ملاحظة: التحول وتسلسل الإجراءات للاستنساخ، ناقش18،19في أماكن أخرى. البروتوكولات هنا تبدأ من تعداء ناقلات التعبير الثدييات (الشكل 3).
1-تعداء الخلايا HEK293T مع مراسل اللون المزدوج بناء
- زراعة الخلايا HEK293T في المتوسطة تعديل النسر دولبيكو (دميم) وتستكمل مع 10% (v/v) المصل البقري الجنين (FBS) والبنسلين (100 U/mL) ستربتوميسين (100 ميكروغرام/مل) في 5% CO2 حاضنة في 37 درجة مئوية. بعد ذوبان الجليد، تجارب الخلايا HEK293T مرور 2-3 مرات قبل استخدامها في تعداء. وهذا سيعطي الوقت الخلايا للتعافي من الإجراء ذوبان.
تنبيه: تلوث مفطورة من الثقافات الخلية لا يزال يمثل مشكلة خطيرة. الممارسة الجيدة للمختبرات والفحص الروتيني للثقافات الخلية ضرورية لتقليل خطر التلوث مفطورة، وتجنب نشر20.
- تقسيم الخلايا 1:2 يوم واحد قبل البذر وتحويلها إلى الطازجة دميم المتوسطة. زراعة الخلايا ح 24 في 5% CO2 حاضنة في 37 درجة مئوية.
- إزالة المتوسطة من قارورة بتطلع اليوم قبل تعداء، وتغسل الخلايا مع دولبيكو للفوسفات مخزنة (دببس) المحلول الملحي خالية من الكالسيوم (Ca2 +) والمغنيسيوم (Mg2 +) لإزالة آثار المصل.
- الاستغناء عن 5 مل محلول يدتا التربسين (0.05%-10 ملم في برنامج تلفزيوني) في سفينة الثقافة ووضعه في 37 درجة مئوية في 5% CO2 حاضنة لمدة 2 إلى 5 دقائق.
- عندما يتم فصل الخلايا، إضافة 5 مل دميم وتستكمل مع 10% (v/v) FBS تمنع زيادة النشاط التربسين التي قد تلحق الضرر الخلايا.
- ريسوسبيند بلطف من بيبيتينج تعليق خلية صعودا وهبوطاً لكسر في كتل.
- تضعف الخلايا 01:10 بوصمة عار تريبان الأزرق (0.4 في المائة).
- عد الخلايا الحية التي لا يستغرق تريبان الأزرق باستخدام مجهر (10 x الهدف) وهايموسيتوميتير.
- حساب عدد الخلايا قادرة على البقاء في المليلتر بأخذ متوسط عدد الخلايا وضرب من قبل 10,000 ومعامل التخفيف (01:10) من تريبان الأزرق بوصمة عار.
- لوحة 2 × 104 خلايا في 100 ميكروليتر من دميم المتوسطة وتستكمل مع 10% FBS دون المضادات الحيوية في لوحة مسطحة القاع 96-جيدا ح 24.
- لكل بئر، تمييع 400 نانوغرام pLTR.gp140/EGFP. RevD38/دسريد، 20 نانوغرام من القس بكمفNL4.3 و 100 نانوغرام من بكمف-Tat101AD8-"علم الحمض النووي" في 50 ميكروليتر من المصل المتوسطة الحرة. المزيج بلطف. لإجراء التجارب دون تأت، استخدم مطابقة فارغة تأت متجه pcDNA3.1 (-).
ملاحظة: ينصح بشدة استخدام الحمض النووي خالية من الذيفان. لذلك، تعد خالية من الذيفان الحمض النووي باستخدام مجموعة أدوات تنقية ميدي أو ماكسيبريب في حمض النووي. تحديد نقاء الحمض النووي عن طريق قياس نسبة OD 260/280، التي ينبغي أن تكون بين 1.7 و 1.9.
- خلط الكاشف الدهون بلطف قبل استخدام، ثم يضعف ميكروليتر 0.65 في 50 ميكروليتر من المصل المتوسطة الحرة. المزيج بلطف واحتضان لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
- الجمع بين الحمض المخفف مع الكاشف الدهون المخفف.
- المزيج بلطف واحتضان لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. قد يبدو الحل الملبدة بالغيوم.
ملاحظة: تابع إلى الخطوة 1، 15. خلال 30 دقيقة.
- الاستغناء عن 100 ميكروليتر كل بئر المجمعات الحمض النووي كاشف دهن دروبويسي أعلى الخلايا.
- المزيج بلطف هزاز لوحة ذهابا وإيابا.
-
احتضان لوحة ح 5 في 5% CO حاضنة هوميديفيد2 في 37 درجة مئوية.
- كل رد فعل مزيج غير كافية تعداء بئر واحدة (96-أيضا). ضبط مقدار وحجم المكونات وفقا للعدد من المخدرات وتركيبة التي سيتم اختبارها، وحسابات للاختلافات بيبيتينج. وعادة ما يتم اختبار كافة الشروط في تريبليكاتيس.
- ترانسفيكت آبار إضافية مع 100 نانوغرام من يحركها CMV بلازميد اجفب ودسريد في التعبير عن الحمض النووي لأغراض التعويض.
2-معاملة Transfected HEK293T الخلايا مع الكمون عكس وكلاء
ملاحظة: قبل كل فحص، تحديد الحالة الفسيولوجية لكل جيش الرب للمقاومة عن طريق قياس صلاحية الخلايا بعد التعرض لجرعة عالية ومنخفضة من المخدرات مع خلية انتشار المقايسة.
- تمييع كل جيش الرب للمقاومة إلى تركيز العمل المناسبة مع متوسط النمو (مثل، 1 ميكرومتر ل JQ1(+)).
تنبيه: إعادة تشكيل الأدوية المجففة بالتبريد مع المذيب المناسب لتركيز من 10 ملم. تخزين جميع الأسهم لراس في-80 درجة مئوية واحدة استخدم قاسمة (5 ميكروليتر في كل) تفاديا لتكرار دورات ذوبان التجميد.
- بعناية نضح المتوسطة تعداء مع القنوات المتعددة واستبدال 100 ميكروليتر المتوسطة التي تحتوي على جيش الرب للمقاومة المناسبة (الجدول 1). إضافة المتوسطة بلطف جداً جنبا إلى جنب مع جدار البئر لتجنب فصل الخلايا HEK293T ترانسفيكتيد، التي هي معروفة لفصلها بسهولة من سطح لوحة الثقافة.
- احتضان لوحة ح 48 في 5% CO حاضنة هوميديفيد2 في 37 درجة مئوية.
3-تلطيخ Transfected الخلايا مع صبغة الجدوى يمكن حلها لتحليل التدفق الخلوي
تنبيه: إزالة الخلايا الميتة والحطام ضروري للقضاء على إيجابيات كاذبة، والحصول على نتائج ذات جودة أعلى.
- فصل الخلايا في وسائل الإعلام استخدام 100 ميكروليتر من الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) كل بئر وقبل بلطف بيبيتينج صعودا ونزولاً (5 مرات ~) مع القنوات المتعددة، مع تجنب مزبد لوسائل الإعلام. إذا لزم الأمر، قم بفصل الخلايا من لوحة استخدام 35 ميليلتر لكل بئر الحل يدتا التربسين (0.05%-10 ملم في برنامج تلفزيوني) وتفرخ 5 دقيقة عند 37 درجة مئوية، قبل تحييد مع المتوسطة التي تحتوي على المصل.
- نقل الخلايا إلى لوحة الخامس-أسفل 96-جيدا.
- تدور الخلايا لمدة 5 دقائق في 500 x ز في 4 درجات مئوية، ثم نضح المتوسطة/برنامج تلفزيوني بعناية دون لمس الخلايا.
- تغسل الخلايا مرة واحدة على الأقل مع 200 ميكروليتر من البروتين/المصل مجاناً برنامج تلفزيوني.
- الطرد المركزي في 500 x ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية، ثم تجاهل المادة طافية بإمالة اللوحة وإزالة المخزن المؤقت يغسل دون لمس الخلايا.
- يعد إيجاد حل عملي لصبغ صلاحية يمكن حلها بتمييع صلاحية صبغ 1: 1000 في البروتين/المصل مجاناً برنامج تلفزيوني. إعداد 50 ميليلتر من وصمة عار المخفف كل بئر.
ملاحظة: الجدوى الأصباغ متوفرة في مجموعة من الألوان مناسبة للاستخدام مع أجهزة الليزر الأزرق والأحمر والبنفسجي. إعداد حل أسهم لصبغ صلاحية يمكن حلها قبل ريسوسبيندينج قنينة واحدة من الصبغة المجففة بالتبريد (المكون A) مع محرك القرص الصلب (العنصر ب) 50 ميكروليتر اللامائى [دمس]. مخزن في-20 درجة مئوية في الكوة استخدام الفردي (1 ميكروليتر في كل)، محمية من الضوء.
- إضافة 50 ميكروليتر من الصبغة صلاحية المخفف لكل بئر وخلط الخلايا من بيبيتينج صعودا وهبوطاً مع القنوات المتعددة.
- وصمة عار لمدة 10-15 دقيقة على 4 درجة مئوية، ومحمية من الضوء.
- أغسل 1-2 مرات مع 150 ميكروليتر من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي (برنامج تلفزيوني مع يدتا الزلال ومم 2 الأبقار 1%).
- أجهزة الطرد المركزي في 500 x ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
- إصلاح الخلايا مع 100 ميكروليتر من طازجة 1% فورمالدهايد في المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي لمدة 10-15 دقيقة في 4 درجات مئوية في الظلام.
تنبيه: الفورمالديهايد سامة جداً. إعداد 1% فورمالدهايد الحل في غطاء دخان لتجنب استنشاق أثناء ارتداء القفازات ونظارات السلامة للحماية.
- تغسل الخلايا 1-2 مرات مع 100 ميكروليتر من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي.
- أجهزة الطرد المركزي في 500 x ز لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
- ريسوسبيند بيليه الخلية في ميكروليتر 70 من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي.
ملاحظة: يمكن أن يكون مؤقتاً البروتوكول هنا. يمكن تخزين خلايا ثابتة عند 4 درجة مئوية في الظلام للتحليل في اليوم التالي في سيتوميتير تدفق.
4-اجفب والقياسات دسريد بالتدفق الخلوي وتحليل البيانات
ملاحظة: تحليل فيروس النسخ (% اجفب) والربط (% دسريد) في سيتوميتير تدفق. تصفية العينة قبل التشغيل مع خلية-مصفاة ميكرومترات 70 أو 100 ميكرومتر النايلون شبكة لتجنب انسداد الفوهة.
- بدء تشغيل سيتوميتير والكمبيوتر على الأقل 10 دقيقة قبل استخدامها للتأكد من أشعة الليزر الاحماء.
- قبل تشغيل عينات والبدء في الحصول على البيانات، ملء خزان غمد مع المحلول الملحي 0.9% وضمان أن تتم إضافة قرص تحت كلوريت الصوديوم إلى خزان النفايات.
- فحص الخلية تدفق لفقاعات الهواء.
- تحقق من أن كاشفات وعوامل التصفية المناسبة للتجربة.
ملاحظة: بالنسبة اجفب، استخدم الليزر الأزرق (488 نانومتر) وممر الموجه 530/30، بينما يتم الكشف عن استخدام الليزر الأصفر على النحو الأمثل إكسبريس دسريد (561 nm) وممر الموجه 610/20. ليزر أزرق (488 نانومتر) ويمكن أيضا استخدام ممر الموجه 610/20 للكشف عن التعبير دسريد.
- التحقق من الأداء سيتوميتير وحساسية عبر أجهزة الكشف عن طريق تشغيل الخرز المعايرة.
- ضبط الأمام (منتدى التعاون الأمني-أ) والجانب مبعثر (SSC-أ) الفولتية مع أونستاينيد عينة حيث يكون السكان الرئيسية التي تظهر على الشاشة ووضوح ملموس.
ملاحظة: منتدى التعاون الأمني (ضوء متناثرة إلى الأمام) مقياس الضوء الحيود في زاوية مسطحة، الذي يعتمد على حجم الخلية (خلية المساحة أو الحجم)، بينما SSC (الجانب-متناثرة الضوء) هو قياس حيود الضوء في زاوية الحق، الذي يتناسب مع مستوى الخلية والتعقيد الداخلي.
- إجراء تعويض اليدوي أو التلقائي باستخدام عينات الملطخة بمفرده كفالة امتداد الحد الأدنى من اجفب + السكان إلى كاشف دسريد والعكس بالعكس.
تنبيه: ولأغراض التعويض، استخدام عينة خلايا معربا عن كل من البروتين الفلورسنت لون واحد، فضلا عن خلايا منفردة ملطخة بصبغة الجدوى يمكن حلها. لا تستخدم الخرز التعويض فيتك والمؤسسة العامة للتعويضات البروتينات الفلورية اجفب ودسريد بسبب الخصائص الطيفية المختلفة. يجب أن تكون ضوابط التعويض مشرق بما فيه الكفاية لحل السكان الإيجابية والسلبية.
- خلق المؤامرات وتعيين غيتس fluorescence ناقص واحد (FMO) عناصر التحكم باستخدام.
- حيازة وتسجيل الحد ني أحداث خلية صالحاً 10,000 كل عينة. تشغيل عينات بسرعة متوسطة أو منخفضة لتجنب doublets مرورا باعتراض الليزر. استخدام نبض الهندسة النابضة مثل التعاون بين بلدان الجنوب-أ مقابل ح ال SSC للقضاء على دوبليتس. تحقق الاستقرار للتشغيل برسم الوقت مقابل SSC-أ لترى كيف حتى يتم التدفق أثناء التشغيل.
- في نهاية الشوط، تنظيف فلويديكس الخلوي التدفق مع وكلاء التنظيف المركزة ثم الماء لمدة 5 دقائق.
- إيقاف تشغيل النظام، التخلص من النفايات وإعادة ملء خزان غمد بعد اكتساب.
- تحليل البيانات استخدام برنامج تحليل بيانات تدفق الخلوي. استبعاد الخلايا الحطام واجمه (دوبليتس) استناداً إلى مبعثر إلى الأمام والجانب، ثم القضاء على الخلايا الميتة استخدام صلاحية صبغ وصمة عار (سلبية السكان = الخلايا الحية). تحديد الخلايا وإذ تعرب عن اجفب ودسريد (الشكل 4)، فضلا عن النسبة المئوية للمنتج المقسمة دسريد/(DsRed + EGFP) (الشكل 5).
- تحديد تأثير جيش الرب للمقاومة على النسخ فيروس نقص المناعة البشرية، والربط بمقارنة خلايا غير المعالجة والخلايا المعرضة لفرد أو مجموعة من لراس (الشكل 5).