مقالة منهجية

قياس السمية الخلوية المعتمدة على الأجسام المضادة في نموذج كروي للورم: تطبيق لاكتشاف الأدوية

DOI:

10.3791/65922

⸱

أبريل 26, 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medical Chemistry, Faculty of Medicine, University of Debrecen, 2Doctoral School of Molecular Medicine, University of Debrecen, 3National Academy of Scientist Education, 4HUN-REN-DE Cell Biology and Signaling Research Group

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا ، نقدم طريقة لتحديد المركبات التي تعدل آلية ADCC ، وهي آلية مهمة لقتل الخلايا السرطانية للأجسام المضادة للأورام. يتم قياس التأثير السام للخلايا القاتلة الطبيعية في كرويات خلايا سرطان الثدي في وجود تراستوزوماب. يحدد تحليل الصور الخلايا القاتلة والمستهدفة الحية والميتة في الأجسام الكروية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعد العلاج المناعي القائم على الأجسام المضادة وحيدة النسيلة الذي يستهدف مستضدات الورم الآن الدعامة الأساسية لعلاج السرطان. إحدى آليات عمل الأجسام المضادة ذات الصلة سريريا هي السمية الخلوية المعتمدة على الأجسام المضادة (ADCC) ، حيث يرتبط الجسم المضاد بالخلايا السرطانية ويشرك المكون الخلوي للجهاز المناعي ، على سبيل المثال ، الخلايا القاتلة الطبيعية (NK) ، لقتل الخلايا السرطانية. يمكن تحسين فعالية هذه العلاجات من خلال تحديد المركبات المساعدة التي تزيد من حساسية الخلايا السرطانية أو قوة الخلايا المناعية. بالإضافة إلى ذلك ، قد تحدد التفاعلات الدوائية غير المكتشفة في مرضى السرطان الذين تم علاجهم بشكل مشترك لحالات سابقة أو الأعراض المرتبطة بالسرطان نجاح العلاج بالأجسام المضادة. لذلك ، يجب القضاء على هذه التفاعلات الدوائية غير المرغوب فيها. مع وضع هذه الأهداف في الاعتبار ، أنشأنا نموذج ADCC للسرطان ووصفنا هنا بروتوكولا بسيطا للعثور على الأدوية المعدلة ل ADCC. نظرا لأن النماذج ثلاثية الأبعاد مثل كرويات الخلايا السرطانية تتفوق على الثقافات ثنائية الأبعاد في التنبؤ بالاستجابات في الجسم الحي للأورام للعلاجات المضادة للسرطان ، فإن الثقافات المشتركة الكروية لخلايا سرطان الثدي HER2 + JIMT-1 التي تعبر عن EGFP و NK92. تم إنشاء خطوط خلايا CD16 وتحفيزها باستخدام Trastuzumab ، وهو جسم مضاد وحيد النسيلة معتمد سريريا ضد سرطان الثدي الإيجابي HER2. سمح للكرويات JIMT-1 بالتشكل في ألواح 96 بئرا طاردة للخلايا. في اليوم 3 ، تمت إضافة الخلايا القاتلة الطبيعية وتراستوزوماب. ثم تم تلطيخ الكرات ب Annexin V-Alexa 647 لقياس موت الخلايا المبرمج ، والذي تم قياسه كميا في المنطقة المحيطية للكرويات باستخدام مجهر آلي. يتم إثبات قابلية تطبيق مقايستنا لتحديد الجزيئات المعدلة ل ADCC من خلال إظهار أن Sunitinib ، وهو مثبط مستقبلات التيروزين كيناز المعتمد من قبل إدارة الغذاء والدواء ضد السرطان النقيلي ، يلغي ADCC بالكامل تقريبا. يتوافق توليد خطوط أنابيب التقاط الصور وتحليلها مع الفحص عالي الإنتاجية للمركبات المعدلة ل ADCC في كرويات الخلايا السرطانية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تستخدم كرويات الورم متعددة الخلايا (MCTS) على نطاق واسع نماذج ثلاثية الأبعاد (3D) تتشكل بسبب ميل الخلايا الملتصقة إلى التجميع وتمثل أداة مهمة لاكتساب نظرة ميكانيكية في بيولوجيا الخلايا السرطانية. يمكن توليدها من مجموعة واسعة من أنواع الخلايا بواسطة العديد من التقنيات ، مثل الثقافات ثلاثية الأبعاد القائمة على السائلوالسقالات 1. ميزتها الرئيسية على نماذج 2D أحادية الطبقة هي أنها تلخص السمات الرئيسية للأورام في الجسم الحي ، وهي التنظيم الهيكلي ونقص الأكسجة ، من خلال محاكاة السلوك البيولوجي للخلايا السرطانية ، وخاصة الآليات التي تؤدي إلى الهروب العلاجي ومقاومة الأدوية2. وبالتالي ، نظرا لأن MCTS يمكن أن يحسن القدرة على التنبؤ بالسمية وحساسية الأدوية ، فإنها تستخدم على نطاق واسع لدراسة السرطانات في 3D ويمكن أن تعزز تطوير أدوية فعالة لأنواع مختلفة من السرطان3.

لدراسة أي مرض ، هناك حاجة ماسة لنماذج ذات صلة ومريحة. يعد إعداد نماذج لدراسات المناعة السرطانية أمرا صعبا لأن الجهاز المناعي يتكون من أنواع متعددة من الخلايا. يحتوي كل نوع خلية على عدة أنواع فرعية ومجموعة واسعة من حالات التنشيط. تتفاعل هذه الأنواع المختلفة من الخلايا المناعية مع الخلايا السرطانية ومكونات الورم الأخرى ، مما يؤثر في النهاية على نتيجة المرض. تفشل طرق زراعة الخلايا 2D في المختبر في تلخيص هذه التفاعلات الخلوية المعقدة ، لأنها تفتقر إلى قابلية الترجمة وغير قادرة على التنبؤ بعمل الدواء على مستوى النظام (على سبيل المثال ، في الأنسجة)4,5. علاوة على ذلك ، فإن نماذج الفئران لها أيضا قيود شديدة بسبب الاختلافات الأساسية بين جهاز المناعة البشري والفئران. وبالتالي ، يمكن لأنظمة الثقافة ثلاثية الأبعاد سد الفجوات الحالية في النماذج المتاحة ، وتوفير طريقة بديلة وتحسين فهمنا لمناعة السرطان6. على وجه التحديد ، يمكن استخدام النماذج الكروية لاختبار العلاجات المناعية ، وذلك أساسا لتقييم كفاءة فحص الأدوية والأجسام المضادة العلاجية لتعزيز تسلل الخلايا المناعية والتأثيرات المضادة للورم ضد الأهداف الكروية7. علاوة على ذلك ، فإن إمكانات MCTS المكونة من خلايا في حالات أيضية وتكاثرية مختلفة لدراسة التفاعلات بين خلايا السدى (على سبيل المثال ، الخلايا الليمفاوية ، الضامة ، الخلايا الليفية) والخلايا السرطانية ولتطوير استراتيجيات جديدة مضادة للسرطان قد تم إثباتها بشكل كبير8. وبالتالي ، هناك حاجة حيوية لتأكيد المنصات التنبؤية والدقيقة من أجل تعزيز عملية اختبار الأدوية ، مع مراعاة الفيزيولوجيا المرضية للبيئة المكروية للورم.

سرطان الثدي (BC) هو السرطان الأكثر شيوعا الذي يتم تشخيصه في جميع أنحاء العالم لدى النساء. يعتمد التصنيف السريري لهذا المرض غير المتجانس على وجود مستقبلات عبر الغشاء ، على سبيل المثال ، مستقبلات هرمون الاستروجين (ER) والبروجسترون (PR) (تسمى مجتمعة مستقبلات الهرمونات ، HR) جنبا إلى جنب مع الإفراط في التعبير أو تضخيم مستقبل عامل نمو البشرة البشري 2 (HER2) البروتين / الجين الورمي. بناء على التعبير المناعي الكيميائي لهذه المستقبلات ، يتم التعرف على أربعة أنواع فرعية بشكل شائع: اللمعية A (HR + / HER2-) ، اللمعية B (HR + / HER2 +) ، HER2 الإيجابية (HR- / HER2 +) وسرطان الثدي الثلاثي السلبي (HR- / HER2-). تشكل مجموعة HER2 + 10-15٪ من حالات BC وتتميز بتعبير HER2 مرتفع مع غياب ER و PR ، ولديها تشخيص أسوأ مقارنة بالأورام اللمعية ، وتتطلب أدوية محددة موجهة ضد بروتين HER2 / neu9.

تطوير BC هو عملية متعددة الخطوات ، والتشخيص المبكر ضروري لعلاج ناجح للمرض10. ومع ذلك ، على الرغم من خيارات علاج BC الشخصية التي ظهرت مؤخرا (على سبيل المثال ، علاجات الغدد الصماء والأجسام المضادة ل HER2) ، تواصل BC تحدي أطباء الأورام. تماما مثل الجراحة والعلاج الكيميائي والعلاج الإشعاعي ، يمكن أن يكون لهذه العلاجات الشخصية أيضا آثار ضارة شديدة ويمكن للمرضى تطوير مقاومة لهذه العوامل ، مما يجعل تحديد أفضل استراتيجية11,12 تحديا طويل الأجل. وبالتالي ، فإن تحسين فهم التفاعل بين الورم وبيئته المكروية أمر ضروري ومن المتوقع أن يوفر اتجاهات جديدة لتطوير علاجات جديدة تأخذ في الاعتبار خصوصيات الأنواع الفرعية المختلفة من BC13. تتم دراسة موجة جديدة من العلاجات المناعية ، مثل اتحادات أدوية الأجسام المضادة ، وعلاجات الخلايا التائية بالتبني ، واللقاحات والأجسام المضادة أحادية النسيلة الجديدة الموجهة HER2 (mAbs) في مجموعة واسعة من المرضى الذين يعانون من الأورام المعبرة عن HER214.

على سبيل المثال ، يمثل Trastuzumab طريقة علاج فعالة ل HER2 + BC. كجزء من طريقة عمله ، يتوسط Trastuzumab الأنشطة المعتمدة على مستقبلات جاما القابلة للبلور (FcγR). تتميز FcγRs بتقاربها مع جزء Fc والاستجابة المناعية التي تبدأها. يعد تنشيط FcγRIIIa (CD16A) على الخلايا القاتلة الطبيعية (NK) أمرا بالغ الأهمية للتوسط في السمية الخلوية المعتمدة على الأجسام المضادة (ADCC) ، في حين أن تحفيز FcγRIIa (CD32A) و FcγRIIIa على البلاعم يحفز البلعمة الخلوية المعتمدة على الأجسام المضادة (ADCP) 15. أظهرت الدراسات التي أجريت على النماذج الحيوانية أن الفئران التي تفتقر إلى مستقبلات FcγRI (CD64) و FcγRIII (CD16) لم تكن قادرة على بدء استجابات مناعية وقائية ضد المستضدات الخاصة بالورم ، مما يكشف أن ADCC من المحتمل أن يكون آلية عمل رئيسية ل mAb Trastuzumab16.

نظرا لأن الخلايا القاتلة الطبيعية تلجأ إلى القيمة المطلقة المرتبطة بالخلايا السرطانية لقتل الخلايا السرطانية بواسطة ADCC ، فإن التعبير عن مستقبلات Fc أمر بالغ الأهمية لعلاج فعال باستخدام Trastuzumab17 (الشكل 1). علاوة على ذلك ، يتم موازنة عملها بكفاءة من خلال تحفيز المستقبلات المنشطة والمثبطة ، على سبيل المثال ، مستقبلات تشبه الغلوبولين المناعي للخلايا القاتلة (KIR)18.

figure-introduction-1
الشكل 1. آلية ADCC في سياق الاستجابة المضادة للأورام. يتعرف مستقبل Fcγ لخلية قاتلة طبيعية (NK) على منطقة Fc للجسم المضاد ، والتي كانت مرتبطة سابقا بمستضد سطحي على خلية سرطانية. يؤدي هذا المشبك المناعي إلى تحلل الخلية القاتلة الطبيعية التي تطلق وسطاء سامة للخلايا مثل الجرانزيمات والبيرفورين. تساهم هذه الجزيئات في تكوين المسام في غشاء الخلية وتنشط مسارات موت الخلايا المبرمج مما يتسبب في موت الخلية المبرمج للخلية المستهدفة (الصورة التي تم إنشاؤها باستخدام Biorender.com). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

يمثل تطوير العلاج المناعي ل HER2 + BC مجالا متطورا. في هذه الحالة ، ينبغي للمرء أن ينظر في التفاعلات بين المكونات المختلفة للجهاز المناعي. علاوة على ذلك ، اختبرت المنشورات السابقة على نطاق واسع العلاجات المركبة التي تشمل جميع أنواع العلاجات التقليدية أو المناعية أو الخلوية لتحديد مجموعات التآزر19.

تم استخدام العديد من النماذج ثلاثية الأبعاد من HER2 + BC سابقا لاكتشاف الأدوية. على سبيل المثال ، استخدم Balalaeva et al. كرويات SKBR-3 التي تفرط في التعبير عن HER2 لتقييم السمية الخلوية للسم المناعي المستهدف HER2 4D5scFv-PE4020. في دراسة أخرى ، تم إنشاء نظام زراعة HER2 + BC قائم على 3D Matrigel لقياس نمو الخلايا استجابة لعوامل Trastuzumab والغدد الصماء21. تسلط هذه الدراسات الضوء على أهمية النماذج الكروية للورم للخلايا السرطانية HER2 المفرطة في التعبير في تمثيل استراتيجية فعالة لتحسين الاستجابات العلاجية سريريا22.

حددت مجموعتنا سابقا Sunitinib ، وهو مثبط متعدد الأهداف لكيناز التيروزين ، كمثبط ل ADCC المعتمد على Trastuzumab في خلايا JIMT-1 HER2 + BC في مقايسة ثقافة ثنائية الأبعاد. كشفت الدراسة أن Sunitinib يحفز الالتهام الذاتي ويضعف وظيفة قتل الخلايا القاتلة الطبيعية ، ويقلل من تنظيم تعبير HER2 ويعزز الارتباط السطحي لخلايا JIMT-117.

هنا أنشأنا نموذجا جديدا ثلاثي الأبعاد ، كروي ADCC (NK.92.CD16 + Trastuzumab + JIMT-1-EGFP خلايا سرطانية) لاستخدامه في تطبيقات الفحص عالية الإنتاجية ، ومن أجل التحقق من صحة النتائج المذكورة أعلاه ، تم استخدام Sunitinib كمركب نموذجي. أولا ، أنشأنا EGFP الذي يعبر عن خلايا JIMT-117 ونمت كرويات من هذه الخلايا. تم تحفيز ADCC بواسطة الخلايا القاتلة الطبيعية مع Trastuzumab ، وتم الاحتفاظ بالكرويات في الثقافة في وجود أو عدم وجود مركبات اختبار لمدة 24 ساعة (الشكل 2). يعتمد القياس الكمي ل ADCC على الكشف عن موت الخلايا السرطانية المبرمج (تلطيخ الملحق الخامس) باستخدام نظام تحليل المحتوى العالي.

figure-introduction-2
الشكل 2. ADCC في نظام الثقافة المشتركة كروية 3D. تعتمد إعداداتنا التجريبية على نظام كروي 3D يمكنه نمذجة البيئة المكروية في الجسم الحي بدقة أكبر مقارنة بنماذج 2D. تم زرع خلايا سرطان الثدي JIMT-1 EGFP على قاع طارد للخلايا مقعرة لتشكيل مجموعة خلوية مستديرة الشكل تسمى كروية. ثم بدأ ADCC بإضافة NK92. خلايا قاتلة طبيعية CD16 (نسبة E: T = 20: 1) وجسم مضاد أحادي النسيلة مضاد ل HER2 ، Trastuzumab. أثبت النموذج التجريبي كفاءته وسهولة تطبيقه لتحديد مركبات الاختبار المعدلة ل ADCC (الصورة التي تم إنشاؤها باستخدام Biorender.com). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

لقد أثبتنا أن الحصول على البيانات بهذه الطريقة يمكن أن يتم في الوقت الفعلي وهو قوي إحصائيا للاستخدام في الفحص عالي المحتوى في اكتشاف أدوية السرطان. الأهم من ذلك ، أن هذا النموذج يسمح بالتحقق الموسع من مجموعة أكبر من المركبات ، ويمكن تطبيقه على العديد من المقايسات ذات الأهمية.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. إعداد نموذج كروي للبروتين الفلوري المعزز JIMT-1 (EGFP)

  1. لتشكيل قاع طارد للخلايا على شكل حرف U ، قم بتغطية اللوحة المكونة من 96 بئرا بمحلول 0.5٪ agarose-PBS (30 ميكرولتر / بئر). احتضان اللوحة في درجة حرارة الغرفة لمدة 30-45 دقيقة تقريبا.
  2. اغسل خلايا JIMT-1-EGFP مرتين باستخدام 2 مل من PBS المعقم (تم الإبلاغ عن توليد خط خلايا JIMT1-EGFP في منشور سابق17). استخدم قوارير زراعة الأنسجة T25 ووسائط JIMT-1 (وسط DMEM / F-12 المكمل بمصل بقري جنيني بنسبة 20٪ (FBS) ، و 0.3 وحدة / مل من الأنسولين (100 وحدة دولية / مل ، Humulin R) ، و 1٪ بنسلين - ستربتومايسين) لزراعة الخلايا.
  3. أضف 2 مل من التربسين-EDTA إلى القارورة واحتضانها لمدة 10 دقائق في حاضنة CO2 .
  4. اضغط على القارورة للتحقق مما إذا كانت خلايا JIMT-1 منفصلة بعد وقت الحضانة.
  5. استخدم 2 مل من وسط JIMT-1 لإيقاف عملية الهضم وجمع تعليق الخلية في أنبوب سعة 15 مل.
  6. عد الخلايا في غرفة Bürker بنسبة 0.4٪ من التريبان الأزرق (80 ميكرولتر من الصبغة + 20 ميكرولتر من تعليق الخلية) واضبط رقم الخلية على 20000 خلية / مل.
  7. ماصة 100 ميكرولتر من معلق الخلية (2000 خلية / بئر) لكل بئر من لوحة 96 بئر (مغلفة مسبقا بمحلول أغاروز - PBS بنسبة 0.5٪ كما هو موضح في 1.1).
  8. اسمح للخلايا بالتكتل معا خلال فترة الحضانة لمدة 3 أيام عند 37 درجة مئوية في حاضنة CO2 .
  9. تحقق بانتظام من حجم وشكل الأجسام الكروية باستخدام مجهر مقلوب.

2. طلاء لوحة HCS

ملاحظة: لمنع ربط كرويات JIMT-1-EGFP بالسطح الزجاجي للوحة ، يعد طلاء لوحة فحص المحتوى العالي (HCS) أمرا بالغ الأهمية (وإلا فلن يكون تحليل المحتوى العالي ممكنا).

  1. في اليوم 3 بعد تحريض الأجسام الكروية ، قم بتغطية لوحة الغربلة عالية المحتوى المكونة من 96 بئرا ب Pluronic-F127 (0.5٪ في DMSO ، 50 ميكرولتر / بئر) واحتضان اللوحة لمدة 45 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  2. نضح محلول الطلاء واغسل الآبار مرتين باستخدام وسط خال من المصل DMEM / F-12 (100 ميكرولتر / بئر).

3. نقل الكرويات إلى لوحة HCS

  1. باستخدام ماصة سعة 1 مل ، انقل الكرويات في ثلاث نسخ إلى لوحة HCS ذات القاع الزجاجي 96 بئرا.

4. المعالجة المسبقة للكرويات JIMT-1 EGFP مع مركبات الاختبار

  1. أضف مركب الاختبار (على سبيل المثال ، Sunitinib المخفف في DMSO بتركيز 40 ميكرومتر) عن طريق سحب 10 ميكرولتر / بئر وإضافة 10 ميكرولتر من وسط JIMT-1 الطازج إلى آبار التحكم (CTL).
  2. احتضان اللوحة لمدة 1 ساعة في حاضنة CO2 عند 37 درجة مئوية.

5. تحريض ADCC عن طريق إضافة الخلايا المستجيبة

ملاحظة: تم استزراع خلايا CD16.176V.NK92 (المشار إليها فيما يلي باسم الخلايا القاتلة الطبيعية) في α-MEM مع 20٪ FBS و 1٪ MEM-NEAA و 1٪ Na-pyruvate و 1٪ جلوتامين و 1٪ بنسلين - ستربتومايسين و 100 وحدة دولية / مل من IL-2.

  1. اجمع الخلايا القاتلة الطبيعية في الدورق في أنبوب حجمه 15 mL. عد الخلايا ذات التريبان الأزرق (80 ميكرولتر من الصبغة + 20 ميكرولتر من تعليق الخلية) واضبط كثافة الخلية على نسبة المستجيب إلى الهدف (E: T) 20: 1 (40000 خلية NK / بئر).
  2. قم بتلطيخ الخلايا القاتلة الطبيعية باستخدام 10 ميكرومتر Cell Tracker Blue (CTB ، 1 ميكرولتر في 1 مل من وسط α-MEM NK) وضعها في حاضنة CO2 عند 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة.
  3. قم بطرد الخلايا القاتلة الطبيعية عند 150 × جم لمدة 3 دقائق في درجة حرارة الغرفة مرتين لغسل الصبغة الزائدة ب 1 مل من وسط α-MEM.
  4. أعد تعليق حبيبات الخلايا القاتلة الطبيعية في 1 مل من وسط JIMT-1 الجديد.
  5. أضف الخلايا القاتلة الطبيعية الملطخة مع الجسم المضاد ل HER2 (Ab) (Trastuzumab ، المذاب في H2O المقطر المعقم) إلى كرويات JIMT-1 المستهدفة عن طريق سحب 55 ميكرولتر / بئر من الخلايا القاتلة الطبيعية الملطخة ب CTB و 55 ميكرولتر / بئر من 10 ميكروغرام / مل Ab في وسط JIMT-1 (إجمالي حجم العلاج المضاف ل ADCC هو 110 ميكرولتر / بئر وتركيز Sunitinib النهائي هو 20 ميكرومتر).
    ملاحظة: لاختيار تركيز Ab ونسبة E: T ، اعتمدنا على منشورنا السابق17. أجريت تجارب أولية بنسب E: T مختلفة وتركيزات Trastuzumab لتقييم أيهما كان الأكثر فعالية في تحفيز ADCC في الكرات (الشكل التكميلي S1).
  6. أضف 110 ميكرولتر / بئر من وسط JIMT-1 الطازج للتحكم في الآبار (CTL).
  7. احتضان اللوحة لمدة 24 ساعة في حاضنة CO2 عند 37 درجة مئوية.
    ملاحظة: من المعروف أن خلايا NK92 تمارس وظائف سامة للخلايا غير محددة ، لاستخدام خلايا JIMT-1 المتضاينة بشكل مشترك مع كل من الخلايا القاتلة الطبيعية وحدها ومع التحكم في النمط المتماثل أو F (ab') 2 Ab. هنا تم استخدام F (ab') 2-Trastuzumab (TR-F (ab') 2) كCTL سلبي. تم تحضير جزء TR-F (ab') 2 كما أبلغ عنه Tóth et al.19 وأضيف بنفس حجم Trastuzumab جنبا إلى جنب مع الخلايا القاتلة الطبيعية كما هو موضح في 5.5. تم تعديل التركيز إلى 6.6 ميكروغرام / مل المقابلة لتركيز متساوي المولي مع Trastuzumab23.

6. الملحق V-647 تلطيخ كرويات

  1. لقياس موت الخلايا المبرمج ، قم بتلطيخ الكرات باستخدام Annexin V-Alexa Fluor 647 المتقارن لمدة ساعة واحدة في وسط JIMT-1 (1: 100) عن طريق سحب 50 ميكرولتر / بئر.

7. التصوير

ملاحظة: يتم تصوير اللوحة عند 24 ساعة بعد إضافة الخلايا المستجيبة NK إلى الخلايا المستهدفة. للتصوير ، يتم استخدام محلل عالي المحتوى وبرنامج تحليل الصور.

  1. حدد نوع الصفيحة الدقيقة من قائمة اللوحات باستخدام خيار نوع اللوحة . استخدم لوحة فحص المحتوى العالي (HCS) ذات 96 بئرا.
  2. حدد اثنين من التركيز البؤري التلقائي للذروة حيث يتم إجراء الفحص في لوحات ذات هدف 10x مع فتحة عدسة رقمية 0.3 (NA) ، باستخدام خيارات التركيز البؤري التلقائي والهدف ، على التوالي. اختر الوضع البؤري مع خيار Opt. Mode وقم بتطبيق Binning 2 باستخدام خيار Binning.
  3. لتصوير الأجسام الكروية ، حدد القنوات المناسبة باستخدام خيار تحديد القناة . للكشف عن خلايا JIMT-1 المحولة بواسطة EGFP ، اختر EGFP (وقت التكامل 200 مللي ثانية ، طاقة الليزر 50٪ ، ارتفاع المكدس 2.0 ميكرومتر ؛ على سبيل المثال: 488 نانومتر em: 500-550 نانومتر) ، وللكشف عن الخلايا المبرمج ، استخدم Alexa 647 (وقت التكامل 100 مللي ثانية ، طاقة الليزر 50٪ ، ارتفاع المكدس 10.0 ميكرومتر ؛ على سبيل المثال: 640 نانومتر em: 650-760 نانومتر). لتصور الخلايا القاتلة الطبيعية داخل الكائنات الكروية ، اختر القناة التالية: DAPI (وقت التكامل 100 مللي ثانية ، طاقة الليزر 50٪ ، ارتفاع المكدس 2.0 ميكرومتر ؛ مثال: 405 نانومتر em: 435-480 نانومتر).
  4. في خيار تحديد التخطيط ، حدد مكدسات Z لأن الخلايا في الكائنات الكروية تميل إلى أن تكون على مستويات بؤرية مختلفة من المجهر. 10 طائرات (بمسافة 10 ميكرومتر) كافية لتغطية المنطقة الكروية بأكملها. اضبط قيم المستوى الأول والمستوى الأخير على 0 ميكرومتر و 90 ميكرومتر على التوالي.
    ملاحظة: قبل بدء القياس ، يمكن التقاط عينات من الصور باستخدام وظيفة اللقطة للتحقق من الإعدادات الصحيحة.
  5. قم بتعيين عدد الآبار والحقول للتصوير باستخدام خيار تحديد التخطيط .

8. تحليل المحتوى العالي (HCA)

ملاحظة: قم بتحليل الصور باستخدام برنامج Harmony أو تصدير الصور لتحليلها باستخدام برنامج مفضل تابع لجهة خارجية. لتحليل كفاءة ADCC ، يتم قياس شدة مضان الملحق V 647. تظهر الخلايا المستهدفة التي قتلها ADCC في المنطقة الطرفية من الأجسام الكروية. لذلك ، يتم قياس الخلايا الإيجابية Annexin V في هذه "الحلقة" الكروية. من أجل التحقق من صحة هذه الطريقة ، تم إجراء تحليلات بمعايير مختلفة لتقييم أيها كان الأكثر موثوقية وأسفر عن أفضل النتائج (الشكل التكميلي S2). يتم عرض بئر ADCC في الفيديو من أجل توضيح عملية تحليل الصور خطوة بخطوة.

  1. حدد الكرات من خلال مضان EGFP لخلايا JIMT-1 باستخدام خيار البحث عن مناطق النسيج وقم بتصفيتها حسب الحجم (> 25000 ميكرومتر2).
  2. قم بإزالة كائنات الحدود عن طريق تحديد خيار السكان .
  3. نظرا لأن الخلايا الإيجابية للملحق الخامس (apoptotic) تظهر على محيط الأجسام الكروية ، قم بقياس شدة Annexin في "حلقة" موت الخلايا المبرمج هذه ، والتي تم تحديدها بواسطة خيار تحديد المنطقة (الحد الخارجي -90٪) لتحديد موت الخلايا المبرمج.
  4. التعبير عن قيم شدة الملحق الخامس كمتوسط شدة.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم إنشاء خلايا EGFP التي تعبر عن JIMT-1 ، ونمت كرويات من هذه الخلايا. تم استخدام Sunitinib كمركب اختبار حيث ثبت سابقا أنه يؤثر على مسار ADCC17. سمح للكرويات بالتكتل لمدة 72 ساعة. في اليوم الثالث ، تمت إضافة 10 ميكروغرام / مل من تراستوزوماب (أو متساوي المولى 6.6 ميكروغرام / مل TR-F (ab') 219) والخلايا القاتلة الطبيعية (20: 1) إلى الكرويدات في وجود أو عدم وجود 20 ميكرومتر Sunitinib (1 ساعة قبل المعالجة) ، لفترة إجمالية قدرها 24 ساعة. تم استخدام JIMT-1 وحده و JIMT-1 المحتضن مع الخلايا القاتلة الطبيعية (20: 1) كقطارات مقطعية. تم تلطيخ الكرويات ب Annexin V 647 لمدة 1 ساعة للكشف عن موت الخلايا المبرمج و ثم تم تصويرها باستخدام محلل عالي المحتوى.

كما هو مبين في تلطيخ الملحق الخامس ، تسببت إضافة الخلايا القاتلة الطبيعية جنبا إلى جنب مع Trastuzumab إلى خلايا JIMT-1 في موت الخلايا في كرويات الورم. ظهرت الخلايا الموجبة (apoptotic) في المنطقة المحيطية للكرويات كما هو موضح في الشكل 3 أ. من ناحية أخرى ، فإن إضافة الخلايا القاتلة الطبيعية وحدها لم تؤد إلى موت الخلايا المبرمج للخلايا السرطانية. للتمييز بين قدرة Trastuzumab على تجنيد ADCC وتأثيره البيولوجي المباشر ، تم استخدام TR-F (ab') 2 الذي يفتقر إلى قدرة ربط FcR الوظيفية كعنصر تحكم سلبي في Trastuzumab. نظرا لأنه ثبت أن TR-F (ab') 2 غير فعال في هذا النموذج (الشكل 3B) ، فمن المحتمل أن يتم التوسط في التأثير عبر ADCC. علاوة على ذلك ، قللت المعالجة المسبقة باستخدام Sunitinib من تلطيخ Annexin V في الكرات الكروية ، مما يؤكد مقاومة ADCC التي يسببها Sunitinib ويكشف عن منع موت الخلايا المبرمج في كرويات JIMT-1 التي تم حضنها بالاشتراك مع الخلايا القاتلة الطبيعية و Trastuzumab.

figure-results-1
الشكل 3. الكشف عن مركبات المستجيب ADCC في نموذج كروي 3D. تم إنشاء كرويات الورم مع خلايا JIMT-1-EGFP. بعد فترة حضانة مدتها 3 أيام ، تم نقل الأجسام الكروية إلى لوحة HCS ، المطلية مسبقا ب Pluronic F-127 لمنع ارتباط الخلية. في اليوم التالي ، 10 ميكروغرام / مل تراستوزوماب (TR) (أو متساوي المولى 6.6 ميكروغرام / مل TR-F (ab') 2 باعتباره CTL سالب) و NK92. تمت إضافة خلايا CD16 (ملطخة مسبقا ب Cell Tracker Blue) إلى الآبار (نسبة E: T 20: 1) ، في غياب أو وجود 20 ميكرومتر Sunitinib (SUN). تم استخدام كرويات JIMT-1 وحدها وكرويات JIMT-1 المحتضنة مع الخلايا القاتلة الطبيعية (20: 1) ككرات CTLs. (أ) بعد وقت حضانة 24 ساعة ، تم استخدام الملحق الخامس 647 (اللون الأحمر) لتلطيخ الكرويات لمدة 1 ساعة لتصور الخلايا المبرمجة. (ب) تم التقاط صور ل 3 كرويات / حالة وتحليلها لشدة مضان الملحق V 647 في المنطقة المحيطية من الحلقات (منطقة الحلقة). يظهر الرسم البياني 4 تجارب مستقلة (يعني±SEM). تم تحليل البيانات باستخدام اختبار Kruskal-Wallis متبوعا باختبار Dunn بعد التخصيص (* p < 0.05 ، # p < 0.05 ، ns: غير مهم). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

تؤكد هذه البيانات أن Sunitinib يثبط ADCC. من المتوقع أن يتم تحديد مركبات تعزيز ADCC بطريقة مماثلة. باختصار ، قد يكون اختبار HCS الخاص بنا مناسبا لتحديد المركبات التي تؤثر على ADCC.

الشكل التكميلي S1. تحسين نسبة E: T وتركيز تراستوزوماب. تم استخدام خلايا JIMT-1-EGFP لتوليد كرويات. في اليوم الثالث ، تم نقل الكرويات إلى لوحة HCS وأضيفت الخلايا القاتلة الطبيعية بنسب E: T مختلفة (20: 1 و 40: 1 و 60: 1) مع 10 و 20 و 50 ميكروغرام / مل Trastuzumab (TR) لمعرفة العلاج الأكثر فعالية الذي يمكن أن يحفز موت الخلايا في الكائنات الكروية. تمت معالجة التحكم (JIMT-1-EGFP) باستخدام وسائط زراعة الخلايا JIMT-1. (أ) بعد 24 ساعة ، تم تلطيخ الخلايا بالملحق V 647 (اللون الأحمر) لمدة 1 ساعة وتم قياس موت الخلايا المبرمج باستخدام HCA. تظهر الرسوم البيانية 3 تجارب مستقلة (وسائل ± SEM). تمثل الأعمدة شدة الملحق V 647 حول كرويات JIMT-1. (ب) تم تحليل صور 3 كرويات / حالة لشدة الملحق V 647 لمنطقة الحلقة. تم تحليل البيانات باستخدام ANOVA أحادي الاتجاه متبوعا باختبار Tukey اللاحق (* p < 0.05 ، ** p < 0.01 ، ns: غير مهم). الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.

الشكل التكميلي S2. تقييم موت الخلايا المبرمج JIMT-1 في الأجسام الكروية. تم استخدام خلايا JIMT-1-EGFP لتوليد كرويات. في اليوم الثالث ، تم نقل الكرويات إلى لوحة HCS وتم معالجتها مسبقا ب 20 ميكرومتر Sunitinib (SUN) لمدة 1 ساعة ، ثم تمت إضافة الخلايا القاتلة الطبيعية بنسبة 20: 1 E: T مع 10 ميكروغرام / مل تراستوزوماب. بعد 24 ساعة ، تم تلطيخ الخلايا بالملحق V 647 لمدة 1 ساعة وتم قياس موت الخلايا المبرمج باستخدام HCA. تم تحليل صور 3 كرويات / حالة لشدة الملحق V 647 (التحكم: JIMT-1-EGFP ، ADCC: 20: 1 خلايا NK + 10 ميكروغرام / مل تراستوزوماب ، ADCC + SUN: 20 ميكرومتر Sunitinib + 20: 1 خلايا NK + 10 ميكروغرام / مل تراستوزوماب). تمثل الأعمدة شدة الملحق V 647 حول كرويات JIMT-1 (حلقة) (A) ، في الكروية بأكملها (B) ، وفي البئر كله (C). تظهر الرسوم البيانية 3 تجارب مستقلة (وسائل ± SEM). تم تحليل البيانات باستخدام ANOVA أحادي الاتجاه متبوعا باختبار Tukey اللاحق (* p < 0.05 ، ** p < 0.01 ، ns: غير مهم). الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

على الرغم من التحسينات الكبيرة في علاج BC على مدى العقود العديدة الماضية ، لا يزال المرضى يطورون بانتظام مقاومة الأدوية أو يعانون من آثار جانبية سلبية24. تتطلب معدلات المراضة والوفيات المرتفعة المرتبطة ب BC إجراء تحقيق مستمر في الآليات الجزيئية الأساسية ، تماما مثل منصات الفحص القوية لتحديد جزيئات جديدة قابلة للتنفيذ من أجل التطويرالعلاجي 25. تتطلب هذه الاستراتيجيات مقايسات متعدية قائمة على زراعة الخلايا. ظهرت أنظمة زراعة الورم 3D ، مثل الكروية وعضويات الورم مؤخرا كنماذج منخفضة التكلفة وسهلة التنفيذ تمثل الجوانب الرئيسية للفيزيولوجيا المرضية للورم بشكل أوثق من الثقافات أحادية الطبقة التقليدية. إحدى هذه الميزات هي التفاعل المنسق مكانيا بين مختلف الخلايا المناعية المرتبطة بالورم والخلايا السرطانية. هذا يجعل نماذج الثقافة المشتركة 3D أدوات متفوقة لفحص المخدرات الموجهة نحو المعدلات التي تعمل على الخلايا المناعية لعلاج الأورام الخبيثة26.

في هذا العمل ، قدمنا نموذجا كرويا جديدا ل ADCC المعتمد على Trastuzumab بوساطة الخلايا القاتلة الطبيعية ضد خلايا سرطان الثدي JIMT-1 ووصفنا سير عمل التصوير والتحليل الآلي لتقييم قتل الخلايا السرطانية بوساطة الخلايا القاتلة الطبيعية. تم تنفيذ الإجراء لتصوير عالي المحتوى وبرنامج تحليل الصور مما يسمح بمراقبة قدرة الخلايا القاتلة الطبيعية ذات الصلة بالمرض على تحفيز موت الخلايا المبرمج للخلايا السرطانية. تم تحديد مثبط التيروزين كيناز متعدد الأهداف Sunitinib كمركب يحفز المقاومة ل ADCC المعتمد على Trastuzumab في خلايا JIMT-1 في مقايسات زراعة الخلايا 2D. يضعف Sunitinib وظيفة القتل للخلايا القاتلة الطبيعية ويحفز الالتهام الذاتي ، ويقلل من تنظيم تعبير HER2 ، ويعزز التصاق خلايا JIMT-117. من أجل التحقق من صحة خط أنابيب تحليل الكروية الخاص بنا لتحديد المركب ، اختبرنا Sunitinib كمركب نموذجي وأظهرنا أنه يمكن أن يعيق بشكل كبير قدرة الخلايا القاتلة الطبيعية على قتل كرويات الخلايا السرطانية التي تعيد إنتاج التأثير الذي أظهرته في الطبقة الأحادية.

طريقتنا بسيطة ، وتشمل نمو الكرات في صفائح زراعة الأنسجة ذات 96 بئرا المطلية بالأغاروز ، ونقل لمرة واحدة للكرويات المشكلة إلى صفيحة مجهرية ذات قاع زجاجي مناسبة لتطبيقات HCS و HCA ، وإضافة مركبات الاختبار والخلايا القاتلة الطبيعية الملطخة بشكل منفصل التي يتم تنشيطها للقتل عن طريق إعطاء Trastuzumab ، وتلطيخ موت الخلية بخطوة واحدة ، والتحليل المجهري. لا يتم تطبيق أي تلاعب شديد على الآبار بعد بداية الزراعة المشتركة لنوعي الخلايا والعلاج بالعقاقير لتجنب المساس بسلامة الكائنات الكروية. يستغرق الفحص 4 أيام فقط لأداء. يعد طلاء الجزء السفلي من ألواح زراعة الأنسجة المكونة من 96 بئرا بالأغاروز منخفض الذوبان بنسبة 1٪ كجزء من الإجراء بديلا رخيصا لاستخدام ألواح التعلق المنخفضة للغاية من أجل منع خلايا JIMT-1 من الالتصاق بسطح اللوحة وتعزيز التنظيم التلقائي للخلايا السرطانية في كرويات. نظرا لأن التقاط الصور غير ممكن عبر وسادة الأغاروز والسطح البلاستيكي على شكل حرف U ، يجب نقل الأجسام الكروية إلى لوحة التصوير. كان من الأهمية بمكان تخميل السطح الزجاجي للوحة HCS باستخدام الفاعل بالسطح الحيوي الخامل ، Pluronic-F127 قبل نقل الكرة الأرضية. بدون هذه الخطوة ، تنتشر الأجسام الكروية في قاع الآبار ، مما يجعل التصوير والتحليل صعبا.

تم استخدام خط خلية ورم بشري يعبر بثبات عن EGFP لتشكيل كرويات17. توفر العلامة المشفرة وراثيا مضانا مستداما في جميع أنحاء البروتوكول بدلا من بقع الخلايا. يوفر تحليل النسيج غير الخاضع للإشراف لإشارة EGFP الأساس للتعرف على النواة المدمجة للكرويات ، والتي تضم الكرة بأكملها دون تحريض موت الخلية. عندما تمت إضافة الخلايا القاتلة الطبيعية وتحفيز ADCC ، شكل التفكك الملحوظ للملامح في بعض الأحيان تحديا لخوارزمية تحليل الصور لتحديد الخطوط العريضة للكروية. نظرا لأنه تم العثور على الخلايا الإيجابية Annexin V بشكل أساسي في محيط الكائنات الكروية ، فقد تم التحايل على هذه المشكلة من خلال تقييم موت الخلايا في منطقة حلقية محيطية تم إنشاؤها بواسطة وحدة تجزئة الصورة المدمجة في البرنامج عن طريق توسيع النواة الكروية المحددة جيدا. تم اختيار عامل التمدد الذي يحدد الحدود الخارجية لهذه المنطقة ليشمل أسفل الظهر من الخلايا المحتضرة والممزقة والمتناثرة في جميع الحالات بعد تنظيم مئات الصور الكروية بصريا. أدى تحديد التألق الكلي لمنطقة الحلقة المبرمج في الإسقاطات القصوى لصور Z-stack إلى أخطاء تجريبية أقل وتأثير ADCC أكثر وضوحا من قياس منطقة الكرة بأكملها أو منطقة البئر بأكملها (الشكل التكميلي S2). تم اختيار ملصقات الفلورسنت لوضع علامات على خلايا BC (EGFP) والكشف عن موت الخلايا (Alexa 647) لمنع الحاجة إلى فصل القناة. تم اختيار قراءة نقطة النهاية بناء على وضع العلامات الفلورية للفوسفاتيديل سيرين المكشوف ، وهو علامة موت الخلايا المبرمج ، بدلا من مراقبة انخفاض مضان EGFP لتحديد صلاحية الأجسام الكروية بمرور الوقت ، والتي يمكن أن تكون خيارا آخر. سمح تلطيخ الملحق بتحديد أكثر دقة وحساسية لموت الخلايا. من حيث المبدأ ، من الممكن تحسين نهج التلوين أحادي البعد الحالي من خلال استكماله بعلامات موت خلية إضافية أكثر دقة يمكنها تحديد طريقة موت الخلية (على سبيل المثال ، ركائز كاسباز الفلورسنت) ونوع الخلية المهلكة.

يمكن تعديل هذه الطريقة مع الحد الأدنى من التغييرات لدراسة أنواع الخلايا المناعية المستجيبة الأخرى (الضامة والخلايا التائية والخلايا المناعية المعبرة عن مستقبلات المستضد الخيمري [CAR]) وجزيئات المنشط (مثل السيتوكينات والإنترلوكينات). بهدف البساطة والمتانة ووقت المعالجة القصير ، لم نستنفد الإمكانيات التي يمكن أن تقدمها HCA لهذا الفحص. بروتوكولات التصوير والتحليل قابلة لإضافة المزيد من الملصقات الفلورية. هذا الفحص قابل للتكيف لدراسة كرويات أكثر تعقيدا عن طريق إضافة أنواع مختلفة من الخلايا واستخدام مجسات الفلورسنت متعددة الإرسال لتمييز أنواع الخلايا هذه وعلامات الفلورسنت المحددة لربطها بالأحداث الخلوية الجارية 4,5. يمكن تكييف البروتوكول مع أي جهاز تصوير HC ويمكن تحليل الصور باستخدام أي برنامج لتحليل الصور يتضمن وحدة تحليل النسيج.

الجانب الرئيسي لأهمية هذا البروتوكول ، هو استخدام كرويات. ومن ثم ، يجب النظر في عدد من المعلمات. من المعروف أن الخلايا في ثقافة 3D تعرض استجابة مخففة للمركبات عند مقارنتها بالخلايا المزروعة في أحاديات الطبقة21,22. استخدام ثقافات الخلايا 2D لا يسمح لأحد بالتنبؤ بالنطاق الفعال لتركيزات عامل تم اختباره في الكائن الحي بأكمله. عند إعداد نموذج 3D الخاص بنا ، اختبرنا تركيزات مركبة أعلى ونسب E: T من تلك التي تم الإبلاغ عنها في 2D. على سبيل المثال ، تم تحسين البروتوكول عن طريق زيادة نسبة E: T من 2: 1 المستخدمة في مقايسة 2D ADCC17 ، إلى 20: 1 للكرويات السرطانية. يمكن أن يكون الأساس المنطقي وراء ذلك هو أن الأدوية لم تكن قادرة على اختراق جوهر الكرويات بشكل فعال وأثرت بشكل رئيسي على خلايا الطبقات الخارجية. ومن ناحية أخرى، فإن زيادة تركيز تراستوزوماب لم تعزز استجابة مركز أبوظبي للتوزيع (الشكل التكميلي S1). قد يختلف هذا التحديد بين خطوط الخلية والهدف. وبالتالي ، سيكون من المثير للاهتمام اختبار هذا البروتوكول على خطوط الخلايا الأخرى ، على سبيل المثال ، خط خلية غير HER2 BC ، مع الأخذ في الاعتبار أن مستوى تعبير HER2 هو محدد مهم لاستجابة ADCC20.

باختصار ، تمثل طريقتنا الجديدة منصة سريعة وقوية لتحليل تأثير المركبات في نموذج 3D للسرطان المناعي مع إمكانية استخدامها لفحص الأدوية عالية الإنتاجية. هذا يسلط الضوء على أهمية استخدام كرويات HER2 + BC و NK92. خلايا CD16 في زيادة تحسين فهم الآليات الجزيئية ل Trastuzumab ، وبالتالي توفير فرصة لتوقع فعالية ADCC المعتمد على Trastuzumab في الإمكانات العلاجية في الجسم الحي27. يمكن أن يستفيد البحث عن معدلات مناعية جديدة مضادة للورم بشكل كبير من هذا الفحص. يمكن توسيع هذه الطريقة لتشمل اختبار الحساسية الكيميائية الشخصية لمزارع الخلايا السرطانية المشتقة من المريض. لقد أثبتنا أن الثقافات المشتركة 2D التقليدية المستخدمة في قتل الخلايا المناعية واختبارات ADCC يمكن تحويلها إلى مقايسات كروية 3D ، مما قد يزيد من أهميتها الانتقالية.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

أعلن المؤلفون عدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تلقت LV تمويلا من منح المكتب الوطني للبحث والتطوير والابتكار GINOP-2.3.2-15-2016-00010 TUMORDNS "، GINOP-2.3.2-15-2016-00048-STAYALIVE، OTKA K132193 و K147482. وقد تلقى هذا المشروع تمويلا من شبكة البحوث الهنغارية HUN-REN. تم الحصول على خلايا CD16.176V.NK-92 من الدكتور كيري س. كامبل (مركز فوكس تشيس ، فيلادلفيا ، بنسلفانيا ، نيابة عن Brink Biologics، lnc. San Diego، CA) ، محمية ببراءات اختراع في جميع أنحاء العالم ، وتم ترخيصها من قبل Nantkwest، lnc. (www.nantkwest.com). يعرب المؤلفون عن امتنانهم لجيورجي فيرب وأرباد زوور لمساعدتهم في استخدام خط الخلية NK-92 و TR-F (ab') 2 ، وعلى المشورة الفنية.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
96 بئر قاع زجاجي خلية حاملة فائقة الصفائح الدقيقةPerkinElmer ، Waltham ، MA ، USALLCلقياسات الفيريات لوحات
زراعة الأنسجة 96 بئرTPP92096لبذر الخلايا
& alpha ؛ -MEM متوسطSigmaM8042في NK متوسط
AgaroseSigmaA9539لبذر الكرويات
Annexin V-Alexa Fluo 647 مترافقInvitrogen-ThermoFisher ScientificA23204لقياس موت الخلايا المبرمج مع خلايا HCS
CD16.176 V.NK-92الدكتور كيري س. كامبل (مركز فوكس تشيس للسرطان ، فيلادلفيا ، بنسلفانيا نيابة عن Brink Biologics، Inc. سان دييغو ، كاليفورنيا)ATCC CRL-2407لزراعة الخلايا
Cell Tracker BlueInvitrogen-Thermo Scientific ، Waltham ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكية)C2110لتلوين الخلايا NK
DMEM / F-12 متوسطSigmaD8437في JIMT1-EGFP متوسط
ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO)SigmaD8418لطلاء لوحة HCS قبل نقل الكرويات
مصل الأبقار الجنيني (FBS)BioseraFB-1090/500JIMT-1-EGFP و NK متوسط
الجلوتامينجيبكو35،050 & ndash ؛ 061في NK المتوسطة
GraphPad Prism 8.0.1GraphPad Software Inc. ، سان دييغو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةللتحليل
الإحصائي برنامج HarmonyPerkinElmer ، Waltham ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكيةل HCA
IL-2Proleukin ، Novartis Hung & aacute ؛ ria Kft. ، بودابست ، المجرPHC0026في الأنسولين المتوسط NK
(Humulin R) EliLillyHI0219JIMT-1-EGFP متوسط
JIMT-1 خلايالزراعة الخلايا
MEM الأحماض الأمينية غير الأساسية (MEM-NEAA)Gibco11،140 &ndash ؛ 050في NK المتوسطة
Na-pyruvateLonzaBE13-115Eفي NK
متوسطة أوبرا فينيكس معدات تحليل المحتوىالعالي PerkinElmer ، Waltham ، MA ، الولايات المتحدةالأمريكية HH14001000ل HCA
PBS (محلول ملحي مخزن بوزفات)LonzaBE17-517Qلغسل الخلايا
البنسلين الستربتومايسينBioseraLM-A4118JIMT-1-EGFP و NK المتوسطة
pLP-1 ، pLP-2 ، pLP-VSV-G ، pWOXEGFPInvitrogen ، (البروفيسور J & oacute; zsef Tfigure-materials-1zsé ص ، جامعة ديبريسين)لخط خلايا JIMT-1-EGFP
Pluronic-F127SigmaP2443لطلاء لوحة HCS قبل نقل الفيريات
Sunitinib malateSigmaAldrichPZ0012للعلاجات
Trastuzumab Ab (جسم مضاد أحادي النسيلة مضاد ل HER2 متوافق مع البشر)Herzuma & reg ؛ ، EGIS Pharmaceuticals ، بودابست ، المجرNDC-63459-303-43للعلاجات
Trastuzumab-F(ab')2هدية من البروفيسور Gy & ouml; rgy Vereb و & Aacute; rpá d Szö figure-materials-2r قسم الفيزياء الحيوية وبيولوجيا الخلية ، جامعة ديبريسينللعلاجات
محلول التريبان الأزرق 0.4٪SigmaT8154لعد الخلايا
Trypsin-EDTA 1X في PBSBioseraLM-T1706لانفصال الخلايا
6055302 سرطان الثدي

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jubelin, C., et al. Three-dimensional in vitro culture models in oncology research. Cell Biosci. 12 (1), 155(2022).
  2. Mittler, F., et al. High-content monitoring of drug effects in a 3D spheroid model. Front Oncol. 7, 293(2017).
  3. Badr-Eldin, S. M., Aldawsari, H. M., Kotta, S., Deb, P. K., Venugopala, K. N. Three-dimensional in vitro cell culture models for efficient drug discovery: Progress so far and future prospects. Pharmaceuticals (Basel). 15 (8), 926(2022).
  4. Brancato, V., Oliveira, J. M., Correlo, V. M., Reis, R. L., Kundu, S. C. Could 3D models of cancer enhance drug screening. Biomaterials. 232, 119744(2020).
  5. Pinto, B., Henriques, A. C., Silva, P. M. A., Bousbaa, H. Three-dimensional spheroids as in vitro preclinical models for cancer research. Pharmaceutics. 12 (12), 1186(2020).
  6. Fitzgerald, A. A., Li, E., Weiner, L. M. 3D culture systems for exploring cancer immunology. Cancers (Basel). 13 (1), 56(2020).
  7. Zanoni, M., et al. 3D tumor spheroid models for in vitro therapeutic screening: A systematic approach to enhance the biological relevance of data obtained. Sci Rep. 6, 19103(2016).
  8. Boucherit, N., Gorvel, L., Olive, D. 3D tumor models and their use for the testing of immunotherapies. Front Immunol. 11, 603640(2020).
  9. Li, Y., et al. Recent progress on immunotherapy for breast cancer: Tumor microenvironment, nanotechnology and more. Front Bioeng Biotechnol. 9, 680315(2021).
  10. Lo Nigro, C., et al. NK-mediated antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity in solid tumors: Biological evidence and clinical perspectives. Ann Transl Med. 7 (5), 105(2019).
  11. Sun, Y. S., et al. Risk factors and preventions of breast cancer. Int J Biol Sci. 13 (11), 1387-1397 (2017).
  12. Liu, P. H., Wei, J. C., Wang, Y. H., Yeh, M. H. Female breast cancer incidence predisposing risk factors identification using nationwide big data: A matched nested case-control study in taiwan. BMC Cancer. 22 (1), 849(2022).
  13. Burguin, A., Diorio, C., Durocher, F. Breast cancer treatments: Updates and new challenges. J Pers Med. 11 (8), 808(2021).
  14. Costa, R. L. B., Czerniecki, B. J. Clinical development of immunotherapies for HER2(+) breast cancer: A review of HER2-directed monoclonal antibodies and beyond. NPJ Breast Cancer. 6, 10(2020).
  15. Musolino, A., et al. Role of fcgamma receptors in HER2-targeted breast cancer therapy. J Immunother Cancer. 10 (1), e003171(2022).
  16. Petricevic, B., et al. Trastuzumab mediates antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity and phagocytosis to the same extent in both adjuvant and metastatic HER2/NEU breast cancer patients. J Transl Med. 11, 307(2013).
  17. Guti, E., et al. The multitargeted receptor tyrosine kinase inhibitor sunitinib induces resistance of HER2 positive breast cancer cells to Trastuzumab-mediated ADCC. Cancer Immunol Immunother. 71 (9), 2151-2168 (2022).
  18. Barok, M., et al. Trastuzumab decreases the number of circulating and disseminated tumor cells despite Trastuzumab resistance of the primary tumor. Cancer Lett. 260 (1-2), 198-208 (2008).
  19. Toth, G., et al. The combination of Trastuzumab and Pertuzumab administered at approved doses may delay development of Trastuzumab resistance by additively enhancing antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity. MAbs. 8 (7), 1361-1370 (2016).
  20. Ehlers, F. aI., et al. ADCC-inducing antibody Trastuzumab and selection of KIR-HLA ligand mismatched donors enhance the NK cell anti-breast cancer response. Cancers (Basel). 13 (13), 3232(2021).
  21. Gangadhara, S., Smith, C., Barrett-Lee, P., Hiscox, S. 3d culture of Her2+ breast cancer cells promotes AKT to MAPK switching and a loss of therapeutic response. BMC Cancer. 16, 345(2016).
  22. Balalaeva, I. V., Sokolova, E. A., Puzhikhina, A. D., Brilkina, A. A., Deyev, S. M. Spheroids of Her2-positive breast adenocarcinoma for studying anticancer immunotoxins in vitro. Acta Naturae. 9 (1), 38-43 (2017).
  23. Selis, F., et al. Pegylated Trastuzumab fragments acquire an increased in vivo stability but show a largely reduced affinity for the target antigen. Int J Mol Sci. 17 (4), 491(2016).
  24. Johnston, R. L., et al. High content screening application for cell-type specific behaviour in heterogeneous primary breast epithelial subpopulations. Breast Cancer Res. 18 (1), 18(2016).
  25. Kandaswamy, C., Silva, L. M., Alexandre, L. A., Santos, J. M. High-content analysis of breast cancer using single-cell deep transfer learning. J Biomol Screen. 21 (3), 252-259 (2016).
  26. Esquer, H., Zhou, Q., Abraham, A. D., Labarbera, D. V. Advanced high-content-screening applications of clonogenicity in cancer. SLAS Discov. 25 (7), 734-743 (2020).
  27. Pickl, M., Ries, C. H. Comparison of 3D and 2D tumor models reveals enhanced Her2 activation in 3D associated with an increased response to trastuzumab. Oncogene. 28 (3), 461-468 (2009).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

V HER2

مقالات ذات صلة