-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
الأشعة السينية الانعراج من العضلات الهيكلية Murine سليمة كأداة لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات

Research Article

الأشعة السينية الانعراج من العضلات الهيكلية Murine سليمة كأداة لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات

DOI: 10.3791/59559

July 18, 2019

Weikang Ma1, Thomas C. Irving1

1BioCAT, Dept. of Biological Sciences,Illinois Institute of Technology

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

نقدم بروتوكولات مفصلة لإجراء تجارب انعراج الأشعة السينية ذات الزاوية الصغيرة باستخدام عضلات العضلات الهيكلية للماوس سليمة. مع توافر نماذج الماوس المعدلة وراثيا على نطاق واسع للأمراض البشرية، يمكن لهذه المنصة التجريبية أن تشكل سرير اختبار مفيد لتوضيح الأساس الهيكلي لأمراض العضلات الوراثية

Abstract

وكانت نماذج الماوس المعدلة وراثيا أدوات هامة لدراسة العلاقة بين النمط الجيني والنمط الظاهري للأمراض البشرية بما في ذلك أمراض العضلات الهيكلية. وقد ثبت أن العضلات الهيكلية للماوس تنتج أنماط انعراج عالية الجودة بالأشعة السينية على خطوط الحزمة المتزامنة من الجيل الثالث مما يوفر فرصة لربط التغييرات على مستوى النمط الجيني بالأنماط الظاهرية الوظيفية في الصحة والمرض عن طريق تحديد العواقب الهيكلية للتغيرات الوراثية. ونقدم بروتوكولات مفصلة لإعداد العينات، وجمع أنماط الأشعة السينية، واستخراج البارامترات الهيكلية ذات الصلة من أنماط الأشعة السينية التي قد تساعد في توجيه التجارب الراغبة في إجراء مثل هذه التجارب لأنفسهم.

Introduction

Synchrotron زاوية صغيرة الأشعة السينية الانعراج هو الأسلوب المفضل لدراسة هيكل نانومتر مقياس من التعاقد بنشاط الاستعدادات العضلات في ظل الظروف الفسيولوجية. الأهم من ذلك، يمكن الحصول على المعلومات الهيكلية من الاستعدادات العضلات الحية أو البشرة في تزامن مع البيانات الفسيولوجية، مثل قوة العضلات والتغيرات طول. كان هناك اهتمام متزايد في تطبيق هذه التقنية لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات الموروثة التي لها أساسها في الطفرات نقطة في البروتينات ساركوميريك. وكان مجتمع الفيزياء الحيوية العضلات نشطة جدا في توليد نماذج الماوس المعدلة وراثيا لهذه الظروف الأمراض البشرية التي يمكن أن توفر أسرة اختبار مثالية للدراسات الهيكلية. وقد أشارت المنشوراتالأخيرة من مجموعتنا 1،2،3 وغيرها4،5 أن أنماط الأشعة السينية من الماوس الموسعة رقمي longus (EDL) وعضلات السولوس يمكن أن توفر جميع معلومات الانعراج المتاحة من الكائنات الحية النموذجية أكثر تقليدية مثل الضفدع والأرنب psoas العضلات الهيكلية. ميزة إعداد العضلات الهيكلية الماوس هو سهولة تشريح وأداء الأغشية الأساسية سليمة، والتجارب الفسيولوجية العضلات كلها. أبعاد العضلات تشريح لديها كتلة كافية لإنتاج أنماط العضلات مفصلة للغاية في أوقات التعرض الأشعة السينية قصيرة جدا (~ مللي ثانية لكل إطار) على الجيل الثالث من شعاع الأشعة السينية.

تتكون أنماط انعراج الأشعة السينية العضلية من الانعكاسات الاستوائية، والانعكاسات الميرية، فضلا ً عن انعكاسات خط الطبقة. نسبة الكثافة الاستوائية (نسبة كثافة انعكاسات 1,1 و1,0 الاستوائية، I 11/I10)،ترتبط ارتباطا وثيقا بعدد الجسور المتقاطعة المرفقة، وهو ما يتناسب مع القوة المتولدة في العضلات الهيكلية للماوس 2.يمكن استخدام الانعكاسات meridional التي تقرير الدورات داخل خيوط سميكة ورقيقة لتقدير خيوط القابلية للتوسعة 1،3،6،7. دعات إنعراج سمات لا على ال [مووند] والاتّلاو الاستواء طبقة خطوط, أيّ ينشأ من ال تقريبا [هلّيكلّي] يؤمر [موسين] رؤوس على السطح من سميكة خيوط عمود فقريّ [أس ولّ س] ال تقريبا [هلّيكلّي] يؤمر خيوط رقيقة. كثافة خطوط طبقة الموسين ترتبط ارتباطا وثيقا بدرجة ترتيب رؤساء myosin في ظل ظروف مختلفة2،8. كل هذه المعلومات يمكن استخدامها دراسة سلوكيات البروتينات الساركوميريك في الموقع في الصحة والمرض.

وقد تم تاريخيا أنعراج الأشعة السينية Synchrotron من العضلات من قبل فرق من الخبراء المتخصصين للغاية ولكن التقدم في التكنولوجيا وتوافر أدوات جديدة للحد من البيانات تشير إلى أن هذا ليس دائما هو الحال. وBioCAT Beamline 18ID في مصدر الفوتون المتقدم، مختبر أرغون الوطني لديها الموظفين وأجهزة الدعم المخصصة لإجراء تجارب الانعراج بالأشعة السينية العضلات التي يمكن أن تساعد الوافدين الجدد إلى الميدان البدء في استخدام هذه التقنيات. يختار العديد من المستخدمين التعاون رسميا مع موظفي BioCAT، ولكن عددا متزايدا من المستخدمين يجدون أنهم يستطيعون القيام بالتجارب وتحليل أنفسهم مما يقلل من العبء على موظفي خط الحزمة. الهدف الرئيسي من هذه الورقة هو توفير التدريب الذي يوفر للتجارب المحتملة مع المعلومات التي يحتاجونها لتخطيط وتنفيذ التجارب على نظام العضلات الهيكلية الماوس إما في خط الحزمة BioCAT أو في غيرها من خطوط الحزم تدفق عالية حول العالم حيث هذه التجارب سيكون من الممكن.

Protocol

تمت الموافقة على جميع بروتوكولات التجارب الحيوانية من قبل معهد إلينوي للتكنولوجيا المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها لجنة (بروتوكول 2015-001، تاريخ الموافقة: 3 نوفمبر 2015) واتبع المعاهد الوطنية للصحة "دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية"9 .

1. التحضير قبل التجربة

  1. إعداد 500 مل من حل رينجر (يحتوي على: 145 مل NaCl، 2.5 مل كيلوكل، 1.0 مليون متر م غسو 4، 1.0 مليون متر CaCl2،10.0 مليون متر HEPES، 11 مليون الجلوكوز، درجة الحموضة 7.4) طازجة لكل يوم من التجربة.
  2. ملء 200 مل من محلول رينجر في زجاجة رذاذ وتخزينها في الثلاجة 4 درجة مئوية. ملء طبق بيتري (10 سم في القطر) مع حل رينجر وperfuse مع الأكسجين 100٪ عن طريق ربط الأنبوب من اسطوانة الأكسجين إلى حجر الهواء حوض السمك. كانت أطباق بيتري ("تشريح الأطباق") مغلفة في السابق بمركب الاستومر للسماح بإدراج دبابيس أثناء التشريح.
  3. إعداد السنانير المعدنية تصاعد. قطع قطعتين من أسلاك الفولاذ المقاوم للصدأ، 0.5 ملم في القطر، إلى الطول المناسب وثني السلك في كلا الطرفين لتشكيل السنانير. ترتيب جميع أدوات تشريح، مقص، خياطة ربط ملقط، مقص صغير مفيد للاستخدام.
    ملاحظة: يجب أن يكون جزء هوك حوالي 3 ملم طويلة. يجب أن يكون السلك الأطول (الذي ينتهي بخطاف) بطول حوالي 5 سم، وينبغي أن يكون السلك الأقصر (الذي ينتهي أيضًا في الخطاف) بطول حوالي 1 سم من أجل احتواء الغرف المخصصة المستخدمة في BioCAT والسماح بمجموعة كافية من الحركة لذراع محول الطاقة.
  4. قم بتوصيل جميع المعدات وتشغيله. ويشمل ذلك محول محرك/قوة مدمج، وجهاز تحكم في محول المحرك/القوة، ومحفزتيار ثنائي الطور عالي الطاقة، ونظام اكتح/تحكم في البيانات يتم التحكم فيه بالحاسوب.
    1. قم بتشغيل نظام الحصول على البيانات ومعايرة قبل بدء التجربة10. باختصار، معايرة القوة عن طريق إضافة مجموعة من الأوزان المعروفة، وتغطي ما يصل إلى 50٪ من القوة القصوى التي تقاس من قبل محول القوة في تطور خطي، على محول القوة وتسجيل التغييرات الجهد الناتج. معايرة طول عن طريق تطبيق مجموعة من الجهد الناتج المعروفة على ذراع رافعة وقياس تغيير طول الذراع.
    2. قم بتوصيل الخراطيم من الكتلة الحرارية على حامل العينة إلى حمام متداول مبرد وقم بتعيين درجة الحرارة للحفاظ على درجة الحرارة المطلوبة في الغرفة إلى ما بين 10 درجة مئوية و40 درجة مئوية. تحديد هذا تجريبيا في وقت مبكر عن طريق وضع الحمام تعميم لمجموعة من درجات الحرارة وقياس درجة الحرارة في الغرفة مع الحرارية.

2. إعداد العضلات

  1. قتل الفأر
    1. قتل الفأر عن طريق استنشاق ثاني أكسيد الكربون متبوعاً بخلع عنق الرحم.
    2. رش الجلد على الطرف الخلفي مع محلول الرينجر الباردة لمنع الشعر من تهب في التحضير. إزالة الجلد عن طريق قطع بعيدا حول الفخذ باستخدام مقص تشريح غرامة وسحب الجلد بسرعة إلى أسفل باستخدام ملقط #5 لفضح العضلات.
    3. قم ببتر الطرف الخلفي ونقله إلى طبق تشريح تم ملئه بحل Ringer المؤكسد، ثم وضعه تحت مجهر تشريح يُحدث منظارًا.
  2. تحضير عضلة نعل
    1. ضع يطرف هُنا في طبق التشريح مع العضلات المعدية المعدية التي تواجه الأعلى. قطع الوتر القاصي لمجموعة العضلات الجهاز الهضمي / السولوس ورفع العضلات بلطف وببطء عن طريق قطع اللفافة على جانبي العضلات الجهاز الهضمي باستخدام مقص غرامة. عزل مجموعة العضلات المعدية/اللولبية من الطرف بعد تحرير الوتر القريب من عضلة النعل.
    2. دبوس مجموعة العضلات التي تحتوي على العضلات المعدية والأوتار البعيدة أسفل في طبق تشريح. رفع العضلات soleus بلطف عن طريق الوتر القريب وفصلها عن العضلات المعدية المعدة ترك أكبر قدر من وتر القاصي soleus سليمة قدر الإمكان.
  3. إعداد عضلة طول التيكونس (EDL)
    1. ضع يطرف هُنا في طبق التشريح مع العضلات الأمامية التي تواجه الأعلى. قطع اللفافة على طول عضلة الساقية الأمامية (TA) وسحبها واضحة باستخدام ملقط. تحديد وقطع الوتر القاصي للعضلة TA. رفع العضلات TA وقطع بها بعناية دون سحب على العضلات EDL.
    2. قطع فتح الجانب الجانبي من الركبة وفضح الأوتار اثنين. قطع الوتر القريب، وترك أكبر قدر ممكن من الوتر لا يزال تعلق على العضلات، ورفع العضلات EDL (العضلات الوسيطة) عن طريق سحب بلطف الوتر. قطع الوتر القاصي بمجرد أن يتعرض.
  4. تركيب العضلات
    1. دبوس أسفل العضلات عن طريق الأوتار، وتقليم جميع الدهون الزائدة، اللفافة والأوتار بعيدا قدر الإمكان. إدراج وتر واحد في عقدة مرتبطة مسبقا وربط خياطة بإحكام مع خياطة ربط ملقط. ربط العقدة الثانية على حول هوك المعدنية.
    2. كرر نفس الإجراء مع هوك طويلة على الطرف الآخر من الوتر. تأكد من أن لا يتم الاتصال بأي من جسم العضلات من قبل الغرز. وهذا سيلحق الضرر بالإعداد.
    3. إرفاق هوك قصيرة إلى الجزء السفلي من الغرفة التجريبية وهوك طويل إلى محول قوة الوضع المزدوج / المحرك. فقاعة الحل في الغرفة التجريبية مع الأكسجين 100٪.
  5. تحسين بروتوكولات التحفيز وطول العضلات
    1. تمتد العضلات عن طريق ضبط micromaniators تعلق على محول / المحرك لتوليد التوتر خط الأساس بين 15 إلى 20 mN قبل العثور على أفضل المعلمات التحفيز. تعيين الجهد التحفيز إلى 40 فولت. يتم زيادة التيار التحفيز بشكل منهجي حتى لا يكون هناك زيادة إضافية في قوة نشل. يتم زيادة أعلى التيار وجدت بحوالي 50٪ لضمان التنشيط فوق القصوى.
    2. العثور على الطول الأمثل، L0، يعرف باسم طول العضلات التي تعطي أقصى قوة نشل، عن طريق زيادة طول العضلات وتفعيل العضلات مع نشل واحد حتى قوة نشطة (قوة الذروة ناقص قوة خط الأساس) يتوقف عن زيادة.
    3. إجراء تقلص الكزاز القصير (1 ق التنشيط) لاختبار تصاعد وتمتد العضلات مرة أخرى إلى قوة خط الأساس الأمثل إذا لزم الأمر. تسجيل طول العضلات في مم مع الفرجار الرقمية.

3. الأشعة السينية الانعراج

ملاحظة: الوصف التالي هو لتجارب الانعراج بالأشعة السينية التي أجريت باستخدام أداة انعراج الأشعة السينية الزاوية الصغيرة على خط الحزمة BioCAT 18ID في مصدر الفوتون المتقدم، مختبر أرغون الوطني ولكن يمكن استخدام أساليب مماثلة على خطوط الحزمة الأخرى مثل ID 02 في ESRF (فرنسا) وBL40XU في SPring8 (اليابان). يتم تشغيل Beamline 18ID في طاقة شعاع الأشعة السينية الثابتة من 12 كيلوفولت (الطول الموجي 0.1033 نانومتر) مع تدفق الحوادث من ~ 1013 فوتونفي الثانية في شعاع كامل.

  1. اختيار عينة لمسافة كاشف (طول الكاميرا). استخدام طول الكاميرا 1.8 م للتجارب فحص 2.7 نانومتر أكتين وارتفاع ترتيب انعكاسات ميوسين مثل 2.8 نانومتر انعكاسات ميريديونال. استخدام كاميرا 4-6 م لتجارب أخرى، حيث يهتم المرء في المقام الأول بالتفاصيل الدقيقة على خطوط الطول والطبقة
  2. تحسين موضع العينة في الحزمة
    1. تحديد موضع الحزمة باستخدام قطعة من الورق الحساس بالأشعة السينية التي تنتج بقعة مظلمة استجابة للأشعة السينية ("حرق"). ثم استخدام مولد الفيديو عبر الشعر لإنشاء الشعر عبر محاذاة مع علامة حرق على الورق أو ببساطة جعل علامة على شاشة الفيديو مع قلم علامة.
    2. استخدم واجهة المستخدم الرسومية التي تم توفيرها من BioCAT إلى موقع العينة لتحريك العضلات ليتم توسيطها على موضع الحزمة. تتأرجح غرفة العينة في ~ 10-20 مم / ث عن طريق تحريك مرحلة العينة من أجل نشر جرعة الأشعة السينية على العضلات أثناء التعرض. مراقبة العينة لأنها تتحرك لتجنب مناطق كبيرة من اللفافة (يحتوي على الكولاجين الذي سوف يلوث أنماط الانعراج) وضمان أن يبقى مضيئة خلال مسار كامل من السفر.
      ملاحظة: والخطوات الدقيقة المطلوبة في الفرعين 3-3 و3-4 لجعل الإعدادات والإجراءات المطلوبة باستخدام واجهة المستخدم الرسومية التي توفرها خطوط الحزمة ستكون محددة في خط الحزمة وكاشف. اسأل موظفي خط الحزمة عن كيفية تنفيذ هذه العمليات.
  3. إعداد كاشف CCD (جهاز المقترنة بالشحن) لأنماط عالية الدقة من العضلات في حالات ثابتة محددة (يستريح، أو أثناء الانكماش متساوي القياس)
    1. قم بإعداد وقت التعرض وفترة التعرض في واجهة المستخدم الرسومية إلى برنامج التحكم. التقاط صورة خلفية داكنة قبل اتخاذ التعرض وتكرار هذا الإجراء كل 2 ساعة أو بعد تغيير وقت التعرض لتصحيح أي الانجراف في أجهزة الكشف عن الالكترونيات القراءة.
    2. تخفيف شعاع الأشعة السينية إلى القيمة المطلوبة للتعرض. ثم التقاط صورة. ليس من الممكن التقاط تسلسل من الصور مع هذا الكاشف. كما يحتاج كاشف اتفاقية مكافحة التصحر إلى عدة ثوان ٍ لقراءة صورة فردية.
  4. إعداد كاشف صفيف البكسل لتجربة حل الوقت
    1. إعداد عدد الصور ووقت التعرض وفترة التعرض في واجهة المستخدم الرسومية. كاشف صفيف بكسل المستخدمة هنا يحتاج على الأقل 1 مللي ثانية للقراءة. الحد الأقصى لتردد الإطار للكشف عن عد الفوتون هو 500 هرتز. استخدام إشارة إخراج كاشف العد الفوتون للتحكم في مصراع الأشعة السينية.
    2. تخفيف شعاع إلى الكثافة المطلوبة. تسليح كاشف وانتظر الزناد من نظام الحصول على البيانات. مزامنة البيانات الميكانيكية والأشعة السينية عن طريق تشغيلها في نفس الوقت. يتم جمع أنماط الأشعة السينية بشكل مستمر في جميع أنحاء البروتوكول أ مع 1 مللي ثانية وقت التعرض و2 مللي ثانية فترة التعرض.
      ملاحظة: وينبغي تحديد وقت التعرض الدقيق وفترة التعرض على أساس كل حالة على حدة فيما يتعلق بالمعلومات المطلوبة والعمر الملاحظ للعينة في الحزمة. تخفيف الحزمة من أجل استخدام شعاع الأشعة السينية أكثر مما هو مطلوب لتوفير بيانات قابلة للتحليل في فترة التعرض المختارة.

4. علاج العضلات بعد التجربة

  1. استعادة ووزن العضلات بعد كل تجربة الميكانيكية والأشعة السينية. حساب المنطقة المقطعية للعضلة باستخدام طول العضلات المقاسة وكتلة العضلات11 على افتراض كثافة العضلات من 1.06 غرام / مل12.
  2. تمتد العضلات إلى الطول التجريبي وإصلاح العضلات في 10٪ فورمالين لمدة 10 دقيقة. فصل العضلات الثابتة إلى سلسلة من حزم الألياف المختارة من المواقع في جميع أنحاء كامل العضلات المقطع العرضي3.
  3. قياس طول sarcomere باستخدام نظام قياس طول sarcomere الفيديو.

Representative Results

تقلص الكزاز متساوي القياس. أي نوع من التجارب الميكانيكية العضلات الكلاسيكية، مثل تقلصات متساوي القياس أو متساوي التوتر، يمكن أن يؤديها مع اكتساب في وقت واحد من أنماط الأشعة السينية. الشكل 1 A يظهر الإعداد التجريبي للتجارب الميكانيكية والأشعة السينية. ويرد في الشكل 1باءأثر قوة مثال لتقلص الكزاز متساوي القياس. عقدت العضلات في يستريح لمدة 0.5 s قبل تفعيلها لمدة 1 s. يتوقف التسجيل الميكانيكي 1 s بعد التحفيز. تم جمع أنماط الأشعة السينية بشكل مستمر في جميع أنحاء البروتوكول في وقت التعرض 1 مللي ثانية في 500 هرتز.

أنماط انعراج الأشعة السينية. يمكن لنمط انعراج الأشعة السينية للعضلات أن يعطي معلومات هيكلية عن دقة النانومتر من الهياكل الموجودة داخل الساركومر. تتكون أنماط انعراج الأشعة السينية العضلية من أربعة أرباع مكافئة مقسومة على خط الاستواء وخط الطول. وينشأ النمط الاستوائي من التعبئة الخيوط العضلية داخل السركومر عمودي على محور الألياف، في حين أن الأنماط الميرية تقرير المعلومات الهيكلية من خيوط العضلات على طول محور العضلات. وتسمى الانعكاسات المتبقية ليست على خط الاستواء أو خط الطول خطوط الطبقة. خطوط طبقة (على سبيل المثال، ملامح المسمى MLL4 و ALL6 في الشكل 2A)تنشأ من الترتيب شبه حلزوني من الوحدات الفرعية الجزيئية داخل myosin التي تحتوي على خيوط سميكة والأكتين التي تحتوي على خيوط رقيقة. خطوط الطبقة المستندة إلى myosin قوية وحادة في أنماط من العضلات يستريح (الشكل 2A)، في حين خطوط طبقة المستندة إلى الأكتين هي أكثر بروزا في أنماط من العضلات المتعاقدة (الشكل 2B). أنماط الفرق التي تم الحصول عليها عن طريق طرح نمط يستريح من نمط التعاقد (الشكل2C)يمكن تسليط الضوء على التغيرات الهيكلية أثناء تطوير القوة في العضلات صحية ومريضة. باتباع هذه التغيرات الهيكلية على مقياس الوقت الملي ثانية من الأحداث الجزيئية أثناء تقلص العضلات، وأنماط الانعراج بالأشعة السينية يمكن أن تكشف عن معلومات هيكلية كبيرة (الشكل2D).

تحليل البيانات باستخدام MuscleX. وفيما يلي مثال على تحليل الانعكاسات الاستوائية باستخدام روتين "خطالاستواء" في حزمة MuscleX (الشكل 3). MuscleX هو حزمة برامج تحليل مفتوحة المصدر تم تطويرها في BioCAT13. نسبة الكثافة الاستوائية (I1,1/I1,0)هي مؤشر على قرب الموسين من الأكتين في العضلات يستريح (الشكل3A)، في حين أنها ترتبط ارتباطا وثيقا بعدد الجسور المتقاطعة المرفقة في التعاقد ( الشكل 3B)مورين العضلات والهيكل العظمي2. نسبة الكثافة, أنا1,1/I1,0, حوالي 0.47 في العضلات يستريح وحوالي 1.2 في تقلص العضلات. المسافة بين انعكاس 1,0 اثنين (2 * S1,0) يرتبط عكسيا إلى تباعد بين خيوط. الوثائق التفصيلية وكتيبات MuscleX متاحة على الانترنت13.

Figure 1
الشكل 1 إعداد التجارب الميكانيكية والأشعة السينية والبروتوكول. (أ) يتم تركيب العضلات على نهاية واحدة إلى هوك داخل الغرفة التجريبية والطرف الآخر إلى محرك مزدوج وضع / قوة محول. هو أمسكت بين اثنان [كبتون] فيلم نافذات أن يسمح ال [إكس-ريس] أن يمرّ كلّيّا. تمتلئ الغرفة مع حل رينجر مع الأكسجين 100٪ طوال التجربة. (ب) البروتوكول الميكانيكي لتجارب الأشعة السينية على العضلات أثناء تقلص الكزاز. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2 أنماط انعراج الأشعة السينية EDL. EDL العضلات نمط الانعراج بالأشعة السينية من يستريح (أ) والتعاقد (B) العضلات. (ج) نمط الفرق بين نمط الراحة والتعاقد. المنطقة الزرقاء تشير إلى كثافة عالية في نمط الراحة، في حين أن المنطقة الصفراء تمثل كثافة عالية في نمط التعاقد. (D) نمط انعراج الأشعة السينية من التعرض 1 مللي ثانية مع عضلة EDL. MLL1 = أول خط طبقة myosin من الدرجة الأولى; MLL4 = خط طبقة myosin من أجل رابع; ALL1 = خط طبقة أكتين من الدرجة الأولى ALL6 = خط طبقة أكتين من الدرجة السادسة؛ ALL7 = خط طبقة أكتين الترتيب السابع; Tm = انعكاس تروبوموسين (المشار إليه من قبل مربع أبيض)؛ M3 = انعكاس meridional من الدرجة الثالثة؛ M6 = انعكاس meridional النظام السادس. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3 تحليل البيانات من الأنماط الاستوائية باستخدام MuscleX. وطرحت الخلفية لمحة عن نسبة الكثافة الاستوائية (في حين أن المنطقة) والطلبات الخمسة الأولى (الخطوط الخضراء) كانت مناسبة لحساب كثافة كل ذروة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Discussion

ويعلن صاحبا البلاغ أنهما ليس لديهما مصالح مالية متنافسة.

Disclosures

نقدم بروتوكولات مفصلة لإجراء تجارب انعراج الأشعة السينية ذات الزاوية الصغيرة باستخدام عضلات العضلات الهيكلية للماوس سليمة. مع توافر نماذج الماوس المعدلة وراثيا على نطاق واسع للأمراض البشرية، يمكن لهذه المنصة التجريبية أن تشكل سرير اختبار مفيد لتوضيح الأساس الهيكلي لأمراض العضلات الوراثية

Acknowledgements

استخدم هذا البحث موارد من مصدر الفوتون المتقدم، وهو مكتب مستخدم علمي تابع لوزارة الطاقة الأميركية يعمل لمكتب العلوم التابع لوزارة الطاقة من قبل مختبر أرغون الوطني بموجب العقد رقم. DE-AC02-06CH11357. وقد تم دعم هذا المشروع بمنحة P41 GM103622 من المعهد الوطني للعلوم الطبية العامة التابع للمعاهد الوطنية للصحة. تم توفير استخدام كاشف بيلاتوس 3 1M بمنحة 1S10OD018090-01 من NIGMS. والمحتوى هو مسؤولية المؤلفين فقط ولا يعكس بالضرورة الآراء الرسمية للمعهد الوطني للعلوم الطبية العامة أو المعاهد الوطنية للصحة.

Materials

الصناعي
# 5 ملقطWPI500342
4/0 خياطة جراحيةBraintree SciSUT-S 108
حجر الهواء حوضالسمك uxcellحجر هواء عادي من متجر للحيوانات الأليفة سيكون جيدا
CaCl2< / sub> Sigma-AldrichC5670
CCD كاشفRayonix Incمارس 165 بيانات CCD
نظام الاستحواذAurora Scientific Inc610A
مركب المطاطDow CorningSylgard 184
GlucoseSigma-AldrichG8270
HEPESSigma-AldrichH3375
كاشف عد الفوتون عالي الدقةDectris IncEIGER X 500K
محفز تيار ثنائي الطور عالي الطاقةAurora Scientific Inc701
مقص القزحيةWPI501263-G
KClSigma-AldrichP9541
MgSO4< / sub> Sigma-AldrichM7506
مقص صغيرWPI503365
محول محرك / قوةAurora Scientific Inc300C-LR
NaClسيجما ألدريتشS9888
طبق بتريسيجما ألدريتشCLS430167
كاشف عد الفوتونDectris IncPilatus 3 1M
أسلاك الفولاذ المقاوم للصدأMcMaster-carr8908K21
خياطة ربط ملقطWPI504498
نظام قياس طول ساركومير الفيديوAurora Scientific Inc900 ب

References

  1. Ma, W., et al. Thick-Filament Extensibility in Intact Skeletal Muscle. Biophysical Journal. 115 (8), 1580-1588 (2018).
  2. Ma, W., Gong, H., Irving, T. Myosin Head Configurations in Resting and Contracting Murine Skeletal Muscle. International Journal of Molecular Sciences. 19 (9), (2018).
  3. Kiss, B., et al. Nebulin stiffens the thin filament and augments cross-bridge interaction in skeletal muscle. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (41), 10369-10374 (2018).
  4. Ochala, J., Gokhin, D. S., Iwamoto, H., Fowler, V. M. Pointed-end capping by tropomodulin modulates actomyosin crossbridge formation in skeletal muscle fibers. Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 28 (1), 408-415 (2014).
  5. Lindqvist, J., Iwamoto, H., Blanco, G., Ochala, J. The fraction of strongly bound cross-bridges is increased in mice that carry the myopathy-linked myosin heavy chain mutation MYH4(L342Q). Disease Models & Mechanisms. 6 (3), 834-840 (2013).
  6. Huxley, H. E., Stewart, A., Sosa, H., Irving, T. X-ray diffraction measurements of the extensibility of actin and myosin filaments in contracting muscle. Biophysical Journal. 67 (6), 2411-2421 (1994).
  7. Wakabayashi, K., et al. X-ray diffraction evidence for the extensibility of actin and myosin filaments during muscle contraction. Biophysical Journal. 67 (6), 2422-2435 (1994).
  8. Anderson, R., et al. Mavacamten stabilizes a folded-back sequestered super-relaxed state of β-cardiac myosin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2018).
  9. National Research Council. Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the care and use of laboratory animals. Institute for Laboratory Animal Research (U.S.) & National Academies Press (U.S.). , (2011).
  10. . How to Calibrate Your Dual-Mode Lever System Using DMC Available from: https://aurorascientific.com/how-to-calibrate-your-dual-mode-lever-system-using-dmc/ (2017)
  11. Alexander, R. M. V. A. The dimensions of knee and ankle muscles and the forces they exert. Journal of Human Movement Studies. 1, 115-123 (1975).
  12. Burkholder, T. J., Fingado, B., Baron, S., Lieber, R. L. Relationship between Muscle-Fiber Types and Sizes and Muscle Architectural Properties in the Mouse Hindlimb. Journal of Morphology. 221 (2), 177-190 (1994).
  13. Jiratrakanvong, J., et al. . MuscleX: software suite for diffraction X-ray imaging V1.13.1. , (2018).
  14. Reconditi, M., et al. Myosin filament activation in the heart is tuned to the mechanical task. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (12), 3240-3245 (2017).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

الأشعة السينية الانعراج من العضلات الهيكلية Murine سليمة كأداة لدراسة الأساس الهيكلي لأمراض العضلات
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code