مقالة منهجية

تحسين نموذج ماوس انسداد الوريد الشبكي للحد من التباين

DOI:

10.3791/62980

⸱

أغسطس 6, 2021

 ,  ,  ,  , 
1Department of Pathology & Cell Biology; Vagelos College of Physicians and Surgeons, Columbia University, 2Department of Molecular Pharmacology and Therapeutics; Vagelos College of Physicians and Surgeons, Columbia University, 3Department of Neurology; Vagelos College of Physicians and Surgeons, Columbia University, 4The Taub Institute for Research on Alzheimer’s Disease and the Aging Brain; Vagelos College of Physicians and Surgeons, Columbia University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا ، نصف بروتوكولا محسنا لانسداد الوريد الشبكي باستخدام وردة البنغال ونظام مجهر تصوير الشبكية الموجه بالليزر مع توصيات لزيادة قابليته للتكاثر في السلالات المعدلة وراثيا.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

غالبا ما تستخدم نماذج الفئران لانسداد الوريد الشبكي (RVO) في طب العيون لدراسة إصابة نقص تروية نقص الأكسجين في الشبكية العصبية. في هذا التقرير ، يتم توفير طريقة مفصلة تشير إلى الخطوات الحاسمة مع توصيات للتحسين لتحقيق معدلات انسداد ناجحة باستمرار عبر سلالات الفئران المعدلة وراثيا المختلفة. يتكون نموذج الماوس RVO بشكل أساسي من إعطاء صبغة محسسة للضوء عن طريق الوريد متبوعة بالتخثير الضوئي بالليزر باستخدام مجهر تصوير شبكية متصل بليزر موجه للعيون. تم تحديد ثلاثة متغيرات كمحددات لاتساق الانسداد. من خلال ضبط وقت الانتظار بعد إدارة البنغال الوردية وتحقيق التوازن بين خط الأساس وإخراج الليزر التجريبي ، يمكن أن يكون التباين عبر التجارب محدودا وتحقيق معدل نجاح أعلى للانسداد. يمكن استخدام هذه الطريقة لدراسة أمراض الشبكية التي تتميز بوذمة الشبكية وإصابة نقص تروية نقص الأكسجين. بالإضافة إلى ذلك ، نظرا لأن هذا النموذج يؤدي إلى إصابة الأوعية الدموية ، فيمكن تطبيقه أيضا لدراسة الأوعية الدموية العصبية وموت الخلايا العصبية والالتهابات.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

انسداد الوريد الشبكي (RVO) هو مرض شائع في الأوعية الدموية في شبكية العين أثر على ما يقرب من 28 مليون شخص في جميع أنحاء العالم في عام 20151. يؤدي RVO إلى تدهور الرؤية وفقدانها لدى البالغين وكبار السن في سن العمل ، مما يمثل مرضا مستمرا يهدد البصر ويقدر أنه سيزداد خلال العقد القريب. بعض الأمراض المميزة ل RVO تشمل إصابة نقص تروية نقص الأكسجين ، وذمة الشبكية ، والالتهاب ، وفقدان الخلايا العصبية2. حاليا ، الخط الأول من العلاج لهذا الاضطراب هو من خلال إعطاء مثبطات عامل النمو البطاني الوعائي (VEGF). بينما ساعد العلاج المضاد ل VEGF في تحسين وذمة الشبكية ، لا يزال العديد من المرضى يواجهون انخفاض الرؤية3. لمزيد من فهم الفيزيولوجيا المرضية لهذا المرض واختبار خطوط العلاج الجديدة المحتملة ، هناك حاجة لتشكيل بروتوكول نموذج فأر RVO وظيفي ومفصل لسلالات الفئران المختلفة.

تم تطوير نماذج الماوس باستخدام نفس جهاز الليزر المستخدم في المرضى من البشر ، مقترنا بنظام تصوير تم تحجيمه إلى الحجم الصحيح للماوس. تم الإبلاغ عن نموذج الماوس هذا من RVO لأول مرة في 2007 4 وتم تأسيسه بواسطة Ebneter وآخرين 4,5. في النهاية ، تم تحسين النموذج بواسطة Fuma et al. لتكرار المظاهر السريرية الرئيسية ل RVO مثل وذمة الشبكية6. منذ أن تم الإبلاغ عن النموذج لأول مرة ، استخدمته العديد من الدراسات باستخدام إدارة صبغة محسسة للضوء متبوعة بالتخثير الضوئي لأوردة الشبكية الرئيسية بالليزر. ومع ذلك ، فإن كمية ونوع الصبغة التي يتم إعطاؤها ، وقوة الليزر ، ووقت التعرض تختلف اختلافا كبيرا عبر الدراسات التي استخدمت هذه الطريقة. يمكن أن تؤدي هذه الاختلافات في كثير من الأحيان إلى زيادة التباين في النموذج ، مما يجعل من الصعب تكراره. حتى الآن ، لا توجد دراسات منشورة تحتوي على تفاصيل محددة حول السبل المحتملة لتحسينها.

يقدم هذا التقرير منهجية مفصلة لنموذج فأر RVO في سلالة C57BL / 6J وسلالة كاسباز 9 البطانية القابلة للحث على عقار تاموكسيفين (iEC Casp9KO) مع خلفية C57BL / 6J وذات صلة بأمراض RVO كسلالة مرجعية للفأر المعدل وراثيا. أظهرت دراسة سابقة أن التنشيط غير المبرمج للكابتيز البطاني caspase-9 يحرض على وذمة الشبكية ويعزز موت الخلايا العصبية8. ساعدت تجربة استخدام هذه السلالة في تحديد وتقديم نظرة ثاقبة نحو التعديلات المحتملة لتكييف نموذج فأر RVO ، والذي يمكن تطبيقه على سلالات أخرى معدلة وراثيا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتبع هذا البروتوكول بيان جمعية أبحاث الرؤية وطب العيون (ARVO) لاستخدام الحيوانات في أبحاث العيون والرؤية. تمت الموافقة على تجارب القوارض ومراقبتها من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوانات (IACUC) بجامعة كولومبيا.

ملاحظة: استخدمت جميع التجارب ذكور فئران عمرها شهرين تزن حوالي 20 جم.

1. إعداد وإدارة عقار تاموكسيفين للاستئصال الجيني المستحث للجينات floxed

ملاحظة: يمكن أن يتأثر قطر وعاء الشبكية بوزن الحيوان. تأكد من أن جميع الحيوانات المستخدمة في التجربة ذات أوزان متشابهة.

  1. تمييع تاموكسيفين في زيت الذرة إلى تركيز 20 ملغ / مل.
    ملاحظة: تاموكسيفين مادة سامة وحساسة للضوء. يحفظ بعيدا عن الضوء ، على سبيل المثال ، باستخدام ورق الألمنيوم.
  2. دوامة الحل لبضع ثوان.
  3. اتركيه في الفرن على حرارة 55 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة.
    ملاحظة: تأكد من أن عقار تاموكسيفين قد ذاب تماما. قد تكون دوامة إضافية ضرورية.
  4. تخزين الحل في 4 °C لمدة تصل إلى 1 أسبوع.
  5. استخدم حقنة سعة 1 مل مزودة بإبرة 26 جم لحقن عقار تاموكسيفين. نظف منطقة الحقن بنسبة 70٪ إيثانول.  يتم تطبيق 2 ملغ من عقار تاموكسيفين (100 ميكرولتر من 20 ملغ/مل) داخل الصفاق (IP) مرة واحدة يوميا للفترة المحددة وفقا لخط كري المحرض المحدد.
  6. اترك يومين من الراحة للحيوانات قبل بدء التجارب.

2. تحضير الكواشف للتخثير الضوئي بالليزر

  1. روز البنغال
    ملاحظة: روز البنغال حساس للضوء. يخزن في الظلام حتى الاستخدام ويحضر طازجا للحصول على أفضل النتائج.
    1. تحضير الورد البنغال عن طريق تخفيفه إلى 5 ملغ / مل في محلول ملحي معقم وترشيحه من خلال مرشح حقنة 0.2 ميكرومتر.
    2. تحضير حقنة 1 مل مزودة بإبرة 26 غرام مع البنغال الوردي.
  2. الكيتامين / الزيلازين
    1. يتم تخفيف الكيتامين والزيلازين في محلول ملحي معقم وفقا للتركيزات التالية: الكيتامين (80-100 ملغ/كغ) وزيلازين (5-10 ملغ/كغ).
  3. كاربروفين
    1. تمييع كاربروفين إلى 1 ملغ / مل في محلول ملحي معقمة.
    2. تحضير حقنة 1 مل مزودة بإبرة 26 غرام مع كاربروفين.
  4. محلول ملحي معقم
    1. تحضير حقنة سعة 5 مل مزودة بإبرة 26 جم مع محلول ملحي معقم.

3. إعداد الليزر

  1. تعامل برفق مع كابل الألياف الضوئية وقم بتوصيله بصندوق التحكم بالليزر ومحول الليزر لمجهر تصوير الشبكية.
  2. قم بتشغيل صندوق مصباح مجهر تصوير الشبكية.
  3. قم بتشغيل الكمبيوتر وافتح برنامج التصوير.
  4. ضبط توازن اللون الأبيض باستخدام قطعة من الورق الأبيض ووضعها أمام قطعة عين الفأرة والنقر على ضبط في برنامج التصوير.
  5. قم بتشغيل صندوق التحكم بالليزر عن طريق تدوير المفتاح واتباع الإرشادات التي تظهر على شاشة صندوق التحكم بالليزر.
    ملاحظة: الليزر المستخدم في هذه التجربة هو من الفئة 3B ويمكن أن يسبب تلف العين. ارتد نظارات واقية عند تشغيل الليزر.
  6. تحقق من طاقة الليزر الأساسية.
    1. استخدم مقياس طاقة الليزر.
    2. اضبط شاشة صندوق التحكم بالليزر على المعلمات التالية: 50 ميجاوات و 2000 مللي ثانية.
    3. قم بتشغيل الليزر وضع عداد الطاقة أمام العدسة.
      ملاحظة: تأكد من إطفاء ضوء المجهر أثناء اختبار طاقة الليزر الأساسية.
    4. اضغط على دواسة مفتاح القدم لتنشيط الليزر.
    5. استهدف أن تكون قراءة طاقة الليزر 13-15 ميجاوات.
      ملاحظة: ستحدد قراءات طاقة الليزر معدل نجاح انسداد الوريد الشبكي. إذا كانت قراءة طاقة الليزر منخفضة جدا ، فيمكن إجراء تعديلات على طاقة ووقت التعرض لليزر. انظر الجدول 1 للاطلاع على التوصيات.
  7. اضبط طاقة الليزر التجريبية عن طريق إعداد شاشة صندوق التحكم بالليزر للمعلمات التالية: 100 ميجاوات ، 1000 مللي ثانية.
  8. أطفئ الليزر.
    ملاحظة: من أجل السلامة ومنع ارتفاع درجة الحرارة ، من الأفضل إبقاء الليزر بعيدا بين الفئران.

4. حقن الوريد ذيل الفأر من وردة البنغال

  1. صب 300 مل من الماء في دورق سعة 500 مل.
  2. سخني الدورق في فرن الميكروويف لمدة 1 دقيقة.
  3. ضع الشاش في الماء الدافئ في الدورق.
  4. ضع الماوس في مقيد.
  5. اضغط على الشاش في ذيل الفأر برفق وابحث عن الأوردة المتوسعة. تطهير موقع الحقن باستخدام مسح الكحول بعد تمدد الماء الدافئ.
  6. أدخل الإبرة في موقع الحقن واسحب المحقنة للتأكد من أنك في الوريد. بعد ذلك ، قم بحقن وريد ذيل الفأر ، مع إعطاء الكمية الصحيحة وفقا لوزن الحيوان (37.5 مجم / كجم). اضغط على موقع الحقن لتجنب ورم دموي أو نزيف. امسح الموقع.
  7. حرر الماوس من المقيد وأعده إلى القفص.
  8. اترك 8 دقائق حتى تنتشر وردة البنغال قبل حقن التخدير.
    ملاحظة: سيوفر هذا ما مجموعه 10 دقائق بين حقن البنغال الوردي وتشعيع الليزر.

5. انسداد الأوردة الرئيسية

  1. قم بتشغيل منصة الماوس الساخنة.
  2. أضف قطرة واحدة من فينيليفرين وتروبيكاميد في كل عين.
  3. حقن 150 ميكرولتر من مادة التخدير والكيتامين (80-100 ملغم / كغم) والزيلازين (5-10 ملغم / كغم) IP.
    ملاحظة: خلال هذا الإجراء ، تم إعطاء الماوس حقنتين IP. ومن ثم ، تم تناوب الجانبين. تم إعطاء حقن IP للتخدير في الربع السفلي الأيمن من البطن ، وتم حقن المحلول الملحي في الربع السفلي الأيسر من البطن. يوصى بسحب المحقنة قبل الحقن للتأكد من أن الإبرة في البطن وليس في أي أعضاء.
  4. قرصة اصبع القدم الحيوان لتحديد عمق التخدير والانتظار حتى لا يستجيب.
  5. أضف قطرة واحدة من بروباراكائين هيدروكلوريد لكل عين (مسكن).
  6. أضف مرهم جل لكلتا العينين.
  7. حقن 150 ميكرولتر من كاربروفين تحت الجلد بين الأذنين.
  8. استيعاب الماوس على المنصة.
  9. اضبط المنصة حتى تصبح رؤية قاع الشبكية واضحة ومركزة.
  10. عد الأوردة الشبكية والتقط صورة لقاع العين.
    ملاحظة: الأوردة الشبكية أغمق وأوسع من الشرايين. الأوردة والشرايين البديلة. ومع ذلك ، في بعض الأحيان يمكن أن يكون هناك شريان متفرع بالقرب من العصب البصري ، وبالتالي ، شريانين متجاورين.
  11. قم بتشغيل الليزر واستهدف الوريد الشبكي على بعد حوالي 375 ميكرومتر من القرص البصري.
  12. قم بتشعيع الوعاء عن طريق الضغط على مفتاح القدم وتحريك شعاع الليزر قليلا حتى 100 ميكرومتر. كرر هذه الخطوة ثلاث مرات وحرك شعاع الليزر بعد كل نبضة حتى لا يتركز التشعيع في مكان واحد.
  13. كرر التشعيع على السفن الرئيسية الأخرى لتحقيق 2-3 انسداد.

6. تحديد عدد الأوردة المسدودة في اليوم 0

  1. أطفئ المصباح بعد تشعيع الأوعية وانتظر لمدة 10 دقائق.
    ملاحظة: التعرض للضوء يمكن أن يسبب تلف الشبكية والالتهابات. أطفئ المصباح أثناء وقت الانتظار لتقليل التعرض7.
  2. أعد تشغيل المصباح واحسب عدد الأوردة المسدودة.
  3. التقط صورة لقاع العين.

7. الرعاية اللاحقة

  1. حقن 1 مل من محلول ملحي معقم IP.
    ملاحظة: انظر تفاصيل حقن IP في القسم 5، الخطوة 3.
  2. أضف قطرات العين المزلقة إلى كلتا العينين.
  3. أضف مرهم جل لكلتا العينين.
  4. راقب الفأر وهو يتعافى من التخدير ، ولا تعيده إلى القفص مع الحيوانات الأخرى حتى يتعافى تماما. يمكن إعطاء كاربروفين (5 ملغ / كغ) يوميا لمدة تصل إلى 2 أيام بعد العملية. إذا تم تطبيقه على البشر ، فإن الألم ليس من أعراض RVO.
    ملاحظة: لا تترك الحيوانات دون مراقبة حتى تتعافى تماما من التخدير.

8. تقييم وذمة الشبكية عن طريق التصوير المقطعي للتماسك البصري (OCT)

ملاحظة: يمكن القيام بهذه الخطوة في الوقت الذي يهمه المحقق. ذروة وذمة الشبكية للماوس C57BL / 6J هي 1 يوم بعد إجراء RVO. قد تختلف هذه النقطة الزمنية وفقا لخلفية الماوس.

  1. قم بتشغيل صندوق ضوء مجهر تصوير الشبكية وجهاز OCT ومنصة الماوس الساخنة.
  2. في اليوم التالي للانسداد ، اتبع الخطوات من 5.2 إلى 5.7 لتحضير الحيوان.
  3. افتح برامج التصوير و OCT.
  4. في برنامج OCT ، اضبط التنبيه على 5.
  5. خذ OCT على بعد 75 ميكرومتر من الحرق أو 4 نقرات.
  6. التقط صور OCT في أربعة أرباع من شبكية العين.
  7. تحليل صور OCT باستخدام برنامج التتبع.
  8. قارن سمك الشبكية للتدابير قبل التشعيع إلى 1 يوم بعد RVO أو في نقطة الاهتمام الزمنية.
    ملاحظة: عند تحليل البيانات ، ضع في اعتبارك عدد الأوردة المشععة لأن هذا يمكن أن يؤثر على تطور وذمة الشبكية. ثم يتم القتل الرحيم للحيوانات عن طريق إعطاء مخدر تليها جراحة التروية غير البقاء على قيد الحياة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يهدف نموذج الماوس RVO إلى تحقيق انسداد في الأوردة الشبكية بنجاح ، مما يؤدي إلى إصابة نقص التأكسج ، وانهيار حاجز الشبكية الدموي ، وموت الخلايا العصبية ، وذمة الشبكية8. يوضح الشكل 1 جدولا زمنيا للخطوات لضمان قابلية التكرار ، وتخطيطيا للتصميم التجريبي ، ويحدد الخطوات التي يمكن تحسينها بشكل أكبر اعتمادا على الأسئلة التجريبية. الخطوات الثلاث الرئيسية التي يمكن تعديلها هي وقت الانتظار بعد إدارة البنغال الوردية ، وطاقة الليزر الأساسية ، وإخراج الليزر التجريبي. في هذا التقرير...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوفر نموذج RVO للماوس وسيلة لفهم أمراض RVO بشكل أكبر واختبار العلاجات المحتملة. بينما يستخدم نموذج الماوس RVO على نطاق واسع في هذا المجال ، هناك حاجة إلى بروتوكول تفصيلي حالي للنموذج يعالج تباينه ويصف تحسين النموذج. هنا ، نقدم دليلا بأمثلة من التجربة حول ما يمكن تغييره للحصول على النتائج الأكثر اتساقا عبر مجموعة من التجارب وتقديم بيانات موثوقة.

العنصران الأساسيان في نموذج الماوس RVO هما إخراج الليزر والحقن الوريدي الناجح لصبغة المحسس للضوء. لإنتاج الطاقة اللازمة للحث على التخثر عندما يستهدف ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ويعلن أصحاب البلاغ أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
تم دعم هذا العمل من قبل برنامج زمالة أبحاث الخريجين التابع لمؤسسة العلوم الوطنية (NSF-GRFP) DGE - 1644869 (إلى CCO) ، والمعهد الوطني للعيون (NEI) 5T32EY013933 (إلى AMP) والمعهد الوطني للشيخوخة (NIA) R21AG063012 (إلى CMT).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
كاربروفينريماديلNADA # 141-199يحافظ على 4 درجات ؛ C
زيت الذرةSigma-AldrichC8267
كابل تصحيح الأليافThor LabsM14L02
GenTealAlcon00658 06401
الكيتامين هيدروكلوريدهنري شاينNDC: 11695-0702-1
Lasercheckمتماسك1098293
فينيليفرينأكورنNDCL174478-201-15
Phoneix Micron IV مع Meridian,  وحدات StreamPix و OCTمجموعة تكنولوجيا Phoenix
Proparacaine HydrochlorideAkornNDC: 17478-263-12تحافظ على 4 درجات ؛ C
RefreshAllergan94170
Rose BengalSigma-Aldrich330000-5G
TamoxifenSigma-AldrichT5648-5GTropicamide Akorn NDC
: 174478-102-12
XylazineAkornNDCL 59399-110-20

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Song, P., Xu, Y., Zha, M., Zhang, Y., Rudan, I. Global epidemiology of retinal vein occlusion: a systematic review and meta-analysis of prevalence, incidence, and risk factors. Journal of Global Health. 9 (1), 010427(2019).
  2. Ehlers, J. P., Fekrat, S. Retinal vein occlusion: beyond the acute event. Survey of Ophthalmology. 56 (4), 281-299 (2011).
  3. Iftikhar, M., et al. Loss of peak vision in retinal vein occlusion patients treated for macular edema. American Journal of Ophthalmology. 205, 17-26 (2019).
  4. Zhang, H., et al. Development of a new mouse model of branch retinal vein occlusion and retinal neovascularization. Japanese Journal of Ophthalmology. 51 (4), 251-257 (2007).
  5. Ebneter, A., Agca, C., Dysli, C., Zinkernagel, M. S. Investigation of retinal morphology alterations using spectral domain optical coherence tomography in a mouse model of retinal branch and central retinal vein occlusion. PLoS One. 10 (3), 0119046(2015).
  6. Fuma, S., et al. A pharmacological approach in newly established retinal vein occlusion model. Scientific Reports. 7, 43509(2017).
  7. Zhang, C., et al. Activation of microglia and chemokines in light-induced retinal degeneration. Molecular Vision. 11, 887-895 (2005).
  8. Avrutsky, M. I., et al. Endothelial activation of caspase-9 promotes neurovascular injury in retinal vein occlusion. Nature Communications. 11 (1), 3173(2020).
  9. Nicholson, L., et al. Diagnostic accuracy of disorganization of the retinal inner layers in detecting macular capillary non-perfusion in diabetic retinopathy. Clinical & Experimental Ophthalmology. 43 (8), 735-741 (2015).
  10. Moein, H. R., et al. Optical coherence tomography angiography to detect macular capillary ischemia in patients with inner retinal changes after resolved diabetic macular edema. Retina. 38 (12), 2277-2284 (2018).
  11. Hirabayashi, K., et al. Development of a novel model of central retinal vascular occlusion and the therapeutic potential of the adrenomedullin-receptor activity-modifying protein 2 system. American Journal of Pathology. 189 (2), 449-466 (2019).
  12. Martin, G., Conrad, D., Cakir, B., Schlunck, G., Agostini, H. T. Gene expression profiling in a mouse model of retinal vein occlusion induced by laser treatment reveals a predominant inflammatory and tissue damage response. PLoS One. 13 (3), 0191338(2018).
  13. Drechsler, F., et al. Effect of intravitreal anti-vascular endothelial growth factor treatment on the retinal gene expression in acute experimental central retinal vein occlusion. Ophthalmic Research. 47 (3), 157-162 (2012).
  14. Genevois, O., et al. Microvascular remodeling after occlusion-recanalization of a branch retinal vein in rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (2), 594-600 (2004).
  15. Khayat, M., Lois, N., Williams, M., Stitt, A. W. Animal models of retinal vein occlusion. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (14), 6175-6192 (2017).
  16. Nguyen, V. P., Li, Y., Zhang, W., Wang, X., Paulus, Y. M. High-resolution multimodal photoacoustic microscopy and optical coherence tomography image-guided laser induced branch retinal vein occlusion in living rabbits. Scientific Reports. 9 (1), 10560(2019).
  17. Sayyed, S. A. A. R., Beedri, N. I., Kadam, V. S., Pathan, H. M. Rose Bengal sensitized bilayered photoanode of nano-crystalline TiO2-CeO2 for dye-sensitized solar cell application. Applied Nanoscience. 6 (6), 875-881 (2015).
  18. Emmart, E. W. Observations on the absorption spectra of fluorescein, fluorescein derivatives and conjugates. Archives of Biochemistry and Biophysics. 73 (1), 1-8 (1958).
  19. Yu, L., Liu, Z., Liu, S., Hu, X., Liu, L. Fading spectrophotometric method for the determination of polyvinylpyrrolidone with eosin Y. Chinese Journal of Chemistry. 27 (8), 1505-1509 (2009).
  20. MacDonald, D. The ABCs of RVO: a review of retinal venous occlusion. Clinical & Experimental Optometry. 97 (4), 311-323 (2014).
  21. Stahl, A., et al. Postnatal weight gain modifies severity and functional outcome of oxygen-induced proliferative retinopathy. American Journal of Pathology. 177 (6), 2715-2723 (2010).
  22. LaVail, M. M., Gorrin, G. M., Repaci, M. A. Strain differences in sensitivity to light-induced photoreceptor degeneration in albino mice. Current Eye Research. 6 (6), 825-834 (1987).
  23. Jeffery, G. The albino retina: an abnormality that provides insight into normal retinal development. Trends in Neurosciences. 20 (4), 165-169 (1997).
  24. Kinnear, P. E., Jay, B., Witkop, C. J. Albinism. Survey of Ophthalmology. 30 (2), 75-101 (1985).
  25. Stahl, A., et al. Postnatal weight gain modifies severity and functional outcome of oxygen-induced proliferative retinopathy. American Journal of Pathology. 177 (6), 2715-2723 (2010).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة