يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

حمض الريتينويك المغلف بمستحلب النانو الموجبة كمساعد لتعزيز الاستجابات الجهازية والمخاطية الخاصة ب OVA

1.8K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/66270

⸱

فبراير 23, 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1National Engineering Research Center of Immunological Products, Department of Microbiology and Biochemical Pharmacy, College of Pharmacy, Third Military Medical University

في هذه المقالة

ملخص

في هذا البروتوكول ، قمنا بتطوير حمض الريتينويك المغلف بمستحلب نانوي كاتيوني (RA) لاستخدامه كمساعد لتعزيز الاستجابات الجهازية والمخاطية الخاصة بالمستضد. من خلال إضافة التهاب المفاصل الروماتويدي المعتمد من إدارة الغذاء والدواء إلى المستحلب النانوي ، تم تعزيز sIgA الخاص بالمستضد في المهبل والأمعاء الدقيقة بعد الحقن العضلي للمستحلب النانوي.

الملخص

ظهرت الهياكل النانوية الكاتيونية كنظام توصيل مساعد ومستضد يعزز نضوج الخلايا المتغصنة ، وتوليد أنواع الأكسجين التفاعلية ، وامتصاص المستضد ، ثم يعزز الاستجابات المناعية الخاصة بالمستضد. في السنوات الأخيرة ، تلقى حمض الريتينويك (RA) اهتماما متزايدا بسبب تأثيره في تنشيط الاستجابة المناعية المخاطية. ومع ذلك ، من أجل استخدام RA كمساعد مخاطي ، من الضروري حل مشكلة حلها وتحميلها وتسليمها. هنا ، نصف نظام توصيل حمض الريتينويك المغلف بمستحلب النانو الموجبة (CNE-RA) المكون من الدهون الكاتيونية 1،2-ديوليويل-سن-جليسيرو-3-فوسفوكولين (DOTAP) ، وحمض الريتينويك ، والسكوالين كمرحلة الزيت ، وبوليسوربات 80 كخافض للتوتر السطحي ، وثلاثي السوربيتان 85 كخافض للتوتر السطحي. تم تمييز خصائصه الفيزيائية والكيميائية باستخدام تشتت الضوء الديناميكي ومقياس الطيف الضوئي. أدى تحصين الفئران بمزيج من المستضد (ovalbumin ، OVA) و CNE-RA إلى رفع مستويات الغلوبولين المناعي الإفرازي المضاد ل OVA A (sIgA) بشكل كبير في سائل غسل المهبل وسائل غسل الأمعاء الدقيقة للفئران مقارنة ب OVA وحده. يصف هذا البروتوكول طريقة مفصلة لإعداد وتوصيف وتقييم التأثير المساعد ل CNE-RA.

المقدمة

غالبا ما تستخدم المواد المساعدة لتعزيز فعالية اللقاح عن طريق تحفيز الجهاز المناعي على الاستجابة بقوة أكبر للقاح ، وبالتالي زيادة المناعة ضد ممرض معين1. يشير المستحلب النانوي (NE) المساعد إلى نظام تشتت غروي مع استقرار ديناميكي حراري عن طريق استحلاب نسبة معينة من طور الزيت والطور المائي لإنتاج مستحلب على شكل ماء في الزيت (W / O) أو زيت في الماء (O / W) 2. يمكن لمستحلب النانو O / W أن ينتج السيتوكينات والكيموكينات في موقع الحقن ، ويحفز التجميع السريع وتكاثر الخلايا المناعية المهمة مثل الخلايا الوحيدة ، والعدلات ، والحمضات ، ويعزز الاستجابة المناعية ، ويحسن مناعة المستضدات3. حاليا ، تم ترخيص ثلاثة مواد مساعدة للمستحلب النانوي (MF59 و AS03 و AF03) للاستخدام في اللقاحات وأظهرت سلامة وفعالية جيدة4.

ومع ذلك ، فقد تمت معالجة المناعة المخاطية بشكل سيئ من خلال التركيبات المساعدة المرخصة حاليا في التطعيم بالحقن التقليدي5. تم الإبلاغ عن أن حمض الريتينويك (RA) يحفز توجيه الخلايا المناعية المعوية ، لكن قطبية منخفضة ، وضعف قابلية الذوبان في الماء ، وضعف الضوء والاستقرار الحراري تحد من استخدامه للتطعيم المعوي القوي. توفر المستحلبات النانوية فرصا لزيادة التوافر البيولوجي للأدوية شديدة المحبة للدهون ، كما أن قلب الزيت للمواد المساعدة لمستحلب O / W مناسب لإذابة المواد غير القطبية مثل RA6. لذلك ، يمكن استخدام المستحلبات النانوية كناقلات لالتهاب المفاصل الروماتويدي من أجل تحقيق تأثير الاستجابة المزدوجة للمناعة الجهازية والمناعة المخاطية.

بالمقارنة مع أنظمة التوصيل المحايدة أو الأنيونية ، تتمتع أنظمة التوصيل الكاتيوني بقدرات تغليف وتوصيل مستضد فعالة نسبيا ، والتي يمكن أن تعزز مناعة المستضدات7،8،9. تعتبر شحنة السطح الكاتيوني لمجموعة متنوعة من الأنظمة المساعدة مهمة لتأثيراتها المساعدة10،11،12. تعتبر الشحنة الكاتيونية عاملا مهما في إطالة فترة الاحتفاظ باللقاح في موقع الحقن ، وزيادة عرض المستضد وإطالة تحفيز المناعة الخلوية في الجسم12.

بناء على الاعتبارات المذكورة أعلاه ، قمنا بتطوير مستحلب نانوي كاتيوني للمشاركة في توصيل RA والمستضدات بشكل فعال. تم تحديد حجم الجسيمات وإمكانات زيتا للمستحلب النانوي باستخدام تشتت الضوء الديناميكي (DLS) ، وتم تقييم الاستجابات المناعية الجهازية والمخاطية للمستحلب النانوي جنبا إلى جنب مع OVA عن طريق الحقن العضلي13.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء التجارب على وفقا لدليل استخدام ورعاية المختبر وتمت الموافقة عليها من قبل لجنة رعاية وأخلاقيات المختبر في الجامعة الطبية العسكرية الثالثة.

1. تحضير المستحلبات النانوية (NEs)

  1. لتحضير الطور المائي، قم بإذابة 0.15 جم من بوليسوربات 80 في 28.2 مل من محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) مع التحريك عند 40 درجة مئوية.
  2. لإعداد طور الزيت ، استخدم تركيبة طور الزيت للمستحلب النانوي الموضح في الجدول 1. قم بإذابة ثلاثي السورنيتان 85 و DOTAP و RA في السكوالين مع التحريك عند 40 درجة مئوية.
  3. لإعداد مستحلب O / W الأولي ، قم بتحريك طور الزيت مغناطيسيا عند 1400 دورة في الدقيقة مع إضافة الماء ببطء وقطرة بمعدل 1 مل / دقيقة. قم باستحلاب الخليط مسبقا باستخدام مستحلب عالي القص عند 30000 دورة في الدقيقة لمدة 6 دقائق.
  4. بالنسبة للتجانس عالي الضغط (HPH) ، عالج مستحلب O / W الأساسي المحضر أعلاه بمجانس عالي الضغط لمدة 12 دورة عند 900 بار للحصول على مستحلب نانو متجانس في نطاق 160-190 نانومتر.
  5. في نهاية العملية ، اجمع المستحلب في قارورة سعة 50 مل وقم بتعقيم المستحلب بالتصفية من خلال غشاء مرشح PES 0.2 ميكرومتر.
  6. قم بتوصيل القارورة بخط Schlenk من خلال القسطرة ، وقم بتدوير المحبس ثلاثي الاتجاهات لتوصيل النظام بأنبوب التفريغ وتشغيل مضخة التفريغ لإنشاء فراغ في القارورة. بعد ذلك ، قم بتدوير المحبس ثلاثي الاتجاهات ، وقم بتوصيل النظام بأنبوب الأرجون واملأه بالأرجون. كرر هذه الخطوة 3x للتأكد من أن القارورة مملوءة بالأرجون.
  7. استبدل الفلين وأغلقه بغشاء بارافين ، ولف القارورة بورق القصدير واحفظها في درجة حرارة 4 درجات مئوية.

2. توصيف المستحلبات النانوية

  1. حجم الجسيمات والكشف عن إمكانات زيتا
    1. قم بتشغيل الجهاز وانتظر 30 دقيقة حتى يستقر مصدر ضوء الليزر.
    2. قم بتخفيف NE 50 ضعفا بالماء عالي النقاء وأضف 1 مل من العينة إلى خلية العينة المقابلة.
    3. لقياس حجم الجسيمات ، اضبط درجة الحرارة على 25 درجة مئوية ، وحدد الماء كوسيط تشتت ، وحدد الأطباق البلاستيكية التي تستخدم لمرة واحدة كخلية قياس. تحميل العينات والقياس تلقائيا. أبلغ عن القيمة المتوسطة لثلاثة قياسات متكررة لكل عينة كنتيجة نهائية.
    4. لقياس جهد زيتا ، اضبط درجة الحرارة على 25 درجة مئوية. نظرا لاختيار الطور المائي كوسط تشتت ، حدد نموذج Smoluchowsi ، والخلية الشعرية المطوية كخلية قياس. تحميل العينات والقياس تلقائيا. أبلغ عن متوسط ثلاثة قياسات مكررة لكل عينة كنتيجة نهائية.
  2. تحديد معدل التغليف ومعدل تحميل الدواء
    1. لتحديد كمية RA المحملة في NE ، استخدم الإيثانول المطلق لإزالة الاستحلاب واستخراج RA من NE. إلى 5 ميكرولتر من العينة ، أضف 995 ميكرولتر من الإيثانول وحدد محتوى RA للمحلول باستخدام مقياس الطيف الضوئي عند 355 نانومتر. قارن الامتصاص بمنحنى قياسي. استخدم المعادلة التالية:
      التغليف = الحمل الفعلي RA / وزن الدواء المضاف
      معدل تحميل الدواء = تحميل RA الفعلي / جودة العينة

3. إجراءات التحصين وجمع العينات

  1. إجراءات التحصين والتجميع
    1. مجموعة إناث Balb / C الفئران الذين تتراوح أعمارهم بين 6-8 أسابيع ويزن حوالي 18-21 جم في مجموعات من 5 للتحصين في اليوم 0 ، اليوم 14 ، اليوم 28 وفقا للمجموعات التجريبية التالية: (1) مجموعة PBS ، (2) مجموعة البومين البيضاوي (OVA) ، (3) مجموعة OVA + NE-RA (OVA / NE-RA) ، (4) مجموعة OVA + CNE-RA (OVA / CNE-RA).
    2. تحصين جميع الفئران عن طريق الحقن العضلي في عضلات الفخذ العلوية مع 200 ميكرولتر من تركيبات اللقاح المختلفة: 100 ميكرولتر من المستحلب و 15 ميكروغرام OVA يمتص في 100 ميكرولتر من PBS ، مختلطة قبل تناوله. حقن 100 ميكرولتر / الساق الخلفية. بالنسبة للفئران في المجموعة الضابطة ، قم بإدارة برنامج تلفزيوني وحده.
    3. القتل الرحيم: القتل الرحيم لجميع الفئران عن طريق الحقن داخل الصفاق من 100 ملغ / كغ من بنتوباربيتال الصوديوم 1 ٪ بعد أسبوعين من الانتهاء من التطعيمات الثلاثة.
    4. جمع العينات ومعالجتها: بعد القتل الرحيم ، استخدم المقص لفتح صدر الفئران وإدخال حقنة مباشرة في القلب لشفط حوالي 0.5 مل من الدم الكامل. اترك الدم يقف لمدة 2 ساعة في درجة حرارة الغرفة ثم جهاز طرد مركزي عند 1800 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية. اجمع المصل والقسمة واحفظيها في درجة حرارة -80 درجة مئوية لمزيد من التحليل.
    5. جمع الدم الكامل والطحال وسائل غسل المهبل (VLF) وسائل غسل القصبات الهوائية (BALF) وسائل غسل الأنف (NLF) وسائل غسل الأمعاء الدقيقة (SILF).
  2. عزل الخلايا الليمفاوية الطحالية
    1. نقع الفئران في الإيثانول 75 ٪ (v / v) لتعقيم قصير ، ونقل الفئران إلى مقعد نظيف. قطع الجلد على البطن الأيسر مع مقص ، وفضح وإزالة الطحال.
    2. ضع الطحال في طبق بتري يحتوي على 3 مل من PBS ، وطحنه ومرشحه في أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل باستخدام غربال (200 شبكة ، 70 ميكرومتر) وقضيب طحن.
    3. أجهزة الطرد المركزي الخلايا في 650 × غرام لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تخلص من المادة الطافية وقم بتعليق الراسب ب 3 مل من محلول تحلل خلايا الدم الحمراء ، واحتضانه في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق.
    4. أضف 10 مل من PBS إلى الأنبوب واهتز جيدا لإنهاء التفاعل ، ثم قم بطرده عند 650 × جم لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة.
    5. تخلص من المادة الطافية وأعد تعليق الخلايا في 10 مل من PBS ، أضف 20 ميكرولتر من تخفيف الخلية إلى عداد الخلايا الآلي لعد الخلايا.
    6. أجهزة الطرد المركزي الخلايا في 650 × غرام لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تخلص من المادة الطافية وقم بتخفيف الخلايا إلى 1 × 106 خلايا / مل مع 1640 وسط كامل (1٪ بنسلين - ستربتومايسين ، 10٪ مصل بقري جنيني).
  3. جمع VLF: شطف المهبل 4x مع 75 ميكرولتر من 1٪ BSA / PBST ، والجمع بين محلول غسل وجمع في أنابيب الطرد المركزي 1.5 مل ، وأجهزة الطرد المركزي في 5000 × غرام في 4 °C لمدة 20 دقيقة وجمع طاف مع ماصة وتخزينها في -80 °C.
  4. مجموعة BALF و NLF
    1. تطهير الفئران بعد التضحية مع 75٪ (v / v) الإيثانول. امسك بطن الفأر وقم بتصويب الرقبة. استخدم المقص لعمل شق طولي في جلد عنق الفأر واستخدم الملقط لفصل العضلات وكشف القصبة الهوائية بشكل كاف.
    2. قطع القصبة الهوائية من خلال فتحة عرضية صغيرة وأدخل الخرطوم باتجاه الرئتين ، وإرفاق المحقنة بالخرطوم وحقن 0.5 مل من PBS في الرئتين والانسحاب ، كرر الشطف 3x وأجهزة الطرد المركزي عند 650 × g عند 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق ، قم بتخزين المادة الطافية (BALF) عند -80 درجة مئوية.
    3. عكس الخرطوم إلى تجويف الأنف ، قم بتوصيل المحقنة بالخرطوم وحقن 0.5 مل من PBS ، وسوف يتدفق السائل عبر تجويف الأنف إلى أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل. نضح الغسيل من أنبوب الطرد المركزي وكرر الشطف 2x ، ثم الطرد المركزي عند 650 × g عند 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق ، وقم بتخزين المادة الطافية (NLF) عند -80 درجة مئوية.
  5. مجموعة سيلف
    1. تحضير محلول PBS يحتوي على مثبط التربسين 0.1 مجم / مل ، 50 ملي متر / لتر EDTA-2Na ، 1 مللي متر / لتر فلوريد فينيل ميثيل سلفونيل (PMSF) كمحلول غسل الأمعاء الدقيقة. يقلب في درجة حرارة الغرفة ليذوب ويخزن على حرارة 4 درجات مئوية.
    2. قطع الأمعاء الدقيقة مفتوحة على طول أنبوب الأمعاء وانغمس في 3 مل من سائل غسل الأمعاء الدقيقة. امزج بالهز الرأسي عند 15 دورة في الدقيقة لمدة 30 دقيقة عند 4 درجات مئوية. أجهزة الطرد المركزي عند 1440 × جم عند 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة وجمع المادة الطافية باستخدام ماصة ، ثم أجهزة الطرد المركزي عند 5000 × جم عند 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة. قم بتخزين المادة الطافية (SILF) في درجة حرارة -80 درجة مئوية.

4. تقييم استجابة الأجسام المضادة الخاصة ب OVA بعد الإعطاء العضلي

  1. تحديد مستويات مصل IgG ، والفئات الفرعية من IgG1 ، IgG2a ومستويات sIgA المحددة في VLF و BALF و NLF و SILF بواسطة مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA).
  2. بالنسبة لطلاء المستضد ، قم بتخفيف OVA إلى 5 ميكروغرام / مل مع عازل طلاء ، وقم بتغطية ألواح ELISA المكونة من 96 بئرا طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع 100 ميكرولتر من محلول OVA لكل بئر.
  3. اغسل ألواح ELISA 5x باستخدام PBST وقم بحظرها عن طريق الحضانة ب 250 ميكرولتر من 1٪ BSA / PBST عند 37 درجة مئوية لمدة ساعتين.
  4. اغسل ألواح ELISA 5x باستخدام PBST ، ثم أضف 100 ميكرولتر من العينة المخففة كما هو موضح أدناه ليتم اختبارها واحتضانها عند 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة. مصل مخفف ، VLF ، BALF ، NLF مع 0.5٪ BSA / PBST ، تمييع SILF مع 20٪ مصل عجل الجنين (FCS) / PBST.
    1. ابدأ بتخفيف المصل 1000x باستخدام إجراء تخفيف من خطوتين: قم بتخفيف 20 ميكرولتر من المصل إلى 1 مل ، ثم قم بتخفيف 25 ميكرولتر من هذا المصل المخفف إلى 500 ميكرولتر. استخدم هذا التخفيف من المصل للكشف عن IgG1 ، IgG2a.
  5. أضف 200 ميكرولتر من المصل المخفف عند 1000x إلى الصف الأول من اللوحة المطلية وأضف 100 ميكرولتر من 0.5٪ BSA / PBST إلى جميع الآبار باستثناء الصف الأول. انقل 100 ميكرولتر من الصف الأول إلى الصف الثاني وامزج 10 أضعاف مع الماصة. كرر هذه الخطوة حتى الصف 8 وتخلص من 100 ميكرولتر من السائل ، وقد تم الحصول على مصل بتركيزات مختلفة للكشف عن IgG.
  6. قم بإجراء تخفيف 1: 1 من BALF و NLF و SILF للكشف عن IgA. استخدم نفس إجراء التخفيف ل VLF مثل إجراء المصل.
  7. اغسل ألواح ELISA 5x باستخدام PBST. أضف 100 ميكرولتر من الماعز المترافق HRP المضاد للفأر IgG / IgG1 / IgG2a / IgA (مخفف 1: 10000 مع PBST) إلى الآبار المناسبة واحتضانها عند 37 درجة مئوية لمدة 40 دقيقة.
  8. اغسل ألواح ELISA 5x باستخدام PBST ، وأضف 100 ميكرولتر من ركيزة TMB ELISA (حساسة للغاية) ، وانقل اللوحة إلى مكان محمي من الضوء لمدة 5 دقائق. أضف على الفور 100 ميكرولتر من محلول توقف 450 نانومتر لركيزة TMB لإيقاف التفاعل.
  9. قم بقياس الامتصاص (OD) عند 450 نانومتر لكل بئر واحسب عيار الجسم المضاد عن طريق أخذ 2.1 مرة من قيمة مصل فأر المجموعة الفارغة كقيمة استجابة إيجابية.

5. مقايسة ELISpot

  1. اتبع إرشادات ELISpot Plus ، واستخدم الماوس IFN-γ (ALP) من المجموعة لإجراء المقايسات.
  2. أخرج اللوحة من العبوة محكمة الغلق واغسلها 4 مرات باستخدام برنامج تلفزيوني معقم (200 ميكرولتر / بئر). رطب اللوحة ب 1640 وسط كامل (200 ميكرولتر / بئر) واحتضانها لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  3. قم بإزالة الوسط وإضافة التركيز المعدل لمعلق الخلايا الليمفاوية المحضر في الخطوة 3.2.2 (100 ميكرولتر / بئر) إلى اللوحة ، ثم أضف 100 ميكرولتر من التحفيز ، أي 1640 وسط كامل يحتوي على 20 ميكروغرام / مل OVA257 ~ 264 أو OVA323 ~ 339 أو 1640 وسط كامل. ضع اللوحة في حاضنة مرطبة عند 37 درجة مئوية مع 5٪ CO2 لمدة 48 ساعة. لف اللوحة بورق الألمنيوم لتجنب التبخر.
  4. تخلص من تعليق الخلية واغسل اللوحة 5x باستخدام PBS (200 ميكرولتر / بئر). خفف الجسم المضاد للكشف (R4-6A2-بيوتين) إلى 1 ميكروغرام / مل في PBS يحتوي على 0.5٪ مصل عجل الجنين (PBS-0.5٪ FCS). أضف 100 ميكرولتر / بئر واحتضانها لمدة 2 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
  5. اغسل اللوحة كما في الخطوة 5.2. تمييع streptavidin-ALP (1: 1000) في PBS-0.5٪ FCS وإضافة 100 ميكرولتر / بئر ، احتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
  6. اغسل اللوحة كما في الخطوة 5.2. قم بتصفية محلول الركيزة الجاهز للاستخدام (BCIP / NBT-plus) من خلال مرشح 0.45 ميكرومتر وأضف 100 ميكرولتر / بئر. تطور حتى تظهر بقع مميزة.
  7. توقف عن نمو اللون عن طريق غسله جيدا في ماء الصنبور ، وقم بإزالة البلاستيك اللين واترك اللوحة حتى تجف.
  8. افحص النقاط وعدها في قارئ ELISpot.

6. التحليل الإحصائي

  1. تحليل الاختلافات بين بيانات 4 مجموعات عن طريق ANOVA أحادي الاتجاه متبوعا بمقارنة Tukey المتعددة بعد الاختبار. عبر عن جميع النتائج كمتوسط ± SD. اعتبرت قيمة P أقل من 0.05 معنوية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

في المجموع ، تم تحضير أربع تركيبات مستحلب نانوي وتميزت بحجم جسيماتها (الشكل 1) ، وإمكانات زيتا وكفاءة تغليفها كما هو موضح في الجدول 2. تركز حجم الجسيمات حول 160-190 نانومتر وإضافة DOTAP عكست إمكانات زيتا للمستحلب النانوي. تم الكشف عن مصل IgG الخاص ب OVA ومستوى الأجسام المضادة للمجموعة الفرعية في المصل بعد 2 أسابيع من التحصين الثالث. زاد اللقاح المساعد للمستحلب النانوي بشكل كبير من عيار الأجسام المضادة IgG و IgG1 و IgG 2a الخاص ب OVA في المصل (الشكل 2

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

في هذا البروتوكول ، قمنا بتطوير حمض الريتينويك المغلف بمستحلب نانوي كاتيوني لاستخدامه كمساعد لتعزيز الاستجابات الجهازية والمخاطية الخاصة بالمستضد. بالمقارنة مع المواد المساعدة التقليدية NE ، فإنه يتمتع بميزتين التاليتين. أولا ، بشكل عام ، يحتوي سطح O / W NEs على شحنة سالبة عالية ، مما يجعل من الصعب تحميل المستضدات مباشرة. يمكن ل NEs الموجبة امتصاص مستضدات الببتيد أو البروتين بشكل فعال وتعزيز المناعة المحددة. ثانيا ، أظهرت التجربة في أبحاث اللقاحات التقليدية أنه من الصعب تحفيز الاستجابة المخاطية عن طريق الحقن تحت الجلد أو...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون أنه ليس لديهم تضارب في المصالح في هذا العمل.

شكر وتقدير

تم تمويل هذه الدراسة من قبل البرنامج الرئيسي لمؤسسة تشونغتشينغ للعلوم الطبيعية (رقم cstc2020jcyj-zdxmX0027) ومشروع مؤسسة العلوم الطبيعية الوطنية الصينية (رقم 32270988).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
1640 جيبكو متوسط، الولايات المتحدة الأمريكيةC11875500BT
450 نانومتر حل التوقف ل TMB الركيزةAbcamab171529-1000 مل
عداد الخلايا الآليCountstar ، الصينIC1000
BSASigma-Aldrich ، الولايات المتحدة الأمريكيةB2064-100G
جهاز طرد مركزي 5810 REppendorf ، ألمانيا5811000398
Danamic مبعثر الضوءMalvernZetasizer Nano S90
DOTAPCordenPharma ، سويسراO02002
ELISpot Plus: Mouse IFN-gamma (ALP)mabtechab205719
مصل الأبقار البقري للجنينGIBCO ، الولايات المتحدة الأمريكية10099141C
قارئ صفيحة دقيقة كامل الوظائفThermo Fisher Scientific ، الولايات المتحدة الأمريكيةVL0000D2
Goat مضاد للفأر IgG1 (HRP)Abcamab97240-1mg
الماعز المضاد للفأر سلسلة IgA ألفا (HRP) Abcamab97235-1mg
الماعز المضاد للفأر IgG H& L (HRP)AbcamAb205720-500ug
الماعز   ؛ سلسلة ثقيلة مضادة للفأر IgG2a (HRP)Abcamab97245-1mg
خالط الضغط العاليATS
MONTANE 85 PPISEPPIC ، فرنساL12910
MONTANOX 80 PPISEPPIC ، فرنسا36372K
OVA257 &ndash ؛ 264شنغهاي بوتاي التكنولوجيا الحيوية المحدودةNA
OVA323-339شنغهاي بوتاي التكنولوجيا الحيوية المحدودةNA
عازلة الفوسفات الملحيةZSGB-bioZLI-9061
عازلة تحلل خلايا الدم الحمراءSolarbio ، الصينR1010
حمض الريتينويكTCI ، اليابانTCI-R0064-5G
SqualeneSigma ، الولايات المتحدة الأمريكيةS3626
T10 الأساسية Ultra-TurraxIKA ، ألمانيا
TMB ELISA الركيزةAbcamab171523-1000ml
مثبط التربسينDiamondA003570-0100
Tween-20Macklin ، الصين9005-64-5
مقياس الطيف الضوئي بالأشعة فوق البنفسجيةهيتاشيU-3900

المراجع

  1. Pulendran, B., Arunachalam, P. S., O'Hagan, D. T. Emerging concepts in the science of vaccine adjuvants. Nat Rev Drug Discov. 20 (6), 454-475 (2021).
  2. Pandey, P., Gulati, N., Makhija, M., Purohit, D., Dureja, H. Nanoemulsion: A novel drug delivery approach for enhancement of bioavailability. Recent Pat Nanotech. 14 (4), 276-293 (2020).
  3. Chen, W. L., et al. Disintegration and cancer immunotherapy efficacy of a squalane-in-water delivery system emulsified by bioresorbable poly(ethylene glycol)-block-polylactide. Biomaterials. 35 (5), 1686-1695 (2014).
  4. Iwasaki, A., Omer, S. B. Why and how vaccines work. Cell. 183 (2), 290-295 (2020).
  5. Spadoni, I., Fornasa, G., Rescigno, M. Organ-specific protection mediated by cooperation between vascular and epithelial barriers. Nat Rev Immunol. 17 (12), 761-773 (2017).
  6. Singh, Y., et al. Nanoemulsion: Concepts, development and applications in drug delivery. J Cont Release. 252, 28-49 (2017).
  7. Yan, W. L., Chen, W. S., Huang, L. Mechanism of adjuvant activity of cationic liposome: Phosphorylation of a MAP kinase, ERK and induction of chemokines. Mol Immunol. 44 (15), 3672-3681 (2007).
  8. Korsholm, K. S., et al. The adjuvant mechanism of cationic dimethyldioctadecylammonium liposomes. Immunology. 121 (2), 216-226 (2007).
  9. Agger, E. M., et al. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): A versatile ddjuvant for vaccines with different immunological requirements. Plos One. 3 (9), e3116(2008).
  10. Slutter, B., et al. Nasal vaccination with N-trimethyl chitosan and PLGA based nanoparticles: Nanoparticle characteristics determine quality and strength of the antibody response in mice against the encapsulated antigen. Vaccine. 28 (38), 6282-6291 (2010).
  11. Nochi, T., et al. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines. Nat Mater. 9 (8), 685-685 (2010).
  12. Henriksen-Lacey, M., et al. Liposomal cationic charge and antigen adsorption are important properties for the efficient deposition of antigen at the injection site and ability of the vaccine to induce a CMI response. J Control Release. 145 (2), 102-108 (2010).
  13. Zhong, X. F., et al. Nanovaccines mediated subcutis-to-intestine cascade for improved protection against intestinal infections. Small. 18 (1), e2105530(2022).
  14. Mora, J. R., et al. Generation of gut-homing IgA-secreting B cells by intestinal dendritic cells. Science. 314 (5802), 1157-1160 (2006).
  15. Iwata, M., et al. Retinoic acid imprints gut-homing specificity on T cells. Immunity. 21 (4), 527-538 (2004).
  16. Hammerschmidt, S. I., et al. Retinoic acid induces homing of protective T and B cells to the gut after subcutaneous immunization in mice. J Clin Invest. 121 (8), 3051-3061 (2011).
  17. Burger, C., Shahzad, Y., Brümmer, A., Gerber, M., du Plessis, J. Traversing the skin barrier with nano-emulsions. Curr Drug Deliv. 14 (4), 458-472 (2017).
  18. Lodaya, R. N., et al. Formulation design, optimization and evaluations of an α-tocopherol-containing self-emulsified adjuvant system using inactivated influenza vaccine. J Cont Release. 316, 12-21 (2019).
  19. Carmona-Ribeiro, A. M., Pérez-Betancourt, Y. Cationic nanostructures for vaccines design. Biomimetics. 5 (3), 32(2020).
  20. Lam, K., et al. trialkyl ionizable lipids are versatile lipid-nanoparticle components for therapeutic and vaccine applications. Adv Mater. 35 (15), e2209624(2023).
  21. Nie, T. Q., et al. Surface coating approach to overcome mucosal entrapment of DNA nanoparticles for oral gene delivery of glucagon-like peptide 1. Acs Appl Mater Inter. 11 (33), 29593-29603 (2019).
  22. Lou, G., et al. Delivery of self-amplifying mRNA vaccines by cationic lipid nanoparticles: The impact of cationic lipid selection. J Cont Release. 325, 370-379 (2020).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

توصيل حمض الريتينوئيكالاستجابة المناعية المخاطيةالتقاط المستضدنضج الخلايا الغصنيةتشتت الضوء الديناميكيالتمنيع بالأوفالبومينمقايسة الإليزاالغلوبولين المناعي أ الإفرازيالاستجابة المناعية الجهازية
حمض الريتينويك المغلف بمستحلب النانو الموجبة كمساعد لتعزيز الاستجابات الجهازية والمخاطية الخاصة ب OVA
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.