$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
جمع وتحليل عينات السائل المنوي البشري في البروتوكولات يتبع المبادئ التوجيهية "اللجنة الأخلاقيات البحثية المنطقة عاصمة" الدانمرك. وحصلت جميع عينات السائل المنوي بعد الموافقة المستنيرة من المانحين المتطوعين. وبعد التسليم، العينات كانت تماما تصبح مجهولة المصدر. للإزعاج تلقي كل جهة مانحة رسماً قدرة 500 كرونة دانمركية (حوالي دولار 75 دولار أمريكي) كل عينة. حللت في اليوم لتسليم العينات وثم دمرت فورا بعد التجارب المعملية.
ملاحظة: سرعة النقل المتوسطة Ca2 +-إشارات المقايسة يرد في الخطوات 4-5 والمقايسة رد فعل acrosome الإنتاجية المتوسطة في الخطوات من 6-7. بروتوكول إعداد متوسطة السوائل البشرية البوقي (HTF+) هو هو موضح في الخطوة 1 وهو وصف تنقية خلايا الحيوانات المنوية لفحوصات في الخطوات من 2-3.
1-إعداد متوسطة السوائل البشرية البوقي (HTF+)
ملاحظة: استخدام قوارير الحجمي أحجام مناسبة، 1 ل قياس اسطوانة، محرض مغناطيسية، وأملاح كما هو موضح في الجدول 1 و الجدول 2، تنقية المياه، 0.2 ميكرون المسام والتصفية وأنابيب بلاستيكية 50 مل.
-
إعداد حلول الأسهم من الأملاح في المياه المنقاة (الجدول 1).
- إضافة كمية الملح المدرجة في الجدول 1 إلى دورق حجمي من الحجم المناسب وإضافة المياه المنقاة إلى قليلاً أدناه وحدة التخزين المطلوبة وكذلك استخدام محرض مغناطيسي مزيج.
- عندما يذوب الملح تماما، إزالة المغناطيس وملء مع الماء المنقي للحجم النهائي المطلوب.
- نقل الأسهم الحل باستخدام زجاجة وتخزين حتى الاستخدام.
ملاحظة: يمكن الاحتفاظ بالمخزون الحلول واستخدامها لفترات أطول من الوقت: السكر وهيبيس في-20 درجة مئوية والحلول الأسهم الأخرى في درجة حرارة الغرفة (RT).
-
تحضير 1 لتر متوسطة HTF+ من حلول الأسهم (الجدول 2).
- التأكد من أن جميع الحلول الأسهم حلت تماما وتمتزج جيدا قبل الاستخدام.
- إضافة كمية الأسهم الحل والملح المدرجة في الجدول 2 إلى ل 1 قياس الاسطوانة وإضافة المياه المنقاة إلى 900 مل.
- المزيج جيدا باستخدام محرض مغناطيسية وضبط الأس الهيدروجيني إلى 7.35 بمحلول هيدروكسيد الصوديوم.
- إزالة المغناطيس وإضافة الماء المنقي لمل 1,000.
- فيلتراتي العقيمة HTF+ المتوسطة عن طريق 0.2 ميكرومتر المسامية التصفية، والمتوسطة HTF+ الكوة إلى 50 مل أنابيب بلاستيكية، ومخزن في 4 درجات مئوية حتى الاستخدام.
- قبل تشغيل تجربة، إضافة 165 ميليلتر من بيروفات نا إلى قاسمة 50 مل للحصول على تركيز Na بيروفات نهائي من 0.33 ملم.
ملاحظة: يمكن أيضا الحصول على البشرية المتوسطة السوائل البوقي من مختلف مقدمي الخدمات التجارية. عند استخدام متوسط3– HCO 4 مم، يمكن المحتضنة عينات مع أغطية مغلقة في حاضنة دون إضافي CO2 في الهواء دون الانجرافات كبيرة في درجة الحموضة. إذا كان متوفراً حاضنة2 CO، يمكن حساب المبلغ المقابل لشركة2 استخدام معادلة هندرسون--هاسيلبالشر واستخدامها. إذا كان استخدام المتوسط 25 مم HCO3– ، ينبغي المحتضنة عينات مع أغطية مفتوحة في حاضنة2 CO مع الهواء الذي يحتوي على مبلغ مماثل من أول أكسيد الكربون2 (يعتمد على الضغط الجوي، وعادة ما بين 5-10%) لتجنب من انجراف في الأس الهيدروجيني. ويمكن حساب المبلغ المحدد من CO2 استخدام معادلة هندرسون--هاسيلبالشر.
2-تنقية خلايا الحيوانات المنوية متحركة عبر السباحة إلى أعلى (الشكل 1)
ملاحظة: استخدام حاوية بلاستيكية نظيفة واسعة الفم عينة السائل المنوي، رف لوضع أنابيب بلاستيكية 50 مل في زاوية 45° والمتوسطة HTF+ (الخطوة أعد 1 أو تم الحصول عليها من موفر التجارية)، وأجهزة الطرد المركزي ومصل الدم البشري وحاضنة، وأنابيب بلاستيكية 50 مل الزلال (HSA).
- الحصول على عينة السائل المنوي بشرية المتبرع بها حديثا أنتجت عن طريق الاستمناء وأنزل في حاوية بلاستيكية نظيفة واسعة الفم. فقط استخدام عينات السائل المنوي التي تفي بالمعايير التي حددها دليل مختبر منظمة الصحة العالمية لدراسة ومعالجة السائل المنوي البشري.
- احتضان العينة في 37 درجة مئوية لمدة 15-30 دقيقة تسمح بذلك تسيل.
- الحرارة تصل 50 مل متوسطة HTF+ مع 4 مم HCO3– إلى 37 درجة مئوية.
- تنظيف مكان 50 مل أنابيب بلاستيكية في رف بزاوية 45 درجة (لزيادة المساحة السطحية بين السوائل). استخدام أنبوب 1 كل مل من السائل المنوي الخام.
- إضافة 4 مل الوسط HTF+ مسخن لكل من الأنابيب.
- بدقة "الماصة؛" 1 مل عينة السائل المنوي إلى الجزء السفلي من كل أنبوبة تحتوي على 4 مل HTF مسخن+. تجنب إطلاق فقاعات الهواء.
- إغلاق الأغطية واحتضان هذه الأنابيب عند 37 درجة مئوية ح 1.
- بلطف نضح ونقل قدر من الكسر العلوي (HTF+ مع خلايا الحيوانات المنوية متحركة) قدر الإمكان إلى أنبوب بلاستيك 15 مل جديدة، مع إيلاء اهتمام أن شيئا من الكسر أسفل (السائل المنوي مع الخلايا اسم والميت) يتم تضمين. وبصفة عامة، أنها آمنة لنقل 3.5 مل الكسر أعلى، دون الإخلال بالجزء السفلي. لتجنب الاضطرابات الشفط، قطع الأبعد 1-2 مم من الحافة ماصة بزاوية 45 درجة للحصول على فرصة أكبر.
- ملء الأنبوب البلاستيك 15 مل مع HTF+ لغسل الخلايا والطرد المركزي الأنبوب في 700 x ز لمدة 10 دقائق في الرايت
- نضح بلطف وإزالة المادة طافية وريسوسبيند بيليه خلية الحيوانات المنوية في 2 مل HTF+.
- نقل 20 ميليلتر لتعليق الحيوانات المنوية لاثنين من أنابيب بلاستيكية صغيرة لتقييم تركيز الحيوانات المنوية (راجع الخطوة 3).
- ملء الأنبوب البلاستيك 15 مل مع HTF+ لغسل الخلايا والطرد المركزي الأنبوب في 700 x ز لمدة 10 دقائق في الرايت
-
بلطف نضح وإزالة المادة طافية وريسوسبيند بيليه الخلية المنوية إلى 10 × 106 خلايا/مل (استناداً إلى تركيز خلية المقررة في خطوة 2.11).
- لإجراء تجارب باستخدام الخلايا المنوية الأمم المتحدة كاباسيتاتيد (Ca الروتينية2 +-يشير التحليل)
- ريسوسبيند الخلايا في HTF+ مع 4 مم HCO3–.
- إضافة 30 ميليلتر من ألبومين المصل البشري (HSA) (100 ملغ/مل) كل مل HTF+ للحصول على تركيز نهائي من 3 ملغ/مل.
- إغلاق الأغطية واحتضانها إيه وان ح في 37 درجة مئوية.
- لإجراء تجارب باستخدام مناطقية الخلايا المنوية (acrosome رد فعل الإنزيم)
- ريسوسبيند الخلايا في HTF+ مع 25 مم HCO3–.
- إضافة 30 ميليلتر من يمتلكهما (100 مغ/مل) كل مل HTF+ للحصول على تركيز نهائي من 3 ملغ/مل.
- إرفاق أغطية فضفاضة واحتضان إيه ثري ساعة عند 37 درجة مئوية مع المبلغ المقابل لأول أكسيد الكربون2 (راجع الخطوة 1، عادة ما بين 5-10% CO2).
3-عد خلايا الحيوانات المنوية
ملاحظة: خلايا الحيوانات المنوية يمكن أما أن تحسب يدوياً50 أو استخدام صورة سيتوميتير51، كما هو موضح هنا. تستخدم صورة سيتوميتير، فورتيكسير، S100 المخزن المؤقت، وحزمة الخدمة SP1-كاسيت، السباحة حتى تنقية الخلايا المنوية (إعدادها في الخطوة 2).
- تضعف من 20 ميليلتر الكوة إلى عامل من 10 أو 20 أو 30، 50 أو 90 في المخزن المؤقت S100 باستخدام أنبوب 2 مل قاع جولة وفقا لتركيز المتوقعة (تقييم بواسطة التفتيش اليدوي لبيليه في الخطوة 2، 10). ومن المتوقع استخدام تمييع الأقرب إلى التركيز (أي، إذا كان تركيز 15 × 106 خلايا الحيوانات المنوية كل مل بعد السباحة ومن المتوقع ثم تمييع عينة الحيوانات المنوية 20 ميليلتر مع ميليلتر 380 S100 المخزن المؤقت [عامل إضعاف 20]).
- مزيج جيد ل 10 s باستخدام خلاط دوامة في القصوى 700 دورة في الدقيقة، تزج في حزمة الخدمة SP1 الكاسيت في العينة واضغط المكبس الأبيض كاملا وصولاً إلى أسبيراتي قاسمة للعينة في الكاسيت.
- فتح سيتوميتير الصورة ووضع الكاسيت في الدرج وتشغيل فحص عدد من PI الملون البشرية خلايا الحيوانات المنوية المقايسة وفقا لعامل التخفيف التطبيقية (تم اختيارها في الخطوة 3، 1).
- كرر الخطوة 3، 3، 1-3 مع آخر عينة 20 ميليلتر، استخدام عامل إضعاف أقرب إلى تركيز المقيسة التي تم الحصول عليها من العينة الأولى 20 ميليلتر.
- حساب تركيز يعني الحيوانات المنوية خلية من القياسات اثنين.
- يعني ضرب الحيوانات المنوية تركيز الخلية مع وحدة التخزين الأصلية للحصول على عدد مجموع الحيوانات المنوية خلايا (في الخطوة 2، وهذا الحجم الأصلي 2 مل).
4-قياس التغيرات في كاليفورنيا داخل الخلايا الحرة2 +-تركيز ([Ca2 +]أنا) استخدام Ca2 +-فلوريميتري (الشكل 2)
ملاحظة: استخدام قارئ لوحة الأسفار، لوحات متعددة جيدا 384، فلوو-4 صباحا، السباحة تنقية الخلايا المنوية (استعداد في الخطوة 2)، مركبات ذات الأهمية كعناصر جيدا أنها إيجابية وسلبية وماصة معيدات الإرسال تلقائي وماصة 12-قناة.
- إعداد 2 مم فلوو-4 صباحا المخزون عن طريق إضافة 22.7 ميليلتر من ثنائي ميثيل سلفوكسيد ([دمس]) إلى قنينة من 50 ميكروغرام فلوو-4 صباحا وخلط الأنبوب جيدا.
- إضافة قاسمة من 700 تعليق الحيوانات المنوية المستردة السباحة ميليلتر (مناطقية أو الأمم المتحدة كاباسيتاتيد المبين في الخطوة 2) إلى أنبوب اختبار جديد. 700 ميكروليتر من عينة الحيوانات المنوية هو المبلغ المطلوب لتحليل صف واحد من الآبار 24 في لوحة 384-ميكروويل (المستخدمة لاختبار عناصر التحكم 3 و 9 مركبات في دوبليتس).
- إضافة ميليلتر 3.5 من 4 قطع أنا فلوو-4 صباحا حل الأسهم ميليلتر 700 تعليق الحيوانات المنوية للحصول على تركيز نهائي من 10 ميكرون.
- احتضان العينة لمدة 45 دقيقة في 37 درجة مئوية، ومحمية من الضوء.
- الطرد المركزي عينة في 700 x ز لمدة 10 دقائق، ونضح وتجاهل المادة طافية لإزالة الزائدة فلوو-4.
- ريسوسبيند بيليه الملون في HTF+ إلى 5 × 106 خلايا/مل (أي، استخدام 2 × حجم تعليق خلية في الخطوة 4، 2)
-
إعداد تخفيف من مركبات وعناصر تحكم (يمكن القيام به أثناء فترات حضانة والطرد المركزي في الخطوة 4-4 و 4-5، على التوالي).
- تضعف من المركبات، فضلا عن عنصر تحكم سلبية (المخزن المؤقت بمركبة) وعنصر إيجابي (البروجسترون) في HTF+. تضعف من مركبات وعناصر التحكم إلى 3 × التركيز النهائي المطلوب، كما هي المخفف 1:3 عند إضافتها إلى خلايا الحيوانات المنوية في الخطوة 4، 16.
- ضع الأنابيب مع تخفيف في رف مع مسافة بين أنابيب المقابلة للمسافة بين نصائح ماصة من ماصة 12-القناة المستخدمة في الخطوة 4، 16.
-
استخدام ماصة معيدات الإرسال تلقائي (خطوات 24 من 50 ميليلتر).
- مزيج فلوو-4 عينة الحيوانات المنوية ملطخة بلطف من بيبيتينج كامل المبلغ الأعلى والأسفل مرة واحدة.
- إضافة مختبرين من 50 ميليلتر للآبار 24 صف في لوحة 384-ميكروويل.
- ضع لوحة ميكروويل في قارئ لوحة الأسفار عند 30 درجة مئوية وإغلاق الدرج.
- حدد البروتوكول المناسب لقطع-4. تثير fluorescence في 480 نانومتر وسجل الانبعاثات في 520 نانومتر. استخدام دورة في أسرع وقت ممكن مع الإعداد.
ملاحظة: استخدام الهبات على الأقل 10 الواحد البصريات جيدا والسفلي، إذا كان ذلك ممكناً.
- حدد جيدا في الصف وضبط الربح إلى قيمة هدف بنسبة 20%.
- بدء القياس.
-
مراقبة خط الأساس خلال الدورات الأولى 5.
- إذا هي قراءات الفلورسنت متزايدة أو متناقصة مع مرور الوقت، إيقاف التجربة وإعادة ضبط المكاسب وبدء التجربة مرة أخرى.
- إذا كان خط الأساس يختلف كثيرا بين الآبار الفردية في صف واحد، أما بيبيتينج في الخطوة 4، 8 وقد تم أونبريسيسي أو كان غير مختلطة العينة جيدا بما يكفي من قبل بيبيتينج. تجاهل هذه التجربة.
- إذا قراءات الفلورسنت المقارنة بين الآبار في الصف ومطردا خلال الدورات الأولى 5، الاستمرار في الخطوة التالية.
- بعد 10 دورات (تستخدم لخط الأساس)، إيقاف التجربة.
- إخراج الدرج مع لوحة ميكروويل.
- استخدام 12-قناة ماصة (2 خطوات من 25 ميليلتر)، بسرعة إضافة 25 ميليلتر من الحلول المعدة من مركبات وعناصر التحكم (من الخطوة 4، 7) للتكرارات 12 جيدا (الآبار 24) صف. تكون الحلول المخفف 1:3، الآبار التي تحتوي بالفعل على 50 ميكروليتر من عينة الحيوانات المنوية الملون.
- مواصلة القياس في أسرع وقت ممكن (درج ستغلق تلقائياً) لتجنب فقدان أي إشارات الفلورسنت الناجمة عن المركبات المضافة وعناصر التحكم. التغييرات في الأسفار (ΔF) بعد الآن سوف يتم القبض على إضافة مركبات وعناصر التحكم.
- تشغيل التجربة حتى سجلت إشارات مضيئة من عنصر التحكم الإيجابي والمجمعات السكنية للفائدة.
- إيقاف التجربة وتصدير البيانات الخام الأسفار لتحليل فإنه كما هو الحال في الخطوة 5.
ملاحظة: عموما فلوو-4 صباحا وقد استخدمت ك Ca2 +-فلوروفوري الحساسة في التحليل، ولكن الأخرى Ca2 +-fluorophores حساسة يمكن أن تستخدم أيضا في حالة الإثارة وأطياف الانبعاث تتناسب مع عوامل التصفية في قارئ لوحة الأسفار. اعتماداً على اختيار فلوروفوري، تأكد من أن يتم تعيين مستوى تحقيق مكاسب على مستوى "آمنة" فيها قمم الفلورسنت المستحث في قياس نطاق الصك. يمكن اختبار هذا عن طريق إضافة إيونوميسين إلى بئر واحدة في تحديد مكاسب محددة. إذا كان هذا فعل إشارة مضيئة فوق العتبة، انخفاض الربح وحاول مرة أخرى. استخدام بعض F-127 بلورونيك للمساعدة في تحميل فلوو-41،13، ولكن تبين أن هذا ليس ضروريا2. أقصى حد عدد من الصفوف التي تقاس في نفس الوقت يعتمد على عاملين. 1) وقت دورة الصك: إذا كان وقت دورة طويلة جداً، قد غاب عن قمم المستحث في [Ca2 +]أنا . قياس أقصى قدر صفين في نفس الوقت للحفاظ على الوقت دورة منخفضة؛ 2) سرعة بيبيتينج في الخطوة 4، 16: استخدام ماصة 12-القناة، فمن الممكن لإضافة 12 مختلف الحلول بسرعة لآبار 12 مكرر (الآبار 24) الصفوف 1 أو 2 (مثلاً، صف واحد قبل المحتضنة مع السيارة وصف واحد المحتضنة مسبقاً مع المانع) ، دون Ca2 + قمم المستحث في عداد المفقودين. ومع ذلك، لا ينصح لمحاولة إضافة حلول مختلفة 24 إلى صفين لقياس واحد، سوف يكون بيبيتينج نصائح لتحل محلها ما بين خطوات متسلسلة بيبيتينج اثنين، حيث يمكن أن تضيع المستحث Ca2 + قمم.
5-تحليل البيانات من Ca2 +-فلوريميتري
- فتح البيانات الخام الأسفار التي تم الحصول عليها وتصديرها في الخطوة 4.
- حساب المتوسط من آبار مكررة. في حالة وجود اختلافات كبيرة بين التكرارات، تجاهل البيانات من آبار محددة.
- تحديد خط الأساس كدورات أول 10.
- حساب ΔF/و0 (%) كنسبة مئوية من تغيير في الأسفار (ΔF) مع مرور الوقت بعد إضافة مركبات والضوابط فيما يتعلق بالأسفار القاعدية يعني (و0) خلال الدورات الأولى 10 (الأساس).
- في حالة استخدام البيانات لجيل منحنيات الاستجابة للجرعة، طرح قراءات المراقبة السلبية من آبار أخرى، لإزالة القطع الأثرية بيبيتينج.
6-قياس رد فعل أكروسومي
ملاحظة: استخدام سيتوميتير صورة، وحاضنة، والأصباغ الفلورية: PI بسا فيتك وهويشت-33342، مركبات الفائدة، فضلا عن عناصر إيجابية وسلبية، حلاً إيموبيليزينج الذي يحتوي على 0.6 م NaHCO3 وفورمالدهايد 0.37% (v/v) في الماء المقطر، شريحة A2، ومناطقية السباحة تنقية الخلايا المنوية (إعدادها في الخطوة 2).
- تعد حلاً المصبوغة تتضمن PI (5 ميكروغرام/مل)، فيتك-PSA (50 ميكروغرام/مل) و 33342 هويشت (100 ميكروغرام/مل) في HTF+، خلط جيدا باستخدام خلاط دوامة وحمايته من الضوء حتى الاستخدام.
- إعداد الحلول من مركبات وعناصر التحكم في 10 × التركيز النهائي المطلوب، كما أنها تضعف 01:10 في الخطوة 6، 5. دائماً بتضمين عنصر تحكم سلبية (المركبات) واثنين من عناصر إيجابية: البروجسترون 10 ميكرون التركيز النهائي وإيونوميسين 2 ميكرومتر التركيز النهائي.
- نقل مختبرين من 240 ميليلتر (إعدادها في الخطوة 2) خلايا الحيوانات المنوية القادرة على أنابيب بلاستيكية.
- إضافة 30 ميليلتر لتلطيخ الحل لكل أنبوبة. وسوف يكون التركيز النهائي للبقع: 0.5 ميكروغرام/مل بي و 5 ميكروغرام/مل بسا فيتك 10 ميكروغرام/مل هويشت 33342.
- إضافة 30 ميليلتر من الحلول مع عناصر أو مركبات لكل أنبوبة (01:10 إضعاف).
- خلط العينات بلطف من بيبيتينج صعودا وهبوطاً عدة مرات أو فورتيكسينج خفيف. بسبب الإجهاد الميكانيكي، وتجنب الاختلاط المفرط.
- احتضان في 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
- إعداد جديدة من أنابيب بلاستيكية مع 100 ميليلتر محلول إيموبيليزينج يحتوي على 0.6 م NaHCO3 وفورمالدهايد 0.37% (v/v) في الماء المقطر، واحد لكل أنبوبة الاختبار.
- وبعد الحضانة، تخلط العينات جيدا من قبل بيبيتينج وإضافة 50 ميكروليتر من عينة الاختبار إلى أنبوب مع 100 ميليلتر لشل حركة الحل.
- قبل تحميل الدوائر شريحة A2، خلط العينة جيدا من قبل بيبيتينج. تعبئة الدوائر بعناية مع حوالي 30 ميليلتر دون خلق فقاعات الهواء.
ملاحظة: أثناء الاحتضان، خلايا الحيوانات المنوية متحركة تميل إلى تجميع. كتل الخلايا يمكن أن يعكر القياسات (على الرغم من أنها مستبعدة). ولذلك، خلط دقيق قبل بيبيتينج بعد الحضانة مهم جداً. وبالمثل، يمكن أن يعكر فقاعات الهواء في الغرف القياسات. لذلك، ملء الدائرة ببطء وتغيير زاوية الماصة إذا حواف السائل على وشك مواجهة وإنشاء فقاعة هواء.
- ضع الشريحة محملة على العلبة سيتوميتير الصورة وإغلاق علبة الورق.
-
حدد بروتوكول فليكسيسيتي وتشغيل الصحافة.
- اختر الإعدادات التالية لبروتوكول فليكسيسيتي: عدد القنوات التحليلية: 2؛ إخفاء القناة: الأشعة فوق البنفسجية (LED365)، هذه هي القنوات المستخدمة لتجزئة الصورة؛ القناة 1: الأزرق (LED475)، ووقت التعرض 3,000 مرض التصلب العصبي المتعدد، تصفية الانبعاثات 560/35؛ القناة الثانية: الأخضر (LED530)، وقت التعرض 500 مللي، تصفية الانبعاثات 675/75؛ الحد الأدنى لعدد الخلايا تم تحليلها: 5000؛ استبعاد الخلايا المجمعة: نعم.
- كرر الخطوة 6.9-6.12 حتى تم قياس جميع العينات.
7-تحليل البيانات من الصورة الخلوي
- فتح البيانات التي تم الحصول عليها في الخطوة 6.
-
إنشاء قطعتي التالية لتقييم القياسات.
- إنشاء مؤامرة مبعثر من كثافة هويشت 33342 مقابل منطقة 33342 هويشت على جداول بيكسبونينتيال. يمكن أن تكون هذه الأرض المستخدمة لبوابة 33342 هويشت الكائنات الإيجابية التي أما أن تكون صغيرة جداً أو كبيرة جداً لتكون الخلايا المنوية البشرية.
- إنشاء مؤامرة مبعثر كثافة PSA فيتك وكثافة PI على جداول بيكسبونينتيال. يمكن استخدام هذه الأرض لتقويم رد مبلغ acrosome خلايا الحيوانات المنوية باستخدام بوابة رباعي، التي تفصل بين المجموعات الأربع على الأرض (الشكل 3): 1) مجموعة بي إيجابية وبسا فيتك الإيجابية: ردت Acrosome غلق الخلايا المنوية؛ 2) PI السلبية ومجموعة PSA فيتك الإيجابية: ردت Acrosome الخلايا المنوية قابلة للتطبيق؛ 3) PI إيجابية وبسا فيتك السلبية المجموعة: Acrosome سليمة الخلايا غلق الحيوانات المنوية؛ و 4) سلبية PI وبسا فيتك السلبية المجموعة: Acrosome سليمة قابلة للاستمرار في الخلايا المنوية.