في فيفو نماذج الثدييات من تشوهات العظام الحرجة الحجم ضرورية للباحثين دراسة آليات الشفاء والعلاجات العظام. نقدم لك هنا، على بروتوكول لإنشاء عيوب استنساخه، القطاعي، فخذي في الفئران التي استقرت باستخدام التثبيت الخارجي.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
نموذج موثوق بها واستنساخه الحرجة الحجم القطاعي فخذي عيب في الفئران التي استقرت مع التبعي خارجية المخصصة
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
أبحاث العظام تعتمد اعتماداً كبيرا على نماذج حيوانية لدراسة آليات للعظام شفاء في فيفو ، فضلا عن التحقيق في أساليب علاج جديدة. عيوب قطعي الحجم الحرجة تمثل تحديا لعلاج سريرياً، وجهود البحث يمكن أن تستفيد من نموذج حيوانات صغيرة موثوقة والاسعافية لعيب فخذي المجزأ. في هذه الدراسة، نقدم بروتوكولا جراحي أمثل لخلق عيب 5 مم جدلي حاسم متسقة واستنساخه في عظم الفخذ الفئران استقرت مع التبعي خارجية. الذي قد استقرت بجهاز تكييف التبعي خارجية أوستيكتومي جدلي أجرى باستخدام رقصة مخصصة لوضع 4 بيكورتيكالي أسلاك كيرشنر،. منشار العظام تتأرجح تم استخدامه لإنشاء هذا العيب. أما اسفنجة الكولاجين وحدها أو اسفنجة الكولاجين غارقة في رهبمب-2 كان مزروع في العيب، وشفاء العظام تم رصد أكثر من 12 أسبوعا باستخدام الصور الشعاعية. بعد 12 أسبوعا، كانت التضحية بالفئران، والتحليل النسيجي تم إجراؤها على عنصر التحكم قصت وتعامل قصبة. تشوهات العظام التي تحتوي على فقط الكولاجين الأسفنج أدت إلى غير الأعضاء في الاتحاد، بينما العلاج رهبمب-2 أسفرت عن تشكيل إعادة عرض العظم القاسي وجديدة بيريوستيل. الحيوانات تعافي تماما بعد زرع، والخارجية تثبيت أثبتت نجاحها في تحقيق استقرار العيوب فخذي ما يزيد على 12 أسبوعا. يمكن تطبيق هذا النموذج المبسط الجراحية سهولة دراسة شفاء العظام واختبار الحيوية العظام الجديدة والعلاجات التجدد في فيفو.
المقدمة
جراحة العظام من الصدمات النفسية تركز على علاج طائفة واسعة من الكسور المعقدة. العظام المجزأ جدلي الحرجة أثبتت العيوب يصعب علاجه طبيا بسبب انخفاض قدرة التجدد في العضلات المحيطة بها والسمحاق، فضلا عن عدم ترجمة الأوعية1. تقنيات المعالجة الحديثة تشمل التثبيت المنطوق مع تطعيم العظم، وتأخر تطعيم العظم (ماسكويليت)، ونقل العظام، والانصهار، أو البتر2،،من34. في معظم المرضى الذين لديهم المتنقلة الدالة الاحتفاظ بعد الصدمات التي مر بها مع أطرافه القاصي يعمل بشكل جيد، وهو إنقاذ أطرافهم وضوح أفضل خيار علاج5. غالباً ما تتطلب علاجات إنقاذ هذه التدخلات الجراحية نظموا خلال دورة علاج طويل. قد اقترح بعض الكتاب أن التثبيت الخارجي أعلى بالمقارنة مع التثبيت الداخلي لهذه التطبيقات بسبب تلف الأنسجة انخفض خلال غرس، انخفض مزروع المساحة السطحية، وزيادة قابلية ضبط بعد العملية الجراحية التبعي6. ومع ذلك، معشاة المحتملين تجري حاليا لمساعدة في توضيح هذا الجدل الداخلية مقابل الخارجية التثبيت في كسور مفتوحة شديدة في الساق7. للأسف، تستمر معدلات المضاعفات وفشل كبير مع العلاج أما المحدد،8،9. أما طريقة العلاج، فيما يتعلق بفقدان العظام القطاعي، الجراح يجب أن يتعامل مع العيوب جدلي قطعي أن تحديات كبيرة. تصحيح العيوب قطعي يجب تحقيق أقصى قدر من الاستقرار العظام وفي نفس الوقت تعزيز10،عملية أوستيوجينيك11.
نظراً لأهمية سريرية، بعد انخفاض حجم، عيوب المجزأ جدلي حاسم الحجم، طراز حيوانية فعالة، واستنساخه أمرا ضروريا لتمكين فرق البحث للنهوض بأساليب العلاج وتحسين النتائج السريرية في نهاية المطاف. يحتاج الباحثون لدراسة في فيفو الفسيولوجية آليات الشفاء في نموذج حيوانات الثديية. على الرغم من وجود هذه نماذج تثبيت الخارجي الفعل12،13،،من1415، ونأمل أن توفر أسلوباً أكثر موثوقية لنقابات العمال في الحيوانات غير المعالجة، وانخفاض التكاليف من خلال اختيار مواد التبعي بأسعار معقولة، ومخطط بروتوكول جراحية واضحة للتطبيق السهل للدراسات المستقبلية. والهدف الأساسي من هذا البروتوكول إنشاء نموذج يمكن الاعتماد عليها واستنساخه لعيب جدلي حاسم في الفئران. وجرى تقييم الإجراء بتقييم الاستقرار والعظام شفاء في قصبة الفئران أكثر من 12 أسبوعا. الأهداف الثانوية التي شملت: صنع نموذج أسعار معقولة كتكلفة فعالة قدر الإمكان، تبسيط النهج الجراحية وتحقيق الاستقرار، وضمان الأخلاقية رعاية الحيوانات. فريق البحوث والمؤلفين أجروا تجارب أولية مع مجموعة من المواد الحيوية المختلفة والعلاجات التجدد المحتملة لتحسين الشفاء في هذا العيب المجزأ.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
على الفئران المستخدمة في هذه الدراسة وتلقى الرعاية اليومية وفقا "المبادئ التوجيهية وبرايتون" "القتل الرحيم للحيوانات": 2013 الطبعة16. رعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة في جامعة ويسكونسن-ماديسون تقييمها والموافقة عليها هذا البروتوكول التجريبي قبل بدء المشروع.
1-الحيوانات
- استخدام سبراغ داولي أووتبريد الفئران الذكور وزنها حوالي 350 غ.
2-الإعداد لعظم Morphogenetic البروتين-2 (رهبمب-2) غارقة السقالات الأسفنج
ملاحظة: إعداد سقالة يجب أن تحدث قبل غرس في عظم الفخذ (راجع الخطوة 6.14).
- اتبع إرشادات الشركة المصنعة للاستخدام مجموعة من الأدوات الاختلاس ثابتة رهبمب-2 العظام التي تحتوي على الكولاجين الأسفنج والمجففة بالتبريد رهبمب-2، والمياه المعقمة لإعادة تشكيل17. الحفاظ على العقم، إعادة تشكيل رهبمب-2 مع الماء المعقم لتركيز 1.5 ملغ/مل.
- باستخدام مقص معقم ومسطرة عقيمة، قطع الأسفنج رهبمب-2 غارقة الكولاجين لإعادة تشكيل لتناسب 5 مم × 3 مم × 3 مم عيب.
- استخدام المحاقن، توزيع الحل رهبمب-2 بالتساوي على الأسفنج الكولاجين حيث أنه يتم امتصاصه.
3-إعداد جهاز تثبيت خارجي مخصص
ملاحظة: انظر الشكل 1A لقائمة أكثر اكتمالا من الأبعاد.
- قطع الألومنيوم ورقة الأسهم (6061، نوع 0.088 "سمك) إلى اثنين قطعة (1.4" x 6 ") باستخدام بانوراما أو أداة أخرى مناسبة.
- جبل قطعة واحدة في آلة الطحن، واستخدام مطحنة مثقاب كربيد 90°-نقطة 1/8 "، قطع أربعة' الخامس 'الأخاديد (0.035" العميق) الطول. ترك قطعة أخرى مجاناً من التخفيضات.
- قص ألواح فردية من 0.3 "العرض من الاثنين قطعة (الشكل 1B). قياس، وحفر ثقوب المسمار للموضوع 4-40. اضغط على لوحة مع الأخاديد 'الخامس' مع الصفحات 4-40. حفر اللوحة دون الأخاديد لحفر هيئة المسمار #4.
- الرمال كل قطعة مستديرة الزوايا وتقليل الوزن (الشكل 1).
- برغي القطع إلى جانب 4-40 و 18-8 الفولاذ المقاوم للصدأ زر الرأس كاب مسامير (0.25 ") حيث تكون الأخاديد دافق ضد لوحة عادي (الشكل 1)
4-الإجراء التخدير والتسكين
- حمل التخدير عن طريق وضع الفئران في الغرفة التعريفي تقديم ل 4 س2دور/دقيقة مع إيسوفلوراني 4%.
تنبيه: يجب تجنب استنشاق غاز مخدر موظفي البحوث والحفاظ على غطاء مناسب والتهوية في المختبر. - إزالة الفئران من الدائرة بعد أن يفقد الفئران منعكس الاستقامة وإرفاق مخروط الآنف ووضع جرعة الصيانة للتخدير عن طريق الآنف (معدل الإنجاز2 س إلى إيسوفلوراني 2-3 لتر في الدقيقة ونسبة 0.8%).
- وضع الفئران في لوحة تدفئة أو تحت ضوء الاحترار لمنع انخفاض حرارة الجسم.
- تأكيد عمق كاف للتخدير معسر إصبع القدم أو اختبار العاكسة بالبيبرال.
- تطبيق تزييت العيون لمنع جفاف القرنية.
- تسليم حقن تحت الجلد للإفراج عن تمديد البوبرينورفين (1 مغ/كغ) على الجذع/دورسوم الفئران، بعيدة عن موقع الجراحة، لتوفير التسكين لمدة 3 أيام بعد الجراحة.
5-إعداد العقيم والمضادات الحيوية بريفينتاتيفيس
- حلق المنطقة المحيطة هيندليج باستخدام خط الوسط البطني وخط الوسط الظهرية، الضلعال 13 والقدم كهوامش.
- منطقة فرك حلق باستخدام شاش 2 × 2 العقيمة غارقة مع 10% بوفيدون تليها 70% EtOH (4 مرات كل منها بالتناوب).
- إدارة حقن العضلي من سيفازولين (20 مغ/كغ) في الفخذ من المنطوق.
- إدارة انروفلوكساسين (0.25 مغ/مل) في مياه الشرب لمدة 7 أيام بعد لمواصلة حماية المضادات الحيوية.
- وضع الفئران في تغذية العلاج (مثلاً، Uniprim) طوال مدة الدراسة لمنع التهابات الجهاز السري.
- تطبيق مرهم مضاد حيوي مزدوج الواجهة دبوس الجلد مرة واحدة يوميا لمدة 3 أيام بعد.
ملاحظة: تجنب أي دبوس التثبيت الخارجية أو المشبك التيسير التي يمكن أن تسهم في تطوير العدوى.
6-الجراحة
ملاحظة: جعل تضافر الجهود المبذولة للحفاظ على حقل العقيمة ومساحة العمل واتباع أسلوب تعقيم في جميع أرجاء القضية بأكملها.
- تمديد الساق حلق عن طريق ثني fenestrated، لزجة واضحة وتغطية مقاعد البدلاء الجراحية في المناشف المعقمة لإنشاء حقل عقيمة.
- جس عظم الفخذ واستخدام شفرة #15 لإنشاء شق أنتيرولاتيرال عن طريق الجلد تمتد من الرضفة إلى trochanter أكبر في عظم الفخذ الدانية.
- بعناية جداً لفافة الساق الجانبية على طول الغشاء إينتيرموسكولار لفصل vastus lateralis عضلة الفخذ الأسفل من أوتار الركبة جيدة حتى يتم كشف عظم الفخذ الجانبية. الحفاظ على الإدراج وتر الوي المختطف في تروتشانتير أكبر.
- القيام تشريح أنسجة لينة كفافى أتروماتيك دقيق، وفضح عظم الفخذ في diaphysis منتصف به ابتداء على السطح الأفقي. للقيام بذلك، استخدم شفرة #15 بلطف قطع العضلات بعيداً عن العظم الكامنة عن طريق الحفاظ الشفرة موازية ضد كفاف سطح العظام. استخدام مصعد periosteal لرفع العضلات بعيداً عن العظام مكشوفة كما أنه يتم تشريح والمضي قدما حول رمح فخذي حتى تم مسح 7-10 ملم من وسط ديافيسيس الأنسجة اللينة على كل الأطراف لإعداد أوستيكتومي.
ملاحظة: تجنب الإصابة إلى حزمة neurovascular فخذي الآنسي. - إدراج أربعة أسلاك كيرشنر (ك) 1.0 مم: 2 الدانية و 2 القاصي في عظم الفخذ عمودي لعظم الفخذ الجانبية، توجه الجانبي على التوالي إلى الآنسي. ضمان إشراك جميع المسامير كلا كورتيسيس (بيكورتيكال) لقدر كاف من الاستقرار (الشكل 2A).
- بدء تشغيل مع دبوس القاصي معظم أولاً، فقط على مستوى ابيكونديلي الأفقي. مسح لعظم الفخذ الجانبية البعيدة الرقصة المكان وإدراج سلك ك تلميح خيوط 1.0.
- تحديد الحفاظ على موقف الرقصة على العظام، حيث ستدخل دبوس الأكثر الدانية العظم استناداً إلى الثقوب الرقصة. حالما يتم تحديد الموقف، بعناية جداً موازية للألياف لوتر الوي حسب الحاجة إلى خلق فجوة صغيرة في الأنسجة لطرف الدانية ليمر، وبالتالي التقليل إلى أدنى حد الأضرار الوتر علاجية المنشأ. حفر 1.0 مم غير مترابطة كسلك في هذه الفجوة، مرة أخرى ضمان الدبوس يشرك كلا كورتيسيس (الشكل 2).
- الحفاظ على موقف الرقصة على اتصال العظام وحفر 1.0 مم الخيوط كسلكين، واحدة على أي من جانبي الموقع عيب مستقبلا. ضمان إشراك دبابيس كلا كورتيسيس (الشكل 2).
- ضع التبعي الخارجية بار مستوى 1 سم فوق الجلد والمسمار محكم، تأمين الشريط في المكان. مقطع أطوال دبوس الزائد (الشكل 2D).
- إعداد أوستيكتومي (عيب إنشاء) عن طريق وضع ضام صغيرة، منحنى حول عظم الفخذ الأمامي والخلفي لحماية الأنسجة اللينة المحيطة بها، والعضلات، وحزمة نيوروفاسكولار. استخدام تتأرجح السهمي ~ 5 مم شهد بليد، وخلق بحذر شديد عيب القطاعي 5 مم من خلال diaphysis منتصف. تطبيق خفيف الضغط حتى مع شاهد لتجنب الكسر لا لزوم لها (الشكل 2E).
- تطبيق مبالغ صغيرة للري (درجة حرارة الغرفة 0.9% العقيمة العادية المالحة (NS)) حسب الحاجة أثناء إنشاء عيب لتجنب الحرارية ونخر العظام.
- مسح الجرح باستخدام 10 مل NS بعد إنشاء هذا العيب.
- إدارة 0.1 مل من بوبيفاكيني 0.25% مع أدرينالين (1: 200، 000) للجرح كمسكن ومضيق للأوعية.
- إدراج السقالة (5 ملم × 3 مم × 3 ملم) من الأسفنج الكولاجين أو رهبمب-2 غارقة الأسفنج (من الخطوة 2) في العيب. ينبغي أن الحجم كل سقالة مناسب تمتد بطول وحجم العيب، مساعدة الأسفنج البقاء في الموقف.
ملاحظة: عند هذه النقطة، مرناً المجمعات قد تكون على استعداد وحقن كما هو موضح في الخطوات أدناه 7.1-7.3 إذا تقوم بتصوير الإضاءة الحيوية. - إغلاق الطائرة العضلات باستخدام نمط توقف بسيطة مع خياطة الامتصاص 4-0. إغلاق طبقة الجلد باستخدام نمط سوبكوتيكولار قيد تشغيل مع خياطة الامتصاص 4-0 والجلد الغراء سد الفجوات حول دبابيس بارزة.
- إزالة الفئران من مخروط الآنف، تبقى على منصة التدفئة، وترصد باستمرار حتى الفئران قادرة على الحفاظ على الدوام موقفا منتصبة. في هذه المرحلة، وضع في قفص نظيف لاسترداد.
7-إعداد مرناً الرصاصية والتصوير بالإضاءة الحيوية
ملاحظة: ينبغي إجراء تعداء مع مجمعات مرناً أثناء جراحة يوم واحد قبل تصوير التﻷلؤ. استخدام تقنيات عقيمة عند التعامل مع مرناً.
- ميكس 10 ميليلتر من ترميز مرناً جوسايا لوسيفراس (تركيز المخزون من 1 ميكروغرام/ميليلتر) مع 30 ميليلتر من عامل ترانسفيكتينج ليبيديك.
- السماح للمجمعات الدهنية مرناً بشكل بحضانة لمدة 5 دقائق على الأقل في درجة حرارة الغرفة. عامل ترانسفيكتينج ليبيديك سوف تتكثف جزيئات مرناً، استقرار لهم وتعزيز كفاءة تعداء.
ملاحظة: إذا لم يتم استخدام المجمعات فورا، تخزينها في الجليد لأقصى قدر ح 1. - استخدام 20 ميليلتر ماصة مجهزة بالنصائح التي تمت تصفيتها، حقن نصف حجم المجمعات مرناً للغايات البعيدة والقريبة من العيب، على التوالي.
- في اليوم التالي، 3 دقيقة قبل التصوير، تخدير الفئران باستخدام إيسوفلوراني المستنشق كما هو موضح سابقا في "الخطوة 4-1".
- ضع الفئران في في فيفو التصوير غرفة مجهزة بمخروط الآنف إيصال isoflurane الصيانة (isoflurane 0.8 في المائة، ومعدل الإنجاز2 س من 2-3 لتر في الدقيقة).
- حقن كويلينتيرازيني حراكه في المحلول الملحي بجرعة 4 مغ/كغ من وزن الجسم بالقرب من العيب.
- الحصول على الصور الإضاءة الحيوية مع في فيفو نظام (إيفيس) وفقا لتعليمات الشركة المصنعة18التصوير.
8-تصوير البروتوكول
- وبعد معايرة آلة التصوير الإشعاعي العادي، نظام الأشعة سينية19، تخدير الفئران باستخدام إيسوفلوراني المستنشق كما هو موضح سابقا (انظر الخطوة 4.1) ووضع الفئران في مخروط الآنف باستنشاق إيسوفلوراني (0.8% إيسوفلوراني، س2 معدل الإنجاز من 2-3 لتر في الدقيقة) للأشعة عظم الفخذ الصورة (AP).
- بينما الفئران في ريكومبينسي القصية، مقدما اللكتات الجراحية إلى الأمام، الثناء في الورك وخنق المشتركة. فليكس خنق المشترك إلى ما يقرب من 90°. الشريط الجانب أخمص القدم مخلب أسفل، قريبة من جدار الجسم. ضع الساق إلى الأمام من عظم الفخذ للقضاء على إمكانية فرض العظام. لتقدم طفيف اختطاف الورك، بوضع اسفنجة شفاف (حوالي 15 مم) في منطقة الفخذ. ثم الحصول على صورة (الجمجمة والذيلية) الأمامي الخلفي لعظم الفخذ.
- كرر هذا AP رأي الشعاعي عظم الفخذ مباشرة بعد الجراحة، 4 أسابيع و 12 أسبوعا. استخدم الشريط وشاش لموقف مناسب أقصى الحيوان للجودة وتصوير متسقة.
- إزالة الفئران من مخروط الآنف وترصد باستمرار حتى الفئران قادرة على الحفاظ على الدوام موقفا منتصبة. ثم، ضع مرة أخرى إلى القفص.
9-النسيجي الداخلي
- Euthanize الفئران في دائرة مع استنشاق أول أكسيد الكربون2 وفقا للمعايير الأخلاقية وبرايتون16.
- في أعقاب القتل الرحيم، يحلق في اللكتات وإزالة الجلد من أقصى المنطوق ديسارتيكولاتي عظم الفخذ في الورك. بعناية إزالة جميع الأنسجة اللينة من عظم الفخذ المنطوق (بما في ذلك جميع العضلات والاوتار والأربطة). تترك سوى طبقة رقيقة من العضلات المحيطة بالموقع عيب لحماية منطقة الشفاء من أضرار غير مقصودة أثناء التشريح.
- ضع عظم الفخذ في 10% "محايدة مخزنة الفورمالين" في درجة حرارة الغرفة لمدة 3-4 أيام للسماح بالتثبيت. الحفاظ فورمالين 15:1 إلى نسبة حجم الأنسجة. تغيير الحل مرة واحدة في منتصف الطريق من خلال عملية التثبيت.
- ديكالسيفي عظم الفخذ في حل الرقم الهيدروجيني 6.5 (يدتا) حمض 15% الإيثيلين لمدة 3-4 أسابيع. جمع الصور الشعاعية المسلسل لتحديد نقطة النهاية ديكالسيفيكيشن.
- تقسم عظم الفخذ طوليا مع قطع من عرفت الخلفي في الطائرة منتصف السهمي. يقدم الأنسجة للتضمين القياسية البارافين والهيماتوكسيلين ويوزين (H & E) تلطيخ.
- إرسال شرائح ح & ه لأخصائي للتقييم النسيجي.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
تم إجراء عملية جراحية في ساعة واحدة تقريبا بجراح واحد مع مساعدة مساعد واحد. بعد التحسين الجراحية، داخلها، ومضاعفات ما بعد الجراحة تم التقليل إلى حد كبير واستخدام جهاز الرقصة ضمان حجم ثابت (5 × 3 × 3 مم) والتعريب من عيوب فخذي. الفئران الإسعافية الانتعاش التالية مباشرة من التخدير ولا يبدو أن يكون أي تغيير الأنماط السلوكية؛ مشيه ما لم يكن أنتالجيك، وأنهم لا يبدو أن انزعاج التبعي الخارجية.
أسلاك ك عدم ترابط اختيرت لدبوس الدانية أكثر...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
نماذج حيوانية صغيرة من إصابات العظام مثل الكسور العظمية كاملة تمكين البحث أن يستكشف آليات تكون العظم، وتقييم إمكانيات العلاجية الحيوية20. تطرح هذه الدراسة الفئران نموذج عيب المجزأ استقرت بالتبعي خارجية مخصصة بسهولة يمكنك استخراج فريق المختبر والهندسة الطبية لإجراء مزيد من الدراسات لإصلاح العظام أوستيوسينثيتيك الحاملة.
الدراسات السابقة استخدام العيوب الحجم الحرج في نماذج الفئران عادة تعتمد على التثبيت الداخلية لوحات21،...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
الكتاب يعلن لا تضارب مصالح مالية أو منافع. وهناك فوائد لا تلقاها المؤلف من هذه المادة مباشرة أو غير مباشرة.
شكر وتقدير
وأيد هذا العمل "منحة معدات المعاهد الوطنية للصحة" 1S10OD023676-01 مع الدعم الإضافي المقدم من خلال جامعة ويسكونسن في الإدارات لجراحة العظام وإعادة التأهيل ومدرسة الطب والصحة العامة. نود أن نعترف كاربوني مركز السرطان دعم المنح P30 CA014520 UW واستخدام "مرفق التصوير الحيوانات الصغيرة"، فضلا عن "منحة التدريب في المعاهد الوطنية للصحة" 5T35OD011078-08 للدعم من مارتن H.. ونشكر أيضا مايكل وماري سو شانون لدعمهم "الشراكة التجدد العضلي الهيكلي".
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 0.9٪ محلول ملحي معقم | باكستر | 2F7124 | يستخدم لري الجرح وإعادة الترطيب |
| 10٪ 1215016 اليود / بوفيدون | Carefusion | يستخدم لتحضير الجلد | |
| 10٪ فورمالين | VWR | مخزن 89370094 | يستخدم كمثبت |
| 1 مم سلك كيرشنر غير مترابط | DePuy Synthes | VW1003.15 | معقم ، يستخدم لأكثر الدبوس |
| القريب1 مم سلك kirschner الخيوط | DePuy Synthes | VW1005.15 | معقم ، يستخدم في 3 فتحات دبوس بعيدة |
| 2 × 2 شاش | Covidien | 4006130 | معقم ، يستخدم لتحضير الجلد وامتصاص الدم |
| 4-0 Vicryl Suture | Ethicon 4015304 | يستخدم لإغلاق طبقات العضلات والجلد | |
| 4-40 × 0.25 بوصة ، 18-8 مسامير غطاء رأس زر من الفولاذ المقاوم | للصدأ مثبت | خارجي عام التجميع | |
| 4200 سائق لاسلكي | سترايكر | OR-S-4200 | يستخدم لحفر أسلاك كيرشنر |
| 4 × 4 | كوفيدين | 1219158 | معقم ، يستخدم لامتصاص الدم |
| 70٪ إيثانول | يستخدم لتحضير الجلد | ||
| Baytril | Bayer Healthcare LLC ، قسم صحة | 312.10010.3 | يضاف إلى الماء كمضاد حيوي |
| سيفازولين | حكمة المستحضرات الصيدلانية | 8917156 | المضاد الحيوي قبل |
| العملية CleanCap Gaussia Luciferase mRNA (5moU) | TriLink Biotechnologies | L-7205 | ترميز mRNA المعدل ل Gaussia Luciferase ، حافظ على الجليد أثناء الاستخدام |
| Coelenterazine الأصلي | NanoLight Technology | 303 | Substrate ل Guassia Luciferase ، تستخدم لتقييم نشاط لوسيفيراز في الجسم |
| الحي مرهم مضاد حيوي مزدوج | جونسون آند ؛ جونسون للمستهلكين | 8975432 | يتم تطبيقه على مواقع الدبوس بعد العملية كعناية بالجروح |
| Dual Cut Microblade | Stryker | 5400-003-410 | يستخدم لإنشاء عيب 5 مم في عظم الفخذ |
| حمض الإيثيلين ديامين رباعي الأسيتيك (EDTA) | فيشر | BP120-500 | يستخدم لإزالة الكلس من العظام للتحضير لعلم الأنسجة |
| بوبرينورفين ZooPharm | الممتد المفعول يستخدم كتخفيف للألم لمدة 3 أيام | ||
| ستائر | 3M | 1204025 | تستخدم لإنشاء |
| سلك قبضة حقل معقم ل TPS | Stryker | OR-S-5100-4N | تستخدم لإنشاء عيب 5 مم في وسادة تسخين عظم الفخذ |
| K & H Pet Products | 121239 | صيانة درجة حرارة الجسم الفئران | |
| مفك براغي سداسي | الرأس Wiha | 263/1/16 " X 50 | مثبت خارجي تشديد |
| غرفة الحث التخدير | العام | للفئران | |
| غرس إسفنجة الكولاجين مع بروتين مورفوجينيك البشري المؤتلف | Medtronic | 7510200 | العلاج ذي الصلة سريريا يستخدم كتحكم إيجابي |
| Isoflurane | Clipper | 10250 | التخدير للفئران |
| IVIS | Perkin Elmer | 124262 | طريقة التصوير التلألؤ الحيوي |
| Jig | مخصص | يستخدم لوضع دبابيس ثنائية | |
| Lipofectamine MessengerMAX | Fisher Scientific | LMRNA003 | عامل تعقيد mRNA الذي يمكن من توصيل mRNA |
| Sensorcaine-MPF (Bupivicane (0.25٪) و Epinephrine (1: 200،000)) | APP Pharmaceuticals، LLC | NDC 63323-468-37 | تطبق على الموقع الجراحي لتخفيف الآلام وتضيق |
| الأوعية المياه المعقمة | Hospira | 8904653 | تستخدم كمذيب لمسحوق السيفازولين |
| لوحات التثبيت الخارجية من التيتانيوم | معدة حسب الطلب | في المنزل مع خردة التيتانيوم وآلة الطحن | |
| الكلي (TPS) وحدة التحكم | Stryker | OR-S-5100-1 | تستخدم لإنشاء عيب 5 مم في عظم الفخذ |
| TPS MicroSaggital Saw | Stryker | OR-S-5100-34 | تستخدم لإنشاء عيب 5 مم في عظم الفخذ |
| Ultrafocus Faxitron مع DXA | Faxitron | طريقة التصوير الشعاعي عالية الدقة | |
| Uniprim النظام الغذائي للفئران | Envigo | TD.06596 | النظام الغذائي للفئران |
| مفتاح يدوي عالمي ل TPS | Stryker | OR-S-5100-9 | يستخدم لإنشاء 5 مم عيب في لاصق أنسجة عظم الفخذ |
| Vetbond | 3M | 1469 | إغلاق الجلد |
المراجع
- Filipowska, J., Tomaszewski, K. A., Niedźwiedzki, Ł, Walocha, J. A., Niedźwiedzki, T. The role of vasculature in bone development, regeneration and proper systemic functioning. Angiogenesis. 20 (3), 291-302 (2017).
- Charalambous, C. P., Akimau, P., Wilkes, R. A. Hybrid monolateral-ring fixator for bone transport in post-traumatic femoral segmental defect: A technical note. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 129 (2), 225-226 (2009).
- Xing, J., et al. Establishment of a bilateral femoral large segmental bone defect mouse model potentially applicable to basic research in bone tissue engineering. The Journal of Surgical Research. 192 (2), 454-463 (2014).
- Chadayammuri, V., Hake, M., Mauffrey, C. Innovative strategies for the management of long bone infection: A review of the Masquelet technique. Patient Safety in Surgery. 9 (32), (2015).
- Koettstorfer, J., Hofbauer, M., Wozasek, G. E. Successful limb salvage using the two-staged technique with internal fixation after osteodistraction in an effort to treat large segmental bone defects in the lower extremity. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 132 (19), 1399-1405 (2012).
- Fragomen, A. T., Rozbruch, S. R. The mechanics of external fixation. The Musculoskeletal Journal of Hospital for Special Surgery. 3 (1), 13-29 (2007).
- O’Toole, R. V., et al. A prospective randomized trial to assess fixation strategies for severe open tibia fractures: Modern ring external fixators versus internal fixation (FIXIT Study). Journal of Orthopaedic Trauma. 31, S10-S17 (2017).
- Fürmetz, J., et al. Bone transport for limb reconstruction following severe tibial fractures. Orthopedic Reviews. 8 (1), 6384(2016).
- Dohin, B., Kohler, R. Masquelet’s procedure and bone morphogenetic protein in congenital pseudarthrosis of the tibia in children: A case series and meta-analysis. Journal of Children's Orthopaedics. 6 (4), 297-306 (2012).
- Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11, 45-54 (2015).
- Pascher, A., et al. Gene delivery to cartilage defects using coagulated bone marrow aspirate. Gene Therapy. 11 (2), 133-141 (2004).
- Glatt, V., Matthys, R. Adjustable stiffness, external fixator for the rat femur osteotomy and segmental bone defect models. Journal of Visualized Experiments. (92), (2014).
- Betz, O. B., et al. Direct percutaneous gene delivery to enhance healing of segmental bone defects. The Journal of Bone and Joint Surgery. 88 (2), 355-365 (2006).
- Fang, J., et al. Stimulation of new bone formation by direct transfer of osteogenic plasmid genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (12), 5753-5758 (1996).
- Kaspar, K., Schell, H., Toben, D., Matziolis, G., Bail, H. J. An easily reproducible and biomechanically standardized model to investigate bone healing in rats, using external fixation. Biomedizinische Technik. 52 (6), Berlin. 383-390 (2007).
- Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2013 edition. American Veterinary Medical Association. , (2013).
- McKay, W. F., Peckham, S. M., Badura, J. M. A comprehensive clinical review of recombinant human bone morphogenetic protein-2 (INFUSE Bone Graft). International Orthopaedics. 31 (6), 729-734 (2007).
- Living lmage Software. , Perkin Elmer. (2006).
- Bassett, J. H. D., Van Der Spek, A., Gogakos, A., Williams, G. R. Quantitative X-ray imaging of rodent bone by faxitron. Methods in Molecular Biology. , 499-506 (2012).
- Histing, T., et al. Small animal bone healing models: Standards, tips, and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
- Lieberman, J. R., et al. The effect of regional gene therapy with bone morphogenetic protein-2-producing bone-marrow cells on the repair of segmental femoral defects in rats. The Journal of Bone and Joint Surgery. 81 (7), 905-917 (1999).
- Tsuchida, H., Hashimoto, J., Crawford, E., Manske, P., Lou, J. Engineered allogeneic mesenchymal stem cells repair femoral segmental defect in rats. Journal of Orthopaedic Research. 21 (1), 44-53 (2003).
- Jiang, H., et al. Novel standardized massive bone defect model in rats employing an internal eight-hole stainless steel plate for bone tissue engineering. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (4), 2162-2171 (2018).
- Baltzer, A. W., et al. Genetic enhancement of fracture repair: Healing of an experimental segmental defect by adenoviral transfer of the BMP-2 gene. Gene Therapy. 7 (9), 734-739 (2000).
- Li, Y., et al. Bone defect animal models for testing efficacy of bone substitute biomaterials. Journal of Orthopaedic Translation. 3 (3), 95-104 (2015).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
