يصف هذا البروتوكول نموذج خنزير حديثي الولادة للمجازة القلبية الرئوية (CPB) ، مع توقف الدورة الدموية والقلب كأداة لدراسة تلف الدماغ الشديد والمضاعفات الأخرى الثانوية ل CPB.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
نموذج حيواني للأطفال للإنعاش القلبي الرئوي خارج الجسم بعد توقف الدورة الدموية لفترات طويلة
* These authors contributed equally
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
أمراض القلب الخلقية (CHD) هي التشوهات الخلقية الأكثر انتشارا ، حيث يتأثر حوالي مليون ولادة في جميع أنحاء العالم سنويا. يتطلب التحقيق الشامل لهذا المرض نماذج حيوانية مناسبة ومعتمدة. تستخدم الخنازير بشكل شائع في الأبحاث الانتقالية بسبب تشريحها وعلم وظائف الأعضاء المماثلين. يهدف هذا العمل إلى وصف والتحقق من صحة نموذج خنزير صغير لحديثي الولادة للمجازة القلبية الرئوية (CPB) مع الدورة الدموية والسكتة القلبية (CA) كأداة لدراسة تلف الدماغ الشديد والمضاعفات الأخرى لجراحة القلب. بالإضافة إلى تضمين قائمة بالمواد ، يوفر هذا العمل خارطة طريق للمحققين الآخرين لتخطيط وتنفيذ هذا البروتوكول. بعد أن أجرى الممارسون ذوو الخبرة العديد من التجارب ، أظهرت النتائج التمثيلية للنموذج معدل نجاح بنسبة 92٪ ، مع حالات فشل تعزى إلى حجم صغير من الخنزير الصغير وتشريح الأوعية المتغير. علاوة على ذلك ، سمح النموذج للممارسين بالاختيار من بين مجموعة متنوعة من الظروف التجريبية ، بما في ذلك الأوقات المتفاوتة في CA ، وتغيرات درجة الحرارة ، والتدخلات الدوائية. باختصار ، تستخدم هذه الطريقة المواد المتاحة بسهولة في معظم المستشفيات ، وهي موثوقة وقابلة للتكرار ، ويمكن استخدامها على نطاق واسع لتعزيز الأبحاث الانتقالية في الأطفال الذين يخضعون لجراحة القلب.
المقدمة
أمراض القلب الخلقية (CHD) هي التشوهات الخلقية الأكثر انتشارا ، حيث يتأثر حوالي مليون ولادة في جميع أنحاء العالمسنويا 1. على الرغم من أن التطورات الحديثة في جراحة القلب والصدر (CTS) وعلاج العناية المركزة قد حسنت معدلات الوفيات ، إلا أن الأمراض المصاحبة لا تزال شائعة للغاية2،3،4،5. تم الإبلاغ عن تشوهات النمو العصبي ، بما في ذلك الإعاقات المعرفية والحركية وكذلك صعوبات التعلم ، في حوالي 25٪ -50٪ من هؤلاء المرضى6،7،8. ثبت أن الجراحة خلال الأيام الأولى من الحياة ، وخاصة تلك التي تتطلب الدورة الدموية والسكتة القلبية (CA) ، تزيد من المراضة9. قد يكون للتغيرات الديناميكية الدموية أثناء الجراحة تأثير مهم على دماغ حديثي الولادة المعرضين للخطر. النماذج التجريبية ضرورية لفهم أصل هذه التشوهات بشكل أفضل والتحقيق في استراتيجيات الحماية العصبية لتحسين توقعات هؤلاء المرضى.
تم توثيق استخدام النماذج الحيوانية لدراسة هذه الفئة من السكان على نطاق واسع5،10،11،12،13،14. والجدير بالذكر أن الخنازير تقدم خيارا ممتازا ، نظرا للتقريب التقريبي في تشريح القلب (الشكل 1) ، والجينوم ، وعلم وظائف الأعضاء ، فضلا عن حجمها الأكبر نسبيا مقارنة بالنماذج الحيوانية الأخرى15 (الشكل 2). تم وصف استخدام نماذج الخنازير لدراسة آثار كل من المجازة القلبية الرئوية (CPB) و CA سابقا. هذه النماذج الحيوانية التجريبية مفيدة لدراسة التغيرات الديناميكية الدموية ومضاعفات أعضاء الأنسجة النهائية المرتبطةبها 14،16،17،18،19،20. تم تطوير هذه النماذج للسماح للباحثين بدراسة الظروف البشرية في بيئة خاضعة للرقابة ، مع المرونة لمجموعة متنوعة من الظروف التجريبية. تشير معظم الدراسات إلى استخدام القنية المركزية ، وهي تقنية تتطلب مهارات جراحية متقدمة ، وتتطلب استخداما أعلى للموارد ، وتجعل من الصعب ضمان البقاء على المدى الطويل. على الرغم من أن الدراسات السابقة قد وثقت استخدام الخنازير في دراسة CPB12،15 ، إلا أن القليل منهم اقترحوا تقنية القنية المحيطية.
تقنية القنية المحيطية الجديدة هذه أسهل وأقل عدوانية وأكثر جدوى عند مقارنتها بالدراسات المنشورة الأخرى19. علاوة على ذلك ، فإن التحقق من صحة هذه التقنية في الأطفال حديثي الولادة الصغيرة أمر جديد ويجب النظر في استخدامه من قبل جميع الباحثين المهتمين باستخدام نموذج حيواني لدراسة أمراض القلب التاجية والأمراض المصاحبة المرتبطة بها. إنه مناسب بشكل خاص للأفراد الذين لديهم إمكانية الوصول إلى مختبر مجهز بالإمدادات والموارد والموظفين ذوي الخبرة في إجراء تجارب النماذج الحيوانية.
باختصار ، الهدف الرئيسي من هذه الدراسة هو وصف والتحقق من صحة نموذج خنزير صغير لحديثي الولادة من CPB مع CA. يهدف البروتوكول إلى دراسة تلف الدماغ الشديد والمضاعفات المحتملة الأخرى لجراحة CPB في بيئة خاضعة للرقابة مع ظروف تجريبية مختلفة. توفر هذه الطريقة نموذجا قابلا للتعميم وموثوقا وعالي الجودة ، والذي يمكن استخدامه لمجموعة متنوعة من البروتوكولات التجريبية.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
تمت الموافقة على الإجراء الحالي من قبل لجنة أخلاقيات التجارب على (CEEA) التابعة لمركز الطب المقارن والصورة الحيوية في كاتالونيا (CEEA-CMCiB). كما أذنت حكومة كاتالونيا بالبروتوكول التجريبي (رقم 11652) ورقم تعريف الملف FUE-2022-02381434 ومعرف QBXQ3RY3J. قام الممارسون ذوو الخبرة ، بما في ذلك الأطباء البيطريون المعتمدون الذين يقدمون الإشراف والمساعدة ، بإجراء جميع التجارب. تم استخدام الخنازير (Sus scrofa domestica) ، التي يبلغ عمرها 4-6 أيام ، ويزن 2.5-3.5 كجم ، في هذه الدراسة. وبذلت محاولة لتحقيق التوازن بين التوزيع الجنساني لتجنب التحيزات ذات الصلة.
1. التخدير والتنبيب والوصول
- يجب بدء التخدير وتسكين الألم باستخدام الكيتامين العضلي (20 ملغ/كغ)، ديكسميديتوميدين (0.02 ملغ/كغ)، والميدازولام (0.3 ملغ/كغ). بمجرد تخدير بعمق (بعد 5 دقائق من إعطاء التخدير) ، قم بالأكسجين بنسبة 100٪ O2 عبر قناع الخطم (2 لتر / دقيقة). بعد ذلك، يجب تحريض التخدير باستخدام البروبوفول الوريدي (0.5 ملغ/كغ) (انظر جدول المواد).
- ضع الخنزير الصغير في وضع الاستلقاء الظهري. إجراء التنبيب الرغامي باستخدام أنبوب القصبة الهوائية المقيد 2.5 مم (انظر جدول المواد) ، باستخدام التصور المباشر للقصبة الهوائية.
- تأكيد وضع الأنبوب الرغامي المناسب عن طريق التسمع المباشر لقواعد الرئة.
- اضبط التهوية الميكانيكية لتقديم معدل تنفس يبلغ 30 نفسا في الدقيقة ، وحجم المد والجزر من 8-12 مل / كجم ، وضغط الزفير النهائي 4 سمH 2O.
- راقب باستمرار عمق التخدير أثناء البروتوكول عن طريق معدل ضربات القلب (HR) وضغط الدم (BP) وتشبع الأكسجين (spO2). اضبط معلمات التهوية والتخدير حسب الضرورة.
ملاحظة: القيم المثالية للعناصر الحيوية هي HR من 130-160 نبضة في الدقيقة ، BP من 75-95 / 60-70 ، و spO2 > 85. - الحفاظ على التخدير باستخدام 1.5٪ سيفوفلوران وفنتانيل (25-200 ميكروغرام / كجم / دقيقة) (انظر جدول المواد).
- استخدم التصور المباشر لوضع القسطرة في الشريان الفخذي (3 Fr) والوريد (4 Fr) (انظر جدول المواد).
ملاحظة: سيتم استخدام هذه القسطرة لإدارة الدواء والحصول على العينات. على هذا النحو ، من المهم الحفاظ على الوصول.
2. إعداد دائرة CPB وفتيلة
- قم بتخصيص وإعداد دائرة CPB باتباع الخطوات أدناه (الشكل 3):
- تقصير الأنبوب قدر الإمكان ، مع السماح بمسافة كافية للوصول إلى من الجهاز.
- قم بإنشاء وإرفاق جسر أنابيب يربط التدفق الخارجي من المؤكسج الغشائي (انظر جدول المواد) بالتدفق إلى المضخة.
ملاحظة: الجسر حيوي للسماح للدم بالاستمرار في الدوران عبر الجهاز أثناء إجراء CAs للحيوان.
- بمجرد إغلاق جميع نقاط الاتصال ، قم بتجهيز الدائرة ب 300 مل من محلول ملحي الهيبارين (1000 وحدة مستخدم من الهيبارين مختلطة في 1 لتر من المحلول الملحي) و 300 مل من دم الخنزير المتبرع الطازج ، متبوعا ب 3.5 mEq بيكربونات الصوديوم ، و 350 وحدة مستخدم من الهيبارين ، و 450 ملغ من غلوكونات الكالسيوم (انظر جدول المواد).
- "اكتساح" الدائرة عن طريق تشغيل خليط الدم والهيبارين المالحة وبيكربونات الصوديوم وغلوكونات الكالسيوم عبر الدائرة بأكملها لمدة 2 دقيقة بمعدل 0.3 لتر / دقيقة.
3. الجراحة وبدء CPB
ملاحظة: يصور الشكل التكميلي 1 المواد الجراحية اللازمة لوضع القنية.
- كشف الوريد الوداجي الداخلي الأيسر والشريان السباتي الأيمن للتحضير للقنية (الشكل 4).
- للقنية ، استخدم تقنية Seldinger أو "عبر الأسلاك"21.
- أولا ، أدخل قسطرة إبرة في الوريد الوداجي الداخلي الأيسر. بمجرد رؤية وميض من الدم ، أدخل سلك توجيه بعناية في الوعاء وأزل الإبرة ، مما يضمن بقاء السلك في مكانه.
- مرر موسعا فوق السلك وفي الوعاء ، ثم قم بإزالة الموسع.
- مع بقاء السلك في مكانه ، قم بربط قنية وريدية 8 Fr ودفعها ببطء ~ 4 سم في الوعاء. قم بإزالة السلك بعناية ، مع التأكد من بقاء القنية في مكانها.
- كرر تقنية سلك Seldinger مع التوسيع لوضع قنية شريانية للأطفال 6 Fr (انظر جدول المواد) في الشريان السباتي الأيمن.
- في وقت القنية الشريانية، يتم تطبيق بلعة من الهيبارين الوريدي (50 وحدة دولية/كغ) عن طريق القنية الشريانية الموضوعة حديثا.
- بمجرد الوصول ، قم بإصلاح كل من القنية بشكل آمن للحيوان باستخدام 3-0 خيوط بولي قابلة للامتصاص وشريط لمنع الإزالة غير المقصودة (الشكل 5).
- قم بتوصيل الكانيولا بدائرة CPB ، مما يضمن إضافة محلول ملحي مع الهيبارين إلى نقاط الاتصال لمنع الهواء في الدائرة.
- اضبط التدفق الأولي على 80-85 مل / كجم / دقيقة وقم بزيادته ببطء إلى معدل تدفق نهائي يبلغ 150 مل / كجم / دقيقة.
ملاحظة: يمكن للحيوان البقاء على CPB طالما تتطلب التجارب. يصور مخطط الخطوات 1-3 في الشكل التكميلي 2.
4. الدورة الدموية والسكتة القلبية (كاليفورنيا)
- للحث على CA ، قم بتطبيق 9 mEq من KCl. استخدم العناصر الحيوية لتقييم الاعتقال الكامل والتأكيد باستخدام تخطيط صدى القلب. إدارة KCl إضافية حسب الضرورة.
- بمجرد توقف القلب ، اعزل عن الدائرة للحث على توقف الدورة الدموية.
- حافظ على تدفق دائرة CPB باستخدام الجسر الموصوف مسبقا (الخطوة 3.5) الذي يدور عند 1500 دورة في الدقيقة.
5. الإنعاش القلبي الرئوي خارج الجسم (eCPR)
- بمجرد تحقيق حالة CA المناسبة (0 دقيقة أو 30 دقيقة أو 60 دقيقة) ، ابدأ في إنعاش eCPR.
- أعد توصيل الخنزير الصغير بدائرة CPB.
- يتم تطبيق 3 مل من غلوكونات الكالسيوم (2.25 ملليمول/10 مل، مخفف 1:2) و6 مل من بيكربونات الصوديوم (1 م، مخفف 1:2) عن طريق المدخل الشرياني المحيطي، مع إضافة جرعات حسب الضرورة.
ملاحظة: يمكن استخدام تقويم نظم القلب أو الأدوية المؤثرة في التقلص العضلي (الأدرينالين أو الدوبامين) إذا لزم الأمر.
6. رعاية ما بعد الجراحة
- بمجرد الإنعاش ، راقب العناصر الحيوية لمدة 15 دقيقة لضمان الاستقرار.
ملاحظة: المعلمات المثالية في فترة وحدة العناية المركزة هي: HR من 100-150 نبضة في الدقيقة ، BP من 75-95 / 60-70 ، و spO2 > 85. - نقل للتصوير بالرنين المغناطيسي (MRI).
ملاحظة: بعد التصوير ، لم تتعاف أبدا وتم القتل الرحيم أثناء التخدير عن طريق إعطاء الصوديوم بنتوباربيتال عن طريق الوريد للحصول على عينات من الدماغ للتحليل النسيجي. يمكن الاطلاع على الجدول الزمني للجزء التجريبي من الإجراء ، بما في ذلك استراتيجية جمع العينات ، في الشكل التكميلي 3.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
خلال فترة 6 أشهر ، تم تنفيذ البروتوكول الكامل 12 مرة من قبل فريق متعدد التخصصات من أطباء الرعاية الحرجة للأطفال وأطباء القلب للأطفال والأطباء البيطريين والفنيين (الشكل التكميلي 2 والشكل التكميلي 3).
يوضح الشكل 1 والشكل 2 التشريح المتوقع للحيوانات المستخدمة في هذا البروتوكول. كان متوسط عمر الخنازير المدرجة 4.8 أيام (4-6 أيام) ووزنها في المتوسط 2,814 جم (2,400-3,140 جم). وكان ما مجموعه 42 في المائة من ا...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
يشيع استخدام المجازة القلبية الرئوية أثناء جراحة القلب للبالغين والأطفال وحديثي الولادة. يعتمد على دائرة آلية خارج الجسم وأكسجين غشائي يعملان معا لأكسجة الدم وتوفير الاستقرار الرئوي والقلبي. أظهرت الدراسات السابقة أن CPB قد يؤثر سلبا على العديد من أجهزة الأعضاء (الكلوية والدماغية والرئوية والقلبية والمعدية المعوية) في كل من المرضى والمرضى الأصحاء سابقا22،23،24. من المحتمل أن يكون هذا مدفوعا بمجموعة متنوعة من العوامل ، بما في ذلك...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
شكر وتقدير
تلقى هذا المشروع تمويلا من برنامج البحث والابتكار Horizon 2020 التابع للاتحاد الأوروبي بموجب اتفاقية المنحة رقم 101017113 ، ومعهد Salud Carlos III (PI20/00298) ، و Beca Carmen de Torres (Fundació Sant Joan de Déu) ، وبرنامج Vanderbilt Medical Scholars. نشكر جميع موظفي CMCiB ، بما في ذلك جوردي جريفولز وماريا ديل مار أريفالو وخوان ريكاردو غونزاليس وسارة كابديفيلا وجوزيب بويج وجيما كريستينا مونتي روبي). كما نتقدم بشكر خاص إلى أبريل كوليل كامبروبي والدكتور سيرجي سيزار دياز لمساعدتهما في الرسومات التشريحية.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 1.5٪ سيفوفلوران | Zoetis | 20070289 | |
| أنبوب القصبة الهوائية 2.5 مم | هنري شاين | 988-1782 | |
| 3 قسطرة Fr للوصول إلى الشرايين الطرفية | Prodimed | 3872.1 | |
| 4 قسطرة Fr للوصول الوريدي المحيطي | Prodimed | 3872.13 | |
| 6 قنية الشرايين الشريانية للأطفال ECMO الفرنسية | Medtronic | 77206 | |
| 8 قنية وريدية للأطفال ECMO الفرنسية | Medtronic | 68112 | |
| الأدرينالين | ب براون | 469801-1119 | |
| ملقط Adson | Allgaier instruments | 08-030-130 | يمكن استبدال أي علامة تجارية BP |
| cuff ؛ | ميندراي | ||
| بوبرينورفين (0.01 مجم / كجم) | ريختر فارما | # 9004114000537 | |
| غلوكونات الكالسيوم (2.25 مليمول / 10 مل) | ب براون | 570-12606194-1119 | |
| ديكسميديتوميدين (0.5-2.0 & ميكرو; جم / كجم / دقيقة) | Orion farma | GTN 064321000017253 | |
| Dolethol | vetoquinol | # 3605870004904 | |
| الدوبامين | الحكمة | A044098010 | |
| الفنتانيل (25-200 & micro; جم / كجم / دقيقة) | Kern Pharma | 756650.2H | |
| فصيلة دم خنزير متبرع طازج O Any | ؛ | ||
| مبادل حراري | Maquet Gmbh & Co | MCP70107.2130 | |
| الهيبارين (1350 UI) | ROVI | 641641.1 | |
| ضام إيروين | Aesculap | BV104R | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| بالكيتامين (20 مجم / كجم) | ريختر فارما | #9004114000452 | |
| زيوت التشحيم | أي زيوت تشحيم | ||
| ميدازولام (0.3 مجم / كجم) | سيرا باميس | 619627.4 | |
| ملقط البعوض | Aesculap | BH109R | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| ملقط إبرة | Aesculap | BM016R | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| عادي & nbsp ؛ محلول ملحي (0.9٪) | B Braun Fisiovet | 5/469827/0610 | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| مشابك بلاستيكية للأنابيب | Achim Schulz-Lauterbach | DBGM | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| كلوريد البوتاسيوم (9 مكافئ مليك) | B براون | 3545156 | |
| بروبوفول (0.5 مجم / كجم) | Zoetis | 579742.7 | |
| Quadrox غشاء Oxygenator ؛ | ماكيت جي إم بي إتش & Co | BE-HMOSD 300000 | |
| ميزان حرارة المستقيم | أي | ||
| نظام ECMO لوحدة التحكم RotaFlow | ماكيت جي إم بي إتش & Co | MCP00703177 | نظام ECMO لحديثي الولادة |
| مشرط | Aesculap | BB074R | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| بيكربونات الصوديوم (1 م) | Fresenius Kabi | 634477.4 OH | |
| مقص جراحي | Talmed Inox | 112 | يمكن استبدال أي علامة تجارية |
| بخيطة (3/0 بولي قابل للامتصاص) | B Braun Novosyn (R) | 0068030N1 | استبدال أي علامة تجارية |
المراجع
- vander Linde, D., et al. Birth prevalence of congenital heart disease worldwide: A systematic review and meta-analysis. Journal of the American College of Cardiology. 58 (21), 2241-2247 (2011).
- Claessens, N. H. P., et al. Amplitude-integrated electroencephalography for early recognition of brain injury in neonates with critical congenital heart disease. Journal of Pediatrics. 202, 199-205 (2018).
- Aly, S. A., et al. Cerebral tissue oxygenation index and lactate at 24 hours postoperative predict survival and neurodevelopmental outcome after neonatal cardiac surgery. Congenital Heart Disease. 12 (2), 188-195 (2017).
- Bouma, B. J., Mulder, B. J. M. Changing landscape of congenital heart disease. Circulation Research. 120 (6), 908-922 (2017).
- Jungwirth, B., de Lange, F. Animal models of cardiopulmonary bypass: development, applications, and impact. Seminars in Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 14 (2), 136-140 (2010).
- Sarrechia, I., et al. Neurocognitive development and behaviour in school-aged children after surgery for univentricular or biventricular congenital heart disease. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 49 (1), 167-174 (2016).
- Schlosser, L., et al. Neurocognitive functioning in young adults with congenital heart disease: insights from a case-control study. Cardiology in the Young. 32 (5), 694-701 (2022).
- Miller, S. P., et al. Abnormal brain development in newborns with congenital heart disease. The New England Journal of Medicine. 357 (19), 1928-1938 (2007).
- Fang, A., Allen, K. Y., Marino, B. S., Brady, K. M. Neurologic outcomes after heart surgery. Paediatric Anaesthesia. 29 (11), 1086-1093 (2019).
- Carr, B. D., et al. Inflammatory effects of blood-air interface in a porcine cardiopulmonary bypass model. ASAIO Journal. 66 (1), 72-78 (2020).
- Drabek, T., et al. Emergency preservation and delayed resuscitation allows normal recovery after exsanguination cardiac arrest in rats: A feasibility trial. Critical Care Medicine. 35 (2), 532-537 (2007).
- Sheikh, A. M., et al. Proteomics of cerebral injury in a neonatal model of cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 132 (4), 820-828 (2006).
- Khailova, L., et al. Tissue alkaline phosphatase activity and expression in an experimental infant swine model of cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest. Journal of Inflammation. 17, 27(2020).
- Mavroudis, C. D., et al. Electroencephalographic response to deep hypothermic circulatory arrest in neonatal swine and humans. The Annals of Thoracic Surgery. 106 (6), 1841-1846 (2018).
- Gabriel, G. C., et al. Cardiovascular development and congenital heart disease modeling in the pig. Journal of the American Heart Association. 10 (14), 021631(2021).
- Dhari, Z., et al. Impact of cardiopulmonary bypass on neurogenesis and cortical maturation. Annals of Neurology. 90 (6), 913-926 (2021).
- Wittnich, C., Belanger, M. P., Wallen, W. J., Torrance, S. M., Juhasz, S. A Long-term stable normothermic cardiopulmonary bypass model in neonatal swine. The Journal of Surgery Research. 101 (2), 176-182 (2001).
- Lodge, A. J., et al. Regional blood flow during pulsatile cardiopulmonary bypass and after circulatory arrest in an infant model. The Annals of Thoracic Surgery. 63 (5), 1243-1250 (1997).
- Davidson, J. A., et al. Alkaline phosphatase treatment of acute kidney injury in an infant piglet model of cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest. Scientific Reports. 9 (1), 14175(2019).
- Wang, X., et al. Ulinastatin protects against acute kidney injury in infant piglets model undergoing surgery on hypothermic low-flow cardiopulmonary bypass. PLoS One. 10 (12), e0144516(2015).
- Tegtmeyer, K., Brady, G., Lai, S., Hodo, R., Braner, D. Videos in clinical medicine: placement of an arterial line. The New England Journal of Medicine. 354 (15), 13(2006).
- Nteliopoulos, G., et al. Lung injury following cardiopulmonary bypass: a clinical update. Expert Review of Cardiovascular Therapy. 20 (11), 871-880 (2022).
- Jufar, A. H., et al. Renal and cerebral hypoxia and inflammation during cardiopulmonary bypass. Comprehensive Physiology. 12 (1), 2799-2834 (2021).
- Nollert, G., Reichart, B. Cardiopulmonary bypass and cerebral injury in adults. Shock. 16 (1), 16-19 (2001).
- Tóth, Z., Györimolnár, I., Abrahám, H., Hevesi, A. Cannulation and cardiopulmonary bypass produce selective brain lesions in pigs. Asian Cardiovascular & Thoracic Annals. 14 (4), 273-278 (2006).
- Senra, D. F., et al. A rat model of acute lung injury induced by cardiopulmonary bypass. Shock. 16 (3), 223-226 (2001).
- Liu, M. D., Luo, P., Wang, Z. J., Fei, Z. Changes of serum Tau, GFAP, TNF-α and malonaldehyde after blast-related traumatic brain injury. Chinese Journal of Traumatology. 17 (6), 317-322 (2014).
- Kim, W. G., Moon, H. J., Won, T. H., Chee, H. K. Rabbit model of cardiopulmonary bypass. Perfusion. 14 (2), 101-105 (1999).
- Mei, B., et al. Acute adrenal cortex injury during cardiopulmonary bypass in a canine model. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 156 (2), 696-706 (2018).
- Cameron, D., Tam, V., Cheng, W., Braxton, M. Studies in the physiology of cardiopulmonary bypass using a swine model. Swine as Models in Biomedical Research. , Iowa State University Press. Ames, Iowa. 187-197 (1992).
- Belanger, M., Wittnich, C., Torrance, S., Juhasz, S. Model of normothermic long-term cardiopulmonary bypass in swine weighing more than eighty kilograms. Comparative Medicine. 52 (2), 117-121 (2002).
- Münch, F., et al. Improved contractility with tepid modified full blood cardioplegia compared with cold crystalloid cardioplegia in a piglet model. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 48 (2), 236-243 (2015).
- Tirilomis, T., Paz, D., Nolte, L., Schoendube, F. A. Modified aortic cannulation for cardiopulmonary bypass in neonatal piglet model. Journal of Cardiac Surgery. 23 (5), 503-504 (2008).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
