مقالة منهجية

تلطيخ مناعي كامل التثبيت والعد التلقائي لخلايا العقدة الشبكية للفأر

DOI:

10.3791/66991

⸱

أكتوبر 4, 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Sichuan Provincial Key Laboratory for Human Disease Gene Study, Sichuan Provincial People's Hospital, University of Electronic Science and Technology of China, 2School of Medicine, University of Electronic Science and Technology of China, 3Research Unit for Blindness Prevention of Chinese Academy of Medical Sciences (2019RU026), Sichuan Academy of Medical Sciences & Sichuan Provincial People's Hospital

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف هذا البروتوكول إجراء عزل شبكية العين الفأرية بالكامل وإجراء التلوين المناعي لتسمية جميع خلايا العقدة الشبكية (RGCs). يتبع العملية التصوير والعد التلقائي ل RGCs باستخدام البرامج القائمة على الذكاء الاصطناعي ، مما يوفر طريقة بسيطة وسريعة ودقيقة لقياس RGCs في شبكية الفأر بأكملها.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الجلوكوما هو سبب رئيسي للعمى على مستوى العالم ، ويتميز بآلية مسببة للأمراض معقدة تجعل استعادة الرؤية صعبة. تعمل الفئران كنماذج حيوانية قيمة لدراسة التسبب في الجلوكوما وعلاجها بسبب خلفيتها الجينية المتجانسة نسبيا والخلايا العقدية الشبكية (RGCs) ، والتي تشبه هيكليا تلك الموجودة في البشر. يتطلب التقييم الدقيق لضرر RGC ونتائج العلاج في نماذج الجلوكوما في الفئران تحديد رقم RGC عبر شبكية العين بأكملها. يحدد هذا البروتوكول طريقة شاملة تتضمن عزل شبكية العين بأكملها ، وتصنيف RGCs بأجسام مضادة محددة ، والعد التلقائي السريع والدقيق ل RGCs باستخدام برنامج قائم على الذكاء الاصطناعي. يسمح النهج المبسط بالقياس الكمي الفعال والدقيق لأعداد RGC في شبكية العين ، مما يسهل تقييم تنكس RGC والتدخلات العلاجية المحتملة. من خلال تمكين الباحثين من تقييم مدى تلف RGC ، يساهم هذا البروتوكول في فهم أعمق للتسبب في الجلوكوما ويساعد في تطوير استراتيجيات علاجية فعالة لإدارة ومنع فقدان البصر.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتميز الجلوكوما بالموت التدريجي للخلايا العقدية ، مما يشكل تحديا كبيرا لاستعادة البصر1،2. يعد هذا المرض محورا رئيسيا لأبحاث طب العيون نظرا لانتشاره وتأثيره على الرؤية3. نماذج الماوس لا غنى عنها في الجلوكوما
البحث بسبب خلفيتها الجينية المتجانسة ، وقدرتها الإنجابية العالية ، وتشابه خصائص الخلايا العقدية مع البشر4. الهدف الأساسي من هذه الطريقة هو تحديد الخلايا العقدية الشبكية (RGCs) بدقة في نماذج الفئران ، وهو أمر ضروري لفهم التسبب في الجلوكوما وتطوير العلاجات ذات الصلة.

ينبع الأساس المنطقي وراء تطوير هذه التقنية من الحاجة إلى طريقة موثوقة وفعالة لتقييم تنكس RGC في نماذج الماوس. غالبا ما توفر الطرق التقليدية ، مثل وضع العلامات على RGCs في أقسام الشبكية ، نتائج غير موثوقة بسبب التوزيع غير المنتظم ل RGCs في شبكيةالعين 5. يعكس القياس الكمي ل RGCs عبر شبكية العين بأكملها بشكل أفضل التغييرات في أعدادها وهو أمر بالغ الأهمية لتقييم تطور المرض والتدخلات العلاجية.

تقدم هذه الطريقة العديد من المزايا مقارنة بالتقنيات البديلة. على سبيل المثال ، يمكن أن يكون العد اليدوي لخلايا العقدة الشبكية (RGCs) في شبكية العين البالغة الطبيعية ، والتي تحتوي على 40,000 إلى 60,000 RGCs ، مضيعة للوقت وعرضة للخطأ 6,7,8. يسمح برنامج العد التلقائي ل RGC الذي طورناه بالعد الدقيق في أقل من 3 دقائق ، مما قد يوفر للباحثين قدرا كبيرا من الوقت. بالإضافة إلى ذلك ، فإن البرنامج المستند إلى الذكاء الاصطناعي المستخدم في العد التلقائي يقلل من التحيز ويعزز قابلية التكرار.

علاوة على ذلك ، توفر هذه التقنية نهجا موحدا لتقييم تنكس RGC عبر نماذج الفئران المختلفة والظروف التجريبية ، مما يساهم ببيانات قيمة في مجال أبحاث الجلوكوما. تتوافق الطريقة مع الدراسات الأخرى التي تؤكد على أهمية تحليل شبكية العين بالكامل لفهم تغيرات الشبكية في الأمراض9.

لمساعدة القراء على تحديد ما إذا كانت هذه الطريقة مناسبة لتطبيقها ، من المهم ملاحظة أن هذه التقنية مفيدة بشكل خاص للباحثين الذين يدرسون تنكس الخلايا العقدية الشبكية (RGC) في نماذج الفئران من الجلوكوما أو أمراض الشبكية الأخرى. هذه الطريقة قابلة للتكيف مع الإعدادات التجريبية المختلفة وتوفر درجة عالية من الدقة والكفاءة في عد RGC ، مما يجعلها مثالية لكل من الدراسات الصغيرة والكبيرة الحجم. بالإضافة إلى ذلك ، فإن التصميم المباشر للبروتوكول وتوافر البرامج سهلة الاستخدام يجعله في متناول الباحثين ذوي مستويات متفاوتة من الخبرة في تحليل الشبكية.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

امتثل الإجراء لإرشادات جمعية البحوث في مجال الرؤية وطب العيون لاستخدام في البحث وتمت الموافقة عليه من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامها (IACUC) التابعة للمستشفى الشعبي لمقاطعة سيتشوان. تم استخدام ذكور الفئران C57Bl / 6J (شهران من العمر) في هذه الدراسة. يوضح الشكل 1 الإجراء العام الموصوف هنا. تفاصيل الكواشف والمعدات المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. عزل شبكية العين كاملة

  1. التضحية بالحيوانات
    1. التضحية بالفئران باستخدام خلع عنق الرحم (باتباع البروتوكولات المعتمدة مؤسسيا) (الشكل 2 أ). قبل خلع عنق الرحم ،
      تخدير الفئران عن طريق استنشاق الأيزوفلوران (3٪ -5٪ في الأكسجين) أو عن طريق الحقن داخل الصفاق لخليط الكيتامين / الزيلازين.
  2. الاستئصال ومعالجة مقلة العين
    1. ضع علامة على حافة القرنية على الجانب الظهري من مقلة العين بعلامة زرقاء لتذكر الاتجاه أثناء التشريح اللاحق.
    2. قم بإزالة الأنسجة العضلية المتبقية المرتبطة بمقلة العين بالمقص. انقل مقلة العين المنزوعة إلى أنبوب طرد مركزي دقيق دائري القاع سعة 2 مل مملوء ب 1x PBS لشطف قصير (الشكل 2 ج).
  3. تثبيت
    1. انقل مقلة العين إلى أنبوب طرد مركزي دقيق دائري القاع سعة 2 مل يحتوي على 4٪ بارافورمالدهيد (PFA) طازج للتثبيت عند 4 درجات مئوية لمدة 10 دقائق (الشكل 2 د).
    2. قم بعمل شق صغير (حوالي 1-2 مم) على القرنية باستخدام مقص ناعم تحت مجهر تشريح.
    3. ضع مقلة العين مرة أخرى في المثبت لمزيد من التثبيت عند 4 درجات مئوية لمدة 3 ساعات للحفاظ على مورفولوجيا الأنسجة (الشكل 2 د).
  4. إزالة القرنية والعدسة 1,9
    1. قم بعمل شق صغير بطول 1 مم تقريبا حول طيفي القرنية ، الحدود بين القرنية والصلبة ، باستخدام مقص جراحي دقيق.
    2. قم بقص محيط القرنية بعناية ، واستئصالها بالكامل لكشف الهياكل الأساسية.
    3. استخدم ملقطا دقيقا لإمساك العدسة برفق ورفعها بعناية من الأنسجة المحيطة لمنع تلف شبكية العين. الحفاظ على السلامة الهيكلية لشبكية العين من خلال عملية دقيقة.
    4. انقل واقية العين إلى أنبوب جهاز طرد مركزي دقيق لمزيد من المعالجة.
      ملاحظة: استئصال القرنية واستخرج العدسة بكفاءة أكبر باستخدام تقنية "الشق المتقاطع"10. اصنع شقين متعامدين عبر القرنية واستخدم الملقط لاستخراج العدسة.
  5. شق الصلبة
    1. قم بقص شق دقيق في الصلبة بمقص عيون ناعم لتسهيل خطوات التشريح اللاحقة (الشكل 2J).
  6. فصل الشبكية
    1. أدخل ملقطا بأسنان في الشق بين الصلبة والشبكية. أمسك حافة الصلبة برفق ، وتجنب القوة المفرطة لمنع تمزق الأنسجة.
    2. قم بتكبير الشق تدريجيا عن طريق تحريك الملقط على طول الحدود بين الصلبة وشبكية العين بحركات يد بطيئة وثابتة. استخدم الجزء المسنن من الملقط لفصل الصلبة بعناية عن شبكية العين ، مما يضمن عدم تلف شبكية العين (الشكل 2J).
  7. قطع الشبكية
    1. قسم شبكية العين إلى أربعة لوحات متساوية الحجم تقريبا باستخدام مقص حاد. تأكد من أن الجروح في منتصف الطريق تقريبا نحو العصب البصري وموجهة بزاوية 90 درجة من بعضها البعض.
  8. تنظيف شبكية العين
    1. افتح شبكية العين المقطوعة برفق باستخدام فرشاة ذات شعيرات ناعمة ، وقم بإزالة الحطام بدقة من سطحها (الشكل 2 ك).
  9. التثبيت النهائي
    1. انقل شبكية العين المعزولة إلى أنبوب طرد مركزي دقيق يحتوي على 4٪ PFA طازج باستخدام ماصة باستور يمكن التخلص منها. اسمح بالتثبيت على الجليد لمدة 5 ساعات إضافية إلى طوال الليل للحفاظ على الأنسجة.

2. تلطيخ المناعة

  1. غسل
    1. اغسل شبكية العين المعزولة بالكامل في 1x PBS مع تحريك لطيف لمدة 5 دقائق. تجاهل حل PBS. كرر هذه العملية مرتين لإزالة المثبت والحطام المتبقية.
  2. حظر
    1. اغمر شبكية العين المغسولة في محلول عازل مانع (1x PBS مع 4٪ مصل حمار عادي (NDS) و 0.2٪ Triton X-100) لمدة 30 دقيقة لمنع ارتباط الأجسام المضادة غير المحددة وتعزيز النفاذية (الشكل 3 أ).
  3. حضانة الأجسام المضادة الأولية
    1. استبدل المخزن المؤقت للحجب بالجسم المضاد الأولي BRN3A (المخفف 1: 200 في المخزن المؤقت للحظر). احتضان شبكية العين طوال الليل عند 4 درجات مئوية للسماح بارتباط مستضد محدد بالجسم المضاد (الشكل 3 ب).
  4. غسل
    1. اغسل شبكية العين ثلاث مرات باستخدام 1x PBS لمدة 5 دقائق لكل منها لإزالة الأجسام المضادة الأولية غير المرتبطة وتقليل تلطيخ الخلفية (الشكل 3C).
  5. حضانة الأجسام المضادة الثانوية
    1. احتضان شبكية العين بجسم مضاد ثانوي مضاد للأرانب مترافق Alexa594 أو Alexa488 (مخفف 1: 300) لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة لتصور المستضدات المستهدفة (الشكل 3 د).
  6. غسل
    1. قم بإجراء ثلاث غسلات متتالية مع 1x PBS لمدة 5 دقائق لكل منها لإزالة الأجسام المضادة الثانوية الزائدة وتقليل الارتباط غير المحدد.
  7. تصاعد
    1. انقل شبكية العين الملطخة بالمناعة برفق إلى شريحة مجهر زجاجي ، وقم بتسطيحها بعناية لتقليل الطي أو التشويه.
    2. ضع قطرة صغيرة من وسيط التثبيت المضاد للبهتان على مركز شبكية العين ، مما يضمن التوزيع المتساوي عبر الأنسجة.
    3. ضع غطاء بعناية فوق شبكية العين المثبتة ، وتجنب فقاعات الهواء (الشكل 3E ، F).

3. معالجة الصور

ملاحظة: قم باستيراد الصورة إلى برنامج العد التلقائي RGC وابدأ العد. يمكن الحصول على عدد الخلايا الإيجابية BRN3A لشبكية العين بأكملها في دقائق. قم بتنزيل برنامج AutoCount من GitHub (https://github.com/MOEMIL/Intelligent-quantifying-RGCs). اتبع خطوات التثبيت التفصيلية للبرنامج أدناه:

  1. قم بتنزيل التعليمات البرمجية من رابط GitHub . سيتلقى المرء ملفا باسم "Intelligent-quantifying-RGCs.zip". قم بفك ضغط هذا الملف.
  2. قم بتنزيل الملفات الضرورية من القرص السحابي (انظر جدول المواد) وفك ضغطها. الملف الذي تم تنزيله يسمى "yolov5_cpu". قم بفك ضغط هذه الحزمة إلى المجلد الحالي لتجنب المشكلات غير المتوقعة.
  3. حدد موقع ملف التكوين من الخطوة 1 وقم بتعديل محتواه للإشارة إلى المسار "yolov5_cpu".
    ملاحظة: على سبيل المثال، إذا تم وضع "yolov5_cpu" الذي تم تنزيله في "D:\1me\yolov5_cpu_"، فقم بتغيير الملف "config.ini" في الخطوة 1 إلى "D:/1me/yolov5_cpu" (استخدم / بدلا من \). (الشكل 4 أ).
  4. افتح الواجهة الرسومية بالنقر فوق userinterface.exe. قد يكون التحميل الأولي بطيئا (يتم تشغيله كمسؤول) (الشكل 4 ب).
  5. بعد فتح البرنامج ، تحقق مما إذا كان ملف الطراز "pmse_plus.pt" موجودا في الدليل الجذر لمحرك الأقراص C. إذا لم يكن موجودا ، فانسخه إلى هذا الدليل.
    ملاحظة: يوجد ملف النموذج "pmse_plus.pt" في مجلد الأوزان في المجلد "yolov5"، الموجود في مجلد RGCs ذكي للقياس الكمي (الشكل 4C).
  6. قم بإعداد الصور المراد اكتشافها.
    ملاحظة: يسمح البرنامج بقراءة صورة واحدة أو خمس صور فقط في المرة الواحدة. ستؤدي قراءة المزيد إلى حدوث خطأ.

4. العد الآلي للخلايا

  1. افتح برنامج العد (الشكل 5 أ).
  2. انقر فوق فتح الصورة لاستيراد الصورة (الشكل 5 ب).
  3. انقر فوق RUN للسماح للبرنامج بحساب الخلايا تلقائيا (الشكل 5C).
    ملاحظة: سيقوم البرنامج بتمييز الخلايا التي تم عدها بمربع أحمر ويعرض عدد الخلايا في الزاوية اليمنى العليا (الشكل 5 د).

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوضح هذا البروتوكول بالتفصيل منهجية التلوين المناعي الكامل لشبكية العين ، مما يضمن التحضير الدقيق للأنسجة ، وحضانة الأجسام المضادة الدقيقة ، وعد الخلايا الآلي الموثوق. يسهل الإجراء وضع العلامات القوية وتحديد الخلايا العقدية الشبكية (RGCs) ، مما يتيح تقييما دقيقا للمجموعات الخلوية في سياقات تجريبية مختلفة. تم استخدام الطريقة لحساب RGCs في الفئران البرية والغرق ، مما أدى إلى نتائج متسقة. تظهر النتيجة التمثيلية أن عدد RGCs في فأر بالغ عادي في عمر شهرين يبلغ حوالي 45,000 (الشكل 6).

لتقييم ما إذا كان برنامج الذكاء الاصطناعي يمكنه تحديد RGCs المسمى BRN3a بدقة في النماذج العادية والمرضية ، قمنا بإنشاء نموذج فأر ناتج عن N-methyl-D-aspartate (NMDA) من الجلوكوما7. تم تلطيخ شبكية العين المثبتة بالكامل من هذا النموذج بمضاد BRN3A ، وتم قياس RGCs باستخدام برنامج العد التلقائي. أشارت النتيجة إلى تلطيخ الخلفية مرتفع نسبيا (الشكل 7). ومع ذلك ، كان البرنامج قادرا على تحديد جميع RGCs تقريبا بدقة. تم تحديد ما مجموعه 15,231 RGCs في شبكية العين هذه ، مقارنة بحوالي 45,000-50,000 RGCs في شبكية الفأر الطبيعية ، مما يشير إلى تنكس شديد. وبالتالي ، يمكن أيضا استخدام برنامج الذكاء الاصطناعي بشكل فعال لحساب RGCs في شبكية العين بجودة تلطيخ أقل مثالية.

figure-results-1
الشكل 1: رسم تخطيطي لإعداد RGC. (أ) تتم إزالة مقلة العين ووضعها في 1x PBS. (ب) يتم تثبيت مقلة العين بنسبة 4٪ PFA على الجليد لمدة 3 ساعات. (د) استخراج العدسة. (ه) ينقسم كوب العين إلى 4 لوحات باستخدام المقص. (و) يتم تقشير الصلبة وإزالة الحطام برفق من سطح الشبكية بفرشاة ناعمة. (ز) شبكية العين ذات علامة مناعية مضاد BRN3A. (ح) يتم تصوير إشارات الفلورسنت باستخدام مجهر متحد البؤر. (I) العد التلقائي ل RGCs. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2
الشكل 2: عزل شبكية العين الفأرية بالكامل. (أ) يتم القتل الرحيم للفأر عن طريق خلع عنق الرحم. (ب) يوضع الماوس على سطح مستو. (ج) تتم إزالة مقلة العين بعناية بالمقص. (د) يتم وضع مقلة العين برفق في 1x PBS. (ه) يتم تثبيت مقلة العين بالملقط على حافة القرنية. (و) يتم إجراء شق صغير على حافة القرنية بإبرة. (ز) تتم إزالة الهيكل على شكل وعاء بعد إزالة القرنية. (ح) تتم إزالة العدسة بعناية باستخدام ملقط. (I) يتم إجراء شق صغير على طول حافة القرنية باتجاه العصب البصري على الصلبة ، لتجنب تلف الشبكية. (ي) تمزق الصلبة على طول الشق بالملقط. (ك) يتم تسطيح شبكية العين وتنظيفها بفرشاة الرسم. (ل) يتم تسطيح شبكية العين وتثبيتها بسرعة بالميثانول المثلج. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-3
الشكل 3: تلغيم مناعي لشبكية الفأر بالكامل. (أ) بعد الغسيل باستخدام 1x PBS ، يتم حظر شبكية العين بمخزن مؤقت مسد. (ب) يتم تحضين شبكية العين بجسم مضاد أولي عند 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها. (ج) يتم غسل شبكية العين ب 1x PBS ثلاث مرات. (د) يتم تحضين شبكية العين بجسم مضاد ثانوي لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة. (ه) يتم تثبيت شبكية العين على شريحة زجاجية مع RGCs متجهة لأعلى. (و) يتم الحصول على الصور باستخدام مجهر ليزر متحد البؤر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-4
الشكل 4: تركيب برنامج العد التلقائي. (أ) تتضمن الخطوة 1 تحديث مسار الملف إلى الدليل "yolov5_cpu". (ب) يتم تشغيل الواجهة الرسومية. (ج) التحقق من وجود ملف النموذج في الدليل الجذر لمحرك الأقراص C. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

figure-results-5
الشكل 5: تشغيل برنامج عد RGC الآلي. (أ) تم فتح برنامج العد. (ب) يتم النقر فوق الزر OPEN IMAGE لاستيراد الصورة. (ج) يتم النقر فوق الزر RUN لبدء العد التلقائي. (د) يتم تمييز الخلايا التي تم عدها بمربع أحمر ، ويتم عرض رقم الخلية في الزاوية اليمنى العليا. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-6
الشكل 6: العد الآلي ل RGCs الماوس. تظهر اللوحة العلوية (على اليسار) نتائج تمثيلية لشبكية العين المسطحة الملطخة بمضادات BRN3A ؛ تعرض اللوحة العلوية (يمين) العد التلقائي ل RGCs باستخدام البرامج المطورة مسبقا. شريط المقياس: 100 ميكرومتر. يتم تكبير الإدخالات من الألواح العلوية وعرضها في اللوحة السفلية ، على التوالي. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-7
الشكل 7: عد RGC في نموذج فأر من الزرق الناجم عن NMDA. اللوحة اليسرى: نظرة عامة على شبكية العين المثبتة بالكامل، توضح RGCs المعترف بها بواسطة برنامج الذكاء الاصطناعي. اللوحة اليمنى: منظر مكبر لمنطقة جزئية من شبكية العين. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوفر هذا البروتوكول طريقة لتحديد جميع الخلايا العقدية الشبكية (RGCs) في شبكية الفأر ، والتي يمكن استخدامها لمراقبة تطور تنكس RGC في نماذج الفئران لدراسات الجلوكوما. شبكية الفأر عبارة عن نسيج عصبي رقيق5 ، ويتطلب عزل شبكية العين الكاملة عن عيون الفأر ممارسة متكررة. أثناء التجريب ، وجد أن وقت التثبيت يؤثر بشكل كبير على مورفولوجيا شبكية العين. بالنسبة للفئران التي يبلغ عمرها حوالي أسبوعين ، يكون وقت التثبيت لمدة 20 دقيقة كافيا للحصول على نتائج جيدة بسبب الصلبة الرقيقة والضعيفة. ومع ذلك ، بالنسبة للفئران البالغة التي يزيد عمرها عن شهرين ، فإن 20 دقيقة من التثبيت غير كافية. يعد وقت التثبيت البالغ 3 ساعات مثاليا للحصول على شبكية العين السليمة.

في عملية عزل شبكية العين ، فإن الخطوة الأكثر تحديا هي فصل الصلبة عن شبكيةالعين 10. يمكن تقشير الصلبة بسهولة نسبيا من شبكية العين باستخدام مجموعتين من الملقط بأطراف مسننة. باستخدام مجموعتي الملقط لإمساك الصلبة وتفكيكها ، يتم تمزيق الصلبة إلى قطع صغيرة وفصلها عن شبكية العين.

تعد الصورة عالية الجودة للخلايا العقدية الشبكية (RGCs) أمرا بالغ الأهمية للعد الدقيق. نظرا لأن شبكية العين ثلاثية الأبعاد ، فليست كل RGCs على نفس المستوى في شبكيةالعين 8 المثبتة بشكل مسطح. عندما يتم تثبيت شبكية العين على شريحة زجاجية ، يجب أن تنتشر بشكل مسطح قدر الإمكان لتسهيل التصوير اللاحق. أثناء التصوير ، يتم الحصول على الصور بمستويات تركيز متعددة لالتقاط جميع RGCs عبر مناطق مختلفة من شبكية العين بأكملها.

باختصار ، يوفر هذا البروتوكول إجراء موحدا للعد التلقائي لجميع RGCs في شبكية الماوس المثبتة بشكل مسطح. تمكن هذه الطريقة العلماء من تقييم تنكس RGC بدقة في نماذج الفئران ، مما يعزز كفاءة ودقة القياس الكمي RGC. هذه الدقة ضرورية لفهم وعلاج الجلوكوما والأمراض ذات الصلة.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين أي تعارض للإفصاح عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا المشروع البحثي من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (82371059 (HZ)) ، وإدارة العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة سيتشوان ، الصين (2023JDZH0002 (HZ)) ، ومكتب تشنغدو للعلوم والتكنولوجيا (2022-YF05-01984-SN (H.Z.)) ، ومستشفى الشعب بمقاطعة سيتشوان (30320230095 (JY) ، 30420220062 (JY)).

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
1 وأقات. PBSServicebioG4202
Alexa594 الماعز المضاد للأرانب IgG & nbsp ؛ (H + L)ThermoFisherA-11012
المضاد ل BRN3A [EPR23257-285]
AutoCounthttps://github.com/MOEMIL/Intelligent-quantifying-RGCs
القرص السحابيرمز استخراج رابط Baidu: g44khttps://pan.baidu.com/s/1lccg1OVbeudsp2VtnqxWZg  ؛
ماركرشاربي
سيروم دونكي نورمالبيوشارب ، لبجيك25030081
بارافورمالدهيدماكلينP804536
بروكلين 300بيوتيمST853
سكروزبي بي آي ، سانجونA610498
تريتون X-100بيو فروكس ، نيو فروكس1139 مللي 100
الجسم المضاد برنامج Abcam ab245230 القرص السحابي رابط محرك Google https://drive.google.com/file/d/1yOEsBvil6KEdZFa5ENQxB6  ؛

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Quigley, H. A., Broman, A. T. The number of people with glaucoma worldwide in 2010 and 2020. Br J Ophthalmol. 90 (3), 262-267 (2006).
  2. Gallo Afflitto, G., Swaminathan, S. S. Racial-ethnic disparities in concurrent rates of peripapillary & macular OCT parameters among a large glaucomatous clinical population. Eye. , (2024).
  3. Atkinson, M. J., et al. A new measure of patient satisfaction with ocular hypotensive medications: the Treatment Satisfaction Survey for Intraocular Pressure (TSS-IOP). Health Qual Life Outcomes. 1, 67(2003).
  4. Guo, J., et al. A new mouse-fixation device for IOP measurement in awake mice. Vision Res. 219, 108397(2024).
  5. Almasieh, M., Wilson, A. M., Morquette, B., Cueva Vargas, J. L., Di Polo, A. The molecular basis of retinal ganglion cell death in glaucoma. Prog Retin Eye Res. 31 (2), 152-181 (2012).
  6. Jeon, C. J., Strettoi, E., Masland, R. H. The major cell populations of the mouse retina. J Neurosci. 18 (21), 8936-8946 (1998).
  7. Zhang, J., et al. Automatic counting of retinal ganglion cells in the entire mouse retina based on improved YOLOv5. Zool Res. 43 (5), 738-749 (2022).
  8. Al-Khindi, T., et al. The transcription factor Tbx5 regulates direction-selective retinal ganglion cell development and image stabilization. Curr Biol. 32 (19), 4286-4298 (2022).
  9. Claes, M., Moons, L. Retinal ganglion cells: Global number, density and vulnerability to glaucomatous injury in common laboratory mice. Cells. 11 (17), 2689(2022).
  10. Zhang, N., Wang, Z., Lin, P., Xing, Y., Yang, N. Methanol-based whole-mount preparation for the investigation of retinal ganglion cells. J Vis Exp. (194), e65222(2023).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

BRN3A

مقالات ذات صلة