يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

جرثومية عن طريق الفم الرضاعة مع البعوض المعالجة بالمضادات الحيوية

6.6K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/61341

⸱

سبتمبر 12, 2020

في هذه المقالة

ملخص

تقدم هذه المقالة بروتوكولًا للتحقيق في تأثير بكتيريا الأمعاء الفردية للبعوض ، بما في ذلك عزل وتحديد الميكروبات القابلة للزراعة في منتصف البعوض ، واستنزاف المضادات الحيوية لبكتيريا الأمعاء البعوض ، وإعادة إدخال نوع واحد محدد من البكتيريا.

الملخص

البعوض منتصف الموانئ الموانئ ميكروبيوم ديناميكية للغاية التي تؤثر على التمثيل الغذائي المضيف، والتكاثر، واللياقة البدنية، والكفاءة ناقلات. وقد أجريت دراسات لدراسة تأثير ميكروبات الأمعاء ككل؛ ومع ذلك، يمكن أن الميكروبات المختلفة تمارس آثار متميزة نحو المضيف. توفر هذه المقالة منهجية لدراسة تأثير كل ميكروب أمعاء البعوض المحدد والآلية المحتملة.

يحتوي هذا البروتوكول على جزأين. الجزء الأول يقدم كيفية تشريح البعوض منتصف، عزل مستعمرات البكتيريا التي يمكن تكاثرها، وتحديد أنواع البكتيريا. يوفر الجزء الثاني الإجراء الخاص بتوليد البعوض المعالج بالمضادات الحيوية وإعادة إدخال نوع واحد من البكتيريا المحددة.

المقدمة

ويعتبر البعوض أن تكون أهم ناقلات الأمراض المسببة للأمراض البشرية، ونقل أكثر من مائة مسببات الأمراض بما في ذلك فيروس زيكا، فيروس حمى الضنك، والطفيليات Plasmodium 1. عندما يأخذ البعوض وجبة دم للحصول على العناصر الغذائية للوَفَس، فإنها يمكن أن تبتلع مسببات الأمراض عن طريق الخطأ من مضيف مصاب عن طريق الجهاز الهضمي2. الأهم من ذلك، فإن البعوض midgut، الذي يلعب دورا محوريا في كل من هضم وجبة الدم ومدخل الممرض، ويأوي الميكروبيوم ديناميكية للغاية3.

وقد تميزت العديد من الدراسات المختبرية التي تم تربيتها والحقول التي جمعت البعوض الميكروبية باستخدام إما طريقة تعتمد على الثقافة أو البكتيريا تسلسل المقايسة4,5,6. الأنواع بما في ذلك البانتوا، Serratia، Klebsiella، Elizabethkingia، و Enterococcus يتم عزلها عادة من البعوض في مختلف الدراسات5،7،8،9. ومن المثير للاهتمام، يتقلب ميكروبيوتا الأمعاء البعوض بشكل حيوي في كل من تنوع المجتمع وكمية أنواع البكتيريا، تتأثر بمرحلة التنمية، والأنواع، والأصل الجغرافي، وسلوك التغذية4. تشير الدراسات إلى أن تغذية الدم تزيد بشكل كبير من إجمالي الحمل البكتيري مع التوسع السريع للأنواع من Enterobacteriaceae وانخفاض في التنوع العام10،11. بالإضافة إلى ذلك ، عادة ما يتم القضاء على ميكروبيوتا الأمعاء البعوض من مرحلة اليرقات عندما تخضع الحشرة للتحول أثناء ال pupation و eclosion ؛ وهكذا ، ظهرت حديثا البعوض البالغ بحاجة إلى إعادة إسكان الجراثيم4.

الأمعاء الميكروبية تعدل علم وظائف الأعضاء الحشرات في مختلف الجوانب، بما في ذلك امتصاص المغذيات، والمناعة، والتنمية، والتكاثر، والكفاءة ناقلات12. يرقات البعوض أكسينيك تفشل في التطور وراء أول إنستار في حين أن البكتيريا عن طريق الفم إنقاذ التنمية الإمدادات، مشيرا إلى أن ميكروب الأمعاء البعوض ضروري لتطوير اليرقات13,14. الى جانب ذلك، استنزاف البكتيريا الأمعاء يؤخر هضم وجبة الدم وامتصاص المغذيات، ويؤثر على نضوج البويضات، ويقلل من oviposition15. بالإضافة إلى ذلك ، فإن البعوض الذي يُصاب بصغر الأمعاء يثير استجابات مناعية أعلى مقارنة بالبعوض المعالج بالمضادات الحيوية ، مع تعبير ببتيد مضاد للميكروبات مرتفع باستمرار ضد مسببات الأمراض الأخرى لتصيب16. عادة ما يتم إعطاء المضادات الحيوية عن طريق الفم لإزالة بكتيريا الأمعاء في هذه الدراسات ، ثم يتم إجراء تجارب لمقارنة الفرق بين البعوض الفأس والبعوض مع الميكروبات commensal. ومع ذلك ، فإن البعوض في منتصف الغور يضم مجتمعًا متنوعًا من الميكروبات ، ويمكن لكل نوع من أنواع البكتيريا أن يمارس تأثيرًا متميزًا تجاه علم وظائف الأعضاء المضيف.

الميكروبيات البعوض ينظم كفاءة ناقلات مع آثار متباينة. الاستعمار من قبل بروتيوس معزولة عن البعوض المستمدة من الحقل من المناطق التي تتوطن حمى الضنك يمنح أعلى تنظيما التعبير الببتيد المضاد للميكروبات والمقاومة ضد عدوى فيروس حمى الضنك16. فطر entomopathogenic Beauveria bassiana ينشط المسار المناعي حصيلة وJAK-STAT ضد عدوى arbovirus17. وعلى النقيض من ذلك، فإن الفطريات Talaromyces معزولة عن Aedes aegypti midgut يسهل الإصابة بفيروس حمى الضنك عن طريق تحوير نشاط التربسين الأمعاء18. بالإضافة إلى ذلك ، Serratia marcescens يعزز انتقال الفيروس من خلال بروتين سيكريتوري يسمى SmEnhancin، الذي يهضم طبقة المخاطين على ظهارة الأمعاء من البعوض19.

يوفر هذا الإجراء طريقة منهجية وبديهية لتشريح البعوض منتصف، وعزل مستعمرات البكتيريا التي يمكن تكاثرها، وتحديد أنواع البكتيريا، وإعادة إدخالها عن طريق التغذية عن طريق الفم. وهو يوفر نتائج تمثيلية لتغذية الدم مع بكتيريا commensal، Chryseobacterium 100 1000 100،على تطور المبيض والبعوضة وovposition.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. تشريح midgut وعزلة البكتيريا التي يمكن الاستزراع عنها

  1. إعداد البعوضة للتشريح.
    1. جمع البعوض 7-9 أيام بعد ظهور مع التعرق. تخدير البعوض الذي تم جمعه عن طريق إخضاعه لدرجة حرارة 4 درجات مئوية لمدة 3-5 دقائق والحفاظ على تخدير البعوض في طبق بيتري بارد من الجليد حتى التشريح.
  2. تعقيم أدوات المختبرات وسطح البعوض.
    1. تعقيم مقاعد البدلاء التجربة، تشريح المجهر، ملقط، والشرائح الزجاجية عن طريق رش 75٪ الإيثانول لتجنب التلوث من البكتيريا من البيئة.
    2. إعداد طبق بيتري معقمة تحتوي على 75٪ الإيثانول واثنين من أطباق بيتري تحتوي على معقمة 1x الفوسفات المالحة المخزنة (1x PBS).
    3. سطح تعقيم البعوض عن طريق غمس وهز لهم في 75٪ الإيثانول لمدة 3 دقائق، وشطف مرتين مع 1x PBS العازلة في حالة تأثير الإيثانول على النباتات الأمعاء تشريح.
  3. تشريح البعوض منتصف.
    1. نقل البعوض المعقم السطح على الشريحة الزجاجية مع قطرة من عازلة برنامج تلفزيوني معقم 1x. تشريح تحت المجهر تشريح.
    2. تحت التكبير السفلي من المجهر تشريح، وإزالة بعناية الساقين والأجنحة، ورأس البعوض لمنع الهروب. إزالة somite الأخير من البعوض عن طريق قطع مباشرة، بدلا من سحبه، لمنع الجهاز الهضمي من كسر.
    3. المشبك الصدر البعوض ونهاية البطن مع ملقط. سحب بلطف الجهاز الهضمي للبعوضة. الجهاز الهضمي المكتسبة وعادة ما يحتوي على المحاصيل, foregut, midgut, hindgut, وأنابيب Malpighian.
    4. ضبط المجهر تشريح إلى التكبير أعلى. إزالة المحصول، foregut، hindgut، وأنابيب Malpighian من الجهاز الهضمي تشريح للحصول على منتصف البعوض.
    5. العناية أثناء إزالة المحصول، كما يتضخم المحصول ويشبه منتصف بعد البعوض يأخذ وجبة السكر. تقع أنابيب مالبيغيان، وهي مجموعة من الأنابيب المُفَجَرة الطويلة والنحيفة، عند الحدود بين منتصف الgut والهندغوت.
  4. عزل بكتيريا الأمعاء.
    1. نقل midgut تشريح إلى أنبوب معقم 1.5 مل مع 200 ميكرولتر من عازلة 1X PBS العقيمة.
    2. طحن منتصف على مقاعد البدلاء العقيمة تماما مع آفة معقمة للسماح الكامل الإفراج عن البكتيريا الأمعاء إلى المخزن المؤقت.
    3. المسلسل تمييع المتجانس إلى ثلاثة 10 أضعاف التخفيف. إضافة 50 μL من كل تخفيف إلى LB (مرق لوريا) لوحة أجار، ومن ثم نشرها على لوحة. إذا كان يحتوي على تركيز عال من النباتات الأمعاء midgut، فمن الضروري لجعل المزيد من التخفيفات التسلسلية لاختيار المستعمرات واحدة.
    4. احتضان لوحة في 37 درجة مئوية لمدة 1-2 أيام حتى المستعمرات واحدة مرئية.
  5. تحديد الأنواع
    1. اختيار مستعمرات واحدة وتطعيمها على التوالي في قارورة مخروطية 150 مل تحتوي على 50 مل من مرق LB المتوسطة.
    2. يهز البكتيريا في 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
    3. استخراج مجموع الحمض النووي عن طريق طقم استخراج الحمض النووي الجينومي البكتيري. تضخيم 16S rDNA بواسطة تفاعل البوليميراز سلسلة (PCR).
      ملاحظة: هناك عدة شرائح في 16S rDNA التي يتم حفظها. واستنادا إلى هذه المناطق المحفوظة، يمكن تصميم التمهيديات العالمية للبكتيريا لتضخيم 16S شظايا rDNA من جميع البكتيريا. هذه الشعّارات هي محددة للبكتيريا، والفرق في المنطقة المتغيرة من 16S rDNA يمكن استخدامها للتمييز بين البكتيريا المختلفة. ولذلك، 16S rDNA يستخدم على نطاق واسع لتحديد البكتيريا.
    4. استعادة وتنقية شظايا الحمض النووي من منتجات PCR بواسطة agarose هلام electrophoresis ومجموعة استرجاع هلام التجارية.
    5. تنفيذ تسلسل الحمض النووي على شظايا الحمض النووي المنقى للحصول على تسلسلات الجينات البكتيرية.
    6. قارن تسلسل جينات 16S rRNA مع التسلسل البكتيري المتوفر في GenBank. حدد قاعدة بيانات البكتيريا والآرقية.
      ملاحظة: تم تعريف مستوى الأنواع على أنه ≥ 99٪ 16S rDNA تشابه تسلسل إلى أقرب دخول GenBank. تم تعيين العزلة إلى جنس المقابلة عندما كان لها 16S rDNA التشابه تسلسل < 99٪ و ≥ 95٪.

2. العلاج بالمضادات الحيوية وإعادة إدخال البكتيريا

  1. إعداد محلول المضادات الحيوية.
    1. تزن الكمية المطلوبة من السكروز، البنسلين، وstreptomycin لإعداد محلول السكروز 10٪ بما في ذلك 20 وحدة من البنسلين و 20 ميكروغرام من ستريبتومايسين لكل مل.
  2. تغذية البعوض مع محلول المضادات الحيوية.
    1. تخدير البعوض في 4 درجة مئوية لمدة 3-5 دقائق. نقل البعوض إلى كوب ورقة. غطي الجزء العلوي بالشاش وانزه الشاش بشريط لمنع البعوض من الهروب.
    2. تراجع كرات القطن العقيمة في محلول المضادات الحيوية ووضعها بعناية على كوب البعوض. الضغط على كرات القطن قبل استخدامها لمنع البعوض من الغرق في كرات القطن نازف.
    3. غطي كرات القطن بطبق بيتري 10 سم لمنع تبخر الرطوبة. استبدال كرات القطن مرتين في اليوم لمدة ثلاثة أيام متتالية.
  3. تأكيد فعالية العلاج بالمضادات الحيوية.
    1. وفقا للطريقة المذكورة أعلاه ، تشريح منتصف البعوض المعالجة بالمضادات الحيوية.
    2. نقل midguts تشريح إلى أنبوب معقم 1.5 مل مع 200 μL من عازلة 1X PBS العقيمة.
    3. طحن midguts في مقعد معقمة تماما مع آفة معقمة للسماح الافراج الكامل عن البكتيريا الأمعاء إلى المخزن المؤقت.
    4. استخراج الحمض النووي الميكروبي الأمعاء عن طريق طقم استخراج الحمض النووي الجينومي البكتيري.
    5. تنفيذ كمية البكتيريا بواسطة PCR الكمية في الوقت الحقيقي (qPCR) على الحمض النووي الجينومي باستخدام الاعوام البكترية eubacteria العالمي (16S rRNA F: TCCTACGGGAGGCAGCAGT و R: GGACTAGAGGTATTATCTAACTGTT).
  4. إعداد تعليق بكتيري
    1. قياس الحل البكتيري مع مقياس الطيف. أضف 1 OD (OD600) تعليق بكتيري في أنبوب 1 مل. الطرد المركزي تعليق في 5000 × ز لمدة 5 دقائق في 4 درجة مئوية.
    2. تجاهل عظمى وإضافة 1 مل من العقيمة 1X PBS العازلة إلى أنبوب 1.5 مل لتعليق هطول الأمطار.
    3. جهاز طرد مركزي عند 5000 x غم لمدة 5 دقائق عند درجة حرارة 4 درجة مئوية؛ تجاهل المناط.
    4. كرر الخطوات 2.4.2 و 2.4.3.
    5. إضافة 200 μL من معقم 1X PBS العازلة إلى هطول الأمطار البكتيرية.
    6. إضافة 600 ميكرولتر من محلول السكروز 10٪ ، 200 ميكرولتر من 10 ملم ATP (الذي يعمل بمثابة phagostimulant) ، و 200 ميكرولتر من التعليق البكتيري في أنبوب عقيم 1.5 مل. مزيج من دوامة. بدلا من ذلك، تعليق البكتيريا بيليه في الدم المعطل للحرارة.
    7. إعداد الدم المعطل للحرارة
      1. جمع الدم الطازج مع أنبوب مضاد للتخثر.
      2. خذ 2-3 مل من الدم الطازج. جهاز طرد مركزي عند 1000 x غم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية لفصل البلازما وخلايا الدم. لاحظ أن الدم سوف تضيع أثناء عملية الطرد المركزي والغسيل; هناك حاجة لحساب الاستخدام مقدما.
      3. جمع البلازما في أنبوب جديد 1.5 مل والحرارة المعطلة في 56 درجة مئوية لمدة 1 ساعة.
      4. إضافة 500 μL من معقم 1X PBS العازلة إلى 1.5 مل أنبوب لتعليق خلايا الدم. جهاز طرد مركزي في 1000 × ز لمدة 10 دقائق في 4 درجة مئوية ثم تجاهل supernatant.
      5. كرر الخطوة 2.4.7.4 مرتين.
      6. خلايا الدم resuspend مع البلازما المعطلة للحرارة للحصول على الدم المعطل للحرارة.
      7. اتبع الخطوات 2.4.1 إلى 2.4.4 للحصول على 1 OD البكتيرية بيليه.
      8. Resuspend البكتيريا بيليه مع 1 مل من الدم المعطل للحرارة.
  5. تغذية البعوض مع تعليق البكتيريا.
    1. تجويع البعوض لمدة 24 ساعة ، مما يسمح للمضادات الحيوية بالتأيض قبل تغذية البكتيريا.
    2. تجميع نظام تغذية الغشاء.
    3. ختم وحدة التغذية معقمة مع parafilm، بدلا من ذلك غشاء الكولاجين.
    4. وضع على حلقة بلاستيكية وإصلاحه مع parafilm لتجنب كسر بسبب الاحتكاك أثناء التغذية.
    5. إضافة ببطء الحل البكتيرية المعدة إلى وحدة التغذية. لاحظ أنه يمكن ملء بئر واحد فقط من وحدة التغذية ذات البئرين بالمحل وتغطي وحدة التغذية فقط من جانب المتساقط.
    6. توصيل وحدة التغذية إلى نظام تغذية محمّى إلى 37 درجة مئوية، والذي يحاكي درجة حرارة الإنسان لجذب البعوض. ضع جهاز التغذية على كوب ورقي مملوء بالبعوض وتغذى لمدة 90 دقيقة.
    7. بعد التغذية ، يُجرن البعوض عن طريق إخضاعه لدرجة حرارة 4 درجات مئوية لمدة 3-5 دقائق ويُبقي البعوض مُجَنَّدًا في طبق بيتري بارد.
    8. اختيار البعوض المناتقن بالكامل لمزيد من الدراسات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم إخراج منتصف البعوض المعالج بالمضادات الحيوية وبدون مضادات حيوية لاستخراج الحمض النووي ، وتم إجراء qPCR بأوامير بكتيريا عالمية. ويبين الشكل 1 التعبير عن البكتيريا 16S rRNA في مجموعة التحكم ومجموعة العلاج بالمضادات الحيوية. وتظهر النتائج أن حوالي 98٪ من البكتيريا الأمعاء قد أزيلت، والتعقيم الأمعاء من البنسلين وstreptomycin كان ناجحا.

مع الطرق الموصوفة ، تم عزل سلالات البكتيريا وتحديدها. C. صبغة صبغية هو غير مستنتج, oxidase إيجابية الغرام سلبية عصية هوائية, التي تنتمي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وقد وجدت البحوث على التفاعلات الميكروب المضيف أن الميكروبات الأمعاء المختلفة تؤثر على علم وظائف الأعضاء المضيف من خلال آليات متباينة. هذه المادة يقدم طريقة للتحقيق في دور كل من البعوض ميكروب الأمعاء، بما في ذلك تشريح البعوض منتصف، واستزراع بكتيريا الأمعاء زراعة، والعلاج بالمضادات الحيوية، وإعادة إدخال البكتيريا ذات الاهتمام.

من أجل العلاج الناجح بالمضادات الحيوية، يجب مراعاة التفاصيل التالية عند إجراء التجربة. في هذا البروتوكول، تم علاج البعوض باستخدام كرات القطن مبللة مع محلول السكروز 10٪ بما...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ولا يوجد لدى أصحاب البلاغ أي تضارب في المصالح للكشف عنه.

شكر وتقدير

وقد دعم هذا العمل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (منحة رقم 81902094، 81600497)، ومشروع خطة العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة هونان (2019RS1036).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الأدينوزين 5 & بريمي ؛ -ثلاثي الفوسفات ثنائي الصوديوم ملح هيدراتسيجماA2383الأدينوزين 5 &-ثلاثي الفوسفات ثنائي الصوديوم تم استخدام هيدرات ملح ثنائي الصوديوم لتحضير المحاليل القياسية الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP
الزاعجة المصريةأنثى البعوض
أنبوب مضاد للتخثرBD Vacutainer363095المركزي للدم
الطازج سانجون BiotechF601620-00101.5 مل ، كرات قطنية
مناديل طحن الأنسجة يمكن التخلص منها مدقةسانجون للتكنولوجيا الحيويةF619072-000170 مم بطول ، مخروطي ، أزرق ، معقم
إيثانول باينيتخفيفه إلى 75٪ ملقط الإيثانول
RWDF11029تشريح
غشاء Hemotek مكونات نظامHemotekلنظام التغذية ، بما في ذلك   ؛ جهاز التحكم في درجة الحرارة Hemotek ، تجميع مبيت التغذية ، وحدة التغذية المعدنية المجمعة.
حاضنةZQZY-78AN
التطعيمSangon BiotechF619312-000110 & ل ، مسحوق أصفر
LB AgarSangon BiotechA507003Tryptone 10.0 جم ، مستخلص الخميرة 5.0 جم ، كلوريد الصوديوم 10.0 جم ، أجار 15.0 جم.
LB مرق مسحوقسانجون للتكنولوجيا الحيويةA507002التربتون 10.0 جم ، مستخلص الخميرة 5.0 جم ، كلوريد الصوديوم 10.0 جم.
مجهرZeissStemi508
كوبضع البعوض
بارافيلمسانجون للتكنولوجيا الحيويةF1040024 بوصات 125 قدم
طبق بتريسانجون للتكنولوجيا الحيويةF611203
البنسلين G ملح بروكايين هيدراتسانجون للتكنولوجيا الحيويةA606248مسحوق أبيض. قابل للذوبان في الماء ، قابل للذوبان في الميثانول ، قابل للذوبان قليلا في الماء ، الإيثانول
ماصة واحدة ChannalGilson
Streptomycin كبريتاتسانجون للتكنولوجيا الحيويةA610494كبريتات الستربتومايسين هي مضاد حيوي للجلوكوزامين يتداخل مع تخليق البروتينات بدائية النواة.
السكروزسانجون للتكنولوجيا الحيويةA502792قابل للذوبان في الماء والإيثانول والميثانول ، قابل للذوبان بشكل طفيف في الجلسرين والبيريدين.
طقم الحمض النووي للبكتيريا TIANampالحمض النووي TIANGENDP302  ؛
المنفعة النسيج البعوض المعاوضة خلاط دوامة بيضاء
Scintic IndustriesS1-0246
1.5 مل أنبوب EPSangon BiotechF600620
10X PBS عازلةSangonBiotech E607016هذا المنتج هو حل 10X. يرجى تخفيفه 10 مرات قبل الاستخدام. قيمة الأس الهيدروجيني هي 7.4.
) جمع أنبوب الطرد طبيعية ، متخرجة ، معقمة مطلق تغذية شاكر حلقات ورقي استخراج

المراجع

  1. Tolle, M. A. Mosquito-borne diseases. Current Problems in Pediatric and Adolescent Health Care. 39 (4), 97-140 (2009).
  2. Wu, P., Yu, X., Wang, P., Cheng, G. Arbovirus lifecycle in mosquito: acquisition, propagation and transmission. Expert Reviews in Molecular Medicine. 21, 1(2019).
  3. Jayakrishnan, L., Sudhikumar, A. V., Aneesh, E. M. Role of gut inhabitants on vectorial capacity of mosquitoes. Journal of Vector Borne Diseases. 55 (2), 69(2018).
  4. Jupatanakul, N., Sim, S., Dimopoulos, G. The insect microbiome modulates vector competence for arboviruses. Viruses. 6 (11), 4294-4313 (2014).
  5. Moro, C. V., Tran, F. H., Raharimalala, F. N., Ravelonandro, P., Mavingui, P. Diversity of culturable bacteria including Pantoea in wild mosquito Aedes albopictus. BMC Microbiology. 13 (1), 70(2013).
  6. Chouaia, B., et al. Molecular evidence for multiple infections as revealed by typing of Asaia bacterial symbionts of four mosquito species. Applied and Environmental Microbiology. 76 (22), 7444-7450 (2010).
  7. Terenius, O., et al. Midgut bacterial dynamics in Aedes aegypti. FEMS Microbiology Ecology. 80 (3), 556-565 (2012).
  8. Bando, H., et al. Intra-specific diversity of Serratia marcescens in Anopheles mosquito midgut defines Plasmodium transmission capacity. Scientific Reports. 3, 1641(2013).
  9. Telang, A., Skinner, J., Nemitz, R. Z., McClure, A. M. Metagenome and culture-based methods reveal candidate bacterial mutualists in the Southern house mosquito (Diptera: Culicidae). Journal of Medical Entomology. 55 (5), 1170-1181 (2018).
  10. Wang, Y., Gilbreath, T. M., Kukutla, P., Yan, G., Xu, J. Dynamic gut microbiome across life history of the malaria mosquito Anopheles gambiae in Kenya. PloS One. 6 (9), (2011).
  11. Xiao, X., et al. A Mesh-Duox pathway regulates homeostasis in the insect gut. Nature Microbiology. 2 (5), 17020(2017).
  12. Guégan, M., et al. Short-term impacts of anthropogenic stressors on Aedes albopictus mosquito vector microbiota. FEMS Microbiology Ecology. 94 (12), 188(2018).
  13. Valzania, L., Coon, K. L., Vogel, K. J., Brown, M. R., Strand, M. R. Hypoxia-induced transcription factor signaling is essential for larval growth of the mosquito Aedes aegypti. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), 457-465 (2018).
  14. Coon, K. L., Vogel, K. J., Brown, M. R., Strand, M. R. Mosquitoes rely on their gut microbiota for development. Molecular Ecology. 23 (11), 2727-2739 (2014).
  15. de O Gaio, A., et al. Contribution of midgut bacteria to blood digestion and egg production in Aedes aegypti (diptera: culicidae)(L). Parasites & Vectors. 4 (1), 105(2011).
  16. Ramirez, J. L., et al. Reciprocal tripartite interactions between the Aedes aegypti midgut microbiota, innate immune system and dengue virus influences vector competence. PLoS Neglected Tropical Diseases. 6 (3), 1561(2012).
  17. Dong, Y., Morton, J. C., Ramirez, J. L., Souza-Neto, J. A., Dimopoulos, G. The entomopathogenic fungus Beauveria bassiana activate toll and JAK-STAT pathway-controlled effector genes and anti-dengue activity in Aedes aegypti. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 42 (2), 126-132 (2012).
  18. Anglero-Rodriguez, Y. I., et al. An Aedes aegypti-associated fungus increases susceptibility to dengue virus by modulating gut trypsin activity. Elife. 6, 28844(2017).
  19. Wu, P., et al. A gut commensal bacterium promotes mosquito permissiveness to arboviruses. Cell Host & Microbe. 25 (1), 101-112 (2019).
  20. Möhlmann, T. W., et al. Impact of gut bacteria on the infection and transmission of pathogenic arboviruses by biting midges and mosquitoes. Microbial Ecology. , (2020).
  21. Llorca, M., Gros, M., Rodríguez-Mozaz, S., Barceló, D. Sample preservation for the analysis of antibiotics in water. Journal of Chromatography. A. 1369, 43-51 (2014).
  22. Berendsen, B., Elbers, I., Stolker, A. Determination of the stability of antibiotics in matrix and reference solutions using a straightforward procedure applying mass spectrometric detection. Food Additives & Contaminants: Part A, Chemistry, Analysis, Control, Exposure & Risk Assessment. 28 (12), 1657-1666 (2011).
  23. Hill, C. L., Sharma, A., Shouche, Y., Severson, D. W. Dynamics of midgut microflora and dengue virus impact on life history traits in Aedes aegypti. Acta Tropica. 140, 151-157 (2014).
  24. Eng, M. W., et al. Multifaceted functional implications of an endogenously expressed tRNA fragment in the vector mosquito Aedes aegypti. PLoS Neglected Tropical Diseases. 12 (1), 0006186(2018).
  25. Kajla, M. K., Barrett-Wilt, G. A., Paskewitz, S. M. Bacteria: A novel source for potent mosquito feeding-deterrents. Science Advances. 5 (1), 6141(2019).
  26. Gonçalves, G. G. A., et al. Use of MALDI-TOF MS to identify the culturable midgut microbiota of laboratory and wild mosquitoes. Acta Tropica. 200, 105174(2019).
  27. Kuss, S. K., et al. Intestinal microbiota promote enteric virus replication and systemic pathogenesis. Science. 334 (6053), New York, N.Y. 249-252 (2011).
  28. Rani, A., Sharma, A., Rajagopal, R., Adak, T., Bhatnagar, R. K. Bacterial diversity analysis of larvae and adult midgut microflora using culture-dependent and culture-independent methods in lab-reared and field-collected Anopheles stephensi-an Asian malarial vector. BMC Microbiology. 9 (1), (2009).
  29. Apte-Deshpande, A., Paingankar, M., Gokhale, M. D., Deobagkar, D. N. Serratia odorifera a midgut inhabitant of Aedes aegypti mosquito enhances its susceptibility to dengue-2 virus. PLoS One. 7 (7), 40401(2012).
  30. Behura, S. K. Mosquito microbiota and metagenomics, and its relevance to disease transmission. Nature. 436, 257-260 (2013).
  31. Dickson, L. B., et al. Diverse laboratory colonies of Aedes aegypti harbor the same adult midgut bacterial microbiome. Parasites & Vectors. 11 (1), 1-8 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تشريح المعي المتوسط للبعوضعزل المستعمرات البكتيريةالعلاج بالمضادات الحيويةتسلسل 16S rRNAتحليل ميكروبيوم الأمعاءإعادة إدخال البكتيريامقايسة وحدة تكوين المستعمرةالتقنية العقيمةفسيولوجيا البعوض