$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
إجراء
شرائح طلاء مع فبرونيكتين
قبل تركيب الجهاز ميكروفلويديك ، تعقيم شرائح الزجاج مع فبرونيكتين. معطف الشرائح في biohood للحفاظ على العقم. هل محاذاة PDMS العقيمة على طول حواف الشريحة ووضع علامة على الجانب الذي يواجه حتى مع علامة دائمة. ماصة 1 مل من محلول ميكروغرام / 5 مل من فبرونيكتين (سيغما) داخل هل PDMS على كامل الشريحة الزجاجية. مغادرة الشرائح دون عائق لمدة ساعة ، ثم جافة تماما باستخدام قدرها 2 N البندقية. ويمكن تخزين الشرائح في 4 درجة مئوية في وقت لاحق لاجراء تجارب.
تجميع الجهاز
ويتم تجميع الجهاز بأكمله في بروتوكول biohood تحت ظروف معقمة ، وذلك باستخدام الإجراءات التالية :
- تنظيف رئيسية السيليكون مع microchannels منقوشة عليها من قبل القضاء عليه مع 70 ٪ من الإيثانول والتجفيف مع مدفع 2 N. هل وضع PDMS العقيمة من ارتفاع 1 ملم باستخدام الملقط حول ميزات تخفيف الرئيسية.
- تحضير هلام agarose المستخدمة في الجهاز عن طريق وزنها 0.3 غرام من مسحوق agarose (فيشر العلمية) و 10 مل من ثاني أكسيد الكربون 2 وسائل الإعلام المستقلة (Invitrogen) في دورق 50 مل. يحرك الخليط مع ملعقة والحرارة في الميكروويف لمدة 20 ثانية على ارتفاع. إذا حبيبات غير منحل موجودة ، حرارة المزيج لمدة 10 ثانية ودوامة الخليط الساخن للتخلص من آخر ما تبقى حبيبات. كرر هذه العملية مع الوقت التدفئة من 8 ثوان ، ومن ثم 5 ثوان.
- من أجل حل بسرعة agarose على سيد السيليكون محاطة هل PDMS وتغطية الخليط على الفور agarose مع شريحة زجاجية معقمة. تطبيق المستمر ، والضغط لطيف إلى الشريحة لحوالي 2 دقيقة للتأكد من أن agarose سوف هلام إلى نفس الارتفاع المستمر ملم (1) بوصفها هل PDMS.
- بعد agarose المواد الهلامية ، انزع agarose هلام منقوشة مع PDMS هل من السيليكون الرئيسي ونقلها إلى شريحة زجاجية مغلفة مع فبرونيكتين microchannels في هلام agarose تواجه الشريحة. استخدام غيض حقنة قياس 16 لكمة ثقوب في مناطق الخزان من microchannels عن مدخل ومخرج يصل. إضافة 500 ميكرولتر من وسائل الإعلام المستقلة CO 2 إلى هلام agarose منقوشة على الشريحة لمنع جفاف في microchannels.
- غسل المتعددة الاكريليك المستخدمة في الجهاز مع 70 ٪ من الإيثانول والشطف بالماء DI. محاذاة الفتحات الموجودة في مشعب مع ثقبا في agarose هلام مع microchannels. ثم ، محاذاة متعددة مع هلام ، هل PDMS ، والشريحة فبرونيكتين مع الإطار المعدني للجهاز. مكان البراغي في الجهاز وتشديد إلى نقطة المقاومة باستخدام مفك. يتم ذلك لضمان عدم الإفراط في الجهاز شددت الى حد التشويه وmicrochannels في agarose. تشديد الخناق في ترتيب عقارب الساعة للتأكد من أن جل داخل الجهاز لا تحول. اختبار الجهاز للكشف عن التسربات وانسداد في microchannels باستخدام المحاقن 1ml. يتم تركيب أنابيب المحقنة مع Tygon مع طرف ماصة هلام التحميل في نهاية الأنبوب لحقن ثاني أكسيد الكربون 2 وسائل الإعلام المستقلة في microchannels. ويعتبر الشخص متناهية شكلت بنجاح عندما لاحظ وسائل الاعلام فقط للخروج من مأخذ للمتناهية عندما يتم حقن سائل الإعلام في مدخل المناظرة. الآن ، الجهاز جاهزا للاستخدام.
إعداد والبذر للخلايا في الجهاز
عندما الخلايا تصل إلى 70 ٪ (حوالي 100،000 كثافة خلية خلية / مل) confluency ، انهم مستعدون ليكون المصنف في الجهاز.
تخضع هذه الخلايا لمدة DPBS (Invitrogen) يغسل. إضافة 200 ميكرولتر من التربسين - EDTA (Invitrogen) لفصل الخلايا. نقل الخلايا إلى أنبوب الطرد المركزي 15 مل تحتوي على وسائل الإعلام 5ml M2 تحتوي على مصل لإبطال نشاط التربسين. طرد وسائل الاعلام مع نمو الخلايا في 1000 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق. يستنشق قبالة طاف وresuspend الكرية من الخلايا 5 مل من DPBS. الطرد المركزي الخلايا DPBS مرة أخرى تحت نفس الظروف. يستنشق قبالة طاف مرة أخرى ، وresuspend الكرية من الخلايا في 500 ميكرولتر من CO 2 وسائل الإعلام المستقلة.
التعليق البذور الناتجة من الخلايا في مركز متناهية من الجهاز عن طريق الجاذبية يحركها التدفق. إضافة مدخل ومخرج للمركز متناهية مع 60 ميكرولتر من التعليق الخلية و 20 ميكرولتر من المتوسط 2 - مستقلة أكسيد الكربون ، على التوالي. مركز مراقبة تحت المجهر متناهية brightfield للبحث عن التصاق الخلية. الخلايا تلتزم عادة بعد 10 دقيقة. بعد الخلايا الانضمام إلى أسفل القناة في مناطق ذات كثافة الصحيح ، pipeted خارج الخلية تعليق المتبقية في مدخل ومخرج في وسائل الاعلام. 60 ميكرولتر مكان من ثاني أكسيد الكربون 2 وسائل الإعلام المستقلة في كل من مدخل ومخرج للقناة الوسط. مكان PDMS يغطي ما يزيد على عشرةه مركز مدخل ومخرج لتقليل التبخر من وسائل الإعلام من قناة الوسط.
تصوير الخلايا في الجهاز
قبل تجميع الجهاز ، الصفحات الأنبوب عقيمة تمعجية من خلال محطة الطقس من المجهر (أوليمبوس X81) والتواصل مع مضخة تمعجية (واطسون ، مارلو 205U/CA). دافق من خلال برنامج تلفزيوني الأنبوب بمعدل 4 دورة في الدقيقة. بعد تجميع الجهاز وإعداد تركيزات مناسبة من عامل نمو البشرة (EGF) (سيغما) الحلول في وسائل الإعلام المستقلة 2 - CO في أنابيب الطرد المركزي 15 مل. دوامة الحلول EGF لمدة 5 ثوان والتواصل مع الأنابيب. توصيل الأنابيب التي تحمل تركيزات EGF المقابلة للجهاز. الامر يستغرق نحو ساعة لEGF لنشر عبر التلال وإنشاء قناة التدرج كيميائية ثابتة.
يتم استخدام البرمجيات والتصوير ، وSlidebook ، باتخاذ مجموعة من الصور في كل 10 دقائق لحوالي 5 ساعات في تشغيل التجريبي. وتمت برمجة مرحلة XY الآلي بحيث يتم تصوير فريقين فرعيين المناطق (كل بمساحة x400μm 400μm) من قناة نفس المركز ، ومجموعه قنوات المركز الثلاثة في نقطة زمنية معينة. الخلايا في قنوات مختلفة مركز (عادة 3 في واحد تشغيل) وتركيزات مختلفة EGF ، وضعت في الأنابيب.
مواد ومعدات
خطوط الخلية : C17.2 NSCs الخلايا المشتقة من الطبقة الخارجية للمخيخ جرثومي الماوس بعد الولادة 6 ، 7. استخدام هذا الخط الخلية ، وضعنا اثنين آخرين من الخلايا الجذعية باستخدام خطوط الفئران الارتجاعي ترنسفكأيشن الأسلوب. هذين ستابلي transfected خطوط الخلايا هي : (1) wtEGFR -- أن الإفراط في الإنسان تعرب عن EGFR نوع البرية ، و (2) ΔEGFR -- التي هي متحولة EGFR constitutively النشطة. لسهولة الكشف والفيروسات القهقرية تحمل العمود الفقري مع الجين المصالح يعقبه موقع الداخلية للربط الريباسي (IRES) والبروتين الفلوري الأخضر (GFP).
خلية ثقافة : كانت تزرع الماوس C17.2 NSCs والمتغيرات في لوحة 6 - M2 جيدا في وسائل الإعلام (DMEM (Invitrogen) مع 10 ٪ مصل بقري جنيني (FBS) (Invitrogen) ، و 5 ٪ مصل الحصان (HS) (Invitrogen ) ، و 1 ٪ البنسلين / الستربتوميسين (Invitrogen)) واستمرت الخلايا في درجة مئوية و 37 في الهواء بنسبة 80 ٪ و 5 ٪ CO 2.
ميكروفلويديك الجهاز : مشعب بلاستيكية وهل PDMS ، والإطار الذي لا يصدأ لعقد الجهاز في مكانه.
التصوير
ويستخدم مجهر مقلوب فلوري (أوليمبوس IX - 81) ، في اتصال مع كاميرا CCD المكثف (أوركا ، هاماماتسو). هي التي شنت على الجهاز ميكروفلويديك مرحلة XYZ الآلي ، ويتم تضمينه في المرحلة قبل الغرفة البيئية التي تحافظ على درجة حرارة 37 درجة مئوية. عادة ما تكون هناك أجهزة 3-4 على الشريحة نفسها التي سيتم تصويره في الوقت نفسه باستخدام نقطة مرحلة XYZ الآلي.
الحفاظ على التدفق
ويستخدم مضخة تمعجية مع 8 خطوط متوازية (واطسون ، مارلو 205U/CA) للحفاظ على تدفق السيارات في جميع المصارف وقنوات المصدر.

التين. 1 سلالات NSC على الحركة الثلاثة (الوالدين ، wtEGFR وEGFR D) في تركيزات مختلفة EGF تؤخذ جميع المسارات من تعقب فيلم من 5 ساعات (باستثناء wtEGF 100ng/ml ، 4hour) ، وكان منشأ جميع المسارات تعديل أوضاعها في (0،0) لغرض المقارنة.

التين. 2 العددية بين مستوى التعبير والحركة EGFR (أ) صورتين من NSCs wtEGF على سطح قناة ميكروفلويديك مع EGF 100ng/ml. الصورة اليسرى هي صورة الفلورسنت ، والحق هو حقل الصورة المنقولة مشرق. شريط المقياس 100μm ، و قناة العرض هو 400 ميكرون. يتم فصل الخلايا في اثنين من السكان من قبل سطوع GFP التي أعرب عنها. الخلايا في الدوائر الزرقاء هي باهتة ، وبالتالي أقل EGFR مستوى التعبير ، والخلايا في الدوائر الحمراء هي brigher ، وبذلك أعلى مستوى التعبير EGFR. (ب) من الخلايا التي تحتوي على مسارات المنخفضة والعالية المستوى EGFR التعبير. وتتخذ هذه المسارات من فيلم مدته ساعة الأربعة.