستخدام بدون-Ag43 ومعالجة التعديلات المحتملة واستكشاف الأخطاء وإصلاحها المتعلقة بالأسلوب.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1-التحضير لبدون-Ag43 السلالات البكتيرية

  1. تحويل بدون-Ag43 إلى سلالة كولاي الفائدة (الشكل 1).
    1. تنمو سلالة استنساخ تستضيف بلازميد بدون-Ag43 (يمكن الحصول عليها من مستودع بلازميد) بتطعيم السلالة في مرق LB تستكمل مع 50 ميكروغرام/مل بالسبيكتينوميسين (رطل + المواصفات) في أنبوب ثقافة (بين عشية وضحاها في حاضنة تهز ~ 250 لفة في الدقيقة، 37 درجة مئوية). ثم، استخدم مجموعة مينيبريب لحصاد بلازميد المنقي بدون-Ag4310.
    2. اختر سلالة كولاي من الفائدة تكون منقوشة. وحتى الآن، تم التحقق من بدأون-Ag43 للعمل في MG16553 و BW25113.
    3. استخدام بروتوكول مؤسس لتوليد المختصة (مثل، كيميائيا المختصة11 أو12من اليكتروكومبيتينت) الأرصدة المختار سلالة كولاي (مثلاً، MG1655).
    4. تحويل Ag43 بدون بلازميد البكتيريا المختصة11،12، تليها الانتعاش ح 1، وطبق على رطل + لوحات أجار المواصفات. السماح للمستعمرات تنمو بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية.
  2. مخزن بدون-Ag43 تحول السلالات.
    1. تطعيم مستعمرة واحدة لبدون-Ag43 من رطل + المواصفات بلايت أجار إلى رطل + المواصفات مرق في أنبوب ثقافة وأنها تنمو في حاضنة تهز (في ~ 250 دورة في الدقيقة، 37 درجة مئوية) إلى المرحلة الأسية (OD600 ~0.4-0.8).
    2. إعداد المخزون لتخزين سلالة بدون-Ag43 تحول في-80 درجة مئوية طويلة الأجل عن طريق خلط 1 مل ثقافة مع 1 مل من 50% والغليسيرول العقيمة في البرد أنبوب للحصول على الجلسرين 25% الأسهم الثلاجة. تخزين هذا في ثلاجة-80 درجة مئوية.
    3. إذا والبلازميدات إضافية (مثلاً، البلازميدات مراسل الفلورسنت) بحاجة إلى أن تتحول، وإنشاء خلايا المختصة11،12 من بدون-Ag43 تحولت سلالة وكرر عملية التحول11 , 12 والبلازميدات إضافية حسب الحاجة.
      ملاحظة: إذا كان استخدام انهانسر8، من الممكن كوترانسفورم متعددة والبلازميدات (بما في ذلك بدون-Ag43) في وقت واحد؛ ومع ذلك، تحول متزامن لا ينصح باستخدام طرق التحويل الكيميائي، كما يعني الحجم الكبير لبدون-Ag43 (> 10 kB) تنخفض كفاءة التحويل.

2-إعداد إعداد جهاز العرض البصري للبكتيريا المضيئة

  1. الحصول حاضنة بكتيرية مع الجدران غير شفافة وفتحه لتمرير الكابلات، وقادرة على الأداء داخل الحاضنات البكتيرية، وتركيب جهاز عرض محمول وكمبيوتر محمول مزودة ببرامج لإسقاط العرض التقديمي (انظر الجدول من المواد). عند اختيار جهاز الإسقاط وحاضنة، ضمان أن مسافة التركيز الحد الأدنى للعرض أقل من ارتفاع الداخلية للحاضنة.
  2. وضع جهاز الإسقاط داخل الحاضنة في الجزء السفلي، مع الإشارة الفتحة مباشرة التصاعدي، في السقف، وفيه قاعة الثقافة بيوفيلم المرفقة (الشكل 2).
  3. بدوره متصل إصلاح جهاز الإسقاط في المكان قبل بناء هيكل مع الكهربية ضوئية قاعدة متصلة بوظيفة رأسي، وظيفة أفقية أي مسامير في جهاز الإسقاط (الشكل 2). لاحظ أنه يمكن تعديل هذا التشكيل تبعاً لأجزاء جهاز الإسقاط/المتوفرة. وفي نهاية المطاف، الشرط الرئيسي أن الإسقاط ثابت متين بالقرب من الأسفل للحاضنة، مع الفتحة مشيراً إلى أعلى.
  4. الاتصال الكمبيوتر المحمول عن طريق كابل الشاشة (مثلاً، HDMI) جهاز الإسقاط داخل الحاضنة.
  5. إذا السطوح – لا سيما الحد الأقصى – الداخلية للحاضنة العاكسة (مثلاً، سطح مصقول معدني)، غطاء لهم مع الأسطح غير لامع الظلام للتقليل من انعكاسات.
  6. استخدم الشريط لإرفاق صحن فارغ 'الطباعة' ثقافة الحد الأقصى للحاضنة. لاحظ أنه، مع جهاز الإسقاط، هناك عدة طرق مقبولة لإرفاق طبق ثقافة؛ التأكد من أن السطح السفلي شفافة لقاعة الثقافة، حيث يحدث الإضاءة، لا تغطي.
  7. ضبط التركيز على جهاز الإسقاط بتحول مقبض التركيز حيث أن الطائرة التركيز يتزامن مع السطح السفلي للطبق الثقافة بيوفيلم (مثل، لوحة جيدا) يعلق على الحد الأقصى للحاضنة (الشكل 2). البروجيكتور ينبغي إلقاء الضوء على صورة حادة، وغير واضح على الجزء السفلي من الطبق الثقافة. إزالة الطبق الثقافة 'الطباعة' مرة واحدة وقد تم تحسين التوقعات.
  8. استخدام برامج الكمبيوتر المحمول، توجيه جهاز الإسقاط لإلقاء الضوء على مجال الرؤية الكاملة مع الإضاءة الزرقاء الحد الأقصى (مثلاً، RGB = [0، 0، 255]) بعرض شريحة أزرق الكامل.
  9. قياس شدة الإضاءة لجهاز الإسقاط باستخدام عداد طاقة ضوئية حسب وضع الرأس فوتوديتيكتور في السقف حاضنة والقراءة الكثافة على مقياس الطاقة المقابلة معايرة للطول الموجي الضوء 460 نانومتر. اتبع الإرشادات على الاتصال ومعايرة photodetector لمقياس الطاقة المحددة المستخدمة.
    1. تقليل الإضاءة المحيطة (مثلاً، إيقاف تشغيل أضواء الغرفة أو مكان الحاضنة بعيداً عن مصادر الضوء) بقدر الإمكان قبل إجراء قياسات كثافة الإضاءة.
  10. ضبط شدة الإضاءة تستخدم عامل تصفية كثافة الطبيعية لتعديل وضعها في الفتحة جهاز الإسقاط. قم بتدوير عامل التصفية لضبط كثافة الإضاءة تقاس بمقياس الطاقة، حتى يقرأ شدة الإضاءة في وسط منطقة الضوء الأزرق المتوقعة 50 μW/سم2.
    ملاحظة: في حين أنه من الممكن لضبط شدة الإضاءة باستخدام قيم RGB الأزرق أقل في نهاية البرنامج، باستخدام عامل تصفية بينما تعظيم قيمة RGB الأزرق يتميز بتحقيق أقصى قدر من التباين الضوئي للنظام بين مضيئة مقابل. المناطق الداكنة.
  11. رسم التعسفي أنماط استخدام برنامج العرض التقديمي/جهاز العرض على الكمبيوتر المحمول وعرض هذه الأنماط على الحد الأقصى للحاضنة، باستخدام جهاز الإسقاط.
    ملاحظة: ينبغي الانتباه بيوفيلم تشكيل المناطق مع الإضاءة الزرقاء الحد الأقصى (مثلاً، RGB = [0، 0، 255])، غير بيوفيلم تشكيل المناطق مع لا الإضاءة (مثلRGB = [0, 0, 0]).

3-استزراع الأغشية الحيوية منقوشة

  1. قبل الإضاءة، إعداد البكتيريا بدون-Ag43، بدءاً من المخزون المجمد والغليسيرول، ذلك لأنها موثوق بها التي يتسبب فيها في أواخر المرحلة النمو الأسى للإضاءة (الشكل 3A).
    1. خط سلالة بدون-Ag43 من الأسهم والغليسيرول على رطل + لوحات أجار المواصفات. السماح للمستعمرات تنمو بين عشية وضحاها (37 درجة مئوية).
      ملاحظة: تأكد من هنا حتى الخطوة ثقافة الإضاءة، الخلايا البقاء في الظلام قدر الإمكان – فترات قصيرة في الإضاءة المحيطة (مثلاً، سوبديلوشن) تكون مقبولة.
    2. تطعيم مستعمرة للبكتيريا بدون-Ag43 من صفيحة أجار في رطل + المواصفات مرق وتنمو الثقافة بين عشية وضحاها إلى مرحلة ثابتة (في حاضنة تهز ~ 250 لفة في الدقيقة، 37 درجة مئوية، ح ~ 16).
    3. سوبديلوتي ثقافة بنسبة 1:1,000 مع رطل + المواصفات مرق (مثلاً، إضافة 1 ميكروليتر من الثقافة بين عشية وضحاها إلى 1 مل من رطل جديدة + المواصفات).
    4. السماح بثقافة سوبديلوتيد تنمو حتى أواخر المرحلة الأسية وبداية ثابتة (OD ~ 1.0، ح ~ 6 في حاضنة هز ~ 250 لفة في الدقيقة، 37 درجة مئوية).
    5. أثناء انتظار للثقافة أن تنمو، تحضير الوسائط M63 مع 1 x M63 الأملاح 1 مم MgSO4، الجلوكوز 0.2%، 0.1% كاسامينو الأحماض و 50 ميكروغرام/مل بالسبيكتينوميسين في الماء (ضمان الأجزاء المكونة عقيمة).
    6. سوبديلوتي ثقافة المرحلة المتأخرة الأسى بنسبة 1: 100 مع وسائط الإعلام M63 تكملة مع 50 ميكروغرام/مل بالسبيكتينوميسين. ثم، إدخال تمييع في طبق ثقافة بيوفيلم (مثلاً، "الماصة؛" العينة المخففة في صفيحة جيدا).
      ملاحظة: وحدات التخزين اللازمة لهذا سوبديلوشن 1: 100 تعتمد على الطبق الثقافة المستخدمة (مثلاً، إذا كان استخدام لوحة جيدا البوليستيرين 6-جيدا [غير----زراعة الأنسجة تعامل]، عينة واحدة تتطلب إضافة 20 ميكروليتر من الثقافة إلى 2 مل M63 + المواصفات، كما معيار حجم لوحة 6-جيدا جيدا ~ 2 مل).
  2. كما العينات جاهزة الآن للإضاءة، الشريط الطبق الثقافة إلى الحد الأقصى للحاضنة، التأكد من أن السطح في الجزء السفلي من الصحن شفاف للإضاءة من الأسفل بجهاز الإسقاط.
    ملاحظة: من المهم التأكد من أن الحد الأقصى للحاضنة لا تعكس، لتقليل الإضاءة طائشة. يمكن أيضا أن يخفض الإضاءة طائشة باستخدام ألواح الجدران الأسود كأطباق الثقافة، على الرغم من أن هذا ليس ضروريا تماما – إذا كان استخدام هذه اللوحات، ضمان السطح السفلي الشفافية.
  3. تسمح الأغشية الحيوية للثقافة في الحاضنة بين عشية وضحاها (ح 16 مع لا تهتز عند 37 درجة مئوية). لاحظ أن بعض أجهزة العرض تصبح أقل موثوقية في ارتفاع درجات الحرارة. إذا كان هذا هو الحال، الثقافة عند درجات حرارة منخفضة (مثلاً، 30 درجة مئوية)، مع الأخذ في الاعتبار أن فترة حضانة المرض قد تحتاج إلى زيادة، واعتماداً على سلالة كولاي .

4-تصوير منقوشة الأغشية الحيوية

  1. بعد نمو عينات بيوفيلم بين عشية وضحاها، إزالة الطبق الثقافة من الحاضنة. سوف يكون الطبق البكتيريا بيوفيلم يعلق على سطحه السفلي حيث أنه قد تم مضيئة، فضلا عن البكتيريا العوالق فرقت في وسائل الإعلام السائلة المذكورة أعلاه.
  2. تجاهل الخلايا العوالق بإزالة الوسائط السائلة من طبق الثقافة (مثلاً، يسفط برفق مع ماصة).
  3. شطف العينة 2 x مع حل مخزنة الفوسفات مالحة (PBS) لإزالة الخلايا العالقة المتبقية (الشكل 3B) عن طريق بيبيتينج برفق في برنامج تلفزيوني، متبوعاً بالطموح.
  4. إذا فلوريسسينتلي هي معلم الخلايا، مباشرة صورة العينات استخدام fluorescence مجهرية13 (مثلاً، واسع المجال13، ثلاثي الأبعاد [كنفوكل]14، إلخ).
    ملاحظة: الفلورسنت الأغشية الحيوية يمكن أيضا الحفاظ على استخدام وسيلة متزايدة تقوية ذاتيا. تطبيق قطره واحدة من تركيب وسائط لنموذج بيوفيلم، وتغطية ذلك مع ساترة زجاجية، مع الحرص على عدم التقاط أي فقاعات تحت، والسماح تتصلب بين عشية وضحاها قبل التصوير.
  5. إذا لم يتم تمييزها الخلايا البكتيرية المستخدمة فلوريسسينتلي، تطبيق الكريستال البنفسجي وصمة عار تقنية15 (الشكل 3B) لتعزيز التباين بيوفيلم قبل التصوير.

5-بروتوكول التعديلات/البدائل

  1. تنمو البكتيريا بدون-Ag43 على الأسطح المختلفة.
    1. وضع الزجاج أو كوبونات (PDMS) بولي-ثنائي ميثيل-siloxane (مثلاً، كوفيرسليبس أو شرائح رقيقة من PDMS) إلى لوحات جيدا قبل إضافة عينة/الإضاءة البكتيرية، واتبع نفس البروتوكول كما كان من قبل لنمط بدون-ag43 الأغشية الحيوية على الزجاج و PDMS.
  2. تنمو البكتيريا بدون-Ag43 داخل دائرة ثقافة المغلقة، وتتسم بالشفافية.
    1. إنشاء قالب دائرة ثقافة ل PDMS.
      1. إنشاء دائرة ثقافة أساسية، تولد العفن عن طريق إرفاق موشور الثابت، مستطيلة بسطح مستو (المنشور سوف يصبح تجويف في PDMS بمثابة قاعة الثقافة حالما يتم تحويل القالب). لاحظ أنه يمكن ملفقة قوالب دائرة الثقافة أكثر تعقيداً باستخدام الطباعة الحجرية الناعمة16.
    2. صوت تجويف PDMS تتدفق PDMS العفن والسماح له بعلاج (بروتوكول الطباعة حجرية ناعمة مفصلة، انظر في جوف "قاعدة تعليم العلوم"16).
    3. تقليم أي PDMS الزائدة ولكمه قنوات المدخل/المخرج في قاعة تجويف/الثقافة والسندات التجويف على سطح مستو (مثلاً، الزجاج/البوليستيرين) عن طريق الضغط بشدة PDMS على سطح مسطح، ترك التجويف بين السطح بعد علاج، و الحد الأقصى PDMS كقاعة الثقافة بيوفيلم.
      ملاحظة: يمكن أيضا استخدام الترابط أكثر دواما استناداً إلى بلازما العلاج16 ، ولكن الرقائق ثم لن تكون قابلة لإعادة الاستخدام.
    4. يتبع البروتوكول الثقافة قبل، استخدام المحاقن مع الإبر نصيحة كليلة (بدلاً من ماصة) لإدخال العينة البكتيرية في الدائرة الثقافة/الشطف مع المخزن المؤقت لبرنامج تلفزيوني (الشكل 3).
      1. إذا كان استخدام تجويف المرتهن مؤقتاً، استخدام الضغط السلبي الوحيد بالنسبة لسحب السائل إلى خارج الغرفة، لضمان إلا يصبح التجويف unbonded من سطح الزجاج/البوليستيرين الكامنة.
  3. تنمو البكتيريا بدأون-Ag43 استخدام النبائط فيلم لإنارة منظم.
    1. تصميم نمط بيوفيلم استخدام كندي البرمجيات المتوافقة مع خدمة طباعة طابعة/النبائط فيلم. وينبغي تصميم الفيلم النبائط واضحة في المناطق حيث بيوفيلم هو المقصود المراد طباعتها، والأسود/معتم في أماكن أخرى. عند الانتهاء، إرسال الملف النبائط بخدمة الطابعة/الطباعة وانتظار عودة النبائط المادية.
    2. إصدار تعليمات لجهاز الإسقاط لإلقاء الضوء على مجال رؤية كاملة مع الإضاءة الزرقاء الحد الأقصى (مثلاً، RGB = [0، 0، 255]) باستخدام برامج الكمبيوتر المحمول.
    3. قطع منطقة الاهتمام من أكبر الأفلام النبائط والشريط مباشرة إلى الجزء السفلي من ثقافة بيوفيلم طبق قبل إدخال العينة البكتيرية للإضاءة بين عشية وضحاها (3D الشكل). الثقافة الأغشية الحيوية كما كان من قبل، وإزالة النبائط بعد استزراع، قبل التصوير.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كما يتضح في الشكل 4A، استخدمت البكتيريا بدون-Ag43 لتوليد الأغشية الحيوية منقوشة في ألواح البوليسترين جيدا مع إضاءة البروجيكتور (تم تعيين جهاز العرض لإلقاء الضوء على نمط بولكا دوت)، مصورة عن طريق الفحص المجهري برايتفيلد مع كريستال البنفسجي وصمة كعامل تباين، والأسفار مجهرية باستخدام البكتيريا الأحمر-فلوري-البروتين-وإذ يعرب عن. يمكن أيضا تصويرها عينات بيوفيلم نيون استخدام الفحص المجهري [كنفوكل]14 للحصول على صور بيوفيلم ثلاثي الأبعاد (الشكل 4 باء). في الشكل 4، نحن توضيح الزخرفة عالية الدقة الممكنة باستخدام النبائط فيلم لتوفير الإضاءة منقوشة إلى عينة بيوفيلم. أخيرا، وفي الشكل 4 و 4E، نظهر أمثلة للزخرفة على الزجاج والأسطح PDMS، فضلا عن الدوائر المغلقة من الثقافة PDMS – توضيح هذه الأنواع المختلفة من البيئات التي يمكن فيها تطبيق الزخرفة بدون-Ag43.

figure-results-1
رقم 1: إعداد البكتيريا بدون-Ag43 (المادة 1 من البروتوكول)- إعداد بدون-Ag43 البكتيريا قادرة على تشكيل بيوفيلم ينظم الضوء ينطوي على تنقية بلازميد بدون-Ag43 من مضيف استنساخ سلالة وتحويلها إلى سلالة كولاي الفائدة، وإنشاء مخزون الثلاجة البكتيرية للمدى الطويل التخزين. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

figure-results-2
رقم 2: إعداد التشكيل البصري بيوفيلم عينة الإضاءة (المادة 2 من البروتوكول)- أن البنية البصرية يقع داخل حاضنة البكتيري ويتكون من بروجيكتور متصل بالكمبيوتر ينير عينة بيوفيلم. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

figure-results-3
الشكل 3: الثقافة البروتوكول للزخرفة الأغشية الحيوية (القسم 3 من البروتوكول)- (أ) الموافقة المسبقة للإضاءة وتعد البكتيريا بدون-Ag43 قبل الزخرفة بأنها موثوق بها التي يتسبب فيها في مرحلة النمو السليم. (ب) بعد ليلة وضحاها مضيئة في النمو، بيوفيلم منقوشة سيكون حاضرا في الجزء السفلي من الطبق الثقافة، جنبا إلى جنب مع الخلايا العوالق في وسائل الإعلام السائلة، وبعد بعض مزيد من المعالجة، بيوفيلم جاهز للتصوير. (ج) كبديل للوحات وأيضا، يمكن مثقف الأغشية الحيوية في دوائر الثقافة المغلقة مثل تجويف PDMS مصبوب. في هذه الحالة، يمكن استخدام المحاقن التي تعلق على الإبر نصيحة فظة الأخذ بالعينة وتدفق السوائل خارج الدائرة. (د) كبديل لأنماط الإضاءة المستندة إلى جهاز الإسقاط، يمكن أيضا إنشاء أنماط بتصوير فيلم فوتوماسكس مباشرة إلى الجزء السفلي من دوائر الثقافة بيوفيلم. وفي هذه الحالة، ينبغي إعداد جهاز الإسقاط لإضاءة الضوء الأزرق عبر الحقل الكامل. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

figure-results-4
الشكل 4: نتائج تمثيلية للأغشية الحيوية منقوشة باستخدام بدون-Ag43- تم الحصول على نتائج كافة استخدام عبئا مضيف MG1655 كولاي . واستخدمت البكتيريا بدون-Ag43 (A) لتوليد الأغشية الحيوية منقوشة في ألواح البوليسترين جيدا مع إضاءة البروجيكتور (تم تعيين جهاز العرض لإلقاء الضوء على نمط بولكا دوت)، مصورة عن طريق الفحص المجهري برايتفيلد مع البنفسجي كريستال وصمة عار عامل تباين، والأسفار مجهرية باستخدام البكتيريا الأحمر-فلوري-البروتين-وإذ يعرب عن. يتم تصويرها عينات بيوفيلم نيون (ب) مع الفحص المجهري [كنفوكل] الحصول على صور ثلاثية الأبعاد بيوفيلم. يمكن منقوشة الأغشية الحيوية ذات الدقة العالية (ج) مع النبائط فيلم لتوفير الإضاءة منقوشة إلى عينة بيوفيلم. يمكن أن تكون منقوشة الأغشية الحيوية (د) على الزجاج والأسطح PDMS. يمكن منقوشة الأغشية الحيوية (E) في دوائر الثقافة المغلقة. وهذا الرقم تم تكييف من العمل السابق3. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

المشكلةالأسباب/الحلول المحتملة
إنشاء بدون-Ag43 إلى سلالة المضيف-لا مستعمراتانخفاض تركيز بلازميد--التحقق من تركيز بلازميد في مطياف. ينبغي أن تسفر عن مينيبريب نموذجية لبدون-Ag43 على الأقل 100 نانوغرام/ميكروليتر؛ استخدام ما يصل إلى 10-100 نانوغرام للتحول
الاختيار/طبعة جديدة من الخلايا المختصة: الخلايا المختصة ينبغي أن يكون التحول الكفاءة على الأقل 10 ^ 6 زيمبابوي/ميكروغرام التحقق من استخدام بلازميد قياسية مثل pUC19--إذا لم يكن كذلك، طبعة جديدة من الخلايا المختصة
خطأ (مستوى) المضادات الحيوية على طبق أجار رطل--تأكد من استخدام 50 ميكروغرام/مل بالسبيكتينوميسين للتحديد
إضاءة البروجيكتور يتحول خارج/غير متناسقة بين عشية وضحاهاقم بتعطيل برامج إشكالية مثل: التحديث التلقائي البرمجيات/OS بين عشية وضحاها، وتصفية الضوء الأزرق الليلي
جهاز العرض قد يكون المحموم--تعيين حاضنة لانخفاض درجة الحرارة أثناء العرض قيد التشغيل (مثلاً 30 درجة مئوية بدلاً من 37 درجة مئوية)-ملاحظة الإسقاط كمصدر الحرارة يمكن أن أسخن حاضنة بعد تعيين نقطة
إزالة لا لزوم لها مصادر الرطوبة من الحاضنة، كما قد تؤثر هذه الإلكترونيات جهاز الإسقاط
لا/انخفاض مستويات بيوفيلم تشكيل بعد الإضاءة بين عشية وضحاها، ولا يوجد نمو الخلايا العوالق أما (أي سائل واضح)خطأ (مستوى) المضادات الحيوية--تأكد من استخدام 50 ميكروغرام/مل بالسبيكتينوميسين
تحقق من كل ما يضاف إلى الوصفة M63 بشكل صحيح
لا/انخفاض مستويات بيوفيلم تشكيل بعد الإضاءة بين عشية وضحاها، والخلايا العوالق فقط (أي سائل غائمة)تحقق الضوء مستوى الإسقاط ينبغي أن ينير الضوء الأزرق في 50 μW/سم ^ 2 في الطول الموجي نانومتر 460
حاول ترك البكتيريا تنمو لوقت أقصر/أطول بعد 1: 1000 رطل سوبديلوشن خطوة قبل إضافة إلى M63
ريستريك البكتيريا في لوحة رطل، بدء من مستعمرة جديدة لتوليد ثقافة المرحلة ثابتة بين عشية وضحاها
ضمان جهاز الإسقاط وتعمل دائماً بين عشية وضحاها--انظر النقطة أعلاه
أنماط بيوفيلم غامض، ومستويات عالية من الضوضاء الخلفيةتقليل ضوء شارد من نظام الإضاءة الضوئية، وتغطية الأسطح العاكسة الداخلية للحاضنة
النظر في استخدام الإضاءة المنظم القائم على النبائط (مقابل المستندة إلى جهاز العرض)
تحقق من جهاز العرض بشكل صحيح تركز على السطح السفلي لقاعة الثقافة بيوفيلم

الجدول 1: المشتركة وإصلاحها.

المناقشة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وفي ضوء الحاجة إلى أدوات البحث التي تسمح بتحكم بنية بيوفيلم، قدمنا بروتوكولا سهلة الاستخدام للزخرفة الأغشية الحيوية البكتيرية التي تستخدم في بناء أوبتوجينيتيك بدون-Ag43. مع هذه التقنية، يمكن منقوشة الأغشية الحيوية كولاي بصريا في مختلف البيئات السطحية، بما في ذلك الدوائر المغلقة، مع قرار مكانية أدناه 25 ميكرومتر.

وإجمالا، يمكن تقسيم هذا البروتوكول إلى أربعة أقسام رئيسية: (1) إعداد البكتيريا بدون-Ag43، (2) إعداد البصرية والثقافة إنشاء الأجهزة وخطوات النمو البكتيري قبل الإضاءة (3) الإضاءة (4) بعد انتهاء يشطف والتصوير.

الجزء الحاسم من القسم 1 هو نجاح تحويل بلازميد بدون-Ag43 إلى سلالة كولاي من الفائدة. وهذا يسر بعزل بلازميد النقية عالية الجودة وتوليد الخلايا المختصة عالية الجودة للتحول (الجدول 1، استكشاف الأخطاء وإصلاحها).

جزءا حاسما من القسم 2 هو الأمثل لتركيب جهاز الإسقاط حتى يتم ضبط شدة الإضاءة إلى 50 μW/سم2 في الطول الموجي نانومتر 460، وجهاز الإسقاط ويتركز بشكل صحيح في ذروة عينة بيوفيلم. ملاحظة أن في هذا البروتوكول، يصف لنا إنشاء إضاءة مقلوب حيث البروجيكتور يضيء الضوء من أسفل إلى أعلى، واتجاه العينة بيوفيلم. وميزة هذا التشكيل أن الضوء يحتاج إلى السفر عبر الجزء السفلي من الطبق الثقافة قبل الوصول إلى سطح تشكيل بيوفيلم فقط. الإضاءة من فوق يعني أنه سيتعين على ضوء السفر عبر وسائل الإعلام السائلة فوق سطح بيوفيلم، الذي، خلال مسار النمو، يحصل غائم مع خلايا العوالق. وبالإضافة إلى هذه الشواغل، من المهم أيضا تقليل ضوء شارد في التشكيل البصري، قدر الإمكان، على سبيل المثال، بالتستر على الأسطح العاكسة في المناطق داخلية الحضانة – وهذا يساعد على الحصول على أدق الأغشية الحيوية منقوشة. وفي هذا الصدد، يمكن الحصول أكثر وضوحاً بيوفيلم أنماط أيضا باستخدام النبائط للتحكم في الإضاءة الزخرفة (3D الشكل، الشكل 4). تشمل القضايا المشتركة التي تتطلب استكشاف الأخطاء وإصلاحها مشكلات الوثوقية الإسقاط في درجات حرارة أعلى (مثلاً، 37 درجة مئوية)، الذي يمكن التقليل بحضانة نمو بيوفيلم عند درجات حرارة منخفضة (مثلاً، 30 درجة مئوية)، فضلا عن برامج الكمبيوتر التي يتسبب تحديثات نظام التشغيل أو الضوء الأزرق التصفية خلال النمو بين عشية وضحاها (الجدول 1). من المهم أيضا أن نلاحظ أنه، اعتماداً على نموذج الإسقاط وحاضنة المستخدمة، من الممكن أيضا أن الحرارة المتولدة من البروجيكتور سيؤدي إلى درجة حرارة داخلية أعلى من الحاضنة ضبط درجة الحرارة، والتي قد تحتاج إلى تصحيح.

جزءا حاسما من القسم 3 هو الحصول على العينات البكتيرية يمكن الاعتماد عليها وقابلة للتكرار قبل الناجم عن الإضاءة. ولهذا السبب، من المستحسن للحصول على مستعمرات الاستنساخ من البكتيريا Ag43 بدون streaking بها على صفيحة أجار وثم استخدام الخطوات ثقافة السائل لضمان أن البكتيريا مضيئة المستحث في أواخر المرحلة النمو الأسى في التكرار طريقة.

أخيرا، جزء أساسي من القسم 4 جيدا، ولكن أيضا بلطف، يغسل العوالق الخلايا المتبقية بعد بيوفيلم الزخرفة البروتوكول؛ وهكذا، من المستحسن القيام بالعديد من الخطوات شطف لطيف مع برنامج تلفزيوني.

مقارنة بالتقنيات الموجودة للخلية الزخرفة5،6، بيوفيلم الضوئية الزخرفة بدون-Ag43 على أساس ما حاجز منخفض معقول من الدخول لاستخدام، حيث أنها لا تتطلب ميكروفابريكيشن، مرافق غرفة نظيفة، ومجمع الكيمياء، أو المعالجة السطحية، حتى الآن لا تزال قادرة على نمط بدقة عالية (25 ميكرومتر) المرتبطة عادة بتقنيات ميكروفابريكيشن. ويمتد الأسلوب العمل السابقة بشأن التصويرية البكتيرية للتحكم في التعبير الجيني17. حاليا، Ag43 بدون بلازميد يقتصر على كولاي، كما أنه يستخدم مصدر pUC المستندة للنسخ المتماثل، ولكن بدون و Ag43 كلاهما متوافق في سائر أنواع الجراثيم (سلبية الغرام). التقنيات الوراثية متاحة لاحتمال إدخال تشكيل بيوفيلم ينظم الضوء على مختلف أنواع الجراثيم، ويمثل اتجاه ممكن للبحوث في المستقبل. آخر الحد المحتملة لهذه التقنية أنه يعمل عن طريق زيادة تكوين بيوفيلم في سلالات مع تشكيل بيوفيلم الأصلية ضعيفة (مثلاً، MG1655 كولاي). ومع ذلك، يكون سلالات مع تشكيل بيوفيلم أصلية قوية شكل الأغشية الحيوية بغض النظر عن ظروف الإضاءة، ويحول دون تشكيل بيوفيلم منقوشة باستخدام بدأون-Ag43 كما هو موضح هنا؛ حتى الآن قد لا يزال يثبت تقنيات أوبتوجينيتيك المطبقة في تنظيم تشكيل بيوفيلم. ونلاحظ أنه في سياقات أخرى، قد تكون أساليب بديلة للزخرفة بيوفيلم المتاحة، مثل عن طريق بصري ج-دي-GMP التحوير18.

عموما، سوف تكون الزخرفة بدون-Ag43 على أساس مناسب للاستخدام في التطبيقات التي التحقيق أثر هيكل بيوفيلم على وظيفة1 ، وعليه، يمكن أن تستفيد من التحكم الانضباطي الزخرفة بيوفيلم-ذات أهمية خاصة مثال لتسليط الضوء على دراسة الإيكولوجيا الميكروبية في الأغشية الحيوية2. وتشمل التوجهات المستقبلية مما يجعل الحيوية منقوشة8،9 و/أو المجتمعات البكتيرية منظم. وتشمل التطبيقات البديلة لهذا البروتوكول موجوداً أيضا بيو-الفن19، نظراً لإمكانات جمالية واضحة، فضلا عن علوم الحياة الرسمية والتعليم20،،من2122. من منظور التربية، البروتوكول الموصوفة هنا يجمع بين العديد من التقنيات ذات الصلة (ثقافة البكتيرية، التحول، والبصريات/أوبتوجينيتيكس) وهي أيضا قابلة للتمديد مجزأة (مثلاً، تشمل ميكروفلويديكس).

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يشكر المؤلفون الزجاج دال وحاء – كيم وعم أ.، تشوكسى أ، راجان س. ومفاتيح باء لتلك الاقتراحات المفيدة ومختبر سبورمان للوصول إلى المجهر [كنفوكل]. وعلاوة على ذلك، تقر الكتاب الدعم المقدم من جامعة ستانفورد بيو-X باوز ومقدمة سرفيسز الزمالات، المعهد الوطني للصحة (R21-منظمة العفو الدولية-139941)، وجمعية السرطان الأمريكية (RSG-14-177-01).

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
DH5alpha / pDawn-Ag43Addgene107742سلالة الاستنساخ DH5alpha التي تستضيف pDawn-Ag43 البلازميد - يجب نقل البلازميد إلى بكتريا قولونية سلالة ذات أهمية قبل الاستخدام
MG1655 بكتريا قولونيةمركز المخزون الجيني - جامعة ييلCGSC # 6300MG1655 كبكتريا قولونية سلالة ذات أهمية في النتائج التمثيلية لهذه الورقة تعبير
RFP البلازميدiGEM biobricksJ04450-pSB4K5bbتوجد العديد من الخيارات للحصول على بكتيريا الفلورسنت - في حالة استخدام البلازميد ، تأكد من أن العمود الفقري لا يتعارض مع colE1 ori من pDawn-Ag43
Plasmid miniprep kitQiagen27104
LB مرق مسحوقAffymetrix75852أضف 20 جم / لتر إلى الماء ، الأوتوكلاف ، أضف 50 مو ؛ جم / مل سبيكتينومايسين للحصول على مسحوق أجار LB + المواصفات
معقمAffymetrix75851أضف 35 جم / لتر إلى الماء ، الأوتوكلاف ، أضف 50 مو ؛ جم / مل سبيكتينومايسين ، تصب في أطباق بتري للحصول على ألواح LB + مواصفات معقمة
أطباق بتريفيشربراند431760
سبيكتينومايسين هيدروكلوريد بنتاهيدراتأبكامAB141968اصنع 1000x مخزون 50 مجم / مل في الماء ، وقم بتصفية وتعقيم وتخفيف الوسائط حسب الحاجة
الجلسرينسيجما-ألدريتشG5516امزج بنسبة 1: 1 بالماء ، وتعقيمه بواسطة الأوتوكلاف أو الفلتر للحصول على 50٪ جلسرين
أملاح الوسائط M63 5X حلالعالم الحيوي705729أضف الأحماض الأمينية والجلوكوز و MgSO4 ، وجلب تركيز الأملاح إلى 1X عن طريق إضافة الماء المعقم
أحماض الكازامينوAmrescoJ851اصنع 20٪ مخزون في الماء ، وقم بتصفية وتعقيمه وإضافته إلى M63 كمكمل غذائي (التركيز النهائي 0.1٪)
D-glucoseSigma-AldrichG8270اصنع 20٪ مخزون في الماء ، وقم بتصفية وتعقيمه وأضفه إلى M63 كمكمل غذائي (التركيز النهائي 0.2٪)
كبريتات المغنيسيومSigma-AldrichM7506اصنع 1 م مخزون في الماء والأوتوكلاف وأضفه إلى M63 كمكمل غذائي (التركيز النهائي 1 مم)
البنفسجي الكريستالي   ؛212120250تمييع Acros Organicsإلى 0.1٪ في الماء قبل استخدام
وسائط التثبيت ذاتية التصلب (Shandon immumount)9990402علمية حراريةللحفاظ على العينات على المدى الطويل للتصوير الفلوري
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)  10010023 Gibcoأيضا استخدام PBS المحضرة من مسحوق / أقراص
6 ألواح بئرFisherbrand351146تستخدم كطبق ثقافة الأغشية الحيوية للحصول على نتائج تمثيلية
مجموعة PDMSDowSYLGARD 184يمكن استخدامها لعمل تجاويف غرفة صغيرة مغلقة باستخدام الطباعة الحجرية الناعمة
حقنة BD 1 مل309659للاستخدام مع مناولة السوائل مع الغرف الدقيقة المغلقة
إبرة طرف حادةCML الإمداد901-23-050يعلق على 1 مل حقنة
شريط مختبرFisherbrand15-901استخدم لربط غرفة الثقافة بسقف الحاضنة
حاضنة بكتيريةSheldon ManufacturingSMI6تأكد من أن الارتفاع الداخلي للحاضنة طويل بما يكفي لتركيز جهاز العرض في السقف
جهاز عرض محمولIvation IV-PJ-PRO-4-1توجد العديد من طرازات أجهزة العرض المحمولة ، وقد تم اختبار pDawn-Ag43 بنماذج متعددة بما في ذلك LED / الليزر ، مع قناة ضوء أزرق تتراوح من 450-460 نانومتر الطول الموجي المركزي
قاعدة اللوح البصريThorLabsMSB6للإعداد البصري لحمل جهاز العرض - العديد من الإعدادات الأخرى ممكنة ، ما عليك سوى تثبيت جهاز العرض بإحكام في الجزء السفلي من الحاضنة ، مشيرا إلى الأعلى
آخر بصريThorLabsTR8هناك حاجة إلى 2 وظيفة - واحدة ليتم إعدادها عموديا تمتد من قاعدة اللوح ، واحدة متصلة أفقيا عبر مشبك الزاوية اليمنى
مشبك الزاوية اليمنىبصري المنشور ThorLabsRA90يربط المشاركات الرأسية والأفقية
قاعدةالتركيب ThorLabsBA1Sيربط قاعدة اللوح البصري والعمود الرأسي
1/4 "-20 برغيThorLabsSH25S050يعلق عمودا رأسيا على قاعدة التثبيت ، وقاعدة التثبيت على قاعدة اللوح
1/4 "-20 برغيThorLabsSS25E63Dيربط العمود الأفقي بجهاز العرض عبر ثقب لولبي ثلاثي القوائم
مقياس الطاقة البصرينيوبورت840استخدم مع كاشف عداد الطاقة لقياس شدة إضاءة جهاز العرض - توجد العديد من طرازات عدادات الطاقة ، واستخدام نموذج يحتوي على كاشف قابل للتمديد سيسهل القياس
كاشف عداد الطاقة الضوئيةNewport818-UVيتصل بعداد الطاقة (أعلاه) - كاشف الأشعة فوق البنفسجية ليس ضروريا تماما لأن الضوء الأزرق ضمن النطاق المرئي
مرشح ND قابل للتعديلK & F ConceptSKU0689مرشح الكثافة المحايدة قابل للتعديل (عن طريق التناوب) - ضع فوق فتحة جهاز العرض
التقديمي برنامجالعرض التقديمي MicrosoftPowerpointأي برنامج يسمح بالرسم / العرض يكفي
برنامجCAD Autodesk   ؛أوتوكادلتصميم أقنعة الصور ، وتتوافق العديد من خدمات طباعة الأقنعة مع ملفات أوتوكاد
، وقناع الصور ، والتصويرالدقيق، وهناكالعديد من خدمات طابعة أقنعة الصور لطباعة أقنعة الصور عالية الدقة (>30000 ديسيبل متوحد الخواص )
تستخدم يمكن تستخدم

المراجع

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Microbial Biofilms. Annual Review of Microbiology. 49 (1), 711-745 (1995).">Costerton, J. W., Lewandowski, Z., Caldwell, D. E., Korber, D. R., Lappin-Scott, H. M. Microbial Biofilms. Annual Review of Microbiology. 49 (1), 711-745 (1995).
  2. Metabolic commensalism and competition in a two-species microbial consortium. Applied and environmental microbiology. 68 (5), 2495-2502 (2002).">Christensen, B. B., Haagensen, J. A. J., Heydorn, A., Molin, S. Metabolic commensalism and competition in a two-species microbial consortium. Applied and environmental microbiology. 68 (5), 2495-2502 (2002).
  3. Biofilm Lithography enables high-resolution cell patterning via optogenetic adhesin expression. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (14), 3698-3703 (2018).">Jin, X., Riedel-Kruse, I. H. Biofilm Lithography enables high-resolution cell patterning via optogenetic adhesin expression. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (14), 3698-3703 (2018).
  4. From dusk till dawn: one-plasmid systems for light-regulated gene expression. Journal of Molecular Biology. 416 (4), 534-542 (2012).">Ohlendorf, R., Vidavski, R. R., Eldar, A., Moffat, K., Möglich, A. From dusk till dawn: one-plasmid systems for light-regulated gene expression. Journal of Molecular Biology. 416 (4), 534-542 (2012).
  5. Construction of high-density bacterial colony arrays and patterns by the ink-jet method. Biotechnology and Bioengineering. 85 (1), 29-33 (2004).">Xu, T., et al. Construction of high-density bacterial colony arrays and patterns by the ink-jet method. Biotechnology and Bioengineering. 85 (1), 29-33 (2004).
  6. Patterned Biofilm Formation Reveals A Mechanism for Structural Heterogeneity in Bacterial Biofilms. Langmuir: the ACS Journal of Surfaces and Colloids. 29 (35), 11145-11153 (2013).">Gu, H., Hou, S., Yongyat, C., Detore, S., Ren, D. Patterned Biofilm Formation Reveals A Mechanism for Structural Heterogeneity in Bacterial Biofilms. Langmuir: the ACS Journal of Surfaces and Colloids. 29 (35), 11145-11153 (2013).
  7. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiology and Molecular Biology Reviews: MMBR. 64 (4), 847-867 (2000).">Davey, M. E., O'Toole, G. A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiology and Molecular Biology Reviews: MMBR. 64 (4), 847-867 (2000).
  8. Programmable biofilm-based materials from engineered curli nanofibres. Nature Communications. 5, 4945(2014).">Nguyen, P. Q., Botyanszki, Z., Tay, P. K. R., Joshi, N. S. Programmable biofilm-based materials from engineered curli nanofibres. Nature Communications. 5, 4945(2014).
  9. Synthesis and patterning of tunable multiscale materials with engineered cells. Nature Materials. 13, 515-523 (2014).">Chen, A. Y., et al. Synthesis and patterning of tunable multiscale materials with engineered cells. Nature Materials. 13, 515-523 (2014).
  10. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Plasmid Purification. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).">JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Plasmid Purification. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  11. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Bacterial Transformation: The Heat Shock Method. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).">JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Bacterial Transformation: The Heat Shock Method. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  12. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Bacterial Transformation: Electroporation. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).">JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Bacterial Transformation: Electroporation. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  13. General Laboratory Techniques. Introduction to Fluorescence Microscopy. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).">JoVE Science Education Database. General Laboratory Techniques. Introduction to Fluorescence Microscopy. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  14. Handbook of Biological Confocal Microscopy. , Springer Science & Business Media. New York, NY. (2010).">Pawley, J. Handbook of Biological Confocal Microscopy. , Springer Science & Business Media. New York, NY. (2010).
  15. Microtiter Dish Biofilm Formation Assay. Journal of Visualized Experiments. 47, e2437(2011).">O'Toole, G. A. Microtiter Dish Biofilm Formation Assay. Journal of Visualized Experiments. 47, e2437(2011).
  16. Bioengineering. Soft Lithography. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).">JoVE Science Education Database. Bioengineering. Soft Lithography. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  17. Spatiotemporal control of cell signalling using a light-switchable protein interaction. Nature. 461 (7266), 997-1001 (2009).">Levskaya, A., Weiner, O. D., Lim, W. A., Voigt, C. A. Spatiotemporal control of cell signalling using a light-switchable protein interaction. Nature. 461 (7266), 997-1001 (2009).
  18. Bioprinting Living Biofilms through Optogenetic Manipulation. ACS Synthetic Biology. 7 (5), 1195-1200 (2018).">Huang, Y., Xia, A., Yang, G., Jin, F. Bioprinting Living Biofilms through Optogenetic Manipulation. ACS Synthetic Biology. 7 (5), 1195-1200 (2018).
  19. Signs of Life: Bio Art and Beyond. , MIT Press. Cambridge, MA. (2007).">Kac, E. Signs of Life: Bio Art and Beyond. , MIT Press. Cambridge, MA. (2007).
  20. Trap it!: A Playful Human-Biology Interaction for a Museum Installation. Proceedings of the 33rd Annual ACM Conference on Human Factors in Computing Systems. , 2593-2602 (2015).">Lee, S. A., et al. Trap it!: A Playful Human-Biology Interaction for a Museum Installation. Proceedings of the 33rd Annual ACM Conference on Human Factors in Computing Systems. , 2593-2602 (2015).
  21. A Biotic Game Design Project for Integrated Life Science and Engineering Education. PLOS Biology. 13 (3), e1002110(2015).">Cira, N. J., et al. A Biotic Game Design Project for Integrated Life Science and Engineering Education. PLOS Biology. 13 (3), e1002110(2015).
  22. The next generation science standards and the life sciences. Science and Children. 50 (6), 7(2013).">Bybee, R. W. The next generation science standards and the life sciences. Science and Children. 50 (6), 7(2013).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

pDawn Ag43 E coli

مقالات ذات صلة