يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

إنشاء عيوب مركبة الخيوط العظمية في الفئران: نموذج موحد للتحقيق في العلاج التجديدي للخياطة

2.1K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/66417

⸱

مايو 10, 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Oral Diseases & National Center for Stomatology & National Clinical Research Center for Oral Diseases, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University, 2Department of Endodontics, West China Hospital of Stomatology, Sichuan University

في هذه المقالة

ملخص

نصف الإجراءات الجراحية التفصيلية للعيوب المركبة العظمية في خياطة الجلسنة في الفئران ، جنبا إلى جنب مع التحقيقات في التكهنات قصيرة وطويلة المدى للنموذج. نهدف إلى بناء نموذج موحد لتطوير العلاجات التجديدية للخياطة.

الملخص

غالبا ما تتزامن العيوب الجلدية واسعة النطاق مع اضطراب خياطة الجمجمة ، مما يؤدي إلى ضعف في استعادة العيوب الجلدية وتطور الجمجمة (يحدث الأخير في الجمجمة النامية). ومع ذلك ، فإن عدم وجود نموذج موحد يعيق التقدم في التحقيق في العلاجات التجديدية للخياطة ويشكل تحديات لإجراء تحليلات مقارنة عبر دراسات متميزة. لمعالجة هذه المشكلة ، يصف البروتوكول الحالي عملية النمذجة التفصيلية للعيوب المركبة العظمية في خياطة الجلسنة في الفئران.

تم إنشاء النموذج عن طريق حفر ثقوب مستطيلة كاملة السماكة بقياس 4.5 مم × 2 مم عبر الغرز الإكليلية. تم القتل الرحيم للفئران ، وتم حصاد عينات الجمجمة بعد الجراحة في اليوم 0 ، والأسبوع 2 ، والأسبوع 6 ، والأسبوع 12. أكدت نتائج التصوير المقطعي المحوسب من العينات التي تم جمعها مباشرة بعد الجراحة التأسيس الناجح للعيب المركب العظمي للخياطة ، بما في ذلك إزالة الخيط الإكليلي وأنسجة العظام المجاورة.

أظهرت البيانات من الأسبوعين6 و 12بعد الجراحة ميلا طبيعيا للشفاء لإغلاق العيب. أكد التلوين النسيجي صحة هذا الاتجاه من خلال إظهار زيادة الألياف المعدنية والعظام الجديدة في مركز العيب. تشير هذه النتائج إلى اندماج الخيوط التدريجي بمرور الوقت بعد العيوب الجلدية ، مما يؤكد أهمية التدخلات العلاجية لتجديد الخيط. نتوقع أن يسهل هذا البروتوكول تطوير علاجات تجديد الخيوط ، وتقديم رؤى جديدة حول الاستعادة الوظيفية للعيوب الجليسية وتقليل النتائج السلبية المرتبطة بفقدان الخيط.

المقدمة

الغرز القحفية هي وصلات ليفية كثيفة بين عظام الجمجمة ، تعمل كمفاصل لتسهيل حركة الجمجمة الطفيفة وتوفير وسادة واقية للدماغ تحت الضغط1. في السنوات الأخيرة ، سلطت الأبحاث المتزايدة الضوء على الدور المحوري لخيوط الجمجمة في نمو الجمجمة ، والتوازن القحفي الوجهي ، وإمكانات إصلاح العظم المتأصلة2،3،4،5،6،7،8. خلال فترات النمو والتطور ، تعمل الغرز القحفية كمراكز نمو رئيسية في الجمجمة4. يحدث تكوين عظام جديد في الجبهات العظمية على جانبي الغرز ، بينما تحافظ الخلايا الموجودة داخل الغرز على حالة وسيطة غير متمايزة ، مما يضمن تمدد متوازن للجمجمة جنبا إلى جنب مع نمو الدماغ1. يؤدي فقدان خيوط الجمجمة في هذا الوقت إلى تناقض بين نمو الجمجمة والدماغ ، مما يؤدي إلى مشاكل خطيرة مثل إصابات الدماغ ، واستسقاء الرأس ، وزيادة الضغط داخل الجمجمة ، والخلل الوظيفي المعرفي3،9.

إلى جانب ذلك ، تلعب خيوط الجمجمة دورا مهما في تحديد تشخيص العيوب الجلدية5،7،10. يتم توزيع إمكانات التجدد عبر سطح الجلسنة بشكل غير متساو ، حيث تظهر خيوط الجمجمة قدرات فائقة بشكل ملحوظ مقارنة بالمناطق غير الخيطة10،11. تشير إحدى الدراسات إلى أن سرعة التئام العيوب الجليزية ترتبط عكسيا بالمسافة بين خياطة الجمجمة وموقع الإصابة10. على وجه التحديد ، تؤدي إزالة الغرز الإكليلي والسهمي إلى عدم التئام عيوب العظام الجداري7 ، مع التأكيد على ضرورة تجديد الخيط في عيوب الجلالة. ومع ذلك ، فإن تركيز الدراسات الحالية ينصب في الغالب على استعادة البنية العظمية القحفية مع إهمال تجديد اللحمة المتوسطة للخياطة.

فيما يتعلق بالتقدم في تجديد الخيوط ، لوحظت نتائج واعدة مع زرع اللوحات العظمية المحتوية على الخيط والخلايا الجذعية الوسيطة (MSCs) والمواد الحيوية الاصطناعية. عندما تم زرع اللوحات العظمية مع الغرز في عيوب الجلالة ، فقد نجحت في الاندماج والشفاء ، على عكس تلك التي لا تحتوي على خيوط جراحية تظهر عدم الاتحاد وعدم القدرة على تكوين السمحاق أو الأم الجافية أو الخلايا العظمية5. وبالمثل ، فإن زرع الخلايا الجذعية الجذعية المشتقة من نخاع العظام في العيوب المركبة العظمية السهمية سهل تكوين فجوات تشبه الخيط12. وتجدر الإشارة إلى أن دراسة حديثة سلطت الضوء على تحقيق تجديد الخيط باستخدام Gli1 + MSCs ، مما يسمح بالتحكم في الضغط داخل الجمجمة ، وتصحيح تشوه الجمجمة ، وتعزيز الوظيفة العصبيةالمعرفية 13. مع تطور الطب التجديدي والهندسة الطبية الحيوية ، يركز الباحثون بشكل متزايد على المواد الحيوية لهندسة الأنسجة نظرا لخصائصها القابلة للتكيف والقابلةللتخصيص 14. والجدير بالذكر أن أغشية البولي تترافلورو إيثيلين أثبتت فعاليتها في إعادة بناء عظام الجمجمة واللحمة المتوسطة للخياطة في وقت واحد15،16.

ومع ذلك ، تفتقر الأبحاث القحفية الوجهية إلى النماذج الراسخة لاستكشاف العلاجات التجديدية للخياطة ، على عكس النماذج الناضجة نسبيا في إصلاح الأنسجة الأخرى مثل العظام والجلد والغضاريف والعضلات17. يقيد عدم وجود نموذج موحد دراسة العلاجات التجديدية للخياطة ويجعل من الصعب إجراء تحليل مقارن عبر الدراسات المختلفة. لذلك ، أثبتت دراستنا عيبا مركبا عظميا في خياطة الفئران الجلجلية وقابلا للتكرار. من خلال هذه الطريقة ، نهدف إلى تطوير التدخلات السريرية المناسبة لإعادة بناء خياطة الجمجمة ، وتقديم وجهات نظر جديدة حول الإصلاح الوظيفي للعيوب الجلدية وتقليل النتائج غير المواتية الناتجة عن فقدان الخياطة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت مراجعة جميع الإجراءات الحيوانية في هذه الدراسة والموافقة عليها من قبل اللجنة الأخلاقية لكلية غرب الصين لطب الأسنان بجامعة سيتشوان (WCHSIRB-D-2021-597). تم الحصول على ما مجموعه 12 (3 فئران في كل نقطة من النقاط الزمنية الأربع) من فئران Sprague-Dawley (SD) (ذكر ، 300 جرام ، 8 أسابيع) من مصدر تجاري (انظر جدول المواد).

1. التحضير قبل الجراحة

  1. المواد الجراحية
    1. قم بإعداد الأدوات الجراحية المعروضة في الشكل 1 أ ، بما في ذلك الملقط المنحني ، ومشرط معقم يمكن التخلص منه ، ومصعد السمحاق ، وإبرة الري ، وكرات القطن ، وقبضة منخفضة السرعة ، ومحرك جراحي ، وأزيز دائري منخفض السرعة للأسنان (الشكل 1 ب ، قطر 1.2 مم و 0.8 مم ، على التوالي) ، حامل إبرة ، خيوط 3-0 أحادية الشعيرات ، ومقص مستقيم.
  2. التعقيم والتطهير
    1. تعقيم الأدوات عن طريق التعقيم بالبخار (125-135 درجة مئوية ، 20-25 دقيقة) مقدما.
    2. استخدم الإيثانول لتعقيم المعدات الطبية الحساسة للحرارة ، مثل ماكينات الحلاقة الكهربائية.
    3. استخدم الأقمشة الطبية غير المنسوجة المعقمة لتغطية منصة التشغيل وتطهير البيئة المحيطة بنسبة 75٪ من الإيثانول.
  3. تخدير
    1. تحضير للجراحة مع فترة تأقلم مدتها أسبوع واحد.
    2. حقن الفئران داخل الصفاق بالزيلازين (10 مجم / كجم) والكيتامين (100 مجم / كجم) قبل 20 دقيقة من الجراحة للتخدير أو استخدام أي بروتوكول تخدير مناسب لتحقيق التخدير العام.
      ملاحظة: عادة ما يسري مفعول كوكتيل الكيتامين والزيلازين المخدر الذي يتم إعطاؤه داخل الصفاق في الفئران في غضون 10-15 دقيقة ، ويصل إلى ذروة التخدير بعد حوالي 35-40 دقيقة من الحقن. لمنع انخفاض حرارة الجسم أثناء التخدير ، من الأفضل وضع الفئران على وسادة تدفئة.
    3. يجب تطبيق حقنة تحت الجلد قبل الجراحة من الكاربروفين بمعدل 5 ملغ/كغ لتوفير التسكين.
    4. استخدم "طريقة قرصة إصبع القدم" لتحديد ما إذا كانت الفئران واعية وسريعة الاستجابة أم لا.

2. العملية الجراحية

  1. إعداد الموقع
    1. ضع الجرذ في وضع الانبطاح مع تمديد رأسه بشكل طبيعي عموديا ، دون الحاجة إلى أجهزة أو قيود خاصة للحفاظ على هذا الموقف (الشكل 2 أ).
    2. ضع مرهما بيطري ، أي الفازلين ، على عيون الفئران لمنع جفاف القرنية.
    3. قم بإزالة الشعر من فروة الرأس بين جسر الأنف ومفصل العمود الفقري العنقي باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية (الشكل 2 ب). تطهير المنطقة الجراحية بحركات دائرية تشع من المركز بمحلول يودوفور 2٪ متبوعا بنسبة 75٪ إيثانول. استخدم ستارة جراحية لتغطية ظهر والفراء المحيط بالشق.
  2. فتح موقع الجراحة
    1. بدءا من منتصف عظم الأنف ، قم بعمل شق جلدي طولي بطول 2 سم بمشرط يمكن التخلص منه بعد خط الوسط للجمجمة (الشكل 2 ج).
    2. قم بعمل شق في خط الوسط السمحاق الذي يعكس النقطة الأولية ومدى طبقة الجلد بمشرط (الشكل 2 د). بعد ذلك ، ارفع السمحاق برفق على جانبي الشق باستخدام مصعد السمحاق (الشكل 2E1) لكشف العظام الجدارية والعظام الأمامية والخيوط الإكليلية (الشكل 2E2).
      ملاحظة: عند شق السمحاق ، احرص على عدم الإضرار بالغرز القحفية لمنع النزيف المفرط عند القطع. يعد التعرض الكافي للخياطة الإكليلية أمرا في غاية الأهمية للإجراءات التالية.
    3. اشطف الجرح بمحلول ملحي وجفف المنطقة الجراحية بكرات قطنية.
  3. إنشاء نموذج عيب مركب خياطة عظمية
    1. اضبط المحرك الجراحي على 35,000 دورة في الدقيقة عن طريق تدوير المقبض (الشكل 1 أ ، السهم الأصفر) ، ثم قم بتشغيل المفتاح (الشكل 1 أ ، السهم الأبيض).
    2. بدءا من أي نقطة على الخيط الإكليلي ، قم بتطبيق القوة الرأسية باستخدام دبر دائري قطره 1.2 مم حتى يشعر بالإحساس بالاختراق.
      ملاحظة: أوصي بنقطة منتصف الخيط الإكليلي (المشار إليها بالأسهم الصفراء في الشكل 2E2) كنقطة انطلاق للاختراق. عند الطحن ، يجب أن تبقى تدريبات الأسنان عموديا على سطح الجمجمة. توخي الحذر حتى لا تستمر في الحفر بعد اختراق السماكة الكاملة للجمجمة لمنع أي ضرر إضافي للفئران ، بما في ذلك تلف الدماغ أو النزيف الدماغي.
    3. من نقطة الاختراق ، حرك البر بشكل جانبي على طول الخيط الإكليلي لإنشاء أخدود تحديد المواقع بطول 4 مم تقريبا (الشكل 2F1). قم بإزالة أنسجة العظام مع البر على جانبي أخدود تحديد المواقع لتشكيل عيب مستطيل كامل السماكة في البداية (الشكل 2F2).
    4. استخدم بري دائري بقطر 0.8 مم لتحسين التفاصيل (الشكل 2G1) ، بما في ذلك طحن الزوايا اليمنى وتنعيم هوامش العيوب ، مما يؤدي في النهاية إلى تحقيق عيب مستطيل قياسي بعرض 2 مم وطول 4.5 مم (الشكل 2G2).
      ملاحظة: لتحقيق الإزالة الكاملة للخياطة الإكليلية مع الحفاظ على الغرز السهمية والأمامية في الفئران SD 300 جم ، يبلغ الحد الأقصى لطول العيب الممكن حوالي 4.5 مم. بالنظر إلى عرض الخيط الإكليلي في الاتجاه الأمامي الخلفي (الشكل التكميلي S1) ، تم تعيين عرض العيب على 2 مم.
    5. قم بإنشاء عيبين عبر النصفين الأيسر والأيمن من الخيط الإكليلي للمقارنة الذاتية.
    6. الحفاظ على الري المستمر للمحلول الملحي أثناء إجراء الحفر للحماية من الإصابة الحرارية للجمجمة والدماغ. في غضون ذلك ، استخدم كرات القطن لتجفيف منطقة العملية.
  4. التحقق من أبعاد العينة
    1. تحقق بانتظام من طول وعرض العيوب باستخدام الفرجار الورني (الشكل 2H1 ، H2) لضمان الاتساق عبر جميع العينات.
  5. إغلاق موقع الجراحة
    1. أغلق الجلد ب 3-0 خيوط أحادية الشعيرات (الشكل 2I).
  6. التصوير المقطعي المحوسب الدقيق في الجسم الحي مباشرة بعد الجراحة (μCT)
    1. إذا كان ذلك ممكنا ، قم بإجراء فحوصات التصوير المقطعي المحوسب في الجسم الحي على جميع الفئران مباشرة بعد الجراحة لتأكيد نجاح العملية الجراحية ومراقبة اتجاهات التعافي من العيوب لكل فرد.

3. رعاية ما بعد الجراحة

  1. وفقا لبروتوكولات رعاية ، يجب تطبيق المسكنات المعمول بها حسب الضرورة بعد الجراحة ، على سبيل المثال ، كاربروفين (5 مجم / كجم ، الاستخدام تحت الجلد).
  2. انقل الفئران إلى وسادة تسخين ثابتة (37 درجة مئوية) للتعافي بعد الجراحة.
  3. بمجرد أن تكون واعيا تماما ، انقل الفئران إلى قفص السكن الذي يحتوي على فراش نظيف.
    ملاحظة: راقب الفئران باستمرار بعد الجراحة. لا تتركهم دون رقابة حتى يتمكنوا من الحفاظ على الرق. احتفظ بالفئران التي يتم تشغيلها معزولة عن غيرها حتى تتعافى تماما.
  4. إجراء إدارة التسكين ومراقبة ما بعد الجراحة لمدة 24 ساعة ، متبوعة بتقييمات يومية طوال الأسبوع الأول بعد الجراحة. راقب الفئران 1-2x على الأقل في الأسبوع بعد ذلك.

4. جمع العينات وتحليل البيانات

  1. تحضير العينة
    1. اجمع عينات الجمجمة في اليوم 0 بعد الجراحة ، والأسبوع 2 ، والأسبوع 6 ، والأسبوع 12. قتل الفئران باستخدام استنشاق ثاني أكسيد الكربون2 .
    2. قم بتثبيت العينات في 4٪ بارافورمالدهيد عند 4 درجات مئوية لمدة 24 ساعة قبل إجراء مزيد من التحليل.
  2. تقييم μCT
    1. إجراء فحوصات التصوير المقطعي المحوسب على عظام الجمجمة في اليوم 0 ، الأسبوع 6 ، الأسبوع 12 مع معلمات المسح التالية: إمكانات أنبوب الأشعة السينية ، 70 كيلو فولت ؛ شدة الأشعة السينية ، 0.2 مللي أمبير ؛ مرشح ، AL 0.5 مم ؛ وقت التكامل ، 1 × 300 مللي ثانية ؛ وحجم فوكسل ، 10 ميكرومتر.
    2. احصل على إعادة بناء ثلاثية الأبعاد وصور مقطعية باستخدام برنامج معالجة الصور (انظر جدول المواد).
    3. قياس حجم العيب المتبقي وإجراء التحليل الإحصائي باستخدام البرامج المقابلة (انظر جدول المواد).
  3. تلطيخ نسيجي
    1. قم بإزالة كلسات عظام الجمجمة في محلول حمض رباعي الأسيتيك ثنائي الإيثيلين بنسبة 12٪ (وزن / حجم) (الرقم الهيدروجيني = 7.2) عند 4 درجات مئوية لمدة 6 أسابيع.
      ملاحظة: قم بإزالة الكلس من العينات مع تغيير المحلول كل 3 أيام. استخدم شاكر لتسريع العملية. يشار إلى الاكتمال عندما تخترق إبرة 25 جم العينة بسهولة.
    2. استمر في الجفاف وتضمين البارافين وتحضير أقسام 6 ميكرومتر باستخدام البروتوكولات القياسية18.
    3. إجراء تحليل نسيجي باستخدام الهيماتوكسيلين والأيوزين (H&E) وتلوين ماسون ثلاثي الألوان باتباع بروتوكول المجموعة18.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

في هذه الدراسة ، تم إنشاء عيب مركب خياطة الفئران العظمية عن طريق حفر ثقب مستطيل 4.5 مم × 2 مم عبر الخيط الإكليلي. تم تصوير الرسم التخطيطي الجراحي ومخطط تدفق البحث في الشكل 3. أكدت الصورة ثلاثية الأبعاد وعرض المقطع العرضي لعينات ما بعد الجراحة لمدة 0 يوم ، أي العينات التي تم جمعها مباشرة بعد الجراحة ، الإنشاء الناجح لعيب جليزي كامل السماكة ، بما في ذلك الإزالة الكاملة للخياطة الإكليلية وكذلك الهياكل العظمية المجاورة في كلا الطرفين (الشكل 4 أ). كشفت صور التصوير ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تركز نماذج العيوب الجلجية التقليدية ، سواء كانت تنطوي على خيوط الجمجمة أم لا ، بشكل أساسي على إصلاح الأنسجة الصلبة ، وغالبا ما تتجاهل التجديد الحيوي لللحمة المتوسطة للخياطة19،20. في أبحاث تجديد الخيط ، أدت النماذج السابقة ، مثل تلك التي أجراها Mardas et al.15،16 ، باستخدام تريفين بار لإنشاء عيب دائري 5 مم عبر خياطة السهمية للفئران ، إلى فقدان كبير للأنسجة الصلبة ، وبالتال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذه الدراسة من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين 82100982 (FL) ، 82101000 (HW) ، 82001019 (BY) ، إدارة العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة سيتشوان 2022NSFSC0598 (BY) ، 2023NSFSC1499 (HW) وتمويل البحث من مدرسة غرب الصين / مستشفى طب الأسنان بجامعة سيتشوان (RCDWJS2021-5). تم إنشاء الشكل 3 باستخدام Biorender.com.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
4٪ بارافورمالديهايدBiosharpBL539A
2٪ محلول اليودوفورتشنغدو جينشان الكاشف الكيميائي المحدودةلا شيء
75 ٪ الإيثانولتشنغدو جينشان الكاشف الكيميائي المحدودةلا شيء
كرات القطنHaishi Hainuo Group Co., Ltd. لا شيء
مسحات القطنLakong Medical Devices Co., لا شيء
ملقط منحنيتشنغدو شيفنغ المحدودةلا يوجد
برنامج Dataviewer و Ctan لتقييمات حجم العيوب المتبقيةBrukerNone
Dental منخفض السرعة دائريDreybird Medical Equipment Co.، Ltd.RA3-012
RA1-008
مشرط معقم يمكن التخلص منههانغتشو هواوي للمستلزمات الطبية المحدودةلا يوجد
محاقن يمكن التخلص منها (22 جم)Chengdu Shifeng Co.، Ltd.SB1-089 (IX)
ماكينة حلاقة كهربائيةJASEBM320210
حمض رباعي الأسيتيك ثنائي الإيثيلين (EDTA)BioFroxx1340GR500
Hematoxylin و Eosin Stain KitBiosharpBL700B
إبرة الري (23 جم) شركةSichuan New Century Medical Polymer Products Co.، Ltd.لا شيء
منخفضة السرعةقوانغتشو Dental Guard Technology Co.، Ltd.لا شيء
ماسون s Trichrome Stain KitSolarbioG1340
الأقمشة الطبية غير المنسوجةHenan Yadu Industrial Co., Ltd. لا شيء
المقطعي المحوسب الدقيقة (& micro; CT) Scanco Medical AGµ CT45
يحاكي 20.0 للصور المقطعيةتجسيدلا
توجد حاملات إبرةتشنغدو شيفنغ المحدودةلا شيء
مصعد Periostealتشنغدو شيفنغ المحدودةلا شيء
محلول ملحيسيتشوان كيلون الصيدلانية المحدودةلا شيء
برنامج Scanco medical visualizer for 3D imagereconstruction Scanco Medical AGNone
SPSS Statistics 20.0 للتحليل الإحصائيIBMNone
Sprague-Dawley rats Byrness Weil Biotech Ltdلا شيء
مقص مستقيمChengdu Shifeng Co.، Ltd.لا يوجد
محرك جراحيMARATHONN3-140232
خيوط جراحية (3-0 شعيرات أحادية)هانغتشو هواوي للمستلزمات الطبية المحدودةاي
قبضة التصوير

المراجع

  1. Li, B., et al. Cranial suture mesenchymal stem cells: insights and advances. Biomolecules. 11 (8), 1129(2021).
  2. Opperman, L. A. Cranial sutures as intramembranous bone growth sites. Dev Dyn. 219 (4), 472-485 (2000).
  3. Lenton, K. A., Nacamuli, R. P., Wan, D. C., Helms, J. A., Longaker, M. T. Cranial suture biology. Curr Top Dev Biol. 66 (4), 287-328 (2005).
  4. Slater, B. J., et al. Cranial sutures: A brief review. Plast Reconstr Surg. 121 (4), 170-178 (2008).
  5. Zhao, H., et al. The suture provides a niche for mesenchymal stem cells of craniofacial bones. Nat Cell Biol. 17 (4), 386-396 (2015).
  6. Maruyama, T., Jeong, J., Sheu, T. -J., Hsu, W. Stem cells of the suture mesenchyme in craniofacial bone development, repair and regeneration. Nat Commun. 7 (1), 10526(2016).
  7. Wilk, K., et al. Postnatal calvarial skeletal stem cells expressing PRX1 reside exclusively in the calvarial sutures and are required for bone regeneration. Stem Cell Reports. 8 (4), 933-946 (2017).
  8. Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. Calvarial suture-derived stem cells and their contribution to cranial bone repair. Front Physiol. 8, 956(2017).
  9. Kajdic, N., Spazzapan, P., Velnar, T. Craniosynostosis-recognition, clinical characteristics, and treatment. Bosn J Basic Med Sci. 18 (2), 110-116 (2018).
  10. Park, S., Zhao, H., Urata, M., Chai, Y. Sutures possess strong regenerative capacity for calvarial bone injury. Stem Cells Dev. 25 (23), 1801-1807 (2016).
  11. Quarto, N., Behr, B., Longaker, M. T. Opposite spectrum of activity of canonical Wnt signaling in the osteogenic context of undifferentiated and differentiated mesenchymal cells: Implications for tissue engineering. Tissue Eng Part A. 16 (10), 3185-3197 (2010).
  12. Kaku, M., et al. Mesenchymal Stem Cell-Induced Cranial Suture-Like Gap in Rats. Plast Reconstr Surg. 127 (1), 69-77 (2011).
  13. Yu, M., et al. Cranial suture regeneration mitigates skull and neurocognitive defects in craniosynostosis. Cell. 184 (1), e18 243-256 (2021).
  14. Koons, G. L., Diba, M., Mikos, A. G. Materials design for bone-tissue engineering. Nat Rev Mater. 5 (8), 584-603 (2020).
  15. Mardas, N., Kostopoulos, L., Karring, T. Bone and suture regeneration in calvarial defects by e-PTFE-membranes and demineralized bone matrix and the impact on calvarial growth: an experimental study in the rat. J Craniofac Surg. 13 (3), 453-462 (2002).
  16. Kostopoulos, L., Karring, T. Regeneration of the sagittal suture by GTR and its impact on growth of the cranial vault. J Craniofac Surg. 11 (6), 553-561 (2000).
  17. Mosaddad, S. A., Hussain, A., Tebyaniyan, H. Exploring the use of animal models in craniofacial regenerative medicine: A narrative review. Tissue Eng Part B Rev. , (2023).
  18. Tan, X., et al. PgC3Mg metal-organic cages functionalized hydrogels with enhanced bioactive and ROS scavenging capabilities for accelerated bone regeneration. J Mater Chem B. 10 (28), 5375-5387 (2022).
  19. Yazdanian, M., et al. Fabrication and properties of βTCP/Zeolite/Gelatin scaffold as developed scaffold in bone regeneration: in vitro and in vivo studies. Biocybern Biomed Eng. 40 (4), 1626-1637 (2020).
  20. Soufdoost, R. S., et al. In vitro and in vivo evaluation of novel Tadalafil/β-TCP/Collagen scaffold for bone regeneration: A rabbit critical-size calvarial defect study. Biocybern Biomed Eng. 39 (3), 789-796 (2019).
  21. Russell, W. P., Russell, M. R. Anatomy, head and neck, coronal suture. StatPearls. , (2022).
  22. Menon, S., et al. Skeletal stem and progenitor cells maintain cranial suture patency and prevent craniosynostosis. Nat Commun. 12 (1), 4640(2021).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

عيوب القحفتجدد الدرزنموذج الجرذالدرز الإكليليالتئام العظامالتصوير المقطعي المحوسب الدقيقالتلوين النسيجينموذج العيب المركبتمزيق الدرز القحفيتكوين عظم جديد
إنشاء عيوب مركبة الخيوط العظمية في الفئران: نموذج موحد للتحقيق في العلاج التجديدي للخياطة
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.