تحليل البيلة البروتينية ، والتسلل الكلوي للكريات البيضاء ، والترسب الكلوي للبروتينات في الفئران المعرضة للذئبة MRL / lpr

الوظيفة الأساسية للكلية هي القضاء على المواد السامة عن طريق البول مع الحفاظ على توازن الماء والأملاح¹. هذه الوظيفة مهددة في المرضى الذين يعانون من الذئبة الحمامية الجهازية (SLE) ، مما يؤدي إلى ما يسمى التهاب الكلية الذئبة (LN). LN هو نتيجة لمهاجمة الجهاز المناعي للكلى ، مما يؤدي إلى التهاب الكلى المستمر ، وبالتالي فقدان قدرته على تنظيف النفايات من الدم وتنظيم تركيزات الملح والسوائل. هذا سيؤدي في النهاية إلى الفشل الكلوي ، والذي يمكن أن يكون قاتلا. أثناء العملية الكلوية ، يتم تجنيد الخلايا البائية المتداولة والخلايا التائية والخلايا الوحيدة في الكلى ، وإفراز الكيموكينات والسيتوكينات والأجسام المضادة الذاتية المكونة للمجمع المناعي. هذا يؤدي في نهاية المطاف إلى تلف الخلايا البطانية ، والإصابات الغشائية ، وضمور أنبوبي كلوي ، وتليف².

MRL / Mp-Fas^lpr (MRL / lpr) الفئران المعرضة للذئبة هي نموذج فأر كلاسيكي يظهر علامات سريرية تشبه الذئبة تشبه SLE³ البشري. كان لهذا النموذج دور فعال في فهم أحد الأسباب الرئيسية للوفيات لدى مرضى الذئبة الحمراء ، التهاب الكلية الذئبي (LN)⁴. في كل من الذئبة الحمراء البشرية والفأرية ، يتميز LN بالتهاب تدريجي ناتج عن ترسب كلوي للمجمعات المناعية ، يليه تنشيط مكمل ، وتجنيد الخلايا الالتهابية ، وفقدان وظائف الكلى⁵. ترسب المركب المناعي هو الخطوة الأولى للحث على إنتاج الكيموكين والسيتوكين بواسطة الخلايا الكلوية الجوهرية ، مما يوسع الاستجابة الالتهابية عن طريق تجنيد الخلايا المناعية⁶. يقدم البروتوكول الحالي العديد من التقنيات لمتابعة تطور أمراض الكلى التي تحلل تسلل الخلايا والترسب المعقد المناعي.

يسمح البول الذي يتم جمعه كل أسبوع بالكشف عن الدورة الزمنية للبيلة البروتينية وتصورها قبل وأثناء وبعد ظهور مرض الذئبة. يمكن للبيلة البروتينية كعلامة حيوية تحديد التقدم البيولوجي ل LN. المزايا الأخرى لهذه التقنية هي أنها غير غازية وفعالة من حيث التكلفة وسهلة التنفيذ⁷. عندما تعمل الكلى بشكل مثالي ، يكون مستوى البيلة البروتينية منخفضا باستمرار. ومع ذلك ، في الفئران MRL / lpr ، بعد 8-9 أسابيع من العمر ، لوحظ زيادة تدريجية في مستوى البيلة البروتينية ، والتي هي في نهاية المطاف عالية بما يكفي للتسبب في الفشل الكلوي⁸. تتوفر شرائط كاشف متعددة وكواشف قياس الألوان تجاريا لمراقبة المشكلة. ومع ذلك ، فإن فحص برادفورد رخيص ودقيق للغاية في تحديد بداية البيلة البروتينية ومسار التهاب الكلية الذئبي. هذا الفحص سريع ، ولا يتأثر الكاشف بوجود المذيبات والمخازن المؤقتة وعوامل الاختزال وعوامل تخلب المعادن التي قد تكون في عينتك⁹،^10،11.

أحد الجوانب المهمة التي يجب مراعاتها هو تسلل الخلايا في الكلى. هذه التسلل تعزز التسبب في المرض عن طريق تحفيز إفراز العوامل القابلة للذوبان مثل السيتوكينات لتفاقم الالتهاب¹². لفهم أفضل لمجموعات الخلايا الموجودة في التسلل ، فإن الطريقة المفيدة هي عزل الكريات البيض¹³. هنا ، يتم استخدام الكشف عن التسلل الكلوي للخلايا البائية كمثال. يبدأ الإجراء بعملية هضم مع ديوكسي ريبونوكلياز (DNase) والكولاجيناز ، يليه فصل تدرج الكثافة الذي يزيل الحطام وخلايا الدم الحمراء والخلايا المحببة الكثيفة. سبب عزل الخلايا البائية (CD19+) وخلايا البلازما (CD138⁺) هو أن الكلى الذئبية يمكن أن تركز هذه الخلايا¹⁴. يقترح أن وجود الخلايا البائية في مجاميع صغيرة في الكلى يمكن أن يشير إلى التوسع النسيلي ، وبالتالي إنتاج الغلوبولين المناعي (Ig). من المعروف أن خلايا البلازما موجودة في هذه المجاميع بالإضافة إلى¹⁵. بمجرد عزل الكريات البيض ، يمكن استخدام فرز الخلايا المنشط بالفلور (FACS) لتحليل الخلايا ذات الأهمية عند تلطيخ الأجسام المضادة المختلفة المترافقة مع التألق.

التألق المناعي هو أحد طرق الكشف عن الكيمياء النسيجية المناعية (IHC) التي تسمح بالتصور الفلوري للبروتينات في عينات أنسجة الكلى السميكة 4 ميكرومتر. تعتمد طرق الكشف الأخرى عن المدينة العالمية للخدمات الإنسانية على طبيعة التحليلات وكيمياء الربط وعوامل أخرى¹⁶. التألق المناعي هو طريقة تحديد سريعة تعرض المستضد لنظيره من الأجسام المضادة الموسومة بفلوروكروم معين (أو صبغة فلورسنت). عندما يكون متحمسا ، فإنه ينتج ضوءا يمكن أن يكتشفه المجهر الفلوري. يمكن استخدام هذه التقنية لمراقبة ترسب المكمل C3 و IgG2a¹⁷. يمكن أن يرتبط التنشيط المفرط للتسلسل التكميلي باستجابة مناعية غير منضبطة وفقدان الوظيفة¹⁸. يعد الترسب المناعي للأجسام المضادة للحمض النووي المزدوج (anti-dsDNA) في الكلى مصدر قلق كبير¹⁹ ، حيث ارتبط أولئك الذين لديهم النمط المتماثل IgG2a ب LN²⁰. على وجه التحديد ، تظهر الأجسام المضادة المضادة ل dsDNA المزيد من الإمراض والتقارب مع المواد النووية ، وتشكل مجمعات مناعية²¹. عندما يكون IgG2a موجودا ، يتم تنشيط سلسلة المكمل ، بما في ذلك C3 ، لإزالة المجمعات المناعية²². يمكن تحديد علامات C3 و IgG2a كميا بشكل فردي أو تراكبها لإنشاء ارتباطها.

والجدير بالذكر أن قياس الكرياتينين في الدم هو تقنية أخرى موثوقة يمكن استخدامها مع بيلة دموية مجهرية وخزعات الكلى لتشخيص LN²³. ومع ذلك ، فإن وجود البيلة البروتينية هو مؤشر قوي على تلف الكبيبات. وبهذا المعنى ، فإن مراقبة مستوى البيلة البروتينية أثناء مرض الذئبة يمكن أن تكشف عن بداية المرض وتكمل الطرق الأخرى لتشخيص مرض الذئبة. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن للمجمعات المناعية المودعة في الكبيبات أن تحفز استجابة التهابية ، وتنشط نظام التكملة ، وتجند المزيد من الخلايا الالتهابية. نقطة أخرى جديرة بالملاحظة في هذا البروتوكول هي تسلل الخلايا البائية في الكلى. هذا ، جنبا إلى جنب مع الخلايا التائية المخترقة ، يضخم الاستجابات المناعية المحلية التي تؤدي إلى تلف الأعضاء. الأهم من ذلك ، أن تصنيف LN لا يعتمد فقط على التغيرات المورفولوجية الكبيبية التي شوهدت في الفحص المجهري ولكن أيضا على الرواسب المناعية التي لوحظت مع التألق المناعي. لذلك ، في هذا البروتوكول ، يتم تقديم طرق دقيقة وفعالة من حيث التكلفة لتحليل وظائف الكلى في إعدادات المختبر.

تمت الموافقة على هذا البروتوكول من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوانات (IACUC) في Virginia Tech. نظرا لأن مرض الذئبة لديه معدل حدوث أعلى في الإناث ، فقد تم استخدام الفئران MRL / lpr الإناث فقط. بدأ جمع العينات في عمر 4 أسابيع وانتهى في 15 أسبوعا. تم الحصول على الفئران من مصادر تجارية (انظر جدول المواد) وتم تربيتها وصيانتها في بيئة محددة خالية من مسببات الأمراض وفقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية.

1. اختبار البيلة البروتينية

1. جمع البول باتباع الخطوات أدناه.
   1. تعقيم الغطاء عن طريق رش 70٪ من الإيثانول. ضع ورقة بلاستيكية معقمة على السطح. قم بإعداد نصائح وأنابيب 1.5 مل وماصة لجمع حوالي 20 ميكرولتر من السائل.
      ملاحظة: يجب أن تكون النصائح والأنابيب معقمة وبدون أي معالجة مسبقة.
   2. خذ القفص ورش 70٪ من الإيثانول قبل وضعه داخل الغطاء.
   3. أمسك الماوس بيد واحدة واستخدم اليد الأخرى لتدليك المنطقة البطنية من الأعلى إلى الأسفل بلطف.
   4. استخدم أنبوبا أو ماصة سعة 1.5 مل لجمع البول مباشرة ، أو إذا سقطت العينة ، فقم بجمعها من الغطاء البلاستيكي. استخدم قفازات وملاءات ونصائح جديدة لكل عينة.
      ملاحظة: إذا لم ينجح ذلك ، فاستخدم دورقا معقما لعزل الماوس ، ثم اجمع البول من الكأس بعد تبول الماوس.
   5. ضع الماوس مرة أخرى في القفص. أخرج ماوس آخر وكرر الخطوات 1.1.3-1.1.4.
      ملاحظة: قم دائما بتنظيف الورقة البلاستيكية والكأس باستخدام 70٪ من الإيثانول بعد جمع العينة لكل ماوس. ما لا يقل عن خمسة فئران لكل مجموعة ضرورية للدلالة الإحصائية. يمكن تخزين عينات البول عند -80 درجة مئوية حتى الاستخدام لمدة تصل إلى 12 شهرا.
2. حدد كمية البروتينات بطريقة برادفورد²⁴.
   1. اسمح لعينات البول ومعيار الألبومين وكاشف برادفورد بالوصول إلى درجة حرارة الغرفة (RT) عن طريق الاحتفاظ بها خارج الفريزر لمدة 10-20 دقيقة.
      ملاحظة: يتم تضمين كاشف برادفورد ومعيار الألبومين في مجموعة متاحة تجاريا (انظر جدول المواد). تركيز البدء من معيار الألبومين هو 2 ملغ / مل. يجب أن يتم التخفيف التسلسلي (1: 2 ست مرات) بالماء.
   2. أضف كاشف برادفورد إلى صفيحة 96 بئرا (200 ميكرولتر / بئر) ، غير مخففة.
   3. ماصة 5 ميكرولتر من عينة البول غير المخففة لكل بئر واستخدام الطرف لماصة لأعلى ولأسفل عدة مرات لخلط بشكل صحيح.
   4. أضف المعايير (400 و 200 و 100 و 50 و 25 و 12.5 ملغم / ديسيلتر) في نسخ مكررة. اترك اثنين من الآبار كفراغات.
      ملاحظة: يجب أن تتم إضافة العينات والمعايير بسرعة.
   5. دعها تقف لمدة 5-10 دقائق في RT.
   6. اقرأ اللوحة عند 595 نانومتر في قارئ اللوحات وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة (انظر جدول المواد).

2. عزل خلايا الكلى

1. القتل الرحيم للفأر باستخدام CO₂ (معدل التدفق: 30٪ -70٪ حجم / دقيقة ، لتحقيق فقدان الوعي أو الموت) في غرفة تليها خلع عنق الرحم. المضي قدما في تشريح لجمع كلتا الكليتين. ضع كلية ونصف في وسط C10 بارد مثلج. ضع نصف الكلى الآخر في OCT (الخطوة 3.1.1).
   ملاحظة: C10 مصنوع من RPMI 1640 مكمل بمصل بقري جنيني بنسبة 10٪ ، و 1 mM من بيروفات الصوديوم ، و 1٪ من الأحماض الأمينية غير الأساسية 100x MEM ، و 10 mM من HEPES ، و 55 μM من 2-mercaptoethanol ، و 100 U / mL من البنسلين الستربتومايسين (انظر جدول المواد).
2. قطع الكلى إلى حجم الحبوب (1-2 مم³ قطع) وهضمها في 5 مل من المخزن المؤقت للهضم الذي يحتوي على 1 ملغ / مل من الكولاجيناز و 0.2 ملغ / مل من DNase I (انظر جدول المواد) في وسط RPMI 1640 يحتوي على 10 مليمول / لتر من HEPES لمدة 1 ساعة مع اهتزاز لطيف مستمر عند 37 درجة مئوية.
   ملاحظة: أضف 1 مل من المخزن المؤقت للهضم في أنبوب معقم سعة 2 مل واستخدم مقص معقم لتقطيع الكلى.
3. أضف 10 مل من 1x PBS بارد يحتوي على 10 mM من حمض الإيثيلين ديامين رباعي أسيتيك (EDTA) واحتضنه لمدة 10 دقائق على الجليد. ثم دوامة التعليق مرتين.
4. قم بتصفية تعليق الخلية من خلال مصفاة 100 ميكرومتر واغسلها ب 10 مل من HBSS-full.
   ملاحظة: يحتوي HBSS-full على 5 ملليمتر من EDTA و 0.1٪ BSA و 10 ملليمتر من HEPES.
5. جهاز طرد مركزي عند 350 × g لمدة 10 دقائق في RT.
6. تحضير 30٪ و 37٪ و 70٪ من محلول Percoll متساوي التوتر (SIP).
   ملاحظة: امزج حجم جزء واحد من 10x PBS وحجم 9 أجزاء من Percoll لإعداد SIP (انظر جدول المواد) ؛ استخدم HBSS-full لتخفيف SIP إلى 30٪ و 37٪ و 70٪ SIP.
7. أعد تعليق الخلايا في 5 مل من 30٪ SIP وقم بتحميل 37٪ من 5 مل (أعلى) و 70٪ من 5 مل (أسفل) ، مما يجعل تدرج SIP ، ببطء باستخدام ماصة باستر.
8. جهاز طرد مركزي مع Up9 down0 (أو الفرامل 0) عند 1000 × g لمدة 30 دقيقة في RT.
9. جمع الكريات البيض من واجهة 37٪ -70٪ وإعادة تعليقها في 5 مل من C10.
10. جهاز طرد مركزي عند 350 × جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية.
11. أعد تعليق بيليه الخلية في 3 مل من المخزن المؤقت FACS. الخلايا جاهزة لتلطيخ FACS.
    ملاحظة: يحتوي المخزن المؤقت FACS على 1x PBS و 0.1٪ ألبومين مصل البقر (BSA).
12. جهاز طرد مركزي عند 350 × g لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية وتخلص من supernatant (SN) ، تاركا حوالي 50 ميكرولتر.
    ملاحظة: لإزالة السوبرناتانت، صب المحلول أو ماصه بعناية بعيدا عن المادة الصلبة أو استخدم فراغا شبه أوتوماتيكي لشفط السوبرناتانت.
13. إضافة 50 ميكرولتر من كتلة FcR (انظر جدول المواد) لكل أنبوب (مخفف 1/50 في 1x PBS) ؛ تخلط وتحضن على الثلج في الظلام لمدة 10 دقائق.
14. أضف 2 مل من المخزن المؤقت FACS للغسيل.
15. جهاز طرد مركزي عند 350 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية وتجاهل SN ، تاركا حوالي 50 ميكرولتر.
16. أضف 20 ميكرولتر من صبغة الفلورسنت المناسبة (تمييع 1/100 مع 1x PBS ، انظر جدول المواد) واتركها تقف لمدة 15-30 دقيقة على الجليد.
17. أضف 50 ميكرولتر من مزيج الأجسام المضادة 15 لكل أنبوب: CD138-BV711 (1/200 في 1x PBS) و CD45-AF700 (1/200 في^1x PBS) (انظر جدول المواد).
18. احتضن على الثلج في الظلام لمدة 15-30 دقيقة وأضف 3 مل من المخزن المؤقت FACS.
19. جهاز طرد مركزي عند 350 × g لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية وفراغ SN ، تاركا حوالي 50 ميكرولتر. هذا جاهز الآن ليتم تحليله عن طريق قياس التدفق الخلوي.

3. تلطيخ الفلورسنت المناعي

1. قم بإجراء جمع العينات.
   1. قم بتضمين نصف الكلى في المبرد البلاستيكي الصغير باستخدام مركب درجة حرارة القطع المثلى (OCT) (انظر جدول المواد).
   2. أضف الثلج الجاف إلى صندوق رغوة البوليسترين (انظر جدول المواد) ، وضع المبرد بعناية فوق الثلج الجاف. تأكد من وضع قوالب التبريد بشكل مسطح.
      ملاحظة: يستغرق مركب OCT 3-4 دقائق حتى يتصلب ويتحول إلى اللون الأبيض.
   3. أخرج المبرد ولفه بورق الألمنيوم. قم بتخزينه على درجة حرارة -80 درجة مئوية حتى مزيد من الاستخدام.
      ملاحظة: يمكن تخزين هذا في -80 درجة مئوية لمدة 1 سنة على الأقل.
2. إجراء تقسيم وتثبيت العينة.
   1. قطع العينات إلى أقسام 4 ميكرومتر ، وانتظر لمدة 2-3 ساعات على الأقل حتى تجف ، ثم قم بإصلاحها باستخدام الأسيتون البارد (عند 4 درجات مئوية) لمدة 10 دقائق.
      ملاحظة: كن حذرا عند استخدام الأسيتون ، والذي يتطلب غطاء كيميائي متخصص.
   2. بعد تثبيت الشرائح ، تجف في الهواء لمدة 0.5-1 ساعة وتخزنها لفترة قصيرة عند -20 درجة مئوية ، أو لفترة طويلة عند -80 درجة مئوية.
3. وصمة عار العينات.
   1. أعد إصلاح الشرائح في الأسيتون البارد لمدة 5-10 دقائق.
   2. اسمح للأقسام بالإحماء إلى RT. استخدم قلم PAP (انظر جدول المواد) حول القسم واتركه حتى يجف.
      ملاحظة: يمكن استخدام مينا الأظافر أيضا. تمنع هذه الخطوة تخفيف الأجسام المضادة من الطفو في جميع أنحاء الشريحة.
   3. ضع الشرائح في 1x محلول ملحي مخزن مؤقتا (TBS) في جرة كوبلن (انظر جدول المواد) لمدة 20 دقيقة ، وضع الجرة على الخلاط ، ورجها بلطف.
   4. صب 1x TBS واملأ الجرة ب 1x TBS و 5٪ BSA و 0.1٪ Tween 20. احتضن لمدة 20 دقيقة على الشاكر ، رجه بلطف.
   5. أخرج الشرائح وامسح الجزء السفلي من الشرائح جافا. إذا لزم الأمر ، هز الشرائح جافة. أضف 100 ميكرولتر من الأجسام المضادة المترافقة²⁵ C3-FITC (1/100) و IgG2a-PE (1/100) إلى القسم (انظر جدول المواد). احتضان في RT في غرفة رطبة لمدة 1 ساعة.
   6. اغسل القسم 3 مرات في 1x TBS و 5٪ BSA و 0.1٪ Tween 20 لمدة 10 دقائق على الخلاط.
   7. رج الشرائح الجافة وقم بتركيب القسم باستخدام كاشف مضاد للتلاشي (انظر جدول المواد) ثم غطاء.
   8. قم بتخزين الشرائح عند 4 درجات مئوية حتى عرضها تحت المجهر (على سبيل المثال، المجهر البؤري أو مجهر نظام التصوير). حدد الصور باستخدام البرامج واطرح إشارات الخلفية عند مقارنة كثافة التألق بين المناطق.
   9. لتحليل الصور باستخدام برنامج ImageJ (انظر جدول المواد)، حدد المنطقة المطلوبة.
   10. قم بتعيين المعلمات القياسية بالنقر فوق تحليل، ثم تعيين القياسات وقياس المنطقة للحصول على النتائج.
   11. نقل البيانات التي تم الحصول عليها من نوافذ القياس إلى جدول بيانات.
       ملاحظة: يمكن تحديد مساحة صغيرة من الصورة كخلفية؛ لا ينبغي أن يكون لها أي تألق.
   12. بمجرد الانتهاء من ذلك ، انقر فوق تحليل لقياس المنطقة ونقل البيانات مرة أخرى إلى جدول البيانات السابق.
   13. كرر الخطوات 3.3.11-3.3.12 لعدة مناطق.
   14. احسب متوسط التألق كتألق خلية مصحح (CCF) = الكثافة المتكاملة - (منطقة الخلية المحددة × متوسط تألق الخلفية).
   15. حساب لكل منطقة وتحليل البيانات باستخدام برنامج الرسوم البيانية والإحصاءات (انظر جدول المواد).

يستخدم البروتوكول طرقا متعددة لتقييم الفئران MRL / lpr لالتهاب الكلية الذئبة. أولا ، يتم وصف إجراء لدراسة زيادة مستويات البيلة البروتينية بسبب اختلال وظائف الكلى بمرور الوقت. وكما هو مبين في الشكل 1، عولجت إناث الفئران بجرعة فموية تبلغ 200 ميكرولتر من المياه المالحة العازلة بالفوسفات (1x PBS) كمجموعة ضابطة وبروبيوتيك لاكتوباسيلوس رويتيري كمجموعة علاجية، بتركيز 109 سيفو فوفو/مل، مرتين في الأسبوع. بدأ العلاج في عمر 3 أسابيع وانتهى في عمر 15 أسبوعا. كان لدى مجموعة الفئران المعالجة ب L. reuteri تطور بروتينية أكثر عدوانية من المجموعة الضابطة.

الشكل 1: الكشف عن مستويات البروتين في بول الفئران MRL / lpr مع مرور الوقت. n = 5 الفئران لكل مجموعة. تم إجراء الإحصائيات باستخدام اختبار الانحدار الخطي البسيط. * P < 0.05 ، ** P < 0.01. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

ويبين الشكل 2 تحليل FACS لكريات الدم البيضاء الكلوية المعزولة. عولجت الفئران بالفانكومايسين (2 جم / لتر) أو فانكومايسين بالإضافة إلى E. coli dsDNA (80 ميكروغرام) في هذه التجربة. تم إعطاء فانكومايسين جنبا إلى جنب مع مياه الشرب خلال الفترة الزمنية المشار إليها. تم إعطاء اللقاح الفموي للحمض النووي البكتيري للفئران المعالجة بالفانكومايسين مرة واحدة في الأسبوع لمدة أربعة أسابيع متتالية في عمر 4 و 5 و 6 و 7 أسابيع. كان من المتوقع أن يؤدي E. coli dsDNA إلى التسلل الكلوي لخلايا البلازما مما يؤدي إلى ضعف وظائف الكلى ، ولكن لم يتم العثور على فرق كبير.

الشكل 2: تحليل خلايا البلازما في الكريات البيض الكلوية المعزولة. (أ) استراتيجية البوابة التسلسلية: الخلايا الكلية ، الخلايا المفردة ، الخلايا الحية ، خلايا CD45 + ، وأخيرا خلايا CD138 +. (ب) النسبة المئوية لخلايا البلازما بعد العلاج بالفان (فانكومايسين) أو فان + الحمض النووي (فانكومايسين + إي كولي dsDNA) لمدة 3 أسابيع (ن ≥ 5 فئران لكل مجموعة). لم يلاحظ أي دلالة إحصائية ('ns'). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

يوضح الشكل 3 تلطيخ التألق المناعي للمكمل C3 و IgG2a على أقسام الكلى MRL / lpr للإناث. في هذه التجربة ، تمت مقارنة تأثير العوامل البيئية فيما يتعلق بالترسب الكلوي ل C3 و IgG2a. تم تربية الفئران الداخلية في منشأة الحيوانات لعدة أجيال ، وتمت مقارنتها بالفئران التي تم شراؤها مؤخرا من بائع. لم يظهر التحليل الكيميائي النسيجي المناعي أي فرق بين المرافق المختلفة.

الشكل 3: الكشف عن المكمل C3 و IgG2a في أقسام الكلى عن طريق تلطيخ التألق المناعي. (أ) صور تمثيلية لأقسام الكلى الملطخة بمضاد C3-FITC (أخضر) ومضاد ل IgG2a-PE (أحمر). (ب) مقارنة تألق الخلايا المصحح (CCF) بين المجموعتين (n ≥ 5 فئران لكل مجموعة). شريط المقياس = 100 ميكرومتر. لم يلاحظ أي دلالة إحصائية ('ns'). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

ويعلن صاحبا البلاغ أنه لا يوجد تضارب في المصالح.