يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

مصدر وطريق تلوث قلويد بيروليزيدين في عينات الشاي

2.6K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/64375

⸱

سبتمبر 28, 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Key Laboratory of Agri-food Safety of Anhui Province, School of Resource & Environment, Anhui Agricultural University, 2State Key Laboratory of Tea Plant Biology and Utilization, School of Tea and Food Science & Technology, Anhui Agricultural University, 3Key Laboratory of Tea Quality and Safety & Risk Assessment, Tea Research Institute, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Ministry of Agriculture, 4Department of Molecular Biosciences and Bioengineering, University of Hawaii at Manoa

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول تلوث قلويدات بيروليزيدين (PAs) في عينات الشاي من الحشائش المنتجة للسلطة الفلسطينية في حدائق الشاي.

الملخص

تم العثور على قلويدات بيروليزيدين السامة (PAs) في عينات الشاي ، والتي تشكل تهديدا لصحة الإنسان. ومع ذلك ، ظل مصدر ومسار تلوث السلطة الفلسطينية في عينات الشاي غير واضح. في هذا العمل ، تم تطوير طريقة ماصة مدمجة مع UPLC-MS / MS لتحديد 15 PAs في الأعشاب Ageratum conyzoides L. ، A. conyzoides التربة الجذرية ، أوراق الشاي الطازجة ، وعينات الشاي المجفف . تراوح متوسط حالات التعافي بين 78٪ -111٪ ، مع انحرافات معيارية نسبية تتراوح بين 0.33٪ و 14.8٪. تم جمع خمسة عشر زوجا من عينات التربة الجذرية A. conyzoides و A. conyzoides و 60 عينة من أوراق الشاي الطازجة من حديقة شاي Jinzhai في مقاطعة Anhui ، الصين ، وتم تحليلها ل 15 PAs. لم يتم الكشف عن جميع المناطق المحمية ال 15 في أوراق الشاي الطازجة ، باستثناء إنترميدين-N-أكسيد (ImNO) وسينيسيونين (Sn). كان محتوى ImNO (34.7 ميكروغرام / كجم) أكبر من محتوى Sn (9.69 ميكروغرام / كجم). بالإضافة إلى ذلك ، تركز كل من ImNO و Sn في الأوراق الصغيرة لنبات الشاي ، بينما كان محتواها أقل في الأوراق القديمة. أشارت النتائج إلى أن المناطق المحمية في الشاي تم نقلها من خلال مسار أوراق الشاي الطازجة المنتجة للأعشاب الضارة في حدائق الشاي.

المقدمة

كمستقلبات ثانوية ، تحمي قلويدات بيروليزيدين (PAs) النباتات من الحيوانات العاشبة والحشرات ومسببات الأمراض 1,2. حتى الآن ، تم العثور على أكثر من 660 PAs وأكاسيد PA-N (PANOs) ذات هياكل مختلفة في أكثر من 6000 نوع نباتي في جميع أنحاء العالم 3,4. توجد النباتات المنتجة للسلطة الفلسطينية بشكل رئيسي في عائلات Asteraceae و Boraginaceae و Fabaceae و Apocynaceae 5,6. تتأكسد المناطق المحمية بسهولة إلى قلويدات ديهيدروبيروليزيدين غير مستقرة ، والتي لها كهربية قوية ويمكن أن تهاجم النيوكليوفيليات مثل الحمض النووي والبروتينات ، مما يؤدي إلى نخر خلايا الكبد ، والانسداد الوريدي ، وتليف الكبد ، والاستسقاء ، وأعراض أخرى 7,8. الجهاز المستهدف الرئيسي لسمية السلطة الفلسطينية هو الكبد. يمكن أن تسبب المناطق المحمية أيضا سمية الرئة والكلى والأعضاء الأخرى والسمية المطفرة والمسرطنة والتنموية 9,10.

تم الإبلاغ عن حالات التسمم البشري والحيواني في العديد من البلدان من تناول الأعشاب التقليدية أو المكملات الغذائية أو الشاي الذي يحتوي على المناطق المحمية أو التلوث غير المباشر للأغذية مثل الحليب أو العسل أو اللحوم (السامة من ابتلاع المراعي التي تحتوي على المناطق المحمية)11،12،13. تشير نتائج الهيئة الأوروبية لسلامة الأغذية (EFSA) إلى أن مواد مثل الشاي (العشبي) هي مصدر مهم للتعرض البشري ل PAs / PANOs14. لا تنتج عينات الشاي المناطق المحمية ، في حين توجد النباتات المنتجة للمناطق المحمية بشكل شائع في حدائق الشاي (على سبيل المثال ، إميليا سونشيفوليا ، وسينيسيو أنغولاتوس ، وأجيراتوم كونيزويدس)15. كان يشتبه سابقا في أن الشاي يمكن أن يكون ملوثا بالمناطق المحمية من مصانعها المنتجة أثناء الانتقاء والمعالجة. ومع ذلك ، تم اكتشاف المناطق المحمية أيضا في بعض أوراق الشاي المنتقاة يدويا (أي عدم وجود نباتات منتجة للمناطق المحمية) ، مما يشير إلى أنه يجب أن تكون هناك طرق أو مصادر أخرى للتلوث16. أجريت تجربة زراعة مشتركة لنباتات الراجورت (Senecio jacobaea) مع ميليسا (ميليسا أوفيسيناليس) والنعناع (Mentha piperita) والبقدونس (Petroselinum crispum) والبابونج (Matricaria recutita) ونباتات nasturtium (Tropaeolum majus) ، وأظهرت النتائج أنه تم اكتشاف المناطق المحمية في جميع هذه النباتات17. تم التحقق من أن المناطق المحمية يتم نقلها وتبادلها بالفعل بين النباتات الحية عبر التربة18,19. وجد Van Wyk et al.20 أن شاي الرويبوس (Aspalathus linearis) كان ملوثا بشدة في المواقع الغنية بالأعشاب الضارة ويحتوي على مناطق محمية من نفس النوع والنسبة. ومع ذلك ، لم يتم الكشف عن أي مناطق محمية في شاي الرويبوس في مواقع خالية من الأعشاب الضارة.

في الوقت الحاضر ، تم استخدام قياس الطيف الكتلي الترادفي للكروماتوغرافيا السائلة فائقة الأداء (UPLC-MS / MS) مع انتقائية وحساسية عالية على نطاق واسع في التحليل النوعي والكمي للمناطق المحمية في المنتجات الزراعية والأغذية21,22. تتكون طريقة معالجة العينة عادة إما من استخراج الطور الصلب (SPE) أو تنظيف QuEChERS (سريع سهل رخيص فعال وفعال وآمن وعرة) لمستخلصات مصفوفات الطعام المعقدة ، والتي يمكن أن تحصل على أعلى حساسية ممكنة12,19. ومع ذلك ، لا تزال الطرق التحليلية القوية التي تسمح باكتشاف المناطق المحمية وتحديدها كميا في المصفوفات المعقدة مثل التربة والأعشاب الضارة وأوراق الشاي الطازجة مفقودة.

حللت هذه الدراسة 15 PAs في عينات الشاي المجفف وأوراق الشاي الطازجة والأعشاب الضارة وعينات التربة الجذرية للأعشاب الضارة باستخدام UPLC-MS / MS جنبا إلى جنب مع طريقة تنقية الممتزة. علاوة على ذلك ، تم جمع 15 عينة من تربة جذور الحشائش والأعشاب الضارة و 60 عينة من أوراق الشاي الطازجة من خمسة مواقع لأخذ العينات في حديقة شاي Jinzhai في مقاطعة Anhui ، الصين ، وتم تحليلها ل 15 PAs. يمكن أن توفر هذه النتائج طريقة مسح وبعض المعلومات حول مصدر ومسار المناطق المحمية (التلوث) في عينات الشاي لضمان جودة وسلامة الشاي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

بالنسبة للدراسة الحالية ، تم جمع أنواع الحشائش التالية: لودفيجيا بروستاتا روكسب ، موردانيا تريكيترا (وول. سابقا سي بي كلارك) بروكن ، أجيراتوم كونيزويدس إل ، تشينوبوديوم أمبروسيويدس ، القصبة الهوائية ياسمينويد (L.) ليم ، أجيراتوم كونيزويدس إل ، إميليا سونشيفوليا (L.) DC ، Ageratum conyzoides L. ، و Crassocephalum crepidioides (القاع.) س. مور. تم اختيار أوراق الشاي الطازجة من مجموعة متنوعة من أشجار الشاي Longjing 43 # ، وكانت عينات الشاي المجفف متاحة تجاريا لمعالجة الشاي وفقا لعملية تصنيع الشاي الأخضر (انظر جدول المواد).

1. جمع العينات

  1. جمع 40 عينة حقيقية.
    1. اجمع 10 أعشاب و 10 تربة و 10 أوراق شاي طازجة بشكل عشوائي من حدائق شاي متعددة.
      ملاحظة: بالنسبة للدراسة الحالية ، تم أخذ عينات من التربة على عمق 20 سم بكمية عينة 200 جم.
    2. اجمع بشكل عشوائي 10 منتجات شاي مجفف (250 جم) من سوبر ماركت.
  2. اجمع عينات من الحشائش والتربة وأوراق الشاي الطازجة لدراسة مصدر تلوث المناطق المحمية في الشاي.
    1. ضع خمس نقاط لأخذ العينات في نفس حديقة الشاي ، مع ثلاث نسخ متماثلة في كل نقطة.
    2. اجمع عينات الأعشاب الضارة Ageratum conyzoides L. التي تحتوي على أعلى محتوى PA الموجود عادة في حدائق الشاي.
      ملاحظة: كانت كمية العينة 250 جم للدراسة الحالية.
    3. جمع عينات التربة.
      ملاحظة: كانت عينات التربة عبارة عن تربة A. conyzoides الجذرية على عمق 20 سم مع كمية عينة 200 جم.
    4. اجمع أوراق الشاي الطازجة من أجزاء مختلفة من نباتات الشاي ، بما في ذلك برعم واحد بورقتين ، وبرعم واحد بثلاث أوراق ، وبرعم واحد بأربع أوراق ، وأوراق ناضجة.
      ملاحظة: كانت كمية العينة 250 جم.

2. علاج العينة

  1. قم بمعالجة العينات باتباع الخطوات أدناه.
    1. قم بطحن عينات الشاي والتربة المجففة بمطحنة ، وقم بتمرير العينات المسحوقة من خلال غربال 200 شبكة ، وقم بتخزينها في -20 درجة مئوية.
      ملاحظة: كان الشاي المجفف منتجا تجاريا للشاي (انظر جدول المواد) ، لذلك تم سحقه وغربله مباشرة للتخزين. تم وضع عينات التربة (200 جم) في مكان جيد التهوية في الظلام لتجف في الهواء لمدة أسبوع تقريبا.
    2. تجانس الحشائش وأوراق الشاي الطازجة مع الخالط وتخزينها في -20 درجة مئوية.
  2. قم بإجراء معالجة عينة من منتجات الشاي المجفف وأوراق الشاي الطازجة والأعشاب الضارة.
    1. قم بوزن 1.00 جم من كل عينة (منتجات الشاي المجفف وأوراق الشاي الطازجة والأعشاب الضارة) وضعها في أنابيب طرد مركزي سعة 50 مل.
    2. أضف 10 مل من محلول حمض الكبريتيك 0.1 مول / لتر ودوامة لمدة 2 دقيقة لاستخراج الطور الصلب (باستخدام خرطوشة SPE ، انظر جدول المواد) و 1 دقيقة لتنقية الممتزات. قم بإجراء الاستخراج بالموجات فوق الصوتية23 لمدة 15 دقيقة ، ثم الطرد المركزي لمدة 10 دقائق بسرعة 9390 × جم في درجة حرارة الغرفة.
      ملاحظة: كانت قوة المذبذب بالموجات فوق الصوتية 290 واط ، وكان تردد التذبذب 35 كيلو هرتز ، وتم ضبط درجة الحرارة على 30 درجة مئوية.
    3. انقل المادة الطافية إلى أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل باستخدام قطارة بلاستيكية.
    4. اتبع الخطوات المذكورة أعلاه لتكرار الاستخراج مرة واحدة. الجمع بين اثنين من الطافات.
      1. قم بتنشيط خراطيش SPE باستخدام 5 مل من الميثانول و 5 مل من الماء منزوع الأيونات. أضف 10 مل من المادة الطافية إلى الخرطوشة التي تم تنشيطها مسبقا وقم بإجراء تنظيف العينة.
      2. بعد أن يصل مستوى محلول العينة إلى الطبقة العليا من الخراطيش ، قم بإزالة المواد المراد تحليلها باستخدام 5 مل من محلول حمض الفورميك 1٪ ثم 5 مل من الميثانول. تخلص من الشطاف.
      3. Elute مع 5 مل من الميثانول (يحتوي على 0.5٪ ماء الأمونيا) ، قم بتصفية الشطف من خلال مرشح غشاء 0.22 ميكرومتر ، وقم بالتحليل بواسطة UPLC-MS / MS (انظر جدول المواد).
    5. قم بإجراء تنظيف العينة باستخدام الممتزات .
      1. خذ 2 مل من المادة الطافية (الخطوة 2.2.4) في أنبوب طرد مركزي سعة 10 مل مملوء بمواد ماصة GCB: PSA: C18 (10 مجم: 20 مجم: 15 مجم ، انظر جدول المواد) ، دوامة لمدة دقيقة واحدة ، وأجهزة طرد مركزي عند 9,390 × جم لمدة 8 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
      2. مرر 1 مل من المادة الطافية من خلال مرشح غشاء 0.22 ميكرومتر قبل التحليل بواسطة UPLC-MS / MS.
  3. إجراء معالجة عينات التربة.
    1. وزن عينة تربة 1.00 جرام. ضعه في أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل ، وأضف 0.1 مل من محلول سترات ثلاثي الصوديوم 0.1 مول / لتر (انظر جدول المواد) لضبط قيمة الرقم الهيدروجيني للتربة إلى 6.0.
    2. السماح للوقوف لمدة 2 دقيقة ، ثم إضافة 10 مل من 0.1 مول / لتر محلول الميثانول حمض الكبريتيك ، دوامة لمدة 2 دقيقة ويهز لمدة 30 دقيقة ، ثم إجراء استخراج بالموجات فوق الصوتية لمدة 30 دقيقة.
    3. جهاز طرد مركزي عند 9,390 × جم لمدة 10 دقائق ، ونقل المادة الطافية إلى أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل مع قطارة بلاستيكية.
    4. اتبع الخطوات المذكورة أعلاه لتكرار الاستخراج والجمع بين المادة الطافية مرتين.
      ملاحظة: كانت طريقة التنقية هي نفسها الواردة في الخطوة 2-2-5-1 والخطوة 2-2-5-2.

3. التحليل الآلي

  1. اكتشف 15 PAs في عينات الشاي المجفف وأوراق الشاي الطازجة والأعشاب الضارة والتربة (عينات من الخطوة 2) باستخدام نظام UPLC-MS / MS المتاح تجاريا (2.1 مم × 100 مم ، 1.8 ميكرومتر) (انظر جدول المواد).
  2. اضبط درجة حرارة العمود على 40 درجة مئوية ، ومعدل التدفق على 0.250 مل / دقيقة ، وحجم الحقن على 3 ميكرولتر.
  3. اضبط المرحلة المتنقلة A: الميثانول (يحتوي على 0.1٪ حمض الفورميك + 1 مليمول / لتر فورمات الأمونيوم) ، والمرحلة المتنقلة B: الماء (الذي يحتوي على 0.1٪ حمض الفورميك + 1 مليمول / لتر فورمات الأمونيوم).
  4. اضبط إجراء شطف التدرج: 10٪ أ من 0.0 دقيقة إلى 0.25 دقيقة ، 10٪ -30٪ أ من 0.25 دقيقة إلى 6.0 دقيقة ، 30٪ -40٪ أ من 6.0 دقيقة إلى 9.0 دقيقة ، 40٪ -98٪ أ من 9.0 دقيقة إلى 9.01 دقيقة تم الاحتفاظ بها لمدة 1.9 دقيقة ، و 98٪ -100٪ أ من 11.0 دقيقة إلى 11.1 دقيقة تم الاحتفاظ بها لمدة 2.9 دقيقة.
  5. اضبط معلمات مطياف الكتلة: وضع التأين ، مصدر الأيونات الموجبة للرش الكهربائي (ESI +) ؛ ضغط البخاخة ، 7.0 بار ؛ الجهد الشعري ، 4.0 كيلو فولت ؛ تفتق ثقب الظهر تهب التدفق ، 150 لتر / ساعة ؛ تدفق غاز المذيبات ، 800 لتر / ساعة ؛ درجة حرارة المذيب ، 400 °C ؛ تدفق الغاز الصدمي ، 0.25 مل / دقيقة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم إنشاء طريقة تنقية وتحليل الممتزات المحسنة ل 15 PAs في عينات الشاي المجفف وأوراق الشاي الطازجة والأعشاب الضارة والتربة ومقارنتها بطريقة التنقية شائعة الاستخدام باستخدام خرطوشة SPE. أظهرت النتائج أن عمليات استرداد 15 PAs في عينات الشاي المجفف والأعشاب الضارة وأوراق الشاي الطازجة باستخدام خرطوشة SPE كانت 72٪ -120٪ ، بينما كان استخدام تنقية الممتزات 78٪ -98٪ (الشكل 1). كانت عمليات استرداد 15 PAs في التربة باستخدام تنقية الممتزات 79٪ -111٪ (الشكل 1). تم جمع أربعين...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم تصميم العمل الحالي لتطوير طريقة فعالة وحساسة لاستكشاف طرق التلوث ومصادر المناطق المحمية في عينات الشاي وكذلك توزيع المناطق المحمية في أجزاء مختلفة من نباتات الشاي. ومع ذلك ، في هذه الدراسة ، تم فصل 15 PAs فقط بنجاح على العمود الكروماتوغرافي ، وهو عدد صغير جدا مقارنة بالعدد الكبير من قلويدات في الأنواع النباتية 3,4. لم يكن هذا مرتبطا فقط بخصائص التعبئة للعمود نفسه ولكن أيضا بالمصفوفة المعقدة لعينات الشاي التي تم فحصها. لذلك ، لا تزال طرق الفصل والتنقية الأفضل ل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (32102244) ، والمشروع الوطني لجودة وسلامة المنتجات الزراعية وتقييم المخاطر (GJFP2021001) ، والمؤسسة العلمية الطبيعية لمقاطعة آنهوي (19252002) ، ووزارة الزراعة الأمريكية (HAW05020H).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الأسيتونيتريل (99.9٪)شركة Tedia، Inc.21115197سجل المستخلصات الكيميائية رقم: 75-05-8
الأمونيا (25٪ -28٪)Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co.، Ltd.181210سجل المستخلصات الكيميائية رقم: 1336-21-6
فورمات الأمونيوم (97.0٪)تقنياتمختبر Anpel (شنغهاي)G0860050سجل المستخلصات الكيميائية No: 540-69-2
Carbon-GCBCNWB7760030120-400 شبكة ، 10g. لكل صندوق  
جهاز طرد مركزي Z 36 HKHERMLEZ36HK30000  دورة في الدقيقة (دقيقة: 10 دورة في الدقيقة) ، الأبعاد (العرض × الارتفاع × العمق) :  ؛ 71.5 سم وأمر; 42 سم وأمر; 51 سم
منتج الشاي المتاح تجارياLvming ، Qingshan ، Luyuchun ، Changling ، Huixing ، Wuyunjian ، شاي Heshengchunالسائبالشاي الأخضر
Europine N-oxid (EuNO) (98.0٪)BioCrick323256CAS No: 65582-53-8
Europine (EU) (98.0٪)BioCrick98222CAS No: 570-19-4
Formate (98.0٪) علاءالدينE2022005رقم CAS: 64-18-6
HC-C18CNWD211006040-63 & mu ؛ م ، 100 جرام لكل صندوق
هليوترين (هو) (98.0٪)BioCrick906426CAS No: 303-33-3
Heliotrine-N-oxide (HeNO) (98.0٪)BioCrick22581CAS No: 6209-65-0
جهاز طرد مركزي عالي السرعة TG16-WScence203158000الحد الأقصى: 16000 دورة / دقيقة ، 330 مرة ؛ 390 مرة ؛ 300 مم (L & Times ؛ W & مرات ح) ، السعة: 6 مرات ؛ 50 مل
HSS T3 عمودالمياه186004976ACQUITY UPLC HSS T3 (2.1 & مرات ؛ 100 مم 1.8 & mu ؛ م)
Intermedine (Im) (98.0٪)BioCrick114843CAS No: 10285-06-0
Intermedine-N-oxide (ImNO) (98.0٪)BioCrick340066CAS No: 95462-14-9
Jacobine (Jb) (98.0٪)BioCrick132282048CAS No: 6870-67-3
Jacobine-N-oxide (JbNO) (98.0٪) ChemFacesCFN00461CAS No: 38710-25-7
كحول الميثيل (99.9٪)شركة تيديا ، إنك.21115100رقم سجل المستخلصات الكيميائية: 67-56-1
PSAAgelaP19-0083340-60 & mu ؛ م ، 60 & أرينج. 100 جرام لكل صندوق
ريترورسين (إعادة) (98.0٪)BioCrick5281743سجل المستخلصات الكيميائية رقم: 480-54-6
ريترورسين-N-أكسيد (ReNO) (98.0٪)BioCrick5281734CAS No: 15503-86-3
Senecionine (Sc) (98.0٪)BioCrick5280906CAS No: 130-01-8
Senecionine-N-oxide (ScNO) (98.0٪)BioCrick5380876CAS No: 13268-67-2
Seneciphylline N-oxid (SpNO) (98.0٪)BioCrick6442619CAS No: 38710-26-8
Seneciphylline (Sp) (98.0٪)BioCrick5281750CAS No: 480-81-9
Senkirkine (Sk) (98.0٪)BioCrick5281752CAS No: 2318-18-5
SPE PCXAgilent Technologies12108206الوضع المختلط للكاتيون ، 6 مل
حمض الكبريتيك (97٪)Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co.، Ltd. 1003019سجل المستخلصات الكيميائية رقم: 7664-93-9
ثلاثي الصوديومسينفارم الكاشف الكيميائي المحدودة20121009سجل المستخلصات الكيميائية رقم: 6132-04-3
منظف بالموجات فوق الصوتيةSupmileKQ-600Bحجم الفتحة الداخلية: 500 مرة ؛ 300 مرة ؛ 150 مم ؛ السعة: 22.5 لتر
UPLC-xevoTQMSWatersZPLYY-003محلل كتلة قضيب ثلاثي رباعي المراحل ، Waters Alliance 2695 / Waters ACQUITY UPLC نظام الطور السائل
ترموستات حمام الماء مذبذبGuoyu أداةSHY-2AHSأوقات التذبذب:   ؛ 60-300 مرة / دقيقة ، نطاق درجة حرارة ثابتة: درجة حرارة الغرفة إلى 100 درجة ؛ ج
سترات

المراجع

  1. Schramm, S., Kohler, N., Rozhon, W. Pyrrolizidine alkaloids: Biosynthesis, biological activities and occurrence in crop plants. Molecules. 24 (3), 498(2019).
  2. EFSA Panel on Contaminants in the Food Chain (CONTAM). Scientific opinion on pyrrolizidine alkaloids in food and feed. EFSA Journal. 9 (11), 134(2011).
  3. Ma, C., et al. Determination and regulation of hepatotoxic pyrrolizidine alkaloids in food: A critical review of recent research. Food and Chemical Toxicology. 119, 50-60 (2018).
  4. Keuth, O., Humpf, H. U., Fürst, P. Pyrrolizidine Alkaloids: Analytical Challenges. Encyclopedia of Food Chemistry. Melton, L., Shahidi, F., Varelis, P. 1, Elsevier. 348-355 (2019).
  5. Huang, D. Y., et al. Pyrrolizidine alkaloids and its source analysis in tea. Journal of Food Safety & Quality. 9 (2), 229-236 (2018).
  6. Liang, A. H., Ye, Z. G. General situation of the toxicity researches on Senecio. China Journal of Chinese Materia Medica. 31 (2), 93-97 (2006).
  7. Li, Y. H., et al. Proteomic study of pyrrolizidine alkaloid-induced hepatic sinusoidal obstruction syndrome in rats. Chemical Research in Toxicology. 28 (9), 1715-1727 (2015).
  8. Jia, Z. J., et al. Catalytic enantioselective synthesis of a pyrrolizidine-alkaloid-inspired compound collection with antiplasmodial activity. The Journal of Organic Chemistry. 83, 7033-7041 (2018).
  9. Yang, M., et al. First evidence of pyrrolizidine alkaloid N-oxide-induced hepatic sinusoidal obstruction syndrome in humans. Archives of Toxicology. 91 (12), 3913-3925 (2017).
  10. Chen, Z., Huo, J. R. Hepatic veno-occlusive disease associated with toxicity of pyrrolizidine alkaloids in herbal preparations. Netherlands Journal of Medicine. 68 (6), 252-260 (2010).
  11. Mattocks, A. R. Chemistry and Toxicology of Pyrrolizidine Alkaloid. , Academic Press. London, UK. (1986).
  12. Picron, J. F., Herman, M., Van Hoeck, E., Goscinny, S. Analytical strategies for the determination of pyrrolizidine alkaloids in plant based food and examination of the transfer rate during the infusion process. Food Chemistry. 266, 514-523 (2018).
  13. Kowalczyk, E., Kwiatek, K. Application of the sum parameter method for the determination of pyrrolizidine alkaloids in teas. Food Additives & Contaminants: Part A. 37 (4), 622-633 (2020).
  14. EFSA Panel on Contaminants in the Food Chain (CONTAM). Risks for human health related to the presence of pyrrolizidine alkaloids in honey, tea, herbal infusions and food supplements. EFSA Journal. 15 (7), 04908(2017).
  15. Han, H., et al. Pyrrolizidine alkaloids in tea: A review of analytical methods, contamination levels and health risk. Food Science. 42 (17), 255-266 (2021).
  16. Nowak, M., et al. Interspecific transfer of pyrrolizidine alkaloids: An unconsidered source of contaminations of phytopharmaceuticals and plant derived commodities. Food Chemistry. 213, 163-168 (2016).
  17. Selmar, D., et al. Transfer of pyrrolizidine alkaloids between living plants: A disregarded source of contaminations. Environmental Pollution. 248, 456-461 (2019).
  18. Izcara, S., et al. Miniaturized and modified QuEChERS method with mesostructured silica as clean-up sorbent for pyrrolizidine alkaloids determination in aromatic herbs. Food Chemistry. 380, 132189(2022).
  19. Izcara, S., Casado, N., Morante-Zarcero, S., Sierra, I. A miniaturized QuEChERS method combined with ultrahigh liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids in oregano samples. Foods. 9 (9), 1319(2020).
  20. Van Wyk, B. E., Stander, M. A., Long, H. S. Senecio angustifolius as the major source of pyrrolizidine alkaloid contamination of rooibos tea (Aspalathus linearis). South African Journal of Botany. 110, 124-131 (2017).
  21. Johnson, A. E., Molyneux, R. J., Merrill, G. B. Chemistry of toxic range plants. Variation in pyrrolizidine alkaloid content of Senecio, Amsinckia, and Crotalaria species. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 33 (1), 50-55 (1985).
  22. Vrieling, K., de Vos, H., van Wijk, C. A. M. Genetic analysis of the concentrations of pyrrolizidine alkaloids in Senecio jacobaea. Phytochemistry. 32 (5), 1141-1144 (1993).
  23. Han, H. L., et al. Development, optimization, validation and application of ultra high performance liquid chromatography tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids and pyrrolizidine alkaloid N-oxides in teas and weeds. Food control. 132, 108518(2022).
  24. Bodi, D., et al. Determination of pyrrolizidine alkaloids in tea, herbal drugs and honey. Food Additives & Contaminants: Part A. 31 (11), 1886-1895 (2014).
  25. European Union Commission. Commission Regulation (EU) 2020/2040 of 11 December 2020 amending Regulation (EC) No 1881/2006 as regards maximum levels of pyrrolizidine alkaloids in certain foodstuffs. Official Journal of the European Union. 14 (12), 1-4 (2020).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

قلويدات البيروليزيدينتلوث الشايالكروماتوغرافيا السائلة فائقة الأداء المقترنة بمطياف الكتلة المتواليالتنقية بالامتزازالاستخلاص بالطور الصلبتحليل عينات التربةإن-أكسيد الإنترميدينالكشف عن السينيكيونينتحليل أوراق الشايمسار انتقال القلويدات
مصدر وطريق تلوث قلويد بيروليزيدين في عينات الشاي
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.