مقالة منهجية

Dextran وضع العلامات والشراء في خلايا الشعر الحية والوظيفية Murine Cochlear

DOI:

10.3791/60769

⸱

فبراير 8, 2020

 , 
1Molecular Physiology and Biophysics Section, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا ، نقدم طريقة لتصور استيعاب 3 kDa تكساس الأحمر المسمى dextran في خلايا الشعر السمعية مع قنوات mechanotransduction وظيفية. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن استخدام dextrans من 3-10 كيلو دا لدراسة الخلايا الانبسية في الشعر والخلايا الداعمة لجهاز كورتي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تلعب قناة mechanotransduction خلية الشعر (MET) دورًا مهمًا في السمع. ومع ذلك ، فإن الهوية الجزيئية والمعلومات الهيكلية للMET لا تزال غير معروفة. كشفت الدراسات الكهربية لخلايا الشعر أن قناة MET لديها التوصيل الكبير ونفاذها إلى جزيئات الموجبة الفلورية الكبيرة نسبيا، بما في ذلك بعض الأصباغ الستيريلي والمضادات الحيوية الأمينوغليكوسيد تكساس الحمراء المسمى. في هذا البروتوكول، ونحن نصف طريقة لتصور وتقييم الاستفادة من dextrans الفلورسنت في خلايا الشعر من الجهاز من explants كورتي التي يمكن استخدامها لتفحص لقنوات MET وظيفية. وجدنا أن 3 kDa تكساس الأحمر المسمى dextran على وجه التحديد تسميات خلايا الشعر السمعية الوظيفية بعد 1-2 h الحضانة. على وجه الخصوص، 3 كدا dextran تسميات اثنين من صفوف ستيريوسيليا أقصر ويتراكم في جسم الخلية في نمط منتشر عندما قنوات MET وظيفية موجودة. لوحظ نمط إضافي يشبه الحويصلة من الوسم في جسم الخلية من خلايا الشعر والخلايا الداعمة المحيطة بها. تشير بياناتنا إلى أنه يمكن استخدام 3 kDa Texas-Red dextran لتصور ودراسة مسارين لإستمعاء الصبغة الخلوية. طريق دخول خاص بخلية الشعر من خلال قنوات MET الوظيفية وenocytosis ، وهو نمط متاح أيضًا لـ dextran الأكبر.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

خلايا الشعر في الأذن الداخلية هي الخلايا الحسية التي تكشف الصوت وسرية المحفزات ميكانيكيا في الإشارات الكهربائية، والتي يتم تفسيرها في نهاية المطاف من قبل الدماغ. هذه الخلايا لديها حزمة على شكل درج من ثلاثة صفوف من خيوط المستندة إلى أكتين، والمعروفة باسم stereocilia، والتي تبرز من منطقتهم apical1،2. المحفزات الميكانيكية تحويل خيوط stereocilia نحو أطول صف والزناد فتح قنوات mechanotransduction (MET)3. فتح قنوات MET يؤدي إلى تدفق الاتلاف التي depolarizs الخلية وبالتالي يشير إلى الإفراج عن الحويصلات المشبك في المنطقة القاعدية من خلية الشعر.

وقد تميزت الخصائص البيوفيزيائية للقناة MET الضرورية للسمع على نطاق واسع. من بين خصائص أخرى، وهذه القنوات هي انتقائية الكاتيون ية ولها التوصيل كبيرة نسبيا (150-300 pS في كاليفورنيا منخفضة2 +)4،5،6،7،8،9،10. ومن اللافت للنظر أن جزيئات الفلورسنت الكبيرة مثل FM1-43 وتكساس الحمراء المسماة الأمينوغليكوزيدات هي حاصرات محاذية لقناة MET، مما يؤدي إلى تراكمها في جسم خلايا الشعر التي يمكن تصورها باستخدام المجهر الفلوري11،12،13،14. وعلى العكس من ذلك، ظلت الهوية الجزيئية وبنية قناة MET ومسار نفاذها بعيدي المنال. تشير الأدلة التجريبية المتزايدة إلى أن بروتين القناة العابر للأغشية 1 (TMC1) هو مكون من قناة MET في خلايا الشعر الناضجة15،16،17،18،19. الطفرات في القناة العابرة للأغشية 1 (TMC1) تغير خصائص قناة MET19،20،21،22 وتسبب الصمم. بالإضافة إلى ذلك ، TMC1 توطين موقع قناة MET18،23 ويتفاعل مع وصلة تلميح المسؤولة عن نقل القوة الميكانيكية إلى قناة MET24،25. وعلاوة على ذلك، فقد حددت تحليل المعلوماتية الحيوية الأخيرة البروتينات TMC كما التطورية المتعلقة قنوات mechanosensitive TMEM63/OSCA البروتينات والبروتينات TMEM16، وهي عائلة من قنوات كلوريد الكالسيوم تفعيلها والمخفوقات الدهون26،27،28. وكشف نموذج هيكلي من TMC1 على أساس العلاقة بين هذه البروتينات وجود تجويف كبير في واجهة البروتين والدهون27. هذا التجويف يأوي الطفرات TMC1 اثنين التي تسبب فقدان السمع المهيمنة الأوتوسومية (DFNA36)27،29،30،31،32، والتعديل الانتقائي للطفرات السيستين للمخلفات في تجويف تغيير خصائص قناة MET28، مشيرا إلى أنه يمكن أن تعمل كمسار نفاذية من قناة MET. الحجم الكبير لهذا التجويف المتوقع في بروتينات TMC يمكن أن يفسر قدرة الجزيئات الكبيرة على اختراق قناة MET. لاختبار التنبؤ بأن قناة MET تحتوي على مسار نفاذية كبير بشكل غير عادي ولدفع حدود حجم التجويف الملاحظ في TMC1 ، وضعنا بروتوكولًا لإجراء تجارب التموعات في جهاز Corti explants مع جزيء أكبر ، 3 KDa dextran الفلوري المسمى بـ Texas Red.

Dextran هو متعدد السكاريد المتفرع ة المعقدة التي تتألف من العديد من جزيئات D-الجلوكوز ملزمة بوصلات ألفا-1,6 جليكوسيديك. الذوبان عالية في الماء، سمية الخلايا المنخفضة، وbioinertity جعله أداة متعددة الاستخدامات لدراسة العديد من العمليات الخلوية. وبالإضافة إلى ذلك، dextran يتوفر في مجموعة واسعة من الأحجام ووصفت الفلورسنت مع الفلوروفوريات من عدة ألوان. وتستخدم عادة dextrans المسمى الفلوري في أبحاث نفاذية الخلايا والأنسجة33،34، لدراسة الانبطفي في أنظمة خلوية متعددة35،36، ولتتبعالعصبية 37،38. في المجال السمعي ، تم استخدام جزيئات dextran أيضًا لتقييم اضطراب تقاطع الخلية وفقدان سلامة الظهارة الحسية السمعية بعد التعرض لضوضاء شديدة في جهاز الشينشيلا في Corti39،40.

في هذا العمل، استغلنا خصائص بعض من أصغر (3 و 10 كيلو دا) الفلورسنت dextrans لإجراء تجارب التموجدا في خلايا شعر الأذن الداخلية المورين واستكشاف حجم مسار نفاذية من قناة الأذن الداخلية الشعر MET الخلية. بالإضافة إلى ذلك ، استخدمنا المجهر البؤري بالليزر (LSM) 880 المجهز بكاشف Airyscan لتصور وتوطين dextran الفلوري في المجسمة وجسم الخلية من خلايا الشعر السمعية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تنفيذ الرعاية الحيوانية والإجراءات التجريبية وفقا للمبادئ التوجيهية لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية، والتي وافقت عليها لجنة رعاية الحيوانات واستخدامها من المعهد الوطني للاضطرابات العصبية والسكتة الدماغية (بروتوكول الحيوان #1336 إلى KJS).

1. الفئران

  1. تعيين زوجين من أزواج تربية من نوع البرية C57BL/6J لتربية في منشأة الحيوان للسيطرة على تاريخ ولادة القمامة وتتبع عمر الجراء.

2. تشريح القوقعة

  1. تعيين مساحة نظيفة بالقرب من المجسم لإجراء التشريح(الشكل 1A). استخدام الإيثانول 70٪ لتنظيف المساحة والمناطق المحيطة بها ووضع لوحة مقاعد البدلاء نظيفة. وسيلزم كيس بلاستيكي للنفايات المرضية الطبية (MPW) لتجاهل جثث الحيوانات.
  2. إعداد العديد من الأطباق 35 ملم مع بعض وسائل الإعلام L15 Leibovitz.
    ملاحظة: تحتوي وسائط الخلايا L-15 من Leibovitz على 1-2 m M Ca2 +، وهو مطلوب للحفاظ على سلامة وصلات تلميح ، ويحتوي على الأحماض الأمينية الأساسية والفيتامينات والبيروفات الصوديوم لتحسين صحة الخلايا والبقاء على قيد الحياة. تم استبعاد المصل لتجنب التقلبات التجريبية بسبب تكوينه غير المحدد بشكل جيد والتدخل المحتمل مع dextran.
  3. القتل الرحيم بعد الولادة-6-النهار(P6) الفئران عن طريق قطع الرأس.
    ملاحظة: الفئران القديمة 6 أيام مقاومة إلى حد ما للتخدير المستنشق. على الرغم من أنه يمكن استخدام التعرض لـ isoflurane أو CO2 لفترات طويلة (حتى 50 دقيقة) للقتل الرحيم ، يوصى بطريقة جسدية ثانوية لضمان الوفاة.
  4. استخدام المقص الجراحي لإزالة الجلد من الجمجمة عن طريق جعل قطع سطحية من الأمامي إلى النهاية الخلفية وعبر القنوات السمعية الخارجية.
  5. أضعاف الجلد نحو الأنف لفضح الجمجمة(الشكل 2B).
  6. إجراء شق من الخلف إلى الجزء الأمامي من الجمجمة وعبر خط العين(الشكل 2B-C).
  7. فصل الجمجمة في نصفين وإزالة الدماغ مع استخدام ملعقة صغيرة لفضح العظام الزمنية(الشكل 2C-D).
  8. مع مقص صغير، قطع حول العظام الزمنية، واستئصال الأنسجة.
  9. ضع كل من العظام الزمنية في طبق 35 ملم وتأكد من تغطيتها مع وسائل الإعلام L15(الشكل 2E).
    ملاحظة: يتم تنفيذ الخطوات التالية تحت المجهر. عادة ما تساعد الخلفية السوداء على تصور الأنسجة أثناء خطوات التشريح الدقيقة.
  10. تحت مجهر يجهّز بالعدسة واسعة (10X تكبير قوة (WF10X) وتيار خارجي بالتناوب (AC) مصدر ضوء الهالوجين)، قم بإزالة أنسجة القوقعة المحيطة، والقنوات نصف الدائرية، والأعضاء الدهليزية مع الفرمش الجراحي(الشكل 2F).
  11. للسماح لوسائط dextran و L15 بدخول قناة القوقعة ، قم بإجراء حدودين للثقب على القوقعة المشوّشة ، أحدهما على النافذة المستديرة والآخر في منطقة القوقعة apical.
  12. أضف 300 مل من وسائط L15 من Leibovitz في كل بئر من لوحة اكتئاب زجاجية من 9 آبار.
  13. ضع ما لا يقل عن ثلاثة قوقعة تشريحية على كل بئر.

3. دإكستران وضع العلامات

  1. إعادة تشكيل dextran في محلول الملح متوازن هانكس دون كاليفورنيا2 + وملغ2 + (HBSS-CFM) في تركيز نهائي من 10 ملغ / مل. يجب أن يكون هذا الحل الأسهم aliquoted في أنابيب سوداء معتمة (محمية من الضوء) وتخزينها في -30 درجة مئوية حتى الاستخدام.
    ملاحظة: استخدام dextran قابلة للإصلاح يسين أمر بالغ الأهمية لنتيجة ناجحة من هذا البروتوكول.
  2. إعداد كل dextran في تركيز نهائي من 2 ملغ / مل في 500 مل من وسائل الإعلام L15 Leibovitz.
  3. إزالة وسائل الإعلام من القوقعة وإضافة وسائل الإعلام L15 Leibovitz التي تحتوي على dextran الفائدة في تركيز نهائي من 2 ملغ / مل.
    ملاحظة: على الرغم من أن نسبة من قنوات MET مفتوحة في بقية41،42، تم تنفيذ حضانة dextran مع اهتزاز لطيف من explants لزيادة الاحتمال المفتوح لقناة MET.
  4. احتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 2 ساعة مع اهتزاز لطيف (25 دورة في الدقيقة) باستخدام شاكر ثلاثي الأبعاد مع زاوية مائلة من 25 درجة.
    ملاحظة: يجب حماية dextran المسمى الفلوري من الضوء عندما يكون ذلك ممكناً. لحماية dextran خلال حضانة 2 ساعة، ضع لوحة الزجاج 9-well داخل طبق P150 ثقافة الخلية ملفوفة في رقائق الألومنيوم.

4. إعداد عينة للتصوير

  1. بعد الحضانة مع dextran، وغسل الأنسجة لمدة 2 دقيقة مرتين مع وسائل الإعلام ومرة واحدة مع HBSS.
  2. احتضان الأنسجة في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة مع 4٪ paraformaldehyde في محلول الملح المتوازن لهانكس (HBSS).
    تنبيه: التعرض للفورمالديهايد يمكن أن يكون مزعجا للعيون والأنف والجهاز التنفسي العلوي. في بعض الأفراد، يمكن أن يسبب التعرض المتكرر للجلد الفورمالديهايد التوعية التي قد تؤدي إلى التهاب الجلد التحسسي. الفورمالديهايد هو مادة مسرطنة بشرية معروفة ومشتبه بها في خطر الإنجاب.
  3. بسرعة وبلطف غسل الأنسجة الثابتة مرتين مع HBSS لإزالة paraformaldehyde.
    ملاحظة: لا توجد حاجة إلى إزالة الكلس للعظام الزمنية في هذه المرحلة التنموية من القوقعة.
  4. إزالة الرباط الحلزوني والغشاء التكتوني مع ملقط طرف ناعم لتشريح جهاز كورتي(الشكل 2G).
  5. إزالة جميع القطع الصغيرة من الأنسجة وغسل الأنسجة مع HBSS.
  6. Permeabilize الأنسجة في 0.5٪ تريتون X-100 في برنامج تلفزيوني تحتوي على phalloidin المسمى الفلورسنت (مترافق إلى الأخضر أو الأحمر عند اختبار استيعاب TR- أو FITC المسمى dextran، على التوالي) في تخفيف 1:200 لمدة 30 دقيقة لتسمية F-actin وتصور ستيريوسيليا المستندة إلى actin.
  7. غسل الأنسجة 2-3 مرات لمدة 2 دقيقة في كل مرة مع العازلة HBSS لإزالة فائض من تريتون وphalloidin، ومرة واحدة مع برنامج تلفزيوني لإزالة الأملاح.
  8. قم بتركيب عضو أنسجة كورتي على شريحة مجهرية وقم بتغطيتها بالوسائط المتصاعدة.
    ملاحظة: عند تركيب الأنسجة، تأكد من أن الجانب من الأنسجة التي تحتوي على الاستريوسيليا خلية الشعر تواجه زلة الغطاء.
  9. إزالة أي فقاعات محتملة ولدت أثناء إضافة وسائل الإعلام المتصاعدة ومنع توليد فقاعات جديدة أثناء وضع قسيمة الغلاف.
    ملاحظة: يستنشق مع ماصة أي فقاعة ولدت أثناء إضافة وسائل الإعلام المتصاعدة. لمنع فقاعات الهواء من المحاصرين تحت غطاء، ضع حافة الغطاء بالقرب من العينة وبعناية وخفض ببطء coverslip على الأنسجة باستخدام ملقط أو تلميح ماصة.
  10. تغطية الأنسجة في وسائل الإعلام المتصاعدة مع غطاء زجاجي(الشكل 2H).
    ملاحظة: تم تصميم الأهداف ذات الفتحة العددية فوق 0.4 لاستخدام #1.5 قسائم التغطي (سمك 0.17 مم). قد يكون لاستخدام غطاء خاطئ آثار خطيرة على كثافة وجودة الصور.
  11. احتضان الأنسجة المركبة بين عشية وضحاها في درجة حرارة الغرفة للسماح لوسائل الإعلام المتصاعدة الجافة وتخزين الشرائح في 4 درجة مئوية حتى التصوير.

5. الحصول على صورة ومعالجة الصور

ملاحظة: تم التقاط الصور المعتمة باستخدام مجهر بؤري LSM 880 مجهز بكاشف Airyscan 32 قناة في وضع الدقة الفائقة (SR)43 وهدف 63x.

  1. إضافة قطرة صغيرة من زيت الغمر على الهدف.
  2. ضع شريحة المجهر التي تحتوي على عينة الأنسجة المركبة في مرحلة المجهر مع غطاء زجاجي يواجه زيت الغمر.
  3. التركيز على العينة وتعيين معلمات التصوير باستخدام برنامج الحصول على صورة.
  4. استخدم إعدادات اكتساب الصور المتطابقة والمعلمات المثلى لدقة x و y و z لكل تجربة مستقلة. مطلوب نظام التركيز التي يحركها بيزو لتحريك الهدف بسرعة وبدقة عند الحصول على كومة z من الصور.
    ملاحظة: لتصوير المنطقة apical بأكملها من خلايا الشعر، وجمع كومة z من الصور من المجسمة إلى النصف apical من جسم خلية الشعر باستخدام الإعدادات المثلى. من الأهمية بمكان جمع كومة z كبيرة على طول خلية الشعر لضمان تصوير الجسيمات الشبيهة بالحويصلات.
  5. استخدم برنامج اكتساب الصور لمعالجة الصور المعقدة الخام باستخدام خوارزمية إعادة الإعمار ثلاثية الأبعاد Airyscan مع إعدادات فلتر deconvolution الافتراضي التلقائي.
  6. افتح الصور المعتمة في برنامج معالجة الصور لضبط السطوع والتباين، وإضافة شريط المقياس، وتصدير الصور للأرقام النهائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لاحظنا وسم قوية ومحددة من خلايا الشعر بعد 2h حضانة الجهاز من Explants كورتي من البرية نوع بعد الولادة-6-6 (P6) الفئران مع 3 kDa dextran الفلورسنت المسمى مع تكساس الأحمر (dextran-TR)(الشكل 2A-B). لوحظ توسيم Dextran في كل من خلايا الشعر الداخلية والخارجية (IHC وOHC) في المناطق القاعدية والوسطى وapical من جهاز كورتي(الشكل 2B).

تم استخدام phalloidin المسمى بالفلورسنت لمكافحة الأكتين الخيطي (F-actin) وتصور...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف هذا البروتوكول كيفية إجراء تجارب التمويع في جهاز مورين من Explants Corti مع 3 kDa dextran Texas Red. والهدف من هذه الطريقة هو اختبار ما إذا كانت جزيئات أكبر من غيرها من التجارب السابقة قادرة أيضا على تسمية خلايا الشعر السمعية على وجه التحديد وتتخلل من خلال قناة MET. وقد استخدمت بروتوكولات تجريبية مماثلة في السابق لتقييم نفاذية خلايا الشعر إلى الأصباغ الفلورية الأخرى مثل FM1-43 (0.56 كيلو دا)12،19،20 وتكساس الحمراء المسمى ami...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وليس لدى صاحبي البلاغ ما يكشفان عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نشكر فنسنت شرام من المجهر NICHD والتصوير الأساسية للمساعدة في الحصول على صورة confocal، وTsg-Hui تشانغ للحصول على مساعدة لا تقدر بثمن مع إدارة المستعمرة ورعاية الفئران. تم دعم هذا البحث من قبل برنامج البحوث داخل الجدران من NINDS، المعاهد القومية للصحة، Bethesda، MD، إلى K.J.S. A.B. بدعم من برنامج البحوث داخل الجدران من NINDS، المعاهد القومية للصحة، وزمالة روبرت وينتهولد ما بعد الدكتوراه من برنامج البحوث داخل المدرسة من NIDCD.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
# 1.5 أغطية زجاجية 18 مموارنر إنسترومنتس64-0714
أليكسا فلور 488 فالودينثيرموفيشرA12379
أليكسا فلور 594 فالودينثيرموفيشرA12381
ألفا بلان - أبوكرومات 63X / 1.4 زيت كور M27 الهدفكارل زايس420780-9970-000
أميلوريد هيدروكلوريدEMD MILLIPORE129876
Benchwaver 3-dimensionalRocker Benchmarks العلميةB3D5000
C57BL / 6J سلالة الفئران من النوع البري000664خلية مختبر
غير المنفذة BAPTA ملح رباعي البوتاسيومThermoFisherB1204
Dextran، فلورسين، 10,000 ميجاوات، أنيوني، ليسين ThermoFisherD1820
ديكستران ، تكساس ريد ، 10,000 ميجاوات ، ليسينThermoFisherD1863
Dextran ، تكساس ريد ، 3000 ميجاوات ، Lysine FixableThermoFisherD3328
محلول مائي فورمالديهايد EM علمالمجهر الإلكترونيمن الدرجة 15710
HBSS ، كالسيوم ، مغنيسيوم ، بدون فينول أحمرThermoFisher14025
HBSS ، خال من الكالسيوم ، بدون مغنيسيوم ، بدون فينول أحمرThermoFisher14170
Image J أو FIJINIHhttp://fiji.sc/< / a>
Immersol 518F وسائط غمر الزيتكارل زايس444970-9000-000
Leibovitz's L-15 Medium ، مكمل GlutaMAXThermoFisher31415029
هيدرات ملح نيومايسين ثلاثي كبريتاتسيجماN6386
PBS (10X) ، درجة الحموضة 7.4ThermoFisher70011069
Phalloidin-CF405MBiotium00034
ProLong وسائط تركيب الماس المضادة للبهتانThermoFisherP36970
superfrost plus microscopeslide Fisherbrand22-037-246
Triton X-100SigmaT8787
Zen Black 2.3 SP1 البرمجياتCarl Zeisshttps://www.zeiss.com/microscopy/us/products/microscope-software/zen.html< / a>
جاكسون

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Furness, D. N., Hackney, C. M. The Structure and Composition of the Stereociliary Bundle of Vertebrate Hair Cells. , Springer. New York. (2006).
  2. Barr-Gillespie, P. G. Assembly of hair bundles, an amazing problem for cell biology. Molecular Biology of the Cell. 26 (15), 2727-2732 (2015).
  3. Shotwell, S. L., Jacobs, R., Hudspeth, A. J. Directional sensitivity of individual vertebrate hair cells to controlled deflection of their hair bundles. Annals of the New York Academy of Sciences. 374, 1-10 (1981).
  4. Fettiplace, R., Kim, K. X. The physiology of mechanoelectrical transduction channels in hearing. Physiological Reviews. 94 (3), 951-986 (2014).
  5. Fettiplace, R. Hair Cell Transduction, Tuning, and Synaptic Transmission in the Mammalian Cochlea. Comprehensive Physiology. 7 (4), 1197-1227 (2017).
  6. Corey, D. P., Hudspeth, A. J. Ionic basis of the receptor potential in a vertebrate hair cell. Nature. 281 (5733), 675-677 (1979).
  7. Beurg, M., Evans, M. G., Hackney, C. M., Fettiplace, R. A large-conductance calcium-selective mechanotransducer channel in mammalian cochlear hair cells. The Journal of Neuroscience. 26 (43), 10992-11000 (2006).
  8. Geleoc, G. S., Lennan, G. W., Richardson, G. P., Kros, C. J. A quantitative comparison of mechanoelectrical transduction in vestibular and auditory hair cells of neonatal mice. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 264 (1381), 611-621 (1997).
  9. Kros, C. J., Rusch, A., Richardson, G. P. Mechano-electrical transducer currents in hair cells of the cultured neonatal mouse cochlea. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 249 (1325), 185-193 (1992).
  10. Ohmori, H. Mechano-electrical transduction currents in isolated vestibular hair cells of the chick. The Journal of Physiology. 359, 189-217 (1985).
  11. Gale, J. E., Marcotti, W., Kennedy, H. J., Kros, C. J., Richardson, G. P. FM1-43 dye behaves as a permeant blocker of the hair-cell mechanotransducer channel. The Journal of Neuroscience. 21 (18), 7013-7025 (2001).
  12. Lelli, A., Asai, Y., Forge, A., Holt, J. R., Geleoc, G. S. Tonotopic gradient in the developmental acquisition of sensory transduction in outer hair cells of the mouse cochlea. Journal of Neurophysiology. 101 (6), 2961-2973 (2009).
  13. Alharazneh, A., et al. Functional hair cell mechanotransducer channels are required for aminoglycoside ototoxicity. PLoS One. 6 (7), 22347(2011).
  14. Marcotti, W., van Netten, S. M., Kros, C. J. The aminoglycoside antibiotic dihydrostreptomycin rapidly enters mouse outer hair cells through the mechano-electrical transducer channels. The Journal of Physiology. 567, Pt 2 505-521 (2005).
  15. Corns, L. F., Jeng, J. Y., Richardson, G. P., Kros, C. J., Marcotti, W. TMC2 Modifies Permeation Properties of the Mechanoelectrical Transducer Channel in Early Postnatal Mouse Cochlear Outer Hair Cells. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 326(2017).
  16. Kawashima, Y., Kurima, K., Pan, B., Griffith, A. J., Holt, J. R. Transmembrane channel-like (TMC) genes are required for auditory and vestibular mechanosensation. Pflügers Archiv: European Journal of Physiology. 467 (1), 85-94 (2015).
  17. Kim, K. X., Fettiplace, R. Developmental changes in the cochlear hair cell mechanotransducer channel and their regulation by transmembrane channel-like proteins. The Journal of General Physiology. 141 (1), 141-148 (2013).
  18. Kurima, K., et al. TMC1 and TMC2 Localize at the Site of Mechanotransduction in Mammalian Inner Ear Hair Cell Stereocilia. Cell Reports. 12 (10), 1606-1617 (2015).
  19. Pan, B., et al. TMC1 and TMC2 are components of the mechanotransduction channel in hair cells of the mammalian inner ear. Neuron. 79 (3), 504-515 (2013).
  20. Kawashima, Y., et al. Mechanotransduction in mouse inner ear hair cells requires transmembrane channel-like genes. Journal of Clinical Investigation. 121 (12), 4796-4809 (2011).
  21. Beurg, M., Goldring, A. C., Fettiplace, R. The effects of Tmc1 Beethoven mutation on mechanotransducer channel function in cochlear hair cells. The Journal of General Physiology. 146 (3), 233-243 (2015).
  22. Corns, L. F., Johnson, S. L., Kros, C. J., Marcotti, W. Tmc1 Point Mutation Affects Ca2+ Sensitivity and Block by Dihydrostreptomycin of the Mechanoelectrical Transducer Current of Mouse Outer Hair Cells. The Journal of Neuroscience. 36 (2), 336-349 (2016).
  23. Beurg, M., Fettiplace, R., Nam, J. H., Ricci, A. J. Localization of inner hair cell mechanotransducer channels using high-speed calcium imaging. Nature Neuroscience. 12 (5), 553-558 (2009).
  24. Maeda, R., et al. Tip-link protein protocadherin 15 interacts with transmembrane channel-like proteins TMC1 and TMC2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (35), 12907-12912 (2014).
  25. Assad, J. A., Shepherd, G. M., Corey, D. P. Tip-link integrity and mechanical transduction in vertebrate hair cells. Neuron. 7 (6), 985-994 (1991).
  26. Medrano-Soto, A., et al. Bioinformatic characterization of the Anoctamin Superfamily of Ca2+-activated ion channels and lipid scramblases. PLoS One. 13 (3), 0192851(2018).
  27. Ballesteros, A., Fenollar-Ferrer, C., Swartz, K. J. Structural relationship between the putative hair cell mechanotransduction channel TMC1 and TMEM16 proteins. Elife. 7, (2018).
  28. Pan, B., et al. TMC1 Forms the Pore of Mechanosensory Transduction Channels in Vertebrate Inner Ear Hair Cells. Neuron. 99 (4), 736-753 (2018).
  29. Kitajiri, S., Makishima, T., Friedman, T. B., Griffith, A. J. A novel mutation at the DFNA36 hearing loss locus reveals a critical function and potential genotype-phenotype correlation for amino acid-572 of TMC1. Clinical Genetics. 71 (2), 148-152 (2007).
  30. Makishima, T., Kurima, K., Brewer, C. C., Griffith, A. J. Early onset and rapid progression of dominant nonsyndromic DFNA36 hearing loss. Otology & Neurotology. 25 (5), 714-719 (2004).
  31. Noguchi, Y., et al. Multiple quantitative trait loci modify cochlear hair cell degeneration in the Beethoven (Tmc1Bth) mouse model of progressive hearing loss DFNA36. Genetics. 173 (4), 2111-2119 (2006).
  32. Vreugde, S., et al. Beethoven, a mouse model for dominant, progressive hearing loss DFNA36. Nature Genetics. 30 (3), 257-258 (2002).
  33. Hulstrom, D., Svensjo, E. Intravital and electron microscopic study of bradykinin-induced vascular permeability changes using FITC-dextran as a tracer. The Journal of Pathology. 129 (3), 125-133 (1979).
  34. Mayhan, W. G., Heistad, D. D. Permeability of blood-brain barrier to various sized molecules. American Journal of Physiology. 248 (5), Pt 2 712-718 (1985).
  35. Makarow, M. Endocytosis in Saccharomyces cerevisiae: internalization of alpha-amylase and fluorescent dextran into cells. The EMBO Journal. 4 (7), 1861-1866 (1985).
  36. Clayton, E. L., Cousin, M. A. Quantitative monitoring of activity-dependent bulk endocytosis of synaptic vesicle membrane by fluorescent dextran imaging. Journal of Neuroscience Methods. 185 (1), 76-81 (2009).
  37. Allman, B. L., Keniston, L. P., Meredith, M. A. Adult deafness induces somatosensory conversion of ferret auditory cortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (14), 5925-5930 (2009).
  38. Warr, W. B., Boche, J. B., Neely, S. T. Efferent innervation of the inner hair cell region: origins and terminations of two lateral olivocochlear systems. Hearing Research. 108 (1-2), 89-111 (1997).
  39. Hu, B. H., Zheng, G. L. Membrane disruption: an early event of hair cell apoptosis induced by exposure to intense noise. Brain Research. 1239, 107-118 (2008).
  40. Zheng, G., Hu, B. H. Cell-cell junctions: a target of acoustic overstimulation in the sensory epithelium of the cochlea. BMC Neuroscience. 13, 71(2012).
  41. Beurg, M., Nam, J. H., Chen, Q., Fettiplace, R. Calcium balance and mechanotransduction in rat cochlear hair cells. Journal of Neurophysiology. 104 (1), 18-34 (2010).
  42. Johnson, S. L., Beurg, M., Marcotti, W., Fettiplace, R. Prestin-driven cochlear amplification is not limited by the outer hair cell membrane time constant. Neuron. 70 (6), 1143-1154 (2011).
  43. Korobchevskaya, K., Lagerholm, B. C., Colin-York, H., Fritzsche, M. Exploring the Potential of Airyscan Microscopy for Live Cell Imaging. Photonics. 4 (3), (2017).
  44. Gil-Loyzaga, P., Brownell, W. E. Wheat germ agglutinin and Helix pomatia agglutinin lectin binding on cochlear hair cells. Hearing Research. 34 (2), 149-155 (1988).
  45. Santi, P. A., Anderson, C. B. Alcian blue staining of cochlear hair cell stereocilia and other cochlear tissues. Hearing Research. 23 (2), 153-160 (1986).
  46. Slepecky, N., Chamberlain, S. C. The cell coat of inner ear sensory and supporting cells as demonstrated by ruthenium red. Hearing Research. 17 (3), 281-288 (1985).
  47. Rusch, A., Kros, C. J., Richardson, G. P. Block by amiloride and its derivatives of mechano-electrical transduction in outer hair cells of mouse cochlear cultures. The Journal of Physiology. 474 (1), 75-86 (1994).
  48. Zhao, Y., Yamoah, E. N., Gillespie, P. G. Regeneration of broken tip links and restoration of mechanical transduction in hair cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (26), 15469-15474 (1996).
  49. Indzhykulian, A. A., et al. Molecular remodeling of tip links underlies mechanosensory regeneration in auditory hair cells. PLoS Biol. 11 (6), 1001583(2013).
  50. Koivusalo, M., et al. Amiloride inhibits macropinocytosis by lowering submembranous pH and preventing Rac1 and Cdc42 signaling. Journal of Cell Biology. 188 (4), 547-563 (2010).
  51. West, M. A., Bretscher, M. S., Watts, C. Distinct endocytotic pathways in epidermal growth factor-stimulated human carcinoma A431 cells. Journal of Cell Biology. 109 (6), Pt 1 2731-2739 (1989).
  52. Park, S., et al. tmie Is required for gentamicin uptake by the hair cells of mice. Comp Med. 63 (2), 136-142 (2013).
  53. Meyers, J. R., et al. Lighting up the senses: FM1-43 loading of sensory cells through nonselective ion channels. The Journal of Neuroscience. 23 (10), 4054-4065 (2003).
  54. Waguespack, J., Salles, F. T., Kachar, B., Ricci, A. J. Stepwise morphological and functional maturation of mechanotransduction in rat outer hair cells. The Journal of Neuroscience. 27 (50), 13890-13902 (2007).
  55. Beurg, M., et al. Variable number of TMC1-dependent mechanotransducer channels underlie tonotopic conductance gradients in the cochlea. Nature Communications. 9 (1), 2185(2018).
  56. Montgomery, S. C., Cox, B. C. Whole Mount Dissection and Immunofluorescence of the Adult Mouse Cochlea. Journal of Visualized Experiments. (107), e53561(2016).
  57. Landegger, L. D., Dilwali, S., Stankovic, K. M. Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research. Journal of Visualized Experiments. (124), e55704(2017).
  58. May-Simera, H. Evaluation of Planar-Cell-Polarity Phenotypes in Ciliopathy Mouse Mutant Cochlea. Journal of Visualized Experiments. (108), e53559(2016).
  59. Ogier, J. M., Burt, R. A., Drury, H. R., Lim, R., Nayagam, B. A. Organotypic Culture of Neonatal Murine Inner Ear Explants. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 170(2019).
  60. Granath, K. A. Solution properties of branched dextrans. Journal of Colloid Science. 13 (4), 20(1958).
  61. Molecular Probes, I.D.T. Product information on Dextran Conjugates. , (2006).
  62. Korobchevskaya, K., Lagerholm, B. C., Colin-York, H., Fritzsche, M. Exploring the Potential of Airyscan Microscopy for Live Cell Imaging. Photonics. 4 (3), 41(2017).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة