مقالة منهجية

الكشف عن الببتيد المرتبط بجين الكالسيتونين (CGRP) وقياسه في البلازما البشرية باستخدام مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم المعدل

4K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/64775

⸱

يونيو 16, 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Otolaryngology-Head & Neck Surgery, Johns Hopkins University School of Medicine, 2Virginia Commonwealth University School of Medicine, 3Department of Oncology, The Sidney Kimmel Comprehensive Cancer Center, Johns Hopkins University School of Medicine, 4Department of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, University of Michigan Medical School, 5Department of Otolaryngology-Head and Neck Surgery, The Ohio State University College of Medicine, 6ICTR Clinical Research Core Laboratory, Johns Hopkins University School of Medicine

في هذه المقالة

ملخص

البيانات المنشورة المتعلقة بتركيزات الببتيد المرتبط بجين الكالسيتونين (CGRP) في البلازما البشرية غير متسقة. قد تكون هذه التناقضات بسبب عدم وجود منهجية موحدة ومعتمدة لتحديد كمية هذا الببتيد العصبي. هنا ، نصف بروتوكول مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA) لتنقية وقياس CGRP في البلازما البشرية.

الملخص

الببتيد المرتبط بجين الكالسيتونين (CGRP) هو ببتيد عصبي نشط في الأوعية يلعب دورا مفترضا في الفيزيولوجيا المرضية للصداع النصفي وقد يكون مرشحا لحالة العلامات الحيوية. يتم إطلاق CGRP من الألياف العصبية عند التنشيط ويحفز التهابا عصبيا معقما وتوسع الأوعية الشريانية في الأوعية الدموية التي تتلقى التعصيب الصادر ثلاثي التوائم. حفز وجود CGRP في الأوعية الدموية الطرفية التحقيقات للكشف عن هذا الببتيد العصبي وتحديده في البلازما البشرية باستخدام المقايسات البروتينية ، مثل مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA). ومع ذلك ، فإن عمر النصف البالغ 6.9 دقيقة والتباين في التفاصيل الفنية لبروتوكولات الفحص ، والتي غالبا ما لا يتم وصفها بالكامل ، قد أسفرت عن بيانات CGRP ELISA غير متسقة في الأدبيات. هنا ، يتم تقديم بروتوكول ELISA معدل لتنقية وقياس CGRP في البلازما البشرية. تتضمن الخطوات الإجرائية جمع العينات وإعدادها ، والاستخراج باستخدام مادة ماصة قطبية كوسيلة للتنقية ، وخطوات إضافية لمنع الربط غير المحدد ، والقياس الكمي عبر ELISA. علاوة على ذلك ، تم التحقق من صحة البروتوكول من خلال سبايك واستعادة وخطية لتجارب التخفيف. يمكن نظريا استخدام هذا البروتوكول الذي تم التحقق من صحته لتحديد تركيزات CGRP في بلازما الأفراد ليس فقط المصابين بالصداع النصفي ، ولكن أيضا مع الأمراض الأخرى التي قد يلعب فيها CGRP دورا.

المقدمة

الببتيد المرتبط بجين الكالسيتونين (CGRP) هو ببتيد عصبي مكون من 37 حمضا أمينيا موجودا في الألياف العصبية مع توطين حول الأوعية الدموية وكذلك الأنسجة غير العصبية. يشترك شكلان من CGRP ، α- و β-CGRP ، في أكثر من 90٪ من التماثل ويتشاركان الوظائف الفسيولوجية. ومع ذلك ، تم العثور على αCGRP في الجهاز العصبي المركزي والمحيطي ، بينما تم العثور على βCGRP في الجهاز العصبي المعوي 1,2. عند تنشيط مستقبلات الألم والإخراج الخلوي المعتمد على الكالسيوم ، يتم إطلاق CGRP من الخلايا العصبية ، مما يؤدي إلى التهاب عصبي معقم يتضمن توسع الأوعية الشريانية وتسرب بروتين البلازما3،4،5،6،7. من هنا ، يظهر CGRP في الأوعية بعد الشعيرات الدموية وقد يكون علامة حيوية للأمراض التي تسبب تنشيط مسبب للألم ، مثل الصداع النصفي8،9،10،11. وتجدر الإشارة إلى أن CGRP متورط أيضا في COVID-19 من خلال دوره في تكوين الأوعية الدموية والتعديل المناعي ، وقد يتنبأ بتطور المرض غير المواتي12,13. وبالتالي ، فإن بروتوكول القياس الكمي الدقيق ل CGRP في البلازما البشرية يمكن أن يكون له قيمة واسعة.

ربما تم إيلاء أكبر قدر من الاهتمام لدور CGRP في الصداع النصفي. استنادا إلى الدراسات قبل السريرية والسريرية ، تم طرح CGRP كمؤشر حيوي محتمل للصداع النصفي وكهدف للعلاج3،4،5،6،7،8،9،10. وجدت بعض الدراسات ارتفاعا في CGRP في الأفواج المصابة بالصداع النصفي العرضي بالنسبة للمشاركين فيالمجموعة 10،14،15. يبدو أن نجاح مثبطات CGRP في التجارب السريرية لعلاج الصداع النصفي ينطوي على ارتفاع CGRP كعامل مسبب للصداع النصفي. ومع ذلك ، لم يؤكد جميع المحققين هذه النتائج16،17،18،19. علاوة على ذلك ، لم يتم بعد توضيح دور CGRP في أعراض الصداع النصفي غير الصداع. كان الدافع وراء العمل الحالي هو الرغبة في فهم دور CGRP في الأعراض الدهليزية للصداع النصفي.

قد تكون بيانات المقايسة المناعية CGRP غير المتسقة في الأدبيات ناتجة عن عدة أسباب. أولا ، عمر النصف ل CGRP في الأوعية الدموية المحيطية هو 6.9 دقيقة 20 ، بسبب نشاط بروتياز سيرين 21 ، والإنزيمات المهينة للأنسولين وغيرها من الميتالوبروتياز 22 ، والإندوببتيداز المحايد 23 ، والإنزيم المحول للإندوثيلين -1 24. ثانيا ، لم يتم وصف التفاصيل الفنية المتغيرة للمقايسات المناعية المستخدمة لتحديد CGRP بشكل كامل في مثل هذه الدراسات. أخيرا ، يؤدي عدم توحيد منهجية المقايسة المناعية إلى تعقيد الصورة أكثر.

توضح هذه المقالة بروتوكول مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم المعدل (ELISA) الذي يسمح بالتنقية والقياس الكمي الدقيق ل α و βCGRP في البلازما البشرية. لا تتفاعل الأجسام المضادة للمجموعة مع الأميلين أو الكالسيتونين أو المادة P. خضع هذا البروتوكول لتجارب التحقق اللازمة ، مثل الارتفاع والاسترداد وخطية التخفيف ، والتي يتم تقديم البيانات الخاصة بها هنا. لم يتم وصف بروتوكول CGRP ELISA هذا الذي خضع للتحقق من الصحة بشكل كامل في الأدبيات. يمكن استخدام هذا البروتوكول لتحديد CGRP في البلازما البشرية في سياق الصداع النصفي وكذلك أمراض القلب 2,25 ، الأمراض الجلدية 26 ، التوليد 27 ، الروماتيزم28,29 ، الجهاز العضلي الهيكلي 30,31 ، الغدد الصماء 32,33 ، والأمراض الفيروسية 12,13 التي تورط فيها CGRP.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم تطوير هذا البروتوكول باستخدام عينات البلازما البشرية من الأفراد المعتمدين بموافقة من مجلس المراجعة المؤسسية بجامعة جونز هوبكنز (NA_00092491).

1. جمع العينات وإعدادها

  1. اجمع 5 مل من الدم الكامل من الوريد قبل التكعيبي عبر طرق بزل الوريد القياسية34 في أنبوب جمع 6 مل من حمض الإيثيلين ديامينيترايتيك (EDTA).
  2. أضف 0.5 مل من مثبط الأنزيم البروتيني التنافسي للبروتين (10000 وحدة KIU / مل) إلى الأنبوب بعد الجمع لمنع تحلل الببتيد المستهدف. اقلب الأنبوب 10 مرات للسماح للأبروتينين بالاختلاط بشكل كاف مع الدم. بعد ذلك ، قم بتخزين الأنابيب على الثلج حتى الخطوة التالية.
  3. جهاز طرد مركزي الأنبوب عند 604 × جم لمدة 4 دقائق عند 4 درجات مئوية في غضون 60 دقيقة من جمع الدم.
  4. خلع جزء البلازما مع ماصة ونقل إلى 2 مل cryovials معقمة مستديرة القاع.
  5. قم بتخزين cryovials على الفور في -80 درجة مئوية لمدة تصل إلى 2 أسابيع.

2. استخراج عينات البلازما

  1. ضع خرطوشة استخراج داخل أنبوب طرد مركزي مخروطي سعة 15 مل مع الحواف الخارجية للخرطوشة مدعومة بالحواف الخارجية للأنبوب.
  2. قم بتنشيط الخرطوشة عن طريق تمرير 5 مل من الميثانول بنسبة 100٪ أولا ثم 10 مل من الماء عالي النقاء عبر الخرطوشة.
    1. عندما يتم تمرير السائل عبر الخرطوشة عبر التدفق المدفوع بالجاذبية ، فإنه سيتجمع في الأنبوب.
    2. تخلص من السوائل الزائدة أثناء تراكمها للتأكد من أن السائل لا يبتلع الخرطوشة.
    3. تأكد من أن الخرطوشة لا تجف أثناء التجربة.
  3. تمييع 250 ميكرولتر من البلازما مع 750 ميكرولتر من حمض الخليك 4 ٪.
  4. مرر 1 مل من محلول البلازما وحمض الخليك ببطء عبر الخرطوشة.
    ملاحظة: يجب أن تستغرق هذه الخطوة حوالي 30 ثانية عبر التدفق المدفوع بالجاذبية لكل ملليلتر يتم تمريره.
  5. اغسل الخرطوشة ب 10 مل من حمض الخليك 4٪. كما حدث سابقا ، تخلص من السائل الزائد أثناء تراكمه للتأكد من أن السائل لا يبتلع الخرطوشة.
  6. بعد إطلاق آخر قطرة من حمض الأسيتيك من الخرطوشة ، أخرج الخرطوشة من الأنبوب وضعها في أنبوب طرد مركزي مخروطي جديد سعة 15 مل.
  7. تحضير محلول 10: 1 من الميثانول 100٪ وحمض الأسيتيك 4٪ عن طريق خلط 2.7 مل من حمض الأسيتيك 4٪ و 0.3 مل من الميثانول 100٪. استخدم هذا لإزالة CGRP عن طريق تمرير هذا الحل من خلال خرطوشة 1 مل في المرة الواحدة. توقف لمدة 25 دقيقة بين كل ملليلتر من المحلول الذي تم تمريره. لا تتخلص من الخفيف.
  8. سيحتوي الأنبوب على 3 mL من السائل المستخلص بعد 25 دقيقة من مرور آخر ملليلتر من محلول الميثانول وحمض الأسيتيك. ضع كل 1 مل من المحلول في أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 1.7 مل.
    ملاحظة: يجب أن ينتج عن ذلك ثلاثة أنابيب طرد مركزي دقيقة من كل خرطوشة.
  9. ضع كل أنبوب في جهاز طرد مركزي صغير لمدة 1 ثانية للتأكد من أن كل المحلول في أسفل كل أنبوب.
  10. قم بتجفيف جميع العينات عن طريق الطرد المركزي الفراغي عند 4 درجات مئوية (مضبوطة على وظيفة المكثف ، للمحاليل المائية ، عند 1400 دورة في الدقيقة ؛ تختلف قوة الجاذبية اعتمادا على موضع الأنابيب وبالتالي تتراوح من 130-250 × جم).
    ملاحظة: يعتمد الوقت المستغرق لجهاز الطرد المركزي الفراغي لتجفيف العينات على نوع أنبوب الطرد المركزي الدقيق المستخدم.
  11. مباشرة قبل الشروع في إجراء الفحص (الخطوة 4.1) ، أعد تكوين العينة المجففة مسبقا باستخدام محلول المقايسة المناعية للإنزيم (EIA) (انظر جدول المواد) المذاب إلى درجة حرارة الغرفة (RT) أو 20 درجة مئوية.
    ملاحظة: يجب أن يكون حجم المخزن المؤقت EIA المستخدم لإعادة تكوين العينة المجففة مساويا لحجم العينة الأصلي ، أو 250 ميكرولتر.

3. تحضير لوحة ELISA - الحجب للحد من الارتباط غير المحدد

  1. أضف 250 ميكرولتر من محلول ملحي مخزن (TBS) / حاجز مانع جيلاتين السمك إلى كل بئر على اللوحة.
  2. ضع ورقة غطاء فوق اللوحة واحتضانها لمدة 2 ساعة في RT.
  3. قم بإزالة ورقة الغطاء وأفرغ اللوحة عن طريق الانقلاب أو الشفط باستخدام ماصة متعددة القنوات. ثم ، لطخة لوحة على منشفة ورقية للتخلص من أي أثر للسائل.
  4. جفف اللوحة عن طريق ترك اللوحة في غطاء تدفق رقائقي لمدة 10 دقائق.
  5. بعد أن يجف الطبق بشكل واضح ، ضعه في كيس رقائق محكم الغلق مع كيس مجفف من هلام السيليكا وقم بتخزين الكيس عند -20 درجة مئوية لمدة 24 ساعة.
    ملاحظة: يجب استخدام الألواح في غضون 4 أسابيع من حضانة اللوحة.

4. قبل إجراء الفحص

  1. قم بإعداد الكواشف (المخزن المؤقت لتقييم الأثر البيئي ، معيار CGRP ، مراقبة جودة CGRP ، متتبع CGRP ، المخزن المؤقت للغسيل) وفقا لتعليمات المجموعة. قم بإعداد كاشف Ellman فقط بعد انتهاء فترة الحضانة 16-20 ساعة.
  2. قم بإذابة جميع العينات والكواشف إلى RT قبل إجراء بقية البروتوكول.

5. إجراء الفحص

  1. اشطف كل بئر في اللوحة المسدودة خمس مرات باستخدام مخزن مؤقت للغسيل (300 ميكرولتر / بئر). لكل شطف ، توقف مؤقتا لمدة 30 ثانية بعد وضع المخزن المؤقت للغسيل في الآبار ، ثم تخلص من السائل أو نضح باستخدام ماصة متعددة القنوات.
  2. بعد الشطف النهائي ، قم بإزالة كل المخزن المؤقت من الآبار عن طريق الانقلاب (قلب اللوحة لطرد السائل داخل الآبار) أو الشفط باستخدام ماصة متعددة القنوات. امسح آخر قطرات على منشفة ورقية واضغط على اللوحة المقلوبة حتى تتم إزالة كل السائل بشكل واضح من الآبار.
  3. خصص بئرين على الأقل بدون كواشف أو مخزن مؤقت ليعرف باسم الآبار "الفارغة". بعد ذلك ، خصص بئرين آخرين على الأقل للربط غير المحدد (NSB).
  4. قم بتوزيع 100 ميكرولتر من المخزن المؤقت EIA في كل بئر NSB.
  5. الاستغناء عن 100 ميكرولتر من معايير CGRP في نسختين في الآبار المناسبة.
  6. توزيع 100 ميكرولتر من العينات (المعاد تشكيلها في مخزن EIA العازل) ومراقبة الجودة في نسختين في الآبار المناسبة.
  7. الاستغناء عن 100 ميكرولتر من مقتفي CGRP (الجسم المضاد ل CGRP المرتبط بأستيل كولينستراز) لكل بئر يحتوي على معايير NSB و CGRP والعينات ومراقبة الجودة. لا تستغني عن التتبع إلى الآبار "الفارغة".
  8. قم بتغطية اللوحة باستخدام ورقة غطاء شفافة ، وختم كل بئر بحيث لا تتبخر العينات والكواشف في كل بئر بشكل كبير. احتضان اللوحة لمدة 16-20 ساعة عند 4 درجات مئوية.
  9. بعد اكتمال الحضانة ، أعد تكوين كاشف Ellman وفقا لتعليمات المجموعة.
  10. اقلب اللوحة لإزالة كل السائل. شطف كل بئر (كما هو موضح أعلاه) ثلاث مرات مع 300 ميكرولتر من العازلة للغسيل.
  11. بعد الشطف الثالث ، قم بإزالة السائل من الألواح ، ضع اللوحة على لوحة شاكر ، ورجها عند 120 دورة في الدقيقة لمدة 2 دقيقة.
  12. اغسل الطبق ثلاث مرات إضافية. بعد الشطف النهائي ، قم بإزالة كل المخزن المؤقت من الآبار عن طريق الانقلاب أو الشفط باستخدام ماصة متعددة القنوات. امسح آخر قطرات من السائل على منشفة ورقية واضغط على اللوحة المقلوبة حتى تتم إزالة كل السائل بشكل واضح من الآبار.
    ملاحظة: قد لا تكون الغسلات الثلاث الإضافية الموضحة في هذه الخطوة ضرورية في حالة استخدام غسالة ELISA الدقيقة.
  13. توزيع 200 ميكرولتر من كاشف Ellman في كل بئر (لا يشمل الآبار "الفارغة").
  14. قم بتغطية اللوحة بورقة غلاف جديدة ولفها بورق الألمنيوم لمنع أي تعرض للضوء. احتضان في الظلام في RT لمدة 1 ساعة.
  15. تأكد من عدم وجود سائل على الجانب الخلفي من اللوحة قد يربك قراءة مقياس الطيف الضوئي عن طريق مسح المؤخر بمنشفة ورقية جافة.
  16. اقرأ اللوحة للامتصاص عند 405 نانومتر (اللون الأصفر).

6. تحليل البيانات

  1. احسب متوسط الامتصاص لكل "فارغ" ، NSB ، قياسي ، مراقبة الجودة ، والعينات.
  2. اطرح قيم امتصاص NSB المتوسطة من القيم القياسية ومراقبة الجودة وقيم امتصاص العينة.
  3. امتصاص المؤامرة على المحور ص والتركيز على المحور السيني. إنشاء منحنى قياسي باستخدام نموذج الانحدار اللوجستي رباعي المعلمات.
  4. بمجرد إنشاء المنحنى ، استخدم معادلة المنحنى لتحديد التركيزات المقحمة لمراقبة الجودة والعينات ، والتي يمكن قراءتها على المحور السيني.
    ملاحظة: يتم التحقق من صحة المنحنى القياسي فقط إذا كان التركيز المحسوب المحرف لمراقبة الجودة في حدود 25٪ من التركيز المتوقع (عادة 125 بيكوغرام / مل ، ولكن انظر ملصق قارورة مراقبة الجودة).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

هناك العديد من الخطوات الرئيسية في البروتوكول التي يجب تسليط الضوء عليها. أولا ، يجب إضافة الأبروتينين ، وهو مثبط لأنزيم البروتياز سيرين ، إلى عينات الدم الكاملة فور جمعها لمنع المزيد من التدهور الأنزيمي ل CGRP. وقد تبين أن بروتياز سيرين يلعب دورا في استقلاب CGRP ، وقد استخدمت دراسة سابقة أيضا الأبروتينين في قياس CGRP في البشر21,35. إذا لم يتم استخدام مثبطات الأنزيم البروتيني ، واستغرق تحضير العينة أكثر من 60 دقيقة ، فيمكن للمرء أن يتوقع انخفاض مستويات CGRP عند إ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

توضح هذه المقالة بروتوكولا تم التحقق من صحته يسمح بالكشف عن CGRP وقياسه كميا في البلازما البشرية. تم تصنيع هذا البروتوكول بعد العثور على مجموعات CGRP ELISA التجارية لعدم تحديد هذا الجزيء بدقة. بعد إنشاء بروتوكول تحضير العينة ومنحنى قياسي صالح ، أظهرت تجارب الارتفاع والاسترداد والخطية للتخفيف أن النسبة المئوية للتعافي كانت أقل بكثير من المتوقع. تم العثور على نتائج مماثلة باستخدام مجموعة CGRP ELISA تجارية مختلفة (الجدول 4). كمرجع ، فإن الاسترداد القياسي المقبول على نطاق واسع هو 80-120٪ 36...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين المزيد من الإفصاحات لإضافتها.

شكر وتقدير

نود أن نشكر روبرت ن. كول ولورين ر. ديفين وماركوس إغليسياس على مناقشاتهم المفيدة بشأن هذا البروتوكول. تم دعم ذلك جزئيا بتمويل من الجمعية الأمريكية لطب الأذن (منحة الزمالة ، PSK) ، والمؤسسة الأمريكية لأبحاث السمع (90066548 / 90072266 ، JPC) ، والمركز الوطني لتطوير العلوم الانتقالية (NCATS) ، وهو أحد مكونات المعاهد الوطنية للصحة (NIH) ، وخارطة طريق المعاهد الوطنية للصحة للبحوث الطبية (UL1 TR003098 ، NSF). محتويات المنشور هي مسؤولية المؤلفين وحدهم ولا تمثل بالضرورة وجهة النظر الرسمية لمحكمة جونز هوبكنز الجنائية الدولية لرواندا أو NCATS أو المعاهد الوطنية للصحة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
1.7 مل أنبوب الطرد المركزي الدقيق SafesealSorenson Bioscience، Inc.11510
99٪ ميثانولThermoFisher ScientificL13255.0F
15 مل أنبوب الطرد المركزي المخروطيFalcon14-959-49B
2 مل CRYO معقمة معقمة مستديرة. S122263
4٪ حمض الأسيتيكThermoFisher Scientific035572.K2
6.0 مل Vacutainer أنبوب جمع EDTABD367863
Allegra 64R جهاز طرد مركزي منضدةBeckman Coulter، Inc.367586
أبروتينينVWR76344-814
CGRP (بشري) مجموعة ELISAالكاشف الحيوي BertinBioreagent A05481
مخزون CGRPBertin Bioreagent
EIA BufferBertin BioreagentA07000
كاشف Ellman'sBertin BioreagentA09000_49+1
ماصات متعددة القنواتThermoFisher Scientific4661180N
Oasis HLB 3 cc Vac CartridgesWatersWAT094226
Orbital ShakerBellco7744-01010
ماصات دقيقةThermoFisher ScientificF144055MG
SpectraMax M Series متعددة الأوضاع قارئ Microplateالأجهزة الجزيئيةرقم الجزء M2
TBS / جيلاتين السمكBioworld ، من Fischer Scientific50-199-167
ماء عالي النقاء ELISA GradeBertin BioreagentA07001
Vacufuge plus - مكثف الطرد المركزيEppendorf22820109
Wash BufferBertin BioreagentA17000

المراجع

  1. Russell, F. A., King, R., Smillie, S. -J., Kodji, X., Brain, S. D. Calcitonin gene-related peptide: physiology and pathophysiology. Physiological Reviews. 94 (4), 1099-1142 (2014).
  2. Brain, S. D., Grant, A. D. Vascular actions of calcitonin gene-related peptide and adrenomedullin. Physiological Reviews. 84 (3), 903-934 (2004).
  3. Edvinsson, L., Ekman, R., Jansen, I., McCulloch, J., Uddman, R. Calcitonin gene-related peptide and cerebral blood vessels: distribution and vasomotor effects. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 7 (6), 720-728 (1987).
  4. Donnerer, J., Stein, C. Evidence for an increase in the release of CGRP from sensory nerves during inflammation. Annals of the New York Academy of Sciences. 657, 505-506 (1992).
  5. Goadsby, P. J., Edvinsson, L., Ekman, R. Release of vasoactive peptides in the extracerebral circulation of humans and the cat during activation of the trigeminovascular system. Annals of Neurology. 23 (2), 193-196 (1988).
  6. Markowitz, S., Saito, K., Moskowitz, M. A. Neurogenically mediated leakage of plasma protein occurs from blood vessels in dura mater but not brain. The Journal of Neuroscience. 7 (12), 4129-4136 (1987).
  7. Saito, K., Markowitz, S., Moskowitz, M. A. Ergot alkaloids block neurogenic extravasation in dura mater: proposed action in vascular headaches. Annals of Neurology. 24 (6), 732-737 (1988).
  8. Lassen, L. H., et al. CGRP may play a causative role in migraine. Cephalalgia. 22 (1), 54-61 (2002).
  9. Cady, R. K., Vause, C. V., Ho, T. W., Bigal, M. E., Durham, P. L. Elevated saliva calcitonin gene-related peptide levels during acute migraine predict therapeutic response to rizatriptan. Headache. 49 (9), 1258-1266 (2009).
  10. Cernuda-Morollón, E., et al. Interictal increase of CGRP levels in peripheral blood as a biomarker for chronic migraine. Neurology. 81 (14), 1191-1196 (2013).
  11. Messlinger, K. The big CGRP flood-sources, sinks and signalling sites in the trigeminovascular system. The Journal of Headache and Pain. 19, 22(2018).
  12. Ochoa-Callejero, L., et al. Circulating levels of calcitonin gene-related peptide are lower in COVID-19 patients. Journal of the Endocrine Society. 5 (3), (2021).
  13. Rizzi, M., et al. CGRP plasma levels correlate with the clinical evolution and prognosis of hospitalized acute COVID-19 patients. Viruses. 14 (10), 2123(2022).
  14. Goadsby, P. J., Edvinsson, L., Ekman, R. Vasoactive peptide release in the extracerebral circulation of humans during migraine headache. Annals of Neurology. 28 (2), 183-187 (1990).
  15. Sarchielli, P., et al. Clinical-biochemical correlates of migraine attacks in rizatriptan responders and non-responders. Cephalalgia. 26 (3), 257-265 (2006).
  16. Greco, R., et al. Plasma levels of CGRP and expression of specific microRNAs in blood cells of episodic and chronic migraine subjects: towards the identification of a panel of peripheral biomarkers of migraine. The Journal of Headache and Pain. 21 (1), 122(2020).
  17. Tvedskov, J. F., et al. No increase of calcitonin gene-related peptide in jugular blood during migraine. Annals of Neurology. 58 (4), 561-568 (2005).
  18. Pellesi, L., et al. Plasma levels of CGRP during a 2-h infusion of VIP in healthy volunteers and patients with migraine: An exploratory study. Frontiers in Neurology. 13, 871176(2022).
  19. Kruuse, C., Iversen, H. K., Jansen-Olesen, I., Edvinsson, L., Olesen, J. Calcitonin gene-related peptide (CGRP) levels during glyceryl trinitrate (GTN)-induced headache in healthy volunteers. Cephalalgia. 30 (4), 467-474 (2010).
  20. Kraenzlin, M. E., Ch'ng, J. L., Mulderry, P. K., Ghatei, M. A., Bloom, S. R. Infusion of a novel peptide, calcitonin gene-related peptide (CGRP) in man. Pharmacokinetics and effects on gastric acid secretion and on gastrointestinal hormones. Regulatory Peptides. 10 (2-3), 189-197 (1985).
  21. Brain, S. D., Williams, T. J. Substance P regulates the vasodilator activity of calcitonin gene-related peptide. Nature. 335 (6185), 73-75 (1988).
  22. Kim, Y. -G., Lone, A. M., Nolte, W. M., Saghatelian, A. Peptidomics approach to elucidate the proteolytic regulation of bioactive peptides. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (22), 8523-8527 (2012).
  23. Katayama, M., et al. Catabolism of calcitonin gene-related peptide and substance P by neutral endopeptidase. Peptides. 12 (3), 563-567 (1991).
  24. Hartopo, A. B., et al. Endothelin-converting enzyme-1 gene ablation attenuates pulmonary fibrosis via CGRP-cAMP/EPAC1 pathway. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 48 (4), 465-476 (2013).
  25. Mair, J., et al. Plasma CGRP in acute myocardial infarction. Lancet. 335 (8682), 168(1990).
  26. Antúnez, C., et al. Calcitonin gene-related peptide modulates interleukin-13 in circulating cutaneous lymphocyte-associated antigen-positive T cells in patients with atopic dermatitis. The British Journal of Dermatology. 161 (3), 547-553 (2009).
  27. Gangula, P. R., et al. Pregnancy and steroid hormones enhance the vasodilation responses to CGRP in rats. The American Journal of Physiology. 276 (1), H284-H288 (1999).
  28. Hernanz, A., Medina, S., de Miguel, E., Martín-Mola, E. Effect of calcitonin gene-related peptide, neuropeptide Y, substance P, and vasoactive intestinal peptide on interleukin-1beta, interleukin-6 and tumor necrosis factor-alpha production by peripheral whole blood cells from rheumatoid arthritis and osteoarthritis patients. Regulatory Peptides. 115 (1), 19-24 (2003).
  29. Takeba, Y., Suzuki, N., Kaneko, A., Asai, T., Sakane, T. Evidence for neural regulation of inflammatory synovial cell functions by secreting calcitonin gene-related peptide and vasoactive intestinal peptide in patients with rheumatoid arthritis. Arthritis and Rheumatism. 42 (11), 2418-2429 (1999).
  30. Ahmed, M., Srinivasan, G. R., Theodorsson, E., Schultzberg, M., Kreicbergs, A. Effects of surgical denervation on substance P and calcitonin gene-related peptide in adjuvant arthritis. Peptides. 16 (4), 569-579 (1995).
  31. Neugebauer, V., Rümenapp, P., Schaible, H. G. Calcitonin gene-related peptide is involved in the spinal processing of mechanosensory input from the rat's knee joint and in the generation and maintenance of hyperexcitability of dorsal horn-neurons during development of acute inflammation. Neuroscience. 71 (4), 1095-1109 (1996).
  32. Wang, L. H., et al. Serum levels of calcitonin gene-related peptide and substance P are decreased in patients with diabetes mellitus and coronary artery disease. The Journal of International Medical Research. 40 (1), 134-140 (2012).
  33. Zelissen, P. M., Koppeschaar, H. P., Lips, C. J., Hackeng, W. H. Calcitonin gene-related peptide in human obesity. Peptides. 12 (4), 861-863 (1991).
  34. World Health Organization. WHO Guidelines on Drawing Blood: Best Practices in Phlebotomy. 3, Blood-sampling systems. World Health Organization. , Geneva. (2010).
  35. Raffaelli, B., et al. Plasma calcitonin gene-related peptide (CGRP) in migraine and endometriosis during the menstrual cycle. Annals of Clinical and Translational Neurology. 8 (6), 1251-1259 (2021).
  36. Andreasson, U., et al. A practical guide to immunoassay method validation. Frontiers in Neurology. 6, 179(2015).
  37. Messlinger, K., et al. CGRP measurements in human plasma-a methodological study. Cephalalgia: An International Journal of Headache. 41 (13), 1359-1373 (2021).
  38. Sakamoto, S., et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for the quantitative/qualitative analysis of plant secondary metabolites. Journal of Natural Medicines. 72 (1), 32-42 (2018).
  39. Lee, J. -E., Kim, S. Y., Shin, S. -Y. Effect of repeated freezing and thawing on biomarker stability in plasma and serum samples. Osong Public Health and Research Perspectives. 6 (6), 357-362 (2015).
  40. Fan, P. -C., Kuo, P. -H., Lee, M. T., Chang, S. -H., Chiou, L. -C. Plasma calcitonin gene-related peptide: A potential biomarker for diagnosis and therapeutic responses in pediatric migraine. Frontiers in Neurology. 10, 10(2019).
  41. Raffaelli, B., et al. Change of CGRP plasma concentrations in migraine after discontinuation of CGRP-(receptor) monoclonal antibodies. Pharmaceutics. 15 (1), 293(2023).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

CGRP ELISA

مقالات ذات صلة